实验九 液泡系和线粒体的活体染色及观察
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线粒体的超活染⾊与观察【实验⽬的】掌握动物细胞活体染⾊的原理与相关的技术。
【实验原理】活体染⾊就是指对⽣活有机体的细胞或组织能着⾊但⼜⽆毒害的⼀种染⾊⽅法。
它的⽬的就是显⽰⽣活细胞内的某些结构,⽽不影响细胞的⽣命活动与产⽣任何物理、化学变化以致引起细胞的死亡。
活染技术可⽤来研究⽣活状态下的细胞形态结构与⽣理、病理状态。
根据所⽤染⾊剂的性质与染⾊⽅法的不同,通常把活体染⾊分为体内活染与体外活染两类。
体内活染就是以胶体状的染料溶液注⼊动、植物体内,染料的胶粒固定、堆积在细胞内某些特殊结构⾥,达到易于识别的⽬的。
体外活染⼜称超活染⾊,它就是由活的动、植物分离出部分细胞或组织⼩块,以染料溶液浸染,染料被选择固定在活细胞的某种结构上⽽显⾊。
活体染料之所以能固定、堆积在细胞内某些特殊的部位,主要就是染料的“电化学”特性起重要作⽤。
碱性染料的胶粒表⾯带阳离⼦,酸性染料的胶粒表⾯带阴离⼦,⽽被染的部分本⾝也就是具有阴离⼦或阳离⼦的,这样,它们彼此之间就发⽣了吸引作⽤。
但不就是任何染料皆可以作为活体染⾊剂之⽤,应选择那些对细胞⽆毒性或毒性极⼩的染料,⽽且总就是要配成稀淡的溶液来使⽤。
⼀般就是以碱性染料最为适⽤,可能因为它们具有溶解在类脂质(如卵磷脂、胆固醇等)的特性,易于被细胞吸收。
詹纳斯绿B(Janusgreen B)与中性红(neutral red)两种碱性染料就是活体染⾊剂中最重要的染料,对于线粒体与液泡系的染⾊各有专⼀性。
线粒体就是细胞进⾏呼吸作⽤的场所,其形态与数量随不同物种、不同组织器官与不同的⽣理状态⽽发⽣变化。
詹纳斯绿B就是毒性较⼩的碱性染料,可专⼀性地对线粒体进⾏超活染⾊,这就是由于线粒体内的细胞⾊素氧化酶系的作⽤,使染料始终保持氧化状态(即有⾊状态),呈蓝绿⾊;⽽线粒体周围的细胞质中,这些染料被还原为⽆⾊的⾊基(即⽆⾊状态)。
【实验⽤品】1、材料:⼩⽩⿏肝脏、睾丸2、试剂:Ringer溶液:NaCl 0、85g + KCl0.25g+ CaCl2 0、03g+ 蒸馏⽔100ml;1%、1/5000詹纳斯绿B溶液:称取50mg詹纳斯绿B溶于5ml Ringer溶液中,30-40℃加热,使之溶解,⽤滤纸过滤后,即为1%原液。
线粒体和液泡系的超活染色与观察实验报告实验目的:
1. 了解超活染色的原理;
2. 掌握超活染色的方法;
3. 观察线粒体和液泡系的结构特点;
4. 学习常用的显微镜操作技巧。
实验步骤:
1. 取一份新鲜叶片,用透明胶带轻轻压住叶片,将透明胶带带上的叶片剥离下来。
2. 将剥离下的叶片放在载玻片上,加一滴超活染色溶液,并用盖玻片盖住。
3. 用粗目显微镜观察叶片上染色体的变化情况,观察细胞器的数量和形态特征,用细目显微镜进行进一步观察和记录。
实验结果:
经过超活染色处理后,我们可以清晰地观察到叶片细胞的结构特点。
其中,线粒体是细胞内重要的细胞器之一,其形态大小各异,常常呈圆柱状,且有许多线粒体。
而液泡是细胞内的囊状体,它可以储存水分、营养物质、色素等,体积大小不一,可见度较低,需要用高倍显微镜进行观察。
实验分析:
超活染色是一种能够使细胞有机物分解的过程中的酶不会破坏细胞结构和细胞器的染色方法。
该方法对细胞膜和细胞器的染色效果非常好,有助于观察和研究细胞的生理和功能,尤其是在细胞形态变化研究和药物筛选方面有着广泛的应用。
实验总结:
本次实验,通过超活染色,我们成功地观察到了植物叶片细胞内线粒体和液泡系的形态特点。
同时,我们也掌握了常用的显微镜操作技巧,对现代生命科学领域中细胞结构和功能的研究提供了帮助。
线粒体和液泡系的超活染色与观察_百替生物实验一、线粒体和液泡系的超活染色与观察一、实验目的掌握一种活体染色方法,了解光学显微镜下线粒体和液泡系基本形态结构。
二、实验用品(一)材料和标本兔子一只、线粒体的电镜照片;蟾蜍一只,软骨细胞电镜照片。
(二)器材和仪器显微镜、手术器材一套、解剖盘、小平皿、载片、盖片、吸水纸、10ml注射器、吸管。
(三)试剂 l/300詹纳斯绿B染液、Ringer氏液(哺乳类用);l/3000中性红染液、Ringer氏液(两栖类用)。
三、实验内容(一)兔肝细胞线粒体的活体染色1.原理线粒体是细胞内一种重要细胞器,是细胞进行呼吸作用的场所。
细胞的各项活动所需要的能量,主要是通过线粒体呼吸作用来提供的。
活体染色是应用无毒或毒性较小的染色剂真实地显示活细胞内某些结构而又很少影响细胞生命活动的一种染色方法。
詹纳斯绿B 是线垃体的专一性活体染色剂。
线粒体中细胞色素氧化酶使染料保持氧化状态呈蓝绿色,而在周围的细胞质中染料被还原,成为无色状态。
2.方法用空气栓塞处死兔子,置于解剖盘内,迅速打开腹腔,取兔肝边缘较薄的肝组织一小块(2~3mm3),放入盛有Ringer氏液的平皿内洗去血液(用镊子轻压),用吸管吸去Ringer 氏液,在平皿内加1/300詹纳斯绿B染液,让组织块上表面露在染液外面,使细胞内线粒体的酶系可进行充分的氧化,这样才有利于保持染料的氧化状态,使线粒体着色。
当组织块边缘染成蓝色时即可,一般需要染30分钟。
染色后,将组织块移到载片上,用镊子将组织块拉碎,就会有一些细胞或细胞群从组织块脱离。
将稍大的组织块去掉,使游离的细胞或细胞群留在载片上,加一滴Ringer氏液,盖上盖片,吸去多余水分。
3.结果显微镜观察,肝细胞质中许多线粒体被染成蓝绿色,呈颗粒状。
(二)蟾蜍胸骨剑突软骨细胞液泡系活体染色及观察1.原理在动物细胞内,凡是由膜所包围的小泡和液泡除线粒体外都属于液泡系,包括高尔基器、溶酶体、微体、消化泡、自噬小体、残体、胞饮液泡和吞噬泡,都是由一层单位膜包围而成。
线粒体活体染色及观察小白鼠肝细胞线粒体的超活染色及观察一、实验目的掌握动物细胞活体染色的原理和相关的技术。
二、实验原理活体染色是指对生活有机体的细胞或组织着色但又无害的一种染色法。
它的目的是显示生活细胞内某些结构,而不影响细胞的生命活动和产生任何物理、化学变化以致引起细胞的死亡。
詹纳斯绿B(Janus green B)是毒性较小的碱性染料,可专一的对线粒体进行超活染色,这是由于线粒体内的细胞色素氧化酶系的作用,使染料始终保持氧化状态(即有色状态),呈蓝绿色;而线粒体周围的细胞质中,这些染料被还原为无色的色基(即无色状态)。
三、实验用品1.材料:小白鼠肝脏2.试剂:Ringer溶液:NaCl 0.85g + KCl 0.25g + CaCl2 0.03g + 蒸馏水100ml1%、1/5000詹纳斯绿B溶液:称取50mg詹纳斯绿B溶于5ml Ringer溶液中,30-40℃加热,使之溶解,用滤纸过滤后,即为1%原液。
取1%原液1ml加入49ml Ringer溶液,即为1/5000工作液装入棕色瓶中备用。
3.器材:显微镜、解剖盘、剪刀、吸管、载玻片、盖玻片、擦镜纸四、实验步骤1.用断头法处死小白鼠,置于解剖盘中,剪开腹腔,取出肝脏,选取边缘较薄的肝组织0.5cm2,放入小烧杯中,用Ringer液冲洗去血污。
2.滴加1/5000詹纳斯绿B溶液于双凹片的凹穴中,再将上述洗净肝组织移入染液,染色20-30分钟,以细胞块边缘被染成蓝绿色为准。
(注意:染色时要使组织块上面部分半露在染液外,不可完全淹没,以便使线粒体酶系得到氧化)3.吸去染液,将肝组织重置小烧杯中,滴加Ringer溶液0.5ml,用剪刀将组织充分剪碎制悬液。
4.取上述细胞悬液滴片,加盖玻片,高倍镜下观察。
五、实验结果在高倍镜下观察到了小鼠肝细胞,每个细胞中都有一些被染成蓝绿色的球状结构,为线粒体。
如下页图所示:高倍镜下线粒体超活染色图六、分析与讨论1.在取肝脏时要注意大小,大概为指甲盖的1/3左右为宜,且不宜太厚,防止里面的线粒体不宜被染色,影响实验结果的观察。