蝴蝶兰组织培养

毕业论文（设计）学生姓名:指导教师：专业名称: 园林技术所在系部：园林系2010年 3 月 9 日辽宁林业职业技术学院毕业论文评审书蝴蝶兰品种组织培养技术摘要：被誉为“洋兰王后"的蝴蝶兰，几年来一直都处于花卉销售的首位，一直受到花迷们的青睐。

近年来除了盆花,还大量被用作切花材料，切花中除我们常见的插花用途之外，还是制作胸花的好材料，在开会庆典场合备受瞩目，至于用来制作新娘捧花，也是目前国内流行的新风潮，深受广大消费者的好评，这就使得高品质的蝴蝶兰需求量逐年增加。

但目前由于专业性培育蝴蝶兰的整体水品不是很高，关键的生产环节技术薄弱,造成蝴蝶兰生产成本较高繁殖系数偏低,工业化生产效率不高，许多名贵品种短缺，品质较低,且市场售价较高。

因此建立和完善蝴蝶兰组培快繁技术是解决这一问题的关键环节。

本文针对植物组织培养中常见的褐变现象,详细地分析了其产生的机理及影响因素，并提出了相应的对策，为科研和生产提供了一定的理论和实践依据。

关键词：蝴蝶兰；快繁技术；养殖;褐变目录前言……………………………………………………………………………………………第一章蝴蝶兰的生态习性…………………………………………………第二章蝴蝶兰的快速繁殖技术…………………………………………………2.1茎尖培养…………………………………………………2。

2蝴蝶蝶兰的诱导培养基为ＶＷ、ＫＣ、ＭＳ、ＢＫ……………………………2。

3叶片培养…………………………………………………2.4花梗腋培养…………………………………………………2。

5根尖培养…………………………………………………2.6 原球茎的继代培养与育苗…………………………………………………第三章蝴蝶兰的栽培管理…………………………………………………3.1栽培介质…………………………………………………3.2温度……………………………3。

3浇水………………………………………………………………………3.4光照……………………………………………………………………3。

农技服务园艺作物·55·2017，34（24）蝴蝶兰的组织培养概述卢　舒，林浩群（揭阳市农业科学研究所，广东 揭阳 522000）作者简介：卢舒（1988.7-），女，广东省揭阳人，初级农艺师，主要从事农艺工作，研究方向：农作物新品种技术研究。

［摘要］本文从蝴蝶兰外植体选择、培养基、激素和添加物的选择、原球茎的增殖与生根壮苗等几方面概述了蝴蝶兰的组织培养技术的研究进展，为其组培技术研究提供参考。

［关键词］蝴蝶兰；农业；组织培养；快速繁殖蝴蝶兰(Phalaenopsis aphrodite Rchb. F.)为兰科蝴蝶兰属，由于它的花形较为优美、色彩多样且鲜丽、花期较长而享有“兰花皇后”的美誉，观赏价值和经济价值都很高，是世界上四大最具商业价值观赏热带兰的其中一个。

蝴蝶兰为单茎性气生兰，较少侧芽生成，再生能力不高，不利于一般的分株繁殖；且无胚乳的种子在自然环境中难以萌发，难以满足市场的大量需求。

农业科研工作者一直在探索蝴蝶兰优质种苗快速繁殖的方法，其中应用植物组织培养技术进行快速繁殖已经成为蝴蝶兰种苗繁殖最好的方法。

组织培养方法可以缩短繁育周期，获得大量成株，还可以保持种质优良性状。

本文从外植体选择、培养基、激素和添加物的选择、原球茎的增殖与生根壮苗等几方面概述了蝴蝶兰的组织培养的研究进展，以期为蝴蝶兰的生产发展提供有益的信息。

１外植体的选择　对外植体培养成功与否的其中一个主要影响因素就是外植体的来源，花梗芽、叶片、茎尖和根等都是蝴蝶兰组织培养中经常利用的诱导原球茎的外植体。

由于组织培养的分化能力和分化程度与品种、选取的器官有关，所以要成功地进行蝴蝶兰组织培养就要选择合适的外植体进行无菌操作。

1.1花梗芽蝴蝶兰花梗芽是最佳的组培培养外植体，具有易取材、易消毒、对母株损伤小、诱导率高等优点。

从蝴蝶兰产生花梗到花谢期间，绿色的花梗都可以取材，一般越嫩的花梗诱导出的原球茎生长状况越好。

2023-11-08•蝴蝶兰组培生产概述•蝴蝶兰组培生产的基本流程•蝴蝶兰组培生产的堤防事项•蝴蝶兰组培生产的常见问题与解决方案•蝴蝶兰组培生产的未来发展趋势与展望目录01蝴蝶兰组培生产概述蝴蝶兰是兰科蝴蝶兰属的一种植物，其花朵形状独特，色彩鲜艳，具有很高的观赏价值。

蝴蝶兰原产于热带雨林地区，喜欢温暖湿润的环境，不耐寒，需要较高的空气湿度和半阴的光照条件。

蝴蝶兰的生物学特性产的一种方法。

培养基的优化、继代培养和生根培养等环节。

产业。

通过组培生产，可以实现蝴蝶兰的全年供应，提高花卉市场的品种多样性。

此外，蝴蝶兰的组培生产还有助于保护珍稀野生资源和进行植物新品种的培育。

蝴蝶兰的组培生产在花卉产业中具有重要的地位，其繁殖速度快、周期短，可以满足市场对蝴蝶兰的大量需求。

02蝴蝶兰组培生产的基本流程确定培养基配方根据蝴蝶兰的品种和生长阶段，选择适宜的培养基配方。

常用的培养基配方有MS、1/2 MS、VW等。

制备培养基按照选定的配方，称取适量的琼脂、糖、激素等成分，加入蒸馏水，加热至琼脂溶化，然后调节pH值至适宜的范围。

培养基的制备选择健康、无病虫害的蝴蝶兰植株作为外植体，如叶片、茎段、花梗等。

选择外植体将外植体表面清洗干净，然后进行消毒处理，以杀死表面的细菌和真菌。

常用的消毒剂有升汞、酒精等。

外植体消毒外植体的选择与处理在超净工作台上进行无菌接种操作，确保无菌环境。

无菌环境将消毒好的外植体切割成适宜的大小，然后接种到培养基上。

接种时要避免交叉污染，每个瓶内只接种一种外植体。

接种操作将接种好的培养瓶放置在恒温培养箱内，保持适宜的温度、湿度和光照条件。

一般而言，适宜的温度为25℃左右，光照强度为2000-3000勒克斯。

培养条件无菌接种与培养经过一段时间的培养后，外植体上的组织会逐渐生长扩大，需要进行继代培养以维持其生长。

继代培养与增殖继代培养蝴蝶兰的增殖途径包括腋芽增殖、丛生芽增殖和根尖增殖等。

不同的增殖途径具有不同的特点和适用范围。

蝴蝶兰的组织培养研究本试验以蝴蝶兰原优良品种满天红花梗为外植体，对休眠芽萌发诱导、叶片原球茎诱导、原球茎增殖、根诱导和组培苗的移栽等方面进行初步研究，得出以下结果： 1、花梗休眠芽的诱导在夏季、秋季、春季三个季节选取含休眠芽的花梗节段进行培养，对污染率、休眠芽萌发诱导率和芽生长状况进行了比较。

试验表明秋季选取的花梗外植体灭菌效果最好，休眠芽萌发诱导率最高。

MS+BA 5.0培养基较适合休眠芽的诱导。

2、无菌苗叶片的原球茎诱导本试验以无菌苗叶片为外植体诱导原球茎产生，结果表明，BA浓度5.0mg·L^-1最适合叶片原球茎诱导，添加15％（V／V）椰乳（CW）能提高原球茎的诱导率，并有利于原球茎的生长。

MS+BA 5.0+CW 15％培养基较适合诱导叶片产生原球茎，诱导率最高达到38％。

3、原球茎的增殖在MS培养基中添加一定浓度的BA和果汁能提高原球茎的增殖率。

另外，添加聚乙烯吡咯烷酮（PVP）100～200mg·L^-1能有效控制培养基的酚污染、提高原球茎的增殖率。

MS+BA 5.0+CW 15％培养基较适合原球茎的增殖。

J‘西大学祝眨d卜学位论文4、根的诱导在1/2 Ms培养基中附加一定浓度NAA（0 .1一0.5mg’L一’）和多效哇MET（0 .1⁰.5mg’L一‘）与BA配合，能诱导小苗生根。

用多效哇诱导生根，幼苗矮壮，叶片较绿，有利提高幼苗的移栽成活率。

添加0.39一’活性炭（AC）能大大提高生根苗的平均根数和平均根长。

对根诱导较适合的培养基是:1/2 MS+B A 2.0+NAA 0.卜AC或1/ZMS+BA 2.0+MET 0.3。

5、组培苗移栽土上!苦篇乐左牙湘于丁石，卜Z戈寸汗吞目J 立伏禽己七心不破万县‘nl翻云六刁一谁才曰丢，卜Z人叹产1才曰日之习隆百冬观兀笠气1土刃尺水万万U圣a猫田联硒平葵啊权人。

不同培养基成分对蝴蝶兰组织培养褐化的影响●冯 宁（青州市花卉高科技博览园管理委员会 山东 青州 262500）摘要：蝴蝶兰，又被称为蝶兰，属于蝴蝶兰属附生兰类，是一种根部裸露在空气中吸收养分供自身生长的附生兰科植物，还是闻名的切花种类，深受欢迎，栽培范围相对广泛。

尽管近年来国内外对蝴蝶兰组培进行相关研究，但还局限于外植体和激素选择方面上，并没有对褐化问题进行系统研究和分析。

本实验从蝴蝶兰组织培养研究方面切入，通过对培养基配方调整和分析，观察得出不同培养基成分对蝴蝶兰组培苗褐化调控的影响程度，为其今后相关研究发展提供参考。

关键词：蝴蝶兰；组织培养；褐化蝴蝶兰花色相对艳丽，有 “兰中皇后”的美誉，不但拥有较强的观赏价值，经济价值也愈发突出，因此，不管是在国外花卉市场还是国内市场都十分受欢迎。

受其自身特性影响，蝴蝶兰几乎在自然条件下无法分株繁殖，并且如果种子发育不完全，萌发将很难进行，因此组织培养开始成为其最主要的繁殖方式。

在对蝴蝶兰进行组织培养时，因组培材料被切断，体内的酚类物质会与氧结合形成褐色的醌类物质，即组培届所说的“褐化”。

“褐化”物质——醌类与蝴蝶兰组织中蛋白质发生化学反应，不仅影响蝴蝶兰花梗的萌芽率，还严重影响组培苗后期生长及成品苗的开花质量和性状稳定。

因此，本文对培养基影响因素进行分析，以期抑制褐化产生，提升培养质量。

1 实验材料与方法本实验选取蝴蝶兰花梗作为实验材料。

1.1 取材选择芽体饱满、无病虫害的花梗，将其剪下，去除花蕾和开放的花朵。

将花梗用洗洁精清洗干净后，用流水冲洗2h以上。

1.2 外植体消毒与接种在超净工作台中将花梗切成3～4cm的小段，每段要带有1个芽。

然后用75%的酒精浸泡30s，用无菌水冲洗2～3次后，再用0.1%的升汞溶液浸泡15min左右，随后用无菌水冲洗5～6次。

将消毒后的花梗放在灭菌后的滤纸上，吸干水分，将两端被药蚀的伤口部位切掉，然后按照腋芽在花梗上的着生位置将花梗段进行分类，接种到培养基中。

蝴蝶兰组织培养研究进展摘要通过不同培养基、不同激素及添加物对蝴蝶兰各培养再生途径的影响进行了概述,为蝴蝶兰的组培技术研究提供参考。

关键词蝴蝶兰;组织培养;研究进展蝴蝶兰(Phalaenopsis)属热带或亚热带的兰科植物,深受人们的喜爱,研究和开发蝴蝶兰的组织培养具有重要的意义[1]。

组织培养是蝴蝶兰快速繁殖的有效方式,目前主要有3条途径:一是利用蝴蝶兰杂交种子在无菌条件下诱导发芽,获得再生植株[2];二是从离体器官诱导产生原球茎(Protocorm like-body,以下简称PLB),通过原球茎的增殖、分化获得再生植株,即原球茎再生途径[3,4];三是通过离体器官诱导产生丛生芽,通过培养丛生芽获得再生植株,即器官再生途径[4-7]。

1无菌播种再生途径蝴蝶兰经人工授粉可获得种子,但种子个体极其微小,结构简单,没有胚乳,只有1层极薄的种皮,通常在自然状态下很难萌发,需经组织培养无菌播种才能获得植株。

在蝴蝶兰开花时选择优良植株进行自交或杂交授粉,生长4～6个月后尚未开裂的蒴果可用于试管无菌播种。

由于蒴果内种子数量达几千万之多,1个蒴果便可繁殖出成千上万的植株[8]。

通过无菌播种人工培养,能够在短期内获得大量幼小植株,是现阶段经济有效的快速繁殖方法,也是工厂化育苗的重要途径。

种子无菌播种10d后胚明显膨大,呈鹅黄色,陆续变成绿色,约1个月的时间形成原球茎)。

随后,原球体拉长,同时原球体上伴随着长出白色根毛状物,接着在顶端生长点处长出芽鞘,芽鞘不断长大,形成第1片鞘叶。

至2个月时,于第1片鞘叶对面长出第2片鞘叶,随着鞘叶的生长,2～3个月的时间在2片鞘叶之间长出真叶。

最后,转移到新的培养基上形成再生植株[8-10]。

魏翠华等[9]研究发现,添加香蕉汁对蝴蝶兰种子发芽、原球体形成以及叶片的生长具有促进作用,水解乳蛋白对种子萌发有抑制作用,比较光照和黑暗2种培养条件,种子萌发无明显差异。

章玉平等[10]研究表明,外源植物生长调节剂对种子萌发有抑制作用,天然物质如苹果汁、香蕉汁、胰蛋白胨和活性炭对种子萌发具有促进作用。

蝴蝶兰组培种苗生产技术作者：刘思余来源：《西北园艺·果树专刊》 2017年第4期刘思余蝴蝶兰为兰科蝴蝶兰属多年生附生草本植物，花形如蝶，姿态优雅，色彩鲜艳，花期长久，在热带兰中素有“兰花皇后”之美誉，观赏价值极高，深受人们的喜爱，国内外市场的需求量越来越大。

蝴蝶兰属单型茎的兰花，很少有侧芽萌发，靠自然无性繁殖，繁殖率极低，速度慢，不能满足日益增长的市场需求；有性繁殖需经人工授粉才能获得种子，又因种子细小，发育不全，不含为种子萌发提供营养的胚乳和其他组织，而且种子萌发还需要共生菌滋养，所以在自然条件下很难萌发。

因此，组织培养是快速获得大量蝴蝶兰种苗的有效途径。

本文主要介绍通过花梗作为外植体，获得蝴蝶兰无菌种苗，再进行大量繁育蝴蝶兰种苗的生产技术。

1 组织培养技术1.1 无菌苗获得蝴蝶兰花梗作为外植体，不仅易获得，而且不会损伤植株，容易诱导。

选择侧芽饱满、新鲜、无病毒的蝴蝶兰花梗，整枝取下。

在切取花梗时要注意将刀片消毒，以防微生物感染。

将取下的花梗，去掉花朵，先用自来水冲洗，再用洗涤精浸泡5～7分钟，最后用自来水反复冲洗后放在超净工作台上进行表面灭菌。

先将花梗剪成3 cm左右的带芽梗段，用75%酒精浸泡5分钟，无菌水冲洗3次，再用2%次氯酸钠消毒20～30分钟，最后用无菌水冲洗2～3次，在整个消毒过程中，要不断摇动容器，使其能够均匀全面的消毒。

将消毒后的带芽梗段接种在诱导培育基1/2 MS+6-BA 3～5 mg/L+胰蛋白胨0.5～1 g/L+椰乳150～200 ml/L+蔗糖20～25 g/L+琼脂5.5～7 g/L。

培养20天后，侧芽萌发长出2叶片后，将其切下直接继代增殖或者诱导原球茎。

1.2 原球茎诱导将无菌小苗叶片切成小段，接种在MS+6-BA 4～6 mg/L+NAA 1～2 mg/L+胰蛋白胨0.5～1 g/L+椰乳150～200 ml/L+蔗糖20～25 g/L+琼脂5.5～7 g/L的培养基上诱导原球茎。

蝴蝶兰组织培养技术研究进展摘要：蝴蝶兰的传统繁殖方式为分株繁殖，繁殖系数低，速度慢，不能满足日益增长的市场需求。

组织培养是蝴蝶兰快速繁殖的有效途径，本文综述了蝴蝶兰的原球茎诱导增殖培养，并对我国未来蝴蝶兰研究发展进行了展望。

关键词：蝴蝶兰;原球茎;组织培养蝴蝶兰是兰科蝶属植物，花形奇特，色彩艳丽，花期持久，一般2～3个月，最长可达半年，适于家庭摆设或作切花用于花篮、花束等。

但蝴蝶兰很难用传统的方式进行无性繁殖。

蝴蝶兰是单茎性气生兰，植株很少发育侧芽，且种子极难萌发，对其进行常规性的繁殖，增殖速度很慢，故多采用组织培养的方法对其进行快速繁殖。

原球茎是兰科植物组织培养产生的特有现象。

原球茎的发生途径可以由花梗节段、幼叶、根段、茎尖等部位直接产生，也可以通过诱导愈伤组织，再从愈伤组织诱导原球茎产生。

不同外植体原球茎的诱导，其特点及培养基的选择也不同。

本文就蝴蝶兰原球茎诱导增殖培养的研究现状进行综述。

1 外植体的选择外植体的来源是决定外植体能否培养成功的重要因素，不同品种、不同器官之间的分化程度和能力存在差别，因此，在进行组织培养时必须选择合适的外植体进行无菌操作才能保证蝴蝶兰组织培养的成功。

常用于蝴蝶兰组织培养的外植体有茎尖、根、叶片和花梗芽。

1.1 茎尖茎尖是最早用于兰花快速繁殖的外植体，较容易诱导培养，是成功率较高的部位。

利用蝴蝶兰的茎尖诱导出类原球茎，再由类原球茎分化成苗。

这种培养的突出问题在于蝴蝶兰为单茎性植株，剥取茎尖就损坏了母株本身，而蝴蝶兰茎极短，操作困难，易污染。

但茎尖培养的优点是比较容易获取类原球茎或愈伤组织，因为茎尖分生组织细胞的生理年龄小，易于脱分化和分化，同时，操作细致还能达到脱毒效果，获得无病毒苗。

1.2 根尖蝴蝶兰根为外植体诱导原球茎的诱导率相对较低。

以蝴蝶兰新发生的根尖段切成0.5～0.8 cm接种到培养基上，遮光处理4～5 d，14d后可形成愈伤组织。

将蝴蝶兰根平放在培养基上经过约50 d的培养后，根尖顶端可长出原球茎，其诱导率在75％左右，而根尖分生区以外的根段上却诱导不出原球茎。

蝴蝶兰组培工厂化生产流程及注意事项蝴蝶兰原产于亚热带雨林地区，是附生性兰花，其气生根发达，生长过程中吸收空气中的养分，并促进光合作用，蝴蝶兰在种植过程中，需要通过人工授粉才能结出果实，所以人工授粉工作量大，不易于大量生产。

从而利用植物组培快繁技术，进行蝴蝶兰的组培苗生产，下面让我们来看下蝴蝶兰组培快繁流程及注意事项。

一、培养基的研究和配制1．在蝴蝶兰的组织培养中，培养基的种类与成分是决定组培成功与否的关键因素之一。

蝴蝶兰不同品种、不同培养材料或不同的生长阶段对培养基的要求都不同，因此，培养基的研究和选择是一个非常关键的基础性工作，也是蝴蝶兰组培生产中的关键环节之一。

2．在培养基的配制过程中，要保证所使用的各种试剂或原材料的稳定性（如不使用过期的试剂，不使用变质的椰子汁、香蕉等原材料）。

3．在培养基的配制过程中，要保证各种称量的准确性。

二、外植体的取材与消毒处理1．外植体的取材选择除培养基成分外，决定蝴蝶兰组培成败的另一个重要因素就是外植体的来源。

虽然从理论上讲，植物细胞都具有全能性，能够再生新植株，因此任何器官、任何组织，都可以作为外植体。

但实际上，蝴蝶兰的不同器官之间的分化能力有巨大差别，因此选择合适的外植体就显得尤为重要。

①蝴蝶兰的组培外植体主要有叶片、花梗腋芽、花梗节间、茎尖、根尖等，其中花梗腋芽是蝴蝶兰组培的最佳外植体，也是目前利用最广泛的。

②在选择外植体时，应先选择生长健壮、无病虫害、不变异的母株。

③在采取外植体前，对母株进行采前预处理（在采前5-7天，用杀菌剂喷洒母株），可有效预防和降低内源性污染，提高诱导的成功率。

④外植体的最佳成熟度：叶片：叶龄3-5天花梗腋芽：第一朵花现蕾时茎尖或根尖：无菌苗或株龄40天内的植株2.外植体的消毒无菌的外植体材料是蝴蝶兰组培成功的重要前提和根本保证，而消毒是获得无菌外植体的有效方法，它通过一些表面消毒剂来杀死外植体表面的微生物，又尽可能保持外植体的生命力。

蝴蝶兰培养基构成
蝴蝶兰组织培养所采用的基本培养基包括MS、1/2MS、VW、B5、KC、花宝及其改良型等，其中1/2MS对蝴蝶兰原球茎增殖效果好。

目前常使用的外源激素主要是生长素类（如IAA、2,4-Ｄ和NAA）和细胞分裂素类（如BA、ZT、KT）。

蝴蝶兰组织培养中常用的细胞分裂素为6-BA，较高浓度（1~8mg/L）的6-BA能促进蝴蝶兰原球茎增殖，较低浓度（0.1~0.5mg/L）的6-BA则能促进原球茎分化。

适宜浓度的6-BA配合较低浓度的NAA，更有利于原球茎的增殖，2.0mg/L6-BA和0.3mg/LNAA 配合使用是蝴蝶兰原球茎增殖的佳组合。

蝴蝶兰组织培养中常加入一些天然物质如椰乳、香蕉泥、番茄汁、苹果汁等，这些物质能提供一些必要的微量营养成分、生理活性物质和生长激素等，如加入100~200mg/L香蕉泥，具有较大的pH缓冲作用，有利于兰科植物的壮苗和生根。

许多资料也表明，添加适量的香蕉泥、椰乳或含胶质的果菜汁等均对原球茎增殖有明显促进效果。

适量的添加物对蝴蝶兰丛生芽的诱导和生根也有一定的促进作用。

培养基中添加活性炭，低浓度（0.5~1.0g/L）时对原球茎增殖影响不明显，但可促进蝴蝶兰生根；高浓度（2.0~3.0g/L）时对原球茎增殖有促进作用，但原球茎有黄化现象。

蔗糖作为培养基的能源物质和渗透调节剂，对原球茎的增殖生长影响较大。

蔗糖含量为2%时，原球茎分化速度快；蔗糖含量为2%~3%时，促进芽的形成；蔗糖含量为5%时，有利于根的分化和生长。

蔗糖含量为3%~5%时，抑制原球茎的分化和生长，分化质量和分化速度都显著下降。

2020年第1期现代园艺蝴蝶兰组织培养关键技术探讨张雯（杨凌职业技术学院，陕西杨凌712100）蝴蝶兰大多是通过组织培养技术繁殖培育的。

组培苗能够保持母本性状，减少组培苗变异和具有植株整齐等特点。

通过对蝴蝶兰组织培养关键技术中外植体选择、培养基成分以及培养条件等进行探讨，以期提高蝴蝶兰组培苗的生产效益。

褐变；蝴蝶兰；外植体；组织培养了至关重要的作用。

在蝴蝶兰的工厂化生产中，植物激素6-BA 、NAA 浓度决定了原球茎发生的诱导速度，而椰子汁、香蕉泥和土豆泥等对蝴蝶兰组培苗一致性有显著的影响。

生根壮苗培养是提高植株成活率的一项重要内容，壮苗生根阶段为试管苗的移栽和成活奠定基础，直接影响到工厂化生产的种苗质量。

在组培苗壮苗生根阶段，通常提高培养基的生长素浓度，下调细胞分裂素浓度，从而促进植物发根。

此外，培养基中添加了椰子汁、香蕉汁、苹果汁等天然添加物，对蝴蝶兰组培苗的生根壮苗有明显的促进作用，移栽成活率也较高。

3培养条件在花梗诱导丛生芽过程中，适宜的温度十分重要。

较低温度有利于腋芽转化为花芽,而较高温度则有利于腋芽转化为营养芽。

此外，光照强度对蝴蝶兰试管苗的生长也有较大影响，但光照强度合适范围还需要进一步的探究。

蝴蝶兰幼苗对温度的要求比较高。

温度过低，蝴蝶兰根部会停止吸收水分，从而造成生理干旱，进而叶片变黄、脱落，甚至死亡。

光照过强会灼伤叶片，使叶片老化，甚至枯死。

夏季在中午前后要做好遮荫处理。

4植物组织培养褐变在蝴蝶兰组织培养过程中，材料非常容易出现褐变的情况。

尤其是切取茎尖进行脱除病毒的步骤，由于茎尖太小，更容易因褐化而导致死亡。

因此蝴蝶兰组织培养过程需要重视褐化问题。

褐变是因植物组织多酚氧化酶与其酚类底物结合，在氧的作用下，二者发生化学反应形成醌类物质。

醌类物质是褐色物质，当该类物质扩散到培养基时，会对植物材料造成毒害，进而影响植物体内酶的活性，阻碍植物正常代谢，严重时甚至导致材料死亡。

目前，常用的褐化抑制剂分为2大类：一类是吸附剂，另一类是抗氧化剂。

蝴蝶兰组培研究进展张丹桂201310010125集贤创新实验131班蝴蝶兰(Phalaenopsis spp.)为兰科多年生附生草本，花形态优美似蝶，枝叶繁茂，花期持久，观赏价值极高，在热带素有“兰花皇后”的美誉。

蝴蝶兰是目前兰科植物中栽培最广泛的种类之一，同时也是室内绿化美化的新型观赏花卉，国内外市场对其需求量越来越大。

但是，由于蝴蝶兰是单茎性气生兰，植株很少发育侧枝，很难采用常规分株方式进行无性繁殖；其种子也不含胚乳或其他组织，在自然条件下萌发率极低，因此无法利用播种方式进行有性繁殖。

而采用组织培养方法进行种苗繁殖是目前蝴蝶兰大规模生产的唯一途径。

本文概述了近年来蝴蝶兰的组织培养与快繁技术的研究进展。

外植体繁殖途径糊蝶兰组培的过程一般分为外植体的诱导、继代增殖、壮苗、生根、健化移栽5个阶段。

目前，国内外蝴蝶兰组培研究主要集中在外植体的选择、基本培养基选择、植物激素种类和配比浓度、褐变防治措施等方面。

1.外植体选择及培养方法关于糊蝶兰组培外植体选择方面的报道较多，不同外植体各有优缺点。

常见的用作组培的外植体有种子（曾宋君,彭晓明,张京丽,等.蝴蝶兰的组织培养和快速繁殖[J].武汉植物学研究,2000,18(4):344- 346. 章玉平,刘成运,胡鸿钧,等.蝴蝶兰无菌萌发技术的研究[J].武汉植物学研究,2004,22(1):82- 86.）、叶片（李成慧,蔡斌,单丽丽,等.应用正交设计法探讨蝴蝶兰叶片类原球茎的诱导[J]. 扬州大学学报(农业与生命科学版),2004,25(2):76- 78.）、花梗节间（鲁雪华,郭文杰,徐立晖,等.蝴蝶兰花梗节间段培养繁殖的初步研究[J].园艺学报,2002,29(5):491- 492. 刘福林,李淑萍.蝴蝶兰花梗的组织培养和植株再生[J].商丘师范学院学报,2001,17(6):98- 99.）、根尖（曾宋君,彭晓明,张京丽,等.蝴蝶兰的组织培养和快速繁殖[J].武汉植物学研究,2000,18(4):344- 346.）、花梗腋芽（刘林,李淑兰.温度、节位和BA 对蝴蝶兰花茎腋芽生长的影响[J].北方园艺,2003(5):50- 51.）等。

2014年第8期现代园艺

蝴蝶兰组织培养初探冯光惠渊榆林学院生命科学学院袁陕西榆林719000冤

摘要院以蝴蝶兰组培苗花梗节间为材料袁通过对原球茎状体的诱导和增殖试验袁研究不同类型培养基对蝴蝶兰组

培快繁的影响袁根据试验及数据分析袁筛选出适宜的培养基配方袁以期探讨蝴蝶兰组织培养快繁技术袁建立蝴蝶兰组培再生技术体系遥结果表明袁在本试验设计范围内袁最适宜原球茎诱导的培养基为院MS+6-BA2mg/L+NAA0.2mg/L曰最适宜原球茎的增殖培养基为院1/3MS+6-BA2mg/L+NAA0.2mg/L+30g/L香蕉汁遥关键词院蝴蝶兰曰培养

1试验方法

1.1原球茎的诱导

在蝴蝶兰组培研究中袁原球茎的诱导是在基础培养基内添加一定种类及浓度的植物生长调节剂袁由幼叶尧根尖尧茎尖等外植体脱分化而产生胚性愈伤组织袁进而形成原球茎体遥在超净工作台上袁用酒精灯灼烧解剖刀20s袁待自然冷却后袁在诱导生成的休眠芽中切取带叶腋茎段部位约1cm袁用自来水冲洗30min袁再用70％酒精消毒30s袁0.1％升汞溶液灭菌5min袁无菌水清洗3～5次袁切割后分别插入不同培养基中进

行原球茎诱导培养袁每瓶培养基中放置3个茎段遥培养温度为25℃袁光照强度为2000lx袁光照时数12h/d遥定期观察记录原球茎诱导情况袁分别记录数据袁统计各培养基中的诱导率遥1.2原球茎的增殖

在蝴蝶兰的组培快繁研究中袁影响原球茎增殖的因素较为复杂袁主要有试验中所使用的蝴蝶兰品种尧原球茎切割体积尧外植体的选择尧培养的环境条件以及增殖培养基的选择等遥在原球茎状体形成后袁在超净工作台上取出袁用经过酒精灯20s灼烧袁并自然冷却后的解剖刀切成4mm×4mm小块袁然后放入增殖培养基中袁每瓶培养基内放5小块袁将接种好的培养基在温度25℃袁光强1500～2000lx袁光照时数为10h/d的条件下培养遥定期观察统计增殖株数袁统计各培养基

的增殖系数遥2试验结果

2.1不同激素配比对原球茎形成的影响

蝴蝶兰无菌组培实习报告一、实习背景及目的近年来，随着花卉市场的不断发展，蝴蝶兰作为一种高雅、珍贵的观赏植物，需求量逐年上升。

然而，蝴蝶兰的自然繁殖率较低，传统的繁殖方法无法满足市场供应。

因此，本次实习的目的就是通过学习蝴蝶兰的无菌组培技术，提高其繁殖效率，以满足市场需求。

二、实习内容与过程1. 理论知识学习在实习开始前，我们先进行了蝴蝶兰生物学特性、组织培养基的配制、无菌操作技术等理论知识的学习。

通过学习，我们对蝴蝶兰的生长习性、组织培养的原理和无菌操作的注意事项有了深入了解。

2. 实验材料准备实习过程中，我们准备了蝴蝶兰的种子、花梗、叶片等实验材料，并对其进行了清洗、消毒等处理，以保证实验的无菌条件。

3. 实验操作在无菌操作台上，我们按照实验步骤进行蝴蝶兰的无菌组培。

首先，将处理好的实验材料接种到含有适宜营养成分的培养基上，然后将培养基放入培养箱中，调节温度、湿度等条件，以促进蝴蝶兰的生长。

4. 实验结果观察与分析在组培过程中，我们定期观察蝴蝶兰的生长状况，记录其发芽、生根、开花等指标，并对实验结果进行分析，以找出最佳的组培条件。

三、实习收获与反思1. 实习收获通过本次实习，我们掌握了蝴蝶兰无菌组培的基本技术，了解了蝴蝶兰的生长习性和组培过程中的注意事项。

同时，我们也学会了如何观察和分析实验结果，为今后的工作积累了宝贵经验。

2. 实习反思在实习过程中，我们认识到无菌操作的重要性，一旦操作不慎，可能导致实验失败。

此外，我们还发现，在组培过程中，培养基的配制和环境条件的调控对蝴蝶兰的生长至关重要。

因此，在今后的实践中，我们要更加注重细节，提高自己的操作技能，以提高蝴蝶兰的组培成功率。

四、总结通过本次实习，我们对蝴蝶兰无菌组培技术有了深入了解，掌握了基本的操作技能。

同时，我们也认识到，组培技术在花卉繁殖中的应用具有重要意义。

在今后的工作中，我们将继续学习、实践，为蝴蝶兰的繁殖和花卉产业的发展做出贡献。

蝴蝶兰组织培养及体胚发生技术研究的开题报告一、选题背景和意义蝴蝶兰属于兰科植物中的高档花卉，在国内和国际市场上具有广泛的市场需求和经济价值。

由于野生种类的环境受到破坏，采摘野生种类已经受到限制，培育高品质蝴蝶兰成为了重要的发展方向。

组织培养技术是目前蝴蝶兰种质创新和繁殖方式的关键技术之一，对于快速繁殖优质、高产、抗病虫害的蝴蝶兰品种具有至关重要的作用。

二、研究目的和内容本研究的目的是探究蝴蝶兰的组织培养技术和体胚发生技术，以实现对蝴蝶兰生长发育过程的控制和调节，进而能够用于高品质蝴蝶兰的繁殖和遗传育种。

具体的研究内容包括：1. 蝴蝶兰花器官培养技术研究：通过对花茎、花粉、花柱等试管内培养的组织细胞进行生长观察和培养条件优化，实现各花器官的快速繁殖。

2. 蝴蝶兰体胚发生技术研究：通过优化外植体处理、植物生长调节物质的添加和培养基成分的调整等手段，实现蝴蝶兰体胚形成和发育，以及体胚转化和培养。

3. 蝴蝶兰品种优化和选育研究：在蝴蝶兰组织培养和繁殖技术的基础上，对蝴蝶兰种质资源进行繁育，筛选并鉴定具有优良性状的优良品种。

三、研究方法和步骤1. 蝴蝶兰花器官培养技术研究：（1）准备组织培养器材和培养基，包括培养瓶、试管等。

（2）剥离蝴蝶兰的各个器官组织。

（3）优化培养条件，包括培养基的配方、光照强度、温度、湿度等。

（4）对各器官组织的培养和生长情况进行观察和记录。

2. 蝴蝶兰体胚发生技术研究：（1）收集蝴蝶兰的植物外植体，处理后进行培养。

（2）筛选适合的培养基配方，添加生长激素、维生素和糖类等营养物质。

（3）调节培养条件，加强光照和通气。

（4）观察育苗的生长状况，测量外植体的发育情况和体胚的数量和质量指标。

3. 蝴蝶兰品种优化和选育研究：（1）选取具有潜在育种价值的蝴蝶兰品种。

（2）对外植体进行组织培养和体胚发生培养，育成大量的蝴蝶兰无性系。

（3）评价优良品种的性状，进行品种鉴定。

（4）推广优良品种，用于实际生产和市场需求。