蝴蝶兰丛生芽途径的组织培养技术

蝴蝶兰组培快繁技术及褐变控制研究本研究以健康成株的蝴蝶兰花梗腋芽为外植体,采用单因素、二因素完全随机试验设计获得蝴蝶兰无菌苗,筛选出丛生芽途径进行快繁的各阶段的最适培养基;以无菌苗的叶片为外植体采用单因素、二因素完全随机试验设计诱导出类原球茎,进一步分化成无菌苗,筛选出叶片诱导类原球茎进行快繁的各阶段的最适培养基,并且对叶片褐变控制进行研究。

研究结果如下:1、蝴蝶兰诱导丛生芽快繁途径各阶段最适培养基(1)中部腋芽为最佳部位,萌芽率为43.33%。

(2)花梗腋芽诱导丛生芽最适培养基为1/2MS+6-BA5.0mg/L+NAA0.5mg/L+椰乳10%,诱导率达80%,褐变率低。

(3)丛生芽的继代增殖培养基仍沿用诱导培养基,增殖系数为2.89,丛生芽颜色翠绿,生长健壮。

(4)无菌苗生根壮苗最适培养基为1/2MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.5mg/L,生根率100%,平均生根数4.18条,平均叶片数5.23片。

2、叶片诱导类原球茎快繁途径各阶段最适培养基(1)叶片诱导类原球茎最适培养基为VW+6-BA5.0mg/L+椰乳10%,诱导率为54.44%。

诱导的类原球茎个大、饱满,生长健壮,有利于增殖。

(2)类原球茎增殖培养基为1/2MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.3mg/L+香蕉汁200g/L,增殖系数为3.41。

增殖速度快,类原球茎颜色翠绿,表面湿润,排列疏松。

(3)类原球茎分化培养基为1/2MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.4mg/L+香蕉汁200g/L,分化整齐一致,移栽成活率高。

(4)其它因素对增殖的影响:液体培养、薄层切割、10个类原球茎切块均有助于增殖。

3、对蝴蝶兰的褐变控制进行研究,结果如下:(1)对叶片进行10d黑暗预处理,褐变率降至为48.60%。

(2)添加不同种类和浓度的抗褐变剂,均可降低褐变率,以添加2g/LAC效果最好,褐变率降至35.80%,且不影响类原球茎的诱导。

蝴蝶兰的组织培养快速繁殖技术蝴蝶兰属兰科蝶兰属, 蝴蝶兰以花姿似蝴蝶翩翩飞舞而得名, 属于单茎类的兰花, 但茎极短, 被大片的椭圆形叶所遮盖, 几乎无法明显的看出来。

花茎的长短因品种之不同而差异甚大, 可有10～100cm 不等, 而花朵的大小也因品种不同有所差异。

有花的直径大于15cm 的大花种, 也有小于2cm 的小花种。

而花色则有越来越多的趋势, 计有纯白、粉红、紫红、黄、绿、黄色带赤斑纹、白色红唇、白底红条纹等,不胜枚举。

常规繁殖较慢, 常通过组织培养加快繁殖, 现对其组织培养技术介绍如下。

1 原球茎的诱导培养1.1 茎尖的培养将除去叶的茎用流水冲洗干净, 再用10%的漂白粉溶液表面消毒15min, 除去叶原基后, 用5%的漂白粉溶液灭菌10min, 用无菌水冲洗干净。

在无菌条件下将茎尖及叶基部腋芽切成大小约2～3mm 的方块, 进行接种。

1.2 蝴蝶兰的诱导培养基为VW、KC、MS、BK 古川仁郎用培养基附加15%的椰乳进行液体和固体培养。

液体培养时, 至于以160 转/min 速度震荡培养, 10d 左右更换新的培养液。

培养温度为25 ℃, 光强2 000LX , 每天光照16～24h, 1 个月左右诱导出原球茎, 这时可转移到固体培养基上继续培养。

也可取试管苗植株的直径约为0.30mm 的茎尖, 不需消毒接种在MS+6- BA3mg/l 的培养基上, 培养温度为23～27 ℃, 光强1 500LX, 14d 后茎尖膨大, 颜色转绿, 3 个月后, 原球茎直径生长达6mm。

1.3 叶片培养取试管实生苗叶片为外殖体, 实生苗年龄以3～4 个月为最好, 其诱导率及每个外殖体上的原球茎增殖的个数最高。

田中道男1975 年报道, 对于120d 的小苗,可将整叶切下直接插入培养基中, 效果比将叶切断好。

并且取自第1 叶的外殖体, 原球茎形成率较老叶好; 将幼叶片切断进行培养时, 中间部分原球茎形成率比顶部和基部好; 成年植株用叶片基部好; 切断大小与诱导率直接相关, 切断太小成活率低, 以0.50cm左右为最好。

蝴蝶兰组织培养关键技术探讨首先是无菌培养技术。

无菌培养是蝴蝶兰组织培养的基础步骤，能够有效控制外界的微生物对植物的污染。

在无菌环境中进行组织培养必须具备一定的操作技巧和设备。

在培养基制备过程中，需要对培养基进行高压蒸汽消毒或滤过过滤，以确保培养基的无菌性。

在组织培养过程中还需采取一系列无菌操作，如组织的消毒处理、转移时避免接触空气等。

其次是组织愈伤与再生技术。

组织愈伤是指植物组织在应激或外界刺激作用下出现非正常的增殖现象。

对于蝴蝶兰来说，组织愈伤与再生是进行组织培养的关键步骤。

在组织愈伤培养中，可以通过调节培养基中的激素类型与浓度，促使愈伤组织的形成。

而后续的再生过程则需要恰当的培养基配方和培养条件来促进愈伤组织进一步分化为叶片、茎或芽等。

激素配方也是蝴蝶兰组织培养中的一个重要环节。

激素是促使组织发生增殖与分化的关键因子，合理配方的激素能够提高培养效果。

在蝴蝶兰组织培养中，通常会使用生长素（如NAA、IAA等）和细胞分裂素（如BA、KT等）来促进愈伤组织的生长和分化。

但需要注意的是，过量使用激素会导致愈伤组织过度生长、变异等问题，因此需要根据实际情况进行激素配方，以达到最佳效果。

最后是质壁分离技术。

质壁分离技术是蝴蝶兰组织培养中分离不同种类细胞的重要手段。

通过质壁分离可以获得纯种植物的组织或细胞，进行遗传改良和基因工程研究。

在蝴蝶兰的质壁分离过程中，需要先进行组织消毒处理，然后通过特定的酶解剂或物理方法分离细胞的质壁。

质壁分离技术的成功与否直接影响到培养后续的成活率和生长发育情况。

蝴蝶兰组织培养的关键技术包括无菌培养、组织愈伤与再生、激素配方以及质壁分离等。

这些关键技术的掌握对于蝴蝶兰的高效培养和研究具有重要意义。

未来的研究需要进一步深入探讨和改进这些技术，以促进蝴蝶兰组织培养技术的发展与应用。

利用丛生芽途径快速繁殖蝴蝶兰的研究[摘要]本文报道了利用丛生芽途径快速繁殖蝴蝶烂的研究结果。

试验表明：培养基Ms+BA1.0mg·L-1 +NAA0.05mg·L-1 +GA30.5mg·L-1能够诱导花梗休眠芽转化为营养芽。

培养基MS+BA5.0mg·L-1+NAA0.05mg·L-1能够诱导花梗芽产生丛生芽。

在丛生芽增殖阶段，设定NAA0.05mg· L-1与BA的9个不同浓度组合进行比较，结果表明，BA12.5mg· L-1 +NAA0.05mg·L-1的增殖效果最好。

BA、KT、ZT均能诱导“丛生芽”增殖，但以ZT诱导效果最好，BA最为经济。

另外，在增殖阶段，外殖体采用双芽接较单芽接的增殖效果好。

在生根阶段以1/2MS+NAA0.5mg·L-1+0.2%活性炭+10%椰子水的生根效果较佳。

试管苗移栽在水苔上的成活率较高，成活率达到96.7%。

关键词蝴蝶兰丛生芽双芽单芽蝴蝶兰（Phalaenopsis）又称蝶兰，为兰科蝴蝶兰属，多年生常绿气生兰，是世界上栽培最广泛，最普及的洋兰之一。

原产于马来西亚等热带地区，既是名贵的切花，也是室内上佳的盆花[1]。

因其花形似蝴蝶，形态美妙，色彩丰富，花期长，是近年来最受欢迎的洋兰之一。

蝴蝶兰是单茎气生兰，植株极少发育侧芽，对其进行常规的无性繁殖，增殖速度慢，组织培养是其进行大量繁殖的重要手段[2]。

现在蝴蝶兰的繁殖主要通过两种途径：（1）用近成熟的果实消毒后进行无菌播种产生播种苗[3]。

（2）利用茎尖、根尖、叶片等外植体通过诱导原球茎，进行分割转移、增殖，并分化成苗。

前者简单易行,短期内可获得大量试管苗,但是有性后代变异率高[3]。

后者品质比较一致，增殖系数较高，但经过愈伤组织阶段仍有较高的变异率。

微繁过程中的变异问题是造成某些植物组培苗商业生产失败的原因之一[2]，因此进一步探索降低蝴蝶兰组陪苗在生产过程中的变异率是十分必要的。

蝴蝶兰组织培养关键技术探讨植物组织培养技术在近几十年中得到了广泛应用。

它可以被用来繁殖新的植株、提取次生代谢产物、进行基因转化等。

在这些应用中，蝴蝶兰也是一个极具潜力的实验对象。

蝴蝶兰作为世界上最具代表性和最广泛应用的兰花之一，在组织培养中也有着重要的地位。

但是，由于蝴蝶兰组织培养的复杂性，使得研究人员需要更深入的了解这个体系才能更好地应用。

蝴蝶兰种植材料的选择选择合适的种植材料是组织培养的第一个步骤。

在蝴蝶兰中，筒状茎是最常用的组织培养种植材料。

它们是由花茎和叶子部分加厚而成的。

筒状茎可以容易地被分离成许多芽体和芽触须，因此只需要少量的筒状茎就能开展大规模地组织培养介质的配置蝴蝶兰不同发育阶段对培养基成分的要求也不同。

早期的幼苗需要较多的氮源和较低的磷酸盐浓度，以促进株高生长，而成熟后的植物则需要较少的氮源，较多的磷酸盐，以便生成较多的花茎和花蕾。

不同类型的蝴蝶兰组织在培养基配方上也存在差异。

对于直立型蝴蝶兰，培养基中磷酸盐的浓度可以略高，可增加花序的分化，而对于地生型蝴蝶兰，氮源的含量应该增加以增进它们的生长和发展。

植物生长调节剂的添加植物生长调节剂可以增进不同种类的蝴蝶兰的生长和分化。

常用的生长调节剂包括IAA、IBA、NAA、BA、KT、ZN、GA3、2、4-D 等，而它们的作用机制也不尽相同。

对于蝴蝶兰来说，BA 往往是组织培养中最重要的激素，它能促进幼苗生长和芽体分化。

KT 可以促进花序分化，GA3和2、4-D 对于不同种类蝴蝶兰都可以促进植株延长生长和徒长。

因此，在不同的生长阶段和应用场景中，需要选用不同的生长调节剂组合。

温度、湿度和光照等培养条件适宜的温度、湿度和光照都是组织培养中非常关键的因素。

温度以25℃ ~ 28℃ 为宜，湿度以 80% ~ 90% 为宜，植株和试管应避免暴露在直接阳光下。

在实际应用中，还需要针对不同的种类和品种，进行合理的调整和修正，以达到最优的生长效果。

蝴蝶兰组织培养技术研究蝴蝶兰组织培养技术研究一、实验目的1.能够正确选取外植体，并最其进行前处理2.能够有效防止外植体褐变的发生。

3.能够正确进行继代培养与壮苗正根培养。

4.能够利用无菌播种方式进行种子繁殖。

5.培养团队精神、责任心和科学的思维能力。

二、实验原理随着植物组织培养技术在植物快繁上的应用，近年来，对蝴蝶兰组织培养研究较多的是用胚、幼叶、茎尖和根尖、花梗腋芽等多种器官为外植体进行组织培养研究，由于所选外植体材料各异，难度也有高低，虽然有些技术已经用于大规模工厂化生产，但仍面临一些困难，有待于进一步探索和完善。

根据目前蝴蝶兰的发展状况，本文将在以花梗侧芽、茎尖、叶片为外植体材料进行组织快繁技术上作深入的探讨和研究。

三、实验仪器及试剂花梗腋芽诱导培养基为1/ 2MS +BA2. 5 mg/L + NAA0. 2 mg/L 增殖培养基为1/ 2 MS + BA3. 5 mg/L + KT1.0 mg/L + NAA0.5 mg/L + 椰乳10 %。

生根培养基为1/ 2MS + BA1. 5 mg/L +NAA0.3 mg/L + 80 g/L 香蕉泥诱导培养基为1/3MS+NAA0.5~1.0毫克/升+6-BA3.0~5.0毫克/升+椰乳15%+蔗糖30克/升+琼脂6克/升，或KC+NAA1.0毫克/升+6-BA5.0毫克/升+椰乳15%+蔗糖20克/升+琼脂6克/升柠檬酸300毫克/升以上培养基p H 均为5.6四、实验步骤与方法（一）花梗腋芽和顶芽组织培养快速繁殖技术蝴蝶兰为总状花序，通常由花梗基部算起在第4或至第7节才会分化花朵。

除最基部一节外，剥开位于该节位以上各节的苞片都可看到腋芽，近顶端的节含有未完全分化的花原始体，花轴基部的芽往往为休眠芽，常具有苞片覆盖，连同花序的顶端，都是花梗腋芽组织培养的好材料。

1．花梗腋芽的培养途径对花梗腋芽有两条培养途径，一是切取带腋芽的花梗茎段培养；二是不带花梗组织剥取茎尖生长点培养。

试析蝴蝶兰组织培养研究摘要：通过采用组织培养的快速繁殖方式对蝴蝶兰进行繁殖培育，并且对蝴蝶兰的快速培育繁殖技术的研究进行了分析和研究，明确了蝴蝶兰组织培养的优势以及其相应的影响因素，同时阐述了蝴蝶兰组织培养技术以及其影响因素，为减少蝴蝶兰组织培育当中的问题提供了可供参考的经验，同时也为蝴蝶兰的广泛种植以及生产奠定了良好的基础。

关键字：蝴蝶兰；组织培养；研究引言：蝴蝶兰，属于兰科蝴蝶兰属植物，属于热带以及亚热带气生兰。

蝴蝶兰的原本产地在菲律宾、马拉西亚以及印度尼西亚等地，植株美观，形状似碟，枝叶繁茂且花色鲜艳持久，具有极高的观赏价值以及经济价值，然而由于蝴蝶兰属于单茎性气生兰，植株较少发育为侧枝，蝴蝶兰的种子也由于并不包含胚乳或者其他类型的组织，由此蝴蝶兰在自然条件下萌发率十分低，常规的无性繁殖方式根本无法采用。

而组织培养方式进行的种苗繁殖是当前蝴蝶兰大规模生产以及种植的唯一的途径。

蝴蝶兰主要是通过无菌播种以及使用其他类型的外植体诱导类原球茎进行快速繁殖。

一、蝴蝶兰组织培养快速繁殖及其影响因素1、丛生芽诱导繁殖当前，蝴蝶兰组织培养的快速繁殖有原球茎以及丛生芽繁殖途径。

相对而言，原球茎的繁殖途径是研究相对较多的一种类型，而丛生芽快速繁殖途径则在很大程度上是一种芽生芽的繁殖途径。

其培植的技术含量相对较低且容易操作，并不对母株造成影响和伤害，同时能在一定程度上保证其遗传的稳定性。

同时也能在一定程度上避免植株的大量变异。

并且丛生芽诱导的繁殖途径所需要的时间较短，诱导的成功率也相对较高。

2、诱导以及其繁殖的影响因素根据相应的研究以及实验表明，6-BA对蝴蝶兰丛生芽诱导产生了重要的影响。

浓度一定的6-BA能在一定程度上破坏腋芽的休眠，随着6-BA浓度的持续提高，丛生芽的增长率也随之提高。

6-BA浓度的提高能有效提高丛生芽的增长率，然而浓度过高的6-BA也将对丛生芽的生长以及发育产生影响，导致其芽的长势变弱，同时也将导致蝴蝶兰的褐化率明显增加。

园艺园林 282023.01蝴蝶兰组织培养技术要点分析张 婷(广东省惠州市农业科学研究所，广东 惠州 516000)摘要：近年来蝴蝶兰开始频繁出现在各地区的花卉市场中，因此，相关科研单位、企业开始逐渐增加对其生产投入以及组织培养力度。

但是，现阶段蝴蝶兰生产所有的组织培养基配方、培养环境以及规格苗生产中栽培基质等尚未与国际先进水准齐平，导致蝴蝶兰产业在实际发展中受到严重限制。

本文主要是对蝴蝶兰组织培养技术要点进行分析。

关键词：蝴蝶兰；组织培养技术；原球茎本文研究了蝴蝶兰组织培养的相关技术，通过实验论证了在散射光环境下幼叶诱导蝴蝶兰原球茎能够达到最佳效果。

最佳培养基为MS+6-BA6毫克/升水解乳蛋白500毫克/升+蔗糖5克/升（pH=5.4）；最适增殖培养基为MA+6-BA2毫克/升+NAA1毫克/升+水解乳蛋白500毫克/升+蔗糖25克/升+琼脂5克/升（pH=5.4）；最适生根长苗培养基为1/2MS+IBA1.5毫克/升+NAA0.05毫克/升+0.3%活性炭+蔗糖25克/升+琼脂5克/升（pH=5.4）。

1 蝴蝶兰组织培养技术的注意事项1.1 培养基添加物对蝴蝶兰增值与分化的影响一般可以在蝴蝶兰组织培养中添加适量天然物质，能够供给蝴蝶兰幼苗微量营养成分、生长激素等，像是在其中加入120毫克/升香蕉泥，就能够对原有pH值进行缓冲，以此达到壮苗与生根作用。

相关资料指出，在培养基中加入适量椰乳或香蕉泥，能够促进原球茎的增值。

在蝴蝶兰丛生芽中加入一定的添加物，能够促进和诱导幼苗生根。

而在其内加入高浓度活性炭，能够促进原球茎增值。

1.2 原球茎继代中褐化的防治蝴蝶兰与其他兰科植物类似，原球茎状体在继代培养过程中易褐变死亡，很难增值。

通过将1克/升活性炭加入到培养基中，并在合适时间内将原球茎褐化的部分进行切除，并重新配置新鲜的培养基，防治外植体出现褐变死亡，将10%椰子水加入培养基中，能够让原球茎更快生长，在其增值环节中有效抑制褐变现象。

蝴蝶兰的组织培养技术蝴蝶兰的组织培养技术蝴蝶兰为兰科多年生附--生草本，又名蝶兰，是兰科植物中栽培最为广泛的种类之一，主要分布在热带及亚热带地区。

其花形奇特，色彩艳丽，花期持久，素有“兰中皇后”的美誉，具有极高的观赏和经济价值，在国内外花卉市场上极受欢迎。

蝴蝶兰是单茎气生兰，植株上极少发育侧枝，比其他种类的兰花更难于进行常规无性养殖。

组织培养是建立蝴蝶兰快速养殖无性系的重要手段。

1 外植体的选择蝴蝶兰的茎尖、茎段、叶片、花梗侧芽、花梗节间、根尖等部位都已有培养成功的报道，方法各异，难度各有高低。

蝴蝶兰不同外植体的成活率有差异，其中花梗侧芽的成活率最高，达75%；其次为花梗，成活率为 62.5%；叶片和根尖最差，分别为12.5%和 7.5%。

针对不同外植体，取材方法也不同，通常取花梗节之间1~2cm长的幼嫩部分，切取长 2~3mm 的切段作为外植体。

2 基本培养基的选择蝴蝶兰组织培养所采用的基本培养基包括 MS、1/2MS、VW、B5、KC、花宝及其改良型等，其中1/2MS对蝴蝶兰原球茎增殖效果最好。

3 外源激素的选择目前常使用的外源激素主要是生长素类（如IAA、2,4-Ｄ和NAA）和细胞分裂素类（如BA、ZT、KT）。

蝴蝶兰组织培养中常用的细胞分裂素为 6-BA，较高浓度（1~8mg/L）的 6-BA 能促进蝴蝶兰原球茎增殖，较低浓度（0.1~0.5mg/L）的 6-BA 则能促进原球茎分化。

适宜浓度的 6-BA 配合较低浓度的 NAA，更有利于原球茎的增殖，2.0mg/L 6-BA 和 0.3mg/L NAA配合使用是蝴蝶兰原球茎增殖的最佳组合。

4 培养基添加物对蝴蝶兰增殖和分化的影响蝴蝶兰组织培养中常加入一些天然物质如椰乳、香蕉泥、番茄汁、苹果汁等，这些物质能提供一些必要的微量营养成分、生理活性物质和生长激素等，如加入100~200mg/L香蕉泥，具有较大的 pH 缓冲作用，有利于兰科植物的壮苗和生根。

蝴蝶兰丛生芽途径的组织培养技术
李金雨;洪丽萍
【期刊名称】《热带作物学报》
【年(卷),期】2010(031)004
【摘要】对蝴蝶兰丛生芽途径的组织培养进行研究,结果表明,不经过愈伤组织直接诱导丛生芽的过程中,6-BA是影响蝴蝶兰丛生芽诱导的重要因素,6-BA浓度达3.0 mg/L以上时丛生芽的诱导率就可达100%;在丛生芽增殖过程中,6-BA 8.0mg/L处理效果最好,丛生芽增殖率可达304%;6-BA 8.0mg/L+NAA 0.5mg/L的处理更能促进蝴蝶兰丛生芽的增殖效果,丛生芽增殖率可达506%;生根培养基组合
MS+NAA 0.5 mg/L+10%椰子汁的生根效果较好.
【总页数】4页(P610-613)
【作者】李金雨;洪丽萍
【作者单位】福建省亚热带植物研究所,厦门,361006;福建省亚热带植物研究所,厦门,361006
【正文语种】中文
【中图分类】S682.31
【相关文献】
1.垂花蕙兰丛生芽途径的组织培养技术研究 [J], 周辉明;陈燕;林辉锋;尚伟;王雪凤
2.蝴蝶兰丛生芽组织培养研究进展 [J], 黄丹;陈和明;吕复兵
3.丛生芽—蝴蝶兰无性快速繁殖的新途径 [J], 刘荣维;梅庆超
4.蝴蝶兰丛生芽、原球茎途径的组织培养研究 [J], 刘亮;易自力;蒋建雄;陈智勇;黄丽芳
5.垂花蕙兰丛生芽途径的组织培养技术 [J], 周辉明;林辉锋;尚伟;林发壮;王雪凤因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。

简述蝴蝶兰的组织培养方法蝴蝶兰是一种极具有形象性和色彩鲜明的植物，其种类繁多，吸引着众多花友的青睐。

蝴蝶兰培植简单易行，其组织培养也十分容易，而且效果卓著。

本文就简述蝴蝶兰的组织培养方法，以期帮助花友们更好地养护蝴蝶兰。

一、选择合适的蝴蝶兰蝴蝶兰的种类及其色彩繁多，首先应根据自己的需求与喜好，在花店等地选择合适的蝴蝶兰。

蝴蝶兰应当处于正常生长状态，花朵特别是花瓣均匀、紧实，根系及叶片绿润有光泽，没有病虫害。

二、组织培养1.行插穗在蝴蝶兰培养开始前，需要将其插穗。

插穗使蝴蝶兰的根系较为疏松，利于植物的延伸生长。

将蝴蝶兰插入潮湿的细沙中，则可为植株提供良好的水分分布，促进蝴蝶兰的生长发育。

2.理肥料施用植物有两种基础营养元素，即氮元素和磷元素。

在蝴蝶兰培养过程中，需要为植株施加肥料，以满足其生长所需。

氮元素主要可利用于叶片的生长，而磷元素则可利用于花朵的发育。

3.湿管理蝴蝶兰生长所需的温湿数值较为丰富，其适宜的温湿应当保持在温度15度至25度，湿度为60%至70%之间。

其中，温度应当尽量高，以有利于蝴蝶兰的发育，而湿度则应当保持适中，以防止出现病害的发生。

3.照蝴蝶兰喜欢充足而柔和的光照环境，所以应尽可能地将蝴蝶兰移至开窗处，使其能够接受到丰富的太阳辐射，以帮助植物供能发育。

在白天，应保持植株所处的窗口敞开，以让花朵能够更好地吸收阳光。

4.分补充蝴蝶兰容易受到水分缺乏的影响，因此组织培养过程中，应定期给植株补充水分，最好是在上午和傍晚时段为植物浇水，以保证植株的温湿度，使植株继续保持良好的生长状态。

五、结束语以上就是蝴蝶兰的组织培养方法，相信只要秉持着耐心及遵循以上方法，便可以让蝴蝶兰更好地长出更美丽的花朵，为室外环境带来绚丽多彩的视觉享受，让花友们体验独特的植物魅力。