氨基糖苷类抗生素耐药机制研究进展
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2015,49(3):65—69/=t=梓,等 中国兽药杂志 ・65・
氨基糖苷类抗生素耐药机制研究进展
王梓 ,孔令聪 ,贾博岩 ,刘树明 ,马红霞
(1.吉林农业大学动物科技学院,长春130118;2.吉林农业大学动物生产及产品质量安全教育部重点实验室,长春130118) [收稿日期]2015-01-29[文献标识码]A[文章编号]1002—1280(2015)03-0065-05[中图分类号]¥859.796
[摘要] 分别从氨基糖苷类抗生素修饰酶、核糖体靶位修饰、药物的主动外排系统3个方面对近
年来氨基糖苷类抗生素耐药机制的最新研究进展做以综述,以期为临床合理应用氨基糖苷类抗生
素及控制致病菌氨基糖苷类耐药性提供参考。
[关键词] 氨基糖苷类抗生素;耐药性;耐药机制
Research Progress of Resistance Mechanism of Aminoglycosides
WANG Zi ,KONG Ling-cong ,JIA Bo—yan ,LIU Shu-ming ,MA Hong-xia。'
(1.College ofAnimal Science and Technology,Jilin Agricultural Univeni ̄,Changchun 130118,China; 2.Animal Production&Product Quality and Security,Min ̄try ofEducation,Jilin Agricultural t 珊 ,Changchun 130118,China)
Abstract:This paper mainly summarized the new researches about the resistance mechanism of aminoglycosides in
order to provide some reference resources for rational using of aminoglycosides and controlling the production of
drug—resistance.
Key words:aminoglycosides;resistance;drug—resistant mechanism
氨基糖苷类抗生素因其对革兰氏阴性菌的杀
菌作用,以及可与B一内酰胺类抗生素联合应用等
诸多优势得到了广泛的开发与应用,但随之产生的
细菌耐药问题也日趋严重.相关研究已证明细菌对
氨基糖苷类抗生素耐药机制主要包括:氨基糖苷类
修饰酶对抗生素的修饰作用,细菌靶位修饰及药物
的主动外排『1]。近年来,科研工作者利用分子生物
学技术发现了更多新型氨基糖苷类修饰酶,并对外
源性16S rRNA甲基化酶对内源性甲基化酶的影响
及功能外排泵表达的调控等耐药机制进行了更深
人的研究。为此,本文将对上述氨基糖苷类抗生素
主要耐药机制的研究进展做以综述。 1氨基糖苷类抗生素修饰酶
1.1 氨基糖苷类修饰酶分类及分布 细菌产生的
氨基糖苷类抗生素修饰酶是介导氨基糖苷类耐药
最为广泛的途径,即通过修饰酶对氨基糖苷类抗生
素结构进行修饰,使其无法作用于细菌产生耐药
性。氨基糖苷修饰酶根据其对2一脱氧链酶胺上
一OH或一NH,催化作用的不同可分为乙酰基转移酶
类(AACs)、腺苷酰转移酶类(ANTs)及磷酸转移酶
类(APHs)。其中,乙酰基转移酶类对1[AAC
(1)],3[AAC(3)],2’[AAC(2’)],6’[AAC
(6’)]位进行催化乙酰化;腺苷酰转移酶类对
6[ANT(6)],9[ANT(9)],4’[ANT(4’)],2
基金项目:国家自然科学基金项目(31140026);吉林省世行贷款农产品质量安全项目(2011一Y05)
作者简介:王梓,硕士研究生,从事动物药理和毒理学研究。
通讯作者:马红霞。E—mail:hongxia0731001@163.
com ・66・ 中国兽药杂志 2015,49(3):65—69/:E梓,等
『ANT(2一)],3一[ANT(3 )]位进行催化腺苷
酰化;磷酸转移酶类对氨基糖苷分子上的磷酸盐基
团进行催化转移,其可分为:APH(4)-I,APH(6)一
I,APH(9)一I,APH(3’)一I—VII,APH(2’’)一I— IV.APH(3”)一I,APH(7一)一I子类_2]。氨基糖
苷类抗生素修饰酶具有众多亚型的同时,其分布范
围也十分广泛。Pak—Leung Ho等在香港对所分离
188株氨基糖苷类抗生素耐药的大肠杆菌进行耐药
基因检测发现。91%的受试菌株携带有aac(3)-II
基因,12.2%的受试菌株携带aac(6’)一Ib/Ib—cr基
因 ]。Bjcrg C.Haldorsen等在挪威对临床分离的
大肠杆菌及肺炎克雷伯菌进行耐药基因检测,分别
扩增出aac(3)一II、aac(6’)一Ib、ant(2 )一Ia等多
种耐药基因_4]。Reza Ghotaslou等在伊朗分离出的
阴性葡萄球菌中检测出aac(6’)一Ie—aph(2’)一Ia, ant(4一)一Ia,aph(3’)一IIIa等多种耐药基因_5]。
近年来,世界范围内有关氨基糖苷类修饰酶的报道
逐年增多。且其分布范围也逐渐扩大,由于氨基糖
苷类修饰酶基因可定植于染色体或质粒上的整合
子、基因盒、转座子等元件中,故在致病菌中具有极
快的传播能力。
1.2 多重修饰酶作用 近年来,有关氨基糖苷类
抗生素多重修饰酶的报道逐年增多,研究证明,部
分多重修饰酶对细菌氨基糖苷类耐药性具有增强
作用。Shangshang Qin等在氨基糖苷类耐药的肠弯
曲杆菌染色体中发现一个新基因岛,其包含有aadE
—sat4一aphA一3、aacA—aphD多重氨基糖苷修饰酶
簇l_6]。Min Yuan等对多重氨基糖苷修饰酶介导的
威替米星耐药性进行研究,结果显示AAC(6’)一Ie
—APH(2 )一Ia双功能酶可使受试菌对威替米星
的敏感性降低39~116倍"]。Keith D.Green等对
多种双功能修饰酶作用进行研究,结果显示,多数
双功能修饰酶的第二种酶无法发挥其对药物的修
饰作用,但AAC(3)一Ib/AAC(6’)一Ib’双功能修饰
酶可以对庆大霉素产生双重乙酰化作用,提高细菌
的耐药水平l8]。可见.近年来细菌携带的氨基糖苷
类修饰酶已由单一修饰酶介导耐药转向多种修饰
酶共同作用形成的多重修饰酶基团,其介导的耐药
性也逐渐增强,随着诸多修饰酶基因在质粒等媒介
中的快速传递,将会产生更多多重修饰酶。故对氨
基糖苷类抗生素多重修饰酶进行检测的同时.继续
探究其耐药机制,将对抗菌药物的应用及新型药物
的研发发挥重要作用。 2核糖体靶位修饰
2.1 16S rRNA甲基化作用
2.1.1 16S rRNA甲基化酶的发现及作用机制
16S rRNA甲基化酶在细菌中较为常见.其可帮助
细菌30s核糖体结构的形成。而介导氨基糖苷类
高水平耐药的16S rRNA甲基化酶最早发现于产氨
基糖苷的放线菌中,如链霉菌属及小单胞菌属[9]。
其可通过菌体内16S rRNA甲基化酶的甲基化作
用,对其自身产生的氨基糖类物质形成高水平耐
药。使其在复杂的微生物环境下形成生态学优势。
Keiko Yokoyama等首次在绿脓杆菌中发现了由质
粒携带的外源性16S rRNA甲基化酶rmtA基因,其
可介导除链霉素外绝大多数氨基糖苷类抗生素的
高水平耐药(MIC>1024 g/mL)¨ 。从此,质
转座子携带的外源性16S rRNA甲基化酶在世界范
围内陆续发现,且种类也逐渐增多。因其可以在不
同细菌间快速水平传播并不受菌属特异性限制,近
年来外源性16S rRNA甲基化酶介导的耐药性已成
为氨基糖苷类抗生素高水平耐药的主要途径。各
外源性16S rRNA甲基化酶概况如表1所示。
外源性16S rRNA甲基化酶主要通过修饰30s
核糖体亚基N7一G1405及N1一A1408位。使细菌对
氨基糖苷类抗生素产生较高耐药性[1 。其中
ArmA,RmtA—RmtF作用机制皆为对N7一G1405位
发挥甲基化作用,使细菌产生对4,6一二取代2一脱
氧链酶胺类如阿米卡星、妥布霉素、庆大霉素等抗
生素的耐药[12]。NpmA的作用机制为对N1一A1408
位发挥甲基化作用,通过此甲基化作用能够使细菌
同时产生对4,6一二取代2一脱氧链酶胺及4,5一二
取代2一脱氧链酶胺类的耐药性_1 。
表1外源性16S rRNA甲基化酶基因概况表 2015,49(3):65—69/ ̄E梓,等 中国兽药杂志 ・67・
2.1.2外源性16S rRNA甲基化酶对内源性甲基化
酶的影响研究发现.外源性16S rRNA甲基化酶
基因的G+C含量普遍在30%~55%之间.而内源性
甲基化酶基因的G+C含量大多高于60%.由此证
明,两者具有较低的同源性_2 。而在其各自作用
于30s核糖体亚基并发挥甲基化作用时,是否存在
相互影响已引起科研人员的广泛关注。Belen
Gutierrezd等对内源性甲基化酶RsmF.及外源性介
导氨基糖苷类抗生素高水平耐药的甲基化酶
Arm/Rmt的相互影响进行了深入探究,分别通过构
建单基因、多基因共存大肠杆菌模型发现:在同时
存在Arm/Rmt及RsmF甲基化酶时.外源性
Arm/Rmt酶甲基化16S rRNA m7G1405位的同时,
会抑制RsmF对m5C1407位的甲基化作用。同时
还发现携带有RsmF酶的受试菌在抗生素压力下
具有更强的存活能力.证实了其作为内源性16S
rRNA甲基化酶,在发挥修饰30s核糖体亚基作用
的同时,还能够影响细菌对氨基糖苷类药物的敏感
性Ⅲ2 。Virginia S.Lioy等对外源性甲基化酶
NpmA、A瑚A及内源性甲基化酶RsmF、RsmI作用
的相互影响进行了研究。结果显示,NpmA酶在修
饰A1408位同时,能够影响RsmF对C1407位的修
饰作用,A瑚A在修饰G1405位的同时.可以干扰
RsmI对C1402位的甲基化作用。但在C1402位未发
生甲基化修饰时会对细菌产生生长性损伤,而缺少
C1407位修饰的细菌在生长过程中则未见影响 ]。
目前.有关内外源甲基化酶间相互影响的研究
正在逐渐深入,通过探究细菌内源性甲基化酶翻译
的准确性及细胞适应性的影响。可以更加全面的阐
述外源性16S rRNA甲基化酶的起源及作用机制.
并对内源性甲基化酶在氨基糖苷类抗生素耐药中
发挥的作用进行评估,具有重要意义。
2.2核糖体靶位突变 目前,由核糖体30s亚基点
突变介导的2一脱氧链酶胺类氨基糖苷耐药只发生
于分枝杆菌属中。这是因为分枝杆菌属的核糖体
操纵子为单拷贝,当编码16S rRNA的ITS基因发生
碱基突变时。会影响两段高度保守区:相当于大肠
杆菌530环及氨基酸912区.进一步导致其对药物
的亲和力降低从而引起耐药_2 。Rachid Nessar等
对化脓分枝杆菌16S rRNA碱基突变介导的氨基糖 苷类耐药机制进行了深入的研究.除已知的