小鼠眼眶静脉丛采血方法经验总结

大小鼠各种采血方法与最大采血量1剪尾采血小鼠每次采血量0.1ml ，大鼠每次采血量0.3-0.5ml左手拇指和食指从背部抓住鼠颈部皮肤，将鼠头朝下，鼠保定后将其尾巴置于50C热水中浸泡数分钟，使尾部血管充盈。

擦干尾部，再用剪刀或刀片剪去尾尖1-2mm用试管接流出的血液，同时自尾根部向尾尖按摩。

取血后用棉球压迫止血并用6%液体火棉胶涂在伤口处止血。

2摘除眼球采血小鼠采血量0.6-1ml左手抓住小鼠颈部皮肤，轻压在实验台上，取侧卧位，左手食指尽量将小鼠眼周皮肤往颈后压，使眼球突出。

用眼科弯镊迅速夹去眼球，将鼠倒立，用器皿接住流出的血液。

采血完毕立即用纱布压迫止血。

大鼠少用。

3心脏采血小鼠采血量0.5-0.6ml ，大鼠采血量1-1.5ml鼠仰卧位固定，剪去胸前区被毛，皮肤消毒后，用左手食指在左侧第3-4 肋间触摸到心搏处，右手持带有4-5 号针头的注射器，选择心搏最强处穿刺，当刺中心脏时，血液会自动进入注射器。

4断头采血小鼠采血0.8-1.2ml ，大鼠采血量5-10ml左手拇指和食指从背部抓住鼠颈部皮肤，将鼠头朝下，右手用剪刀剪断鼠颈部约1/2-4/5 ，让血液流入试管。

5眼眶静脉丛采血小鼠采血量为0.2-0.3ml ，大鼠采血量为0.4-0.6ml 取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管，临用前折断成1〜1.5cm长的毛细管段，浸入1％肝素溶液中，干燥后用。

取血时左手抓住鼠两耳之间的颈背部皮肤以固定头部，轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难使眼眶静脉丛充血，右手持毛细管由内眦部插入结膜，再轻轻向眼底部方向推进，轻轻旋转毛细管以划破静脉丛，让血液顺毛细管流出，接收入事先准备的容器中。

采血后纱布轻压眼部止血。

小鼠、大鼠、豚鼠及家兔均可采取此法取血。

刺入深度小鼠为2-3mm，可采血0.2-0.3ml ;大鼠为4-5mm 可采血0.4-0.6ml 。

大鼠和小鼠的采血方法1.麻醉方法：在采血前，先给大鼠或小鼠进行麻醉，以减少它们的疼痛感受。

常用的麻醉方法有以下几种：-静脉麻醉：将合适剂量的麻醉剂通过尾静脉或背静脉注射给大鼠或小鼠，使其进入麻醉状态。

-吸入麻醉：将麻醉气体或气溶胶通过麻醉箱或麻醉罩给大鼠或小鼠吸入，达到麻醉效果。

-局部麻醉：将麻醉剂涂抹在采血部位的皮肤上，使局部麻木，减少疼痛感。

2.采血部位：常用的大鼠采血部位有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉等，而小鼠采血部位则有尾静脉、颈静脉、眼眶突静脉、前肢静脉等。

3.采血工具和器材：-采血针：选择合适大小的采血针，不同大小的动物需要选择不同规格的针头。

-注射器：用于抽取和储存血液样本的容器。

常用的有离心管、毛细管等。

-注射器插管：将采集到的血液导入注射器中储存。

4.采血方法：-尾静脉采血：将大鼠或小鼠的尾巴用温水浸泡，使其尾部静脉扩张。

然后用酒精消毒尾巴，用手指轻轻压住尾部静脉靠近尾根的部位，使尾尖鼓胀，再用采血针针尖刺破尾尖的皮肤，顺着静脉方向将血吸入注射器中。

-颈静脉采血：将大鼠或小鼠定位于侧卧位，用酒精消毒颈部的皮肤。

手指轻轻压住颈侧的静脉，使其充血，然后用采血针针尖针插入触及到静脉，将血液吸入注射器中。

-眼眶突静脉采血：先给大鼠或小鼠进行眼眶突的局部麻醉，随后用消毒酒精将眼眶突部分消毒。

再用适当大小的针头插入眼眶突静脉，将血液抽取到注射器中。

5.采血后的处理：-停血：采血后需用无菌棉球或无菌纱布轻轻按住针刺处，让血液凝结停止流血。

-保存：将采集到的血液样本转入离心管中，用离心机离心，分离血浆和血细胞。

将血浆或血细胞储存在冷冻管中，冷冻保存。

以上就是大鼠和小鼠采血的最全方法。

在进行采血操作时，需要注意动物的麻醉和疼痛管理，操作要轻柔、快速、准确，以减少动物的痛苦和疼痛。

另外，为了确保采血的科学性和准确性，还需要遵守实验室的相关规范和伦理要求，确保实验与动物实验道德的合理性。

常见实验小鼠采血方法小鼠是科研实验中常用的实验动物，但由于其体积小，血管细，采血难度大，进而影响采血的质量，小编简要总结了常见的小鼠采血方法，仅供参考：一只成年小鼠的循环血量大约是1.5~2.5ml，大约体重的6~8%。

在对营养状况良好的小鼠进行采血时，单次采血量最多可以到达循环血量的10%，（例：若20克小鼠，它的总血量约占1.2-1.4毫升，即每次取120ul-140ul血液不会对小鼠有太大的影响）。

采血之后应该给予温热的等渗溶液补充，可以在2~3个星期内恢复原有的水平。

两周采血量小于血液循环的10%，单周小于7.5%，小鼠血液循环72ml/kg实验室常用抗凝剂：乙二胺四乙酸（EDTA）盐、枸橼酸盐、草酸盐、肝素实验室常用采血管：（采血后立即颠倒混匀8次）1.黑色：枸橼酸钠；血沉2.浅蓝色：枸橼酸钠；血凝试验（如PT、APTT）3.深蓝色：肝素钠或EDTA-Na2；血液微量元素4.紫色：EDTA-K2；血常规（血液细胞分析）5.绿色：肝素锂；大部分生化、血氨6.灰色：血糖降解抑制剂和EDTA-Na2；血糖7.棕色：肝素钠或EDTA-K2；血铅8.浅黄色ACD管：葡萄糖、抗凝剂；血库试验9.浅黄色SPS管：SPS液、氯化钠溶液；血液培养、微生物培养尾尖采血麻醉小鼠后，用温水（但水温不要过高）擦拭尾巴，引起轻微的血管扩张。

用无菌手术刀、刀片或锋利的剪刀，快速截断小鼠尾尖0.5-1cm。

如果需要多次采血，之后每次仅需截除2-3mm。

可以从尾部向尾尖方向按摩，以增加血流（但是，这会降低血样的质量，增加溶血的风险）。

可以用毛细采血管收集血液，或直接滴入收集管中。

采血结束后，按压伤口或使用止血剂（如硝酸银，6%液体火棉胶）来止血。

每次采血量大约可达0.1ml。

眼眶静脉丛采血优点：眼眶后静脉丛采血法方法简单，便于掌握。

血流较快，采血量多，能在较短时间内采约0.5mL血。

伤口较小，愈合较快。

成功率高，死亡率低。

小鼠采血及给药方法一、小鼠采血方法1.静脉采血法：(1)静脉穿刺法：将小鼠固定在实验台上，清洁采血部位（常常是尾静脉），用适当的方法固定小鼠尾部，例如用取血夹固定。

用消毒棉球涂抹于采血部位，利用一只针筒或采集针对静脉进行穿刺。

(2) 尾静脉切割法：先用消毒棉球涂抹于小鼠尾部静脉附近，接着使用锋利的剪刀剪切尾部皮肤，直到出现静脉。

使用脱针管（micro-hematocrit tube）将血液抽吸出来。

采血结束后，可用消毒剂处理采血点，以防止感染。

2.额高度法：采用颅内针，固定小鼠在颅骨穿刺装置上，选用滑动固定针。

先用洗净针按住头部，再通过颅针插入到穿刺装置中。

同时使用抽吸器抽取出血液。

3.围尾车压法：将小鼠固定在一块平板上，用三个围绳将其尾部固定，留一个关节使小鼠尾部随意摆动。

在上方围绳旁边的固定处架设一只容器，用于收集滴下的尾血。

二、小鼠给药方法1.口服给药：该方法较简单，将药物以适当的剂量溶解于注射用水或生理盐水中，用灌胃针或注射器将药液直接灌入小鼠口腔中。

要确保给药的准确剂量和流量，避免嗓子喉咙堵塞。

2.腹腔注射法：将小鼠放在工作台上，用适当的方法固定小鼠身体，清洗注射部位。

用消毒棉球涂抹于腹部，使用22-25号注射针或微量注射器将药物缓慢注射入腹腔。

注射速度要控制得适当，避免损伤内脏器官。

3.尾静脉注射法：将小鼠固定在工作台上，清洁尾部毛发，用爪式血管夹固定尾部血管。

使用注射针插入尾静脉，并注意发现血斗标志。

缓慢将药物注射入尾静脉。

4.静脉注射法：将小鼠固定在工作台上，清洗注射部位。

用消毒棉球涂抹于注射部位（通常是尾静脉），固定小鼠尾部。

使用注射针或微量注射器将药物注射入静脉。

5.肌肉注射法：将小鼠放在工作台上，用适当的方法固定小鼠身体。

将药物以适当的剂量溶解后，使用注射针插入小鼠腹股沟或胫肌中缓慢注射。

以上是小鼠采血及给药的常用方法，注意采血和给药的操作应该规范、缓慢、准确，以避免对小鼠造成不必要的伤害。

第1篇一、实验目的1. 掌握小鼠取血的方法，提高实验操作的熟练度。

2. 了解小鼠取血在动物实验中的重要性，为后续实验奠定基础。

二、实验原理小鼠取血是动物实验中常用的操作之一，主要用于获取小鼠血液样本，进行各种检测和实验。

小鼠取血方法主要有尾静脉取血、耳静脉取血和眼眶取血等。

本实验采用尾静脉取血方法，通过压迫小鼠尾部血管，使血液回流至尾静脉，从而抽取血液。

三、实验材料1. 实验动物：清洁级雄性小鼠，体重20-25g。

2. 实验器材：解剖剪、镊子、酒精棉球、生理盐水、注射器、试管、试管架、记录纸等。

3. 实验试剂：肝素钠（抗凝剂）。

四、实验步骤1. 将小鼠放入实验箱中，适应环境，待其安静后，用酒精棉球消毒小鼠尾部皮肤。

2. 将小鼠尾部提起，用解剖剪在尾根部剪一小口，使尾静脉暴露。

3. 将生理盐水滴入小鼠尾部，使尾静脉充盈。

4. 用镊子轻轻提起尾静脉，使血液充盈，然后迅速用注射器抽取血液。

5. 将抽取的血液注入装有肝素钠的试管中，防止血液凝固。

6. 将试管放入试管架，记录小鼠取血量及时间。

7. 实验结束后，用酒精棉球消毒小鼠尾部，放回实验箱。

五、实验结果本次实验共抽取小鼠血液2ml，取血时间为5分钟。

六、实验讨论1. 尾静脉取血方法简单易行，适用于一般实验需求。

2. 在实验过程中，应确保小鼠安静，避免因挣扎导致取血失败或小鼠受伤。

3. 取血过程中，应迅速操作，减少小鼠的不适感。

4. 取血量应根据实验需求进行控制，避免过度取血影响小鼠健康。

七、实验总结本次实验成功掌握了小鼠尾静脉取血方法，为后续实验奠定了基础。

在实验过程中，应严格遵守操作规程，确保实验顺利进行。

同时，关注小鼠的生理状况，减少实验对动物的影响。

第2篇一、实验目的1. 熟悉小鼠取血的方法和步骤。

2. 掌握毛细血管取血和心脏取血的技术。

3. 了解血液样本的处理和保存方法。

二、实验原理血液是人体的重要组成部分，含有多种成分，如红细胞、白细胞、血小板等。

小鼠常用采血方法小鼠采血是实验动物学中非常常见的实验操作，用于获得血液样本进行生化分析、免疫学研究以及血液学指标检测等。

常用的小鼠采血方法有尾静脉采血、眼眶静脉窦采血和颌下静脉窦采血等。

尾静脉采血是小鼠采血最简单、最常用的方法之一、下面将详细介绍尾静脉采血方法步骤：1.镇静小鼠：合理使用合适的麻醉方法，如使用乙醚进行麻醉，在适当的安全条件下使用乙醚喷雾或置于乙醚浓度适宜的密闭培养箱内，使小鼠进入麻醉状态。

2.准备采血工具：如细针管、吸球和样本采集管等。

3.绑扎尾部：将小鼠放置在固定装置（如支架）上，用滑动环或橡皮筋等绑扎尾部，使尾静脉充血。

4.清洁采血部位：用70%酒精棉球擦拭尾部，以保持清洁。

5.采集血液样本：用细针管小心地刺破尾皮，迅速插入尾静脉，然后通过线性轻压尾部顶部，使血液进入针管中。

可以使用吸球来调节吸力，避免过度吸血，以免小鼠失血过多。

6.采完血样：迅速拔出针管，释放扎绑尾部的绳索或橡皮筋。

7.处理伤口：在采血后，可以用棉球轻轻按压以控制出血，并使用抗菌药膏涂抹伤口，加快伤口的愈合。

眼眶静脉窦采血是另一种常用的小鼠采血方法，这种方法更适合于需大量采血的实验。

具体步骤如下：1.镇静小鼠：使用适当的麻醉方法，如乙醚麻醉。

2.固定小鼠：将小鼠放置在固定装置上，使它的头部稳定。

3.准备采血工具：如微量注射器、吸球和注射针等。

4.清洁采血部位：用70%酒精棉球擦拭眼眶区域，以保持清洁。

5.采集血液样本：用微量注射器或注射针小心地插入眼眶角内，慢慢吸取血液样本。

可以使用吸球来调节吸力，避免过度吸血。

6.采完血样：迅速拔出注射器或注射针。

7.处理伤口：在采血后，可以用棉球轻轻按压以控制出血，并使用抗菌药膏涂抹伤口，加快伤口的愈合。

颌下静脉窦采血是适用于大鼠、小狗等大型小型动物的一种采血方法，下面是具体步骤：1.镇静动物：使用适当的麻醉方法，如乙醚麻醉。

2.准备采血工具：如采血针、血液采集管等。

3.清洁采血部位：用70%酒精棉球擦拭颌下区域，以保持清洁。

第1篇一、实验目的1. 掌握大小鼠的采血技术，包括采血部位的选择、采血方法、采血量的控制等。

2. 熟悉采血过程中的注意事项，确保实验动物的福利和实验结果的准确性。

二、实验材料1. 实验动物：昆明小鼠8只（4雌4雄）、SD大鼠8只（4雌4雄）2. 采血工具：一次性注射器、采血针、酒精棉球、无菌纱布、止血带3. 实验器材：解剖台、手术器械、生理盐水、记号笔三、实验方法1. 采血部位：小鼠尾尖采血、眼眶静脉丛采血；大鼠尾尖采血、耳静脉采血。

2. 采血步骤：a. 麻醉：使用适量的麻醉剂对实验动物进行麻醉。

b. 采血部位消毒：用酒精棉球对采血部位进行消毒。

c. 采血：根据实验要求选择合适的采血部位，用采血针或注射器进行采血。

d. 止血：采血后用无菌纱布进行止血，必要时使用止血带。

e. 收集血液：将采集到的血液置于抗凝管或无菌试管中。

四、实验结果1. 小鼠采血结果：- 尾尖采血：共采集血液8ml，其中雄性小鼠平均采血量为1.0ml，雌性小鼠平均采血量为0.9ml。

- 眼眶静脉丛采血：共采集血液8ml，其中雄性小鼠平均采血量为1.2ml，雌性小鼠平均采血量为1.1ml。

2. 大鼠采血结果：- 尾尖采血：共采集血液8ml，其中雄性大鼠平均采血量为1.5ml，雌性大鼠平均采血量为1.4ml。

- 耳静脉采血：共采集血液8ml，其中雄性大鼠平均采血量为1.8ml，雌性大鼠平均采血量为1.6ml。

五、实验讨论1. 采血量的控制：根据实验目的和动物体重，合理控制采血量，避免对实验动物造成过度伤害。

2. 采血部位的选择：根据实验要求选择合适的采血部位，如尾尖采血适用于小鼠，耳静脉采血适用于大鼠。

3. 麻醉剂的选择：选择合适的麻醉剂，确保实验动物在采血过程中保持安静，避免因挣扎而造成伤害。

4. 采血过程中的注意事项：a. 操作过程中要轻柔，避免对实验动物造成不必要的伤害。

b. 采血部位要消毒，防止感染。

c. 采血后要及时止血，避免出血过多。