大鼠抗酒石酸酸性磷酸酶 (TRAP))说明书活性
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抗酒石酸酸性磷酸酶页数:3
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P0332 抗酒石酸酸性磷酸酶检测试剂盒页数:2
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酸性磷酸酶的临床意义页数:3
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抗酒石酸酸性磷酸酶染色液说明书页数:3
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凯基抗酒石酸酸性磷酸酶染液试剂盒页数:3
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骨标记物临床意义
骨标记物临床意义一、骨标记物的概述骨标记物是一类反映骨代谢和骨形成过程的生物标志物，其在临床诊断、病情监测和治疗评估等方面具有重要价值。
骨标记物可以分为以下两类：1.骨形成标志物：如骨钙素（BGP）、Ⅰ型胶原羧基端前肽（P1NP）等，它们在骨形成过程中起到关键作用，水平升高表明骨形成活跃。
2.骨吸收标志物：如抗酒石酸盐酸性磷酸酶（TRAP）、钙离子浓度等，它们与骨吸收过程密切相关，水平升高提示骨吸收增加。
二、骨标记物的临床应用骨标记物在临床应用中主要包括以下方面：1.诊断骨质疏松症：通过检测骨形成和骨吸收标志物，有助于评估患者骨质疏松症的风险和发展程度。
2.评估骨折风险：骨标记物水平低下时，提示骨折风险增加，需采取相应预防措施。
3.监测骨代谢性疾病：如甲状旁腺功能亢进症、骨代谢异常等，骨标记物检测有助于病情监测和治疗效果评估。
4.评估骨移植和骨科手术效果：骨标记物水平的变化可作为评估骨移植和骨科手术疗效的指标。
三、常见骨标记物的临床意义1.钙离子浓度：钙离子是骨形成和骨吸收的关键调节因子，其浓度变化反映骨代谢状态。
2.骨碱性磷酸酶（BALP）：主要来源于成骨细胞，活性升高表明骨形成活跃。
3.骨钙素（BGP）：由骨细胞分泌，水平升高提示骨形成增加。
4.Ⅰ型胶原羧基端前肽（P1NP）和Ⅰ型胶原羧基端肽（PYD）：为骨胶原降解产物，水平升高表示骨形成增加。
5.抗酒石酸盐酸性磷酸酶（TRAP）：来源于破骨细胞，活性升高提示骨吸收增加。
四、骨标记物在临床应用中的注意事项1.骨标记物的检测方法：采用酶联免疫吸附法（ELISA）等方法进行检测。
2.结果的解释和评估：需结合患者年龄、性别、骨密度等相关因素，综合分析骨标记物水平。
3.与其他检测方法的结合应用：如双能X线吸收法、骨密度测量等，以获得更全面的诊断依据。
五、未来发展趋势与展望1.新型骨标记物的研发：随着科学技术的进步，新型骨标记物将不断涌现，为临床诊断提供更多依据。
TRAP染色与免疫组化套染技术在骨组织损伤修复染色中的应用
综上所述，ＴＲＡＰ染色与 ＶＥＧＦ免疫组化套染技术虽步 骤较多，但操作简便，染色效果较好，值得推广。
参考文献：
［１］ 何 佳，祁珊珊，李 鑫 鑫．抗 酒 石 酸 酸 性 磷 酸 酶 染 色 方 法 的 改良［Ｊ］．临床与实验病理学杂志，２０１９，３５（７）：８６４－８６６．
［２］ 翁丹枫，张 声，李国平，等．改良 ＥＤＴＡ脱钙液在骨髓活检 组织中染色效果观 察 ［Ｊ］．临 床 与 实 验 病 理 学 杂 志，２０１８，３４ （４）：４６１－４６３．
临床与实验病理学杂志 ＪＣｌｉｎＥｘｐＰａｔｈｏｌ ２０２１Ｍａｙ；３７（５）
·６２３·
散在细胞胞质暗红色，细胞核蓝色，胞体大，核数量不等的破 骨细胞分布，其余细胞胞质不显色，ＴＲＡＰ染色与 ＶＥＧＦ免疫 组化套染可见兔股骨髁骨缺损处生物材料内 ＶＥＧＦ在新生 骨组织细胞、部分破骨细胞、新生血管内皮及部分炎细胞胞 质呈棕黄色表达，破骨细胞胞质暗红色，胞核蓝色，其余细胞 胞核蓝色、胞质不显色且背景干净（图 ２）。
［５］ 丁 伟，王德田．简明病理学技术［Ｍ］．浙江：科学技术出版 社，２０１４：４－７．
［６］ 李 丽，牛钰清，陈 菲，等．介绍一种细胞凋亡 ＴＵＮＥＬ检 测与 Ｋｉ６７ＤＡＰＩ三色荧光染色操作流程［Ｊ］．临床与实验病 理学杂志，２０１９，３５（８）：９８０－９８１．
［７］ 潘 琳．实验病理学技术图鉴［Ｍ］．北京：科学技术出版社， ２０１２：４３３－４３４．
３ 讨论
骨组织损伤修复基础研究中，ＶＥＧＦ增强缺损处血管通 透性，诱导新骨形成的同时也加速破骨细胞的骨吸收，促进 骨愈合［４］。破骨细胞起源于造血干细胞，与执行骨形成功能 的成骨细胞处于动态平衡。研究者试图在同一张脱钙骨组 织石蜡切片上观察破骨细胞与 ＶＥＧＦ的共表达。本实验采 用 ＴＲＡＰ染色与 ＶＥＧＦ免疫组化套染技术，经反复实验发现 该套染技术成 功 需 要 注 意 以 下 几 方 面。 （１）骨 组 织 离 体 后 处理：骨组织离体后除立即使用 １０％中性缓冲福尔马林固 定外［５］，还使用硬组织切片机将 骨 组 织 修 切 成 ３ｍｍ厚 薄 片，以便固定液充分渗透到骨组织内部得到最佳固定效果。 骨组织比软组织致密，若不切开固定，固定液渗透慢导致固 定欠佳，导致不能较好地 保 存 骨 组 织 内 部 细 胞 形 态 结 构、 ＴＲＡＰ酶及抗原。固定不佳的组织后续脱水处理不佳，增加 组织脱片的风险。本实验脱钙液选择文献报道的改良脱钙 液［２］，脱钙和固定同时进行，脱钙使用 ３７℃水浴加快脱钙速 度，以保证在最短的时间内脱钙完全。组织离体后进行该处 理方法可大 大 降 低 脱 片、ＴＲＡＰ酶 及 抗 原 丢 失 的 风 险。 （２） ＴＲＡＰ染色：ＴＲＡＰ染液容易失效，每次实验前待染切片置于 ３７℃水浴锅中静置 １５ｍｉｎ时即可配制 ＴＲＡＰ孵育液，现用
参考文献：
［１］ 何 佳，祁珊珊，李 鑫 鑫．抗 酒 石 酸 酸 性 磷 酸 酶 染 色 方 法 的 改良［Ｊ］．临床与实验病理学杂志，２０１９，３５（７）：８６４－８６６．
［２］ 翁丹枫，张 声，李国平，等．改良 ＥＤＴＡ脱钙液在骨髓活检 组织中染色效果观 察 ［Ｊ］．临 床 与 实 验 病 理 学 杂 志，２０１８，３４ （４）：４６１－４６３．
临床与实验病理学杂志 ＪＣｌｉｎＥｘｐＰａｔｈｏｌ ２０２１Ｍａｙ；３７（５）
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散在细胞胞质暗红色，细胞核蓝色，胞体大，核数量不等的破 骨细胞分布，其余细胞胞质不显色，ＴＲＡＰ染色与 ＶＥＧＦ免疫 组化套染可见兔股骨髁骨缺损处生物材料内 ＶＥＧＦ在新生 骨组织细胞、部分破骨细胞、新生血管内皮及部分炎细胞胞 质呈棕黄色表达，破骨细胞胞质暗红色，胞核蓝色，其余细胞 胞核蓝色、胞质不显色且背景干净（图 ２）。
［５］ 丁 伟，王德田．简明病理学技术［Ｍ］．浙江：科学技术出版 社，２０１４：４－７．
［６］ 李 丽，牛钰清，陈 菲，等．介绍一种细胞凋亡 ＴＵＮＥＬ检 测与 Ｋｉ６７ＤＡＰＩ三色荧光染色操作流程［Ｊ］．临床与实验病 理学杂志，２０１９，３５（８）：９８０－９８１．
［７］ 潘 琳．实验病理学技术图鉴［Ｍ］．北京：科学技术出版社， ２０１２：４３３－４３４．
３ 讨论
骨组织损伤修复基础研究中，ＶＥＧＦ增强缺损处血管通 透性，诱导新骨形成的同时也加速破骨细胞的骨吸收，促进 骨愈合［４］。破骨细胞起源于造血干细胞，与执行骨形成功能 的成骨细胞处于动态平衡。研究者试图在同一张脱钙骨组 织石蜡切片上观察破骨细胞与 ＶＥＧＦ的共表达。本实验采 用 ＴＲＡＰ染色与 ＶＥＧＦ免疫组化套染技术，经反复实验发现 该套染技术成 功 需 要 注 意 以 下 几 方 面。 （１）骨 组 织 离 体 后 处理：骨组织离体后除立即使用 １０％中性缓冲福尔马林固 定外［５］，还使用硬组织切片机将 骨 组 织 修 切 成 ３ｍｍ厚 薄 片，以便固定液充分渗透到骨组织内部得到最佳固定效果。 骨组织比软组织致密，若不切开固定，固定液渗透慢导致固 定欠佳，导致不能较好地 保 存 骨 组 织 内 部 细 胞 形 态 结 构、 ＴＲＡＰ酶及抗原。固定不佳的组织后续脱水处理不佳，增加 组织脱片的风险。本实验脱钙液选择文献报道的改良脱钙 液［２］，脱钙和固定同时进行，脱钙使用 ３７℃水浴加快脱钙速 度，以保证在最短的时间内脱钙完全。组织离体后进行该处 理方法可大 大 降 低 脱 片、ＴＲＡＰ酶 及 抗 原 丢 失 的 风 险。 （２） ＴＲＡＰ染色：ＴＲＡＰ染液容易失效，每次实验前待染切片置于 ３７℃水浴锅中静置 １５ｍｉｎ时即可配制 ＴＲＡＰ孵育液，现用
抗洒石酸酸性磷酸酶5b(TRACP 5b)定量测定
抗酒石酸酸性磷酸酶5b（TRACP 5b）定量测定一、简介和用途、适用范围大量的抗酒石酸酸性磷酸酶（TRACP）是由骨吸收的破骨细胞和有活力的巨噬细胞所释放的。
在血液循环中的TRACP有TRACP 5b 和TRACP 5a二种形式， TRACP 5b 来源于破骨细胞，而TRACP 5a来源于巨噬细胞。
由破骨细胞刚分泌到血液中的TRACP 5b是有活性的酶，但当TRACP 5b在血液循环中被清除之前已无活性，并被降解为碎片。
这样TRACP 5b不会因肝、肾功能受损而在血液中积蓄。
血清中TRACP 5b均来源于破骨细胞，此酶在昼夜的活性水平变化不明显，且不受进食的影响，故可在一天的任何时候都可以采集标本进行检验。
此试剂盒依据测定由破骨细胞释放的TRACP 5b的特异性测定方法。
它可以用于测定骨吸收亢进的病人，如原发性骨质疏松和肾性骨病，也可以预测骨折的危险性，并便于了解抗骨吸收治疗的效果。
在肿瘤病人中，当TRACP 5b 的活力增高提示肿瘤骨转移。
在体外，培养基中TRACP 5b的活力大小代表了破骨细胞数量的多少，因此应用于此试剂盒在进行人的破骨细胞培养时，可用于检测破骨细胞的数量。
二、试验原理测试孔内已包被抗TRACP单克隆抗体→加入校准液、质控品和样品→加入释放剂→有活性的TRACP 5b从结合蛋白质上离解→TRACP 5b与孔内包被的抗TRACP单克隆抗体结合→加入底物pNPP孵育→加入终止液终止反应→在酶标仪上检测结果。
此试验的优点1、所测定的TRACP 5b是由破骨细胞专一释放的。
2、此试验对TRACP 5a或其它磷酸酶没有干扰。
3、溶血不影响结果。
4、不受昼夜变化的影响。
5、不受肝脏、肾脏疾病的影响。
6、不受进食的影响。
7、酶标板容易拆卸，方便检测。
三、试剂盒（一）组成1、酶标板：96孔，已包被抗—TRACP抗体。
2、质控液：3×0.5ml。
3、校准液：3×0.5ml(3×1U/L,3×5U/L,3×10U/L)。
钙磷对体外培养大鼠破骨细胞的影响
钙磷对体外培养大鼠破骨细胞的影响顾建红1，刘俊栋1,2，翟必华1,3，刘学忠1，卞建春1，刘宗平1*（1. 扬州大学兽医学院，扬州 225009；2. 江苏畜牧兽医职业技术学院，泰州 225300；3.福建进出口检验检疫局，福州 350001）摘要：通过成骨细胞（osteoblast, OB）与脾细胞共培养在体外诱导脾细胞转化为破骨细胞（Osteoclasts, OC），转化过程中分别加入5 mmol/L、3 mmol/L的钙(Calcium, Ca)或磷(Phosphorus, P)及不同浓度比例的钙磷，对照不添加钙磷因子。
采用形态学观察、抗酒石酸酸性磷酸酶（TRAP）染色计数、扫描电镜观察象牙片吸收陷窝，研究钙磷因子作用下OC的生成和活化。
结果表明，培养液中Ca、P浓度分别为3 mmol/L及5 mmol/L 对OC的生成及活化均有显著抑制作用（P<0.05），5 mmol/L Ca与对照组比较差异极显著（P<0.01）。
Ca:P 为2:1组对OC生成和活化的抑制作用最强。
认为钙磷通过抑制OC生成和活化，从而抑制OC的骨吸收活性。
关键词：破骨细胞；磷；钙；抗酒石酸酸性磷酸酶；吸收陷窝Effects of calcium and phosphoruson Rat’s osteoclasts formation and activationGu Jianhong 1, Liu Jundong1,2, Zhai Bihua1,3, Liu Xuezhong1,Bian Jianchun1, Liu Zongping1*（1. College of Veterinary Medicine, Yangzhou University, Jiangsu, Yangzhou 225009, China;2. Jiangsu Animal Husbandry & Veterinary College, Jiangsu, Taizhou 225300, China；3. Fujian Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau, Fuzhou 350001, China)Abstract: Osteoclasts were obtained by a co-culture system with rat spleen cells and osteoblasts. In the conversion process, different strengths of calcium, phosphorus and different concentration ratios of calcium to phosphorus were added to the co-culture system. The formation and activation of osteoclasts was detected by morphologic observation, histochemical staining for tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP) and detection of lacunar resorption through scanning electron micrograph. The formation and activation of osteoclasts were inhibited by high concentration of calcium and phosphorus (p<0.05). Compared with control, the difference of high concentration group was very significant. Moreover, osteoclasts formation and activation were inhibited by the ratio of calcium to phosphorus (2:1) mostly. Calcium and Phosphorus inhibit bone absorbing activity by inhibiting formation and activation of osteoclasts.Keyword: osteoclast; phosphorus; calcium; tartrate-resistant acid phosphatase; lacunar resorption 钙、磷或维生素D代谢紊乱是引起动物骨营养不良的主要原因。
中医不同治法对骨质疏松症大鼠抗酒石酸酸性磷酸酶含量影响的比较研究
中医不同治法对骨质疏松症大鼠抗酒石酸酸性磷酸酶含量影响的比较研究杨芳;朱辉;郑洪新;王剑;林庶茹【摘要】目的观察中医不同治法对糖皮质激素诱导骨质疏松症大鼠骨抗酒石酸酸性磷酸酶含量的影响,探讨中医防治骨质疏松症的作用机制.方法将120只雌雄各半的大鼠随机分为正常对照组、模型对照组、补肾中药组、健脾中药组、活血化瘀中药组和骨疏康中药组6个组,用地塞米松肌注造模.实验结束后,腹主动脉取血处死大鼠,用酶联免疫法检测各组大鼠血清抗酒石酸酸性磷酸酶的含量.结果与正常组比较,模型组大鼠血清TRACP含量升高极为显著(P＜0.01);与模型组比较,各治疗组大鼠血清TRACP含量均明显降低,其中以补肾组和骨疏康组降低最为明显,与其他各组比较具有极显著差异(P＜0.01).结论补肾方法通过降低抗酒石酸酸性磷酸酶含量对骨质疏松症具有一定的防治作用.【期刊名称】《中国骨质疏松杂志》【年(卷),期】2016(022)004【总页数】3页(P393-395)【关键词】骨质疏松症;抗酒石酸酸性磷酸酶;补肾方法;中医【作者】杨芳;朱辉;郑洪新;王剑;林庶茹【作者单位】辽宁中医药大学,沈阳110847;辽宁中医药大学,沈阳110847;辽宁中医药大学,沈阳110847;辽宁中医药大学,沈阳110847;辽宁中医药大学,沈阳110847【正文语种】中文【中图分类】R-332骨质疏松(osteoporosis，OP)是以骨量减少、骨微观结构退化为特征，致使骨的脆性增加以及易于发生骨折的一种全身性骨骼疾病。
糖皮质激素(glucocorticoid，GC)是引起骨质疏松症的最常见的药物，长期接受GC治疗者都有发生骨质疏松的危险，而这种由GC治疗所导致的骨质疏松症即成为糖皮质激素性骨质疏松症(glucocorticoid induced osteoporosis，GIO)。
本实验研究以中医学整体观念为指导思想，采用分子生物学的技术，观察补肾、健脾、活血化瘀方法对糖皮质激素性骨质疏松症大鼠的抗酒石酸酸性磷酸酶(tartrate-resistant acid phosphatase，TRACP)含量的影响。
雄激素受体抑制剂对大鼠成骨细胞的作用分析
雄激素受体抑制剂对大鼠成骨细胞的作用分析杨政兴;陈忠铭;刘美宝;陈夏韧【期刊名称】《临床合理用药杂志》【年(卷),期】2017(10)34【摘要】目的分析雄激素受体抑制剂对大鼠成骨细胞的作用。
方法采用LNCaP人前列腺癌细胞建立原发性裸鼠前列腺癌模型,其中实验组21只应用雄性激素受体抑制剂——比卡鲁胺进行饲喂给药,对照组7只注射生理盐水,另选择未荷瘤裸鼠6只为空白组,比较给药前后3组裸鼠血清睾酮、雄激素、骨源性碱性磷酸酶(BALP)和抗酒石酸酸性磷酸酶5b(TRAP-5b)水平。
结果 LNCaP人前列腺癌细胞荷瘤小鼠及空白组裸鼠生长情况均正常,精神状态较好,均无实验过程中死亡。
于实验组比卡鲁胺给药1周后,3组各项指标比较差异均无统计学意义(P>0.05);比卡鲁胺给药4周后,实验组睾酮水平明显低于对照组和空白组(P<0.05),雌激素水平高于对照组和空白组(P<0.05),3组BALP和TRAP-56比较差异均无统计学意义(P>0.05)。
结论雄性激素受体抑制剂可以治疗及缓解前列腺癌症状,但同时可引起患者骨质疏松的不良反应,应合理适量使用。
【总页数】2页(P80-81)【作者】杨政兴;陈忠铭;刘美宝;陈夏韧【作者单位】厦门大学附属福州第二医院【正文语种】中文【中图分类】R973.2【相关文献】1.雄激素对大鼠胎颅盖骨成骨细胞雌激素受体基因表达的影响2.雄激素受体在大鼠睾丸发育过程中的表达及雄激素对其表达的调节作用3.雄性受体大鼠同种肾移植慢性排斥反应中性激素、性别、雄激素受体拮抗剂的作用4.雄性大鼠成骨细胞内雄激素受体表达对骨代谢的影响因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
肾性骨病的诊断治疗
癌、慢性肾功能不全、畸形性骨炎、高转换的骨 质疏松患者、佝偻病和软骨病。
二、与骨矿有关的生化检查
骨是由骨矿物质与骨基质两大部分 组成。骨矿物质主要由无定型钙磷混合物 和钙磷羟磷灰石晶体构成。其他如镁、锌、 铜、锰、氟、铝、硅、锶等元素也参与骨 代谢。临床通过测定血、尿中这些矿物质 的含量可以间接了解骨代谢的状况。但由 于人体机能状态的调节及其他脏器的影响， 从而使依靠测定血清中这些元素的变化来 反映骨代谢疾病受到限制。
是最常见的骨病类型。由于甲状旁腺 增生和功能亢进，甲状旁腺素（PTH） 分泌过多，产生高运转型的骨病如纤维 性骨炎等，同时伴有1，25（OH）2 D3的 缺乏。典型的生化改变包括血钙的降低 及血磷、碱性磷酸酶、骨钙素的升高， 血PTH水平显著升高。
一、肾性骨病的分类和特点
（一）高骨转化型
骨X线:
可见骨膜下吸收、骨硬化等特征表现。 骨组织活检示纤维性骨炎为主要改变， 成骨和破骨细胞数目和活性增加，骨重 建增加，骨矿物化过程加速，骨小梁形 状和排列不规则，骨组织失去其规则的 板层状结构甚至形成布纹状骨：胶原纤 维在骨小梁区聚集，骨面积大量增加， 整个骨小梁区以至骨髓发生纤维化。
反映骨形成的生化指标
3、I型胶原前肽
I型胶原前肽 是最常见的骨胶原，是骨基质 的重要组成部分，几乎组成总蛋白部分的90％。 前胶原形成胶原纤维时从前胶原分子上裂解出两 种I型胶原前肽：即前胶原羧基端肽（PICP）和前 胶原氨基端肽（PINP）PICP增高常见于儿童发育 期、妊娠最后3个月、骨肿瘤、特别是前列腺癌骨 转移、畸形性骨炎、酒精性肝炎、肺纤维化等。 PICP在绝经期后骨质疏松患者经雌激素治疗6个月 后可降低30％，但其降低的机制尚不清楚。许多 学者对PICP在代谢性骨病诊断中的价值持怀疑的 态度，多数意见认为血清PINP水平诊断意义更大。
二、与骨矿有关的生化检查
骨是由骨矿物质与骨基质两大部分 组成。骨矿物质主要由无定型钙磷混合物 和钙磷羟磷灰石晶体构成。其他如镁、锌、 铜、锰、氟、铝、硅、锶等元素也参与骨 代谢。临床通过测定血、尿中这些矿物质 的含量可以间接了解骨代谢的状况。但由 于人体机能状态的调节及其他脏器的影响， 从而使依靠测定血清中这些元素的变化来 反映骨代谢疾病受到限制。
是最常见的骨病类型。由于甲状旁腺 增生和功能亢进，甲状旁腺素（PTH） 分泌过多，产生高运转型的骨病如纤维 性骨炎等，同时伴有1，25（OH）2 D3的 缺乏。典型的生化改变包括血钙的降低 及血磷、碱性磷酸酶、骨钙素的升高， 血PTH水平显著升高。
一、肾性骨病的分类和特点
（一）高骨转化型
骨X线:
可见骨膜下吸收、骨硬化等特征表现。 骨组织活检示纤维性骨炎为主要改变， 成骨和破骨细胞数目和活性增加，骨重 建增加，骨矿物化过程加速，骨小梁形 状和排列不规则，骨组织失去其规则的 板层状结构甚至形成布纹状骨：胶原纤 维在骨小梁区聚集，骨面积大量增加， 整个骨小梁区以至骨髓发生纤维化。
反映骨形成的生化指标
3、I型胶原前肽
I型胶原前肽 是最常见的骨胶原，是骨基质 的重要组成部分，几乎组成总蛋白部分的90％。 前胶原形成胶原纤维时从前胶原分子上裂解出两 种I型胶原前肽：即前胶原羧基端肽（PICP）和前 胶原氨基端肽（PINP）PICP增高常见于儿童发育 期、妊娠最后3个月、骨肿瘤、特别是前列腺癌骨 转移、畸形性骨炎、酒精性肝炎、肺纤维化等。 PICP在绝经期后骨质疏松患者经雌激素治疗6个月 后可降低30％，但其降低的机制尚不清楚。许多 学者对PICP在代谢性骨病诊断中的价值持怀疑的 态度，多数意见认为血清PINP水平诊断意义更大。
抗酒石酸酸性磷酸酶染色液使用说明
抗酒石酸酸性磷酸酶染色液使用说明货号：G4561有效期：6个月有效。
产品内容：名称规格（4×10ml）保存试剂(A):TRAP固定液50ml4℃避光试剂(B):TRAP孵育液B1:AS-BI Buffer1ml-20℃避光B2:GBC染色液0.1ml4℃避光B3:TRAP Buffer9ml RT避光临用前，按B1:B2:B3=10:1:90混合，即为TRAP孵育液，即配即用。
试剂(C):苏木素染色液10ml4℃避光试剂(D):甲基绿染色液10ml RT避光产品说明：酸性磷酸酶(acid phosphatase，ACP)分布极广泛，遍布各种组织，主要存在于细胞的溶酶体内，所以常作为溶酶体标志酶。
溶酶体外的酸性磷酸酶存在于内质网和胞质内。
各种动物中的酸性磷酸酶各有不同，酸性磷酸酶的适宜pH为4.5～5.5。
存在于正常人肺泡巨噬细胞和白血病人脾脏的抗酒石酸酸性磷酸酶(Tartrate-resistnt acid phosphatase，TRAP)均在细胞滤泡中，并不是释放入血液。
血液中的TRAP绝大多数来源于破骨细胞，因此可以通过测量血液中的TRAP了解破骨细胞的功能状态。
抗酒石酸酸性磷酸酶染色液以萘酚AS-BI为底物，在酸性pH下被酸性磷酸酶水解释放出磷酸和萘酚，萘酚不重氮盐偶联生成有色产物，定位于细胞质中，若细胞内的ACP有抗酒石酸的活性，则呈阳性反应。
该染色液可用于新鲜血涂片、细胞涂片，亦可用于冰冻切片、石蜡切片。
自备材料：1、蒸馏水、恒温箱2、载玻片、推玻片3、光学显微镜操作步骤(仅供参考)：(一)血液、细胞涂片：1、推片：取新鲜血液或骨髓涂片置于载坡片上，推玻片于载玻片保持30度，置于血液或细胞滴液的正前方，稍往后移不血液或细胞滴液接触使后者沿推片下缘散开，再匀速沿载玻片平面平稳向前滑动至铺满血膜为止。
2、自然晾干，TRAP固定液4℃固定30s～3min，多数情况下30～60s即可。
抗酒石酸酸性磷酸酶染色方法的改良
临床与实验病理学杂志 ＪＣｌｉｎＥｘｐＰａｔｈｏｌ ２０１９Ｊｕｌ；３５（７）
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①
②
图 １ 大鼠股骨的破骨细胞，传统 ＴＲＡＰ染色：组织切片表面有颗粒 沉淀 图 ２ 大鼠股骨的破骨细胞，改良 ＴＲＡＰ染色：组织切片表 面干净整洁，无颗粒沉淀
色液（ｐＨ５０～５２）为亮红色，切片染色后背景出现颗粒沉 淀，且染色液不易冲洗，导致水洗时间延长，易脱片。当染色 液 ｐＨ值逐渐升高时，染液逐渐由亮红色转变为淡黄色，组 织上非特异性沉淀密集，背景干扰严重，染色效果不理想，脱 片严重。当 ＴＲＡＰ染色液 ｐＨ值调至 ５０以下时，随着 ｐＨ值 的下降染色液颜色逐渐变浅，且切片染色后非特异性沉淀逐 渐减少，当 ｐＨ４６时，染色液呈淡红色，切片染色后无非特 异性沉淀产生，组织不脱片（表 ２）。
３７℃温箱中温育 ３ｈ，使盐酸副品红充分溶解，冷却至室温 经 ０２２μｍ微孔滤膜制成盐酸副品红溶液，置于 ４℃避光贮 存；称取亚硝酸钠 ４００ｍｇ，溶解于 １０ｍＬ蒸馏水中，制成 ４％ 亚硝酸钠溶液（现用现配）；临用前取 １ｍＬ新配置的亚硝酸 钠溶液，缓慢滴加到等量的盐酸副品红溶液中，边滴加边搅 拌，静置 １ｍｉｎ后备用。（３）萘酚 ＡＳＢＩ磷酸盐溶液配制：称 取萘酚 ＡＳＢＩ磷酸盐 １０ｍｇ，溶解于 ０５ｍＬ的 Ｎ，Ｎ二甲基 甲酰胺中，混匀备用。（４）ＴＲＡＰ染色液：将 ９ｍＬ乙酸铵缓 冲液与 ０５ｍＬ六偶氮副品红溶液混合，微调 ｐＨ４６（传统 方法 ｐＨ５０～５２），再加入 ０５ｍＬ萘酚 ＡＳＢＩ磷酸盐溶液 混匀，后加入酒石酸钾钠 １４１ｍｇ，充分溶解经 ０２２μｍ微孔 滤膜配制成 ＴＲＡＰ染色液。 １．２．２ 取材与固定 采用 ＣＯ２麻醉法处死大鼠，取其股骨， 剔除周边软组织，经 ４％多聚甲醛固定，１０％ＥＤＴＡ脱钙（２８ 天），梯度乙醇脱水，二甲苯透明，常规石蜡包埋等步骤后，制 成厚度为 ５μｍ的组织切片。 １．２．３ ＴＲＡＰ染 色 取 大 鼠 骨 组 织 切 片，使 用 改 良 后 的 ＴＲＡＰ染色方法染色。切片于二甲苯Ⅰ脱蜡 ８ｍｉｎ，二甲苯Ⅱ 彻底脱蜡 ８ｍｉｎ，随后经 １００％ Ⅰ、１００％ Ⅱ、９５％ Ⅰ、９５％ Ⅱ、８０％梯 度 乙 醇 中 逐 步 水 化 （各 ５ｍｉｎ），水 洗 ３ｍｉｎ，用 ＴＲＡＰ染色液（传统方法 ｐＨ５０～５２）３７℃避光浸染 ３ｈ， 蒸馏水充分水洗，Ｈａｒｒｉｓ苏木精复染 １ｍｉｎ，蒸馏水充分水 洗，最后切片经梯度乙醇（８０％、９５％ Ⅰ、９５％ Ⅱ、１００％ Ⅰ、 １００％ Ⅱ）逐步脱水，二甲苯透明，中性树胶封固，置于 ４５℃ 烤片机中烤片 １ｈ，光镜下观察（表 １）。
端粒酶活性TRAP实时定量检测试剂盒产品说明书
二、 定量检测
1． 一次反应总量为 25 微升
2． 移取 xx 微升反应液（Reagent B）到 0.5 毫升 PCR 管
3． 加入 1 微升待测的细胞或组织裂解悬液（总量为 250 纳克总蛋白；注意：严格避免 RNA 酶污染）
4． 加入 xx 微升染色液（Reagent C）
5． 加入 xx 微升补充液（Reagent D）到总量 25 微升
产品内容
裂解液（Rea 补充液（Reagent D） 封隔液（Reagent E） 产品说明书
毫升 微升 微升 毫升 毫升 1份
保存方式
保存在－20℃冰箱里，避免反复冻融；染色液（Reagent C）避免光照，有效保证 6 月
11．PCR 产物置于－20℃保存备用
注意事项
1. 本产品为 20 次 PCR 反应 2. 操作时，须戴手套 3. 本产品适合各种荧光定量 PCR 仪 4. 建议整个操作在 4℃下进行 5. 必须使用带滤芯的枪头 6. 所有器皿、离心管、液体等无 RNA 酶污染 7. 使用时，避免污染母液 8. 建议使用裂解液或无离子水作为阴性对照 9. 根据用户 PCR 仪的性能，决定是否加入封隔液（Reagent E） 10. 配制完成后，即刻进行扩增反应，以确保反应物的活性 11. 试剂避免反复冻融 12. 通常样品量范围为 1.6 纳克至 1 微克；理想范围为 250 纳克；如果没有反应，可能样品中存在 PCR 抑
用户自备
1.5 毫升离心管：用于样品制备和保存的容器 微型台式离心机：用于样品沉淀收集 PCR 管：用于样品扩增操作的容器 荧光定量 PCR 仪：用于荧光定量 PCR 反应
实验提示
1
一、 样品制备
1）细胞样品制备 1． 准备 1 个细胞培养 6 孔板的单孔细胞，直至生长至 80％铺满率（1 X 105 细胞） 2． 小心抽去细胞培养液 3． 用细胞刮脱棒刮落细胞转移到 1.5 毫升离心管 4． 放进微型台式离心机离心 5 分钟，速度为 3000g（或 6000RPM，例如 eppendorf 5415） 5． 小心抽去上清液 6． 小心加入 xx 微升预冷的裂解液（Reagent A），混匀细胞颗粒群 7． 放进冰槽里孵育 30 分钟 8． （选择步骤）放进 4℃微型台式离心机离心 5 分钟，速度为 16000g（或 13000RPM，例如 eppendorf 5415） 9． （选择步骤）小心移取上清液到新的 1.5 毫升离心管 10．移取 5 微升进行蛋白定量检测（注意：建议使用 Bradford 蛋白质浓度定量试剂盒－30030.1） 11．即刻放进－70℃冰箱里保存或置于冰槽里备用
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2-8℃
Stop Solution
3ml×1 bottle
6ml×1 bottle
2-8℃
wash solution
（20ml×20fold）
×1bottle
（20ml×30fold）
×1bottle
2-8℃
Specimen requirements
1.serum-coagulation at room temperature 10-20 mins，centrifugation 20-minat the speed of2000-3000 r.p.m. removesupernatant,If precipitation appeared,Centrifugal again.
4.细胞培养上清：检测分泌性的成份时，用无菌管收集。离心20分钟左右（2000-3000转/分）。仔细收集上清。检测细胞内的成份时，用PBS（PH7.2-7.4）稀释细胞悬液，细胞浓度达到100万/ml左右。通过反复冻融，以使细胞破坏并放出细胞内成份。离心20分钟左右（2000-3000转/分）。仔细收集上清。保存过程中如有沉淀形成，应再次离心。
4.cell culture supernatant-detect secretory components,collect sue a sterile container,centrifugation 20-minat the speed of2000-3000 r.p.m. removesupernatant,detectthe composition of cells, Dilut cell suspension withPBS（PH7.2-7.4）,Cell concentration reached 1 million / ml,repeated freeze-thaw cycles,damage cells and release of intracellular components, centrifugation 20-minat the speed of2000-3000 r.p.m. removesupernatant,Ifprecipitation appeared,Centrifugal again.
6ml×1 bottle
2-8℃
Sample diluent
3ml×1 bottle6mLeabharlann ×1 bottle2-8℃
Chromogen Solution A
3ml×1 bottle
6ml×1 bottle
2-8℃
Chromogen Solution B
3ml×1 bottle
6ml×1 bottle
Purpose
This kit allows for thedetermination ofTRAPinRatserum, blood plasma, and otherbiological fluids.
Principle of the assay
The kitassayRatTRAPlevel in thesample，usePurifiedRatTRAPantigento coatmicrotiter plate wells, makesolid-phaseantigen,thenaddTRAPtowells,CombinedTRAPantigenwhich WithHRPlabeled，becomeantigen-antibody- enzyme-antigencomplex, afterwashingCompletely,Add TMB substrate solution,TMB substrate becomes blue color At HRP enzyme-catalyzed,reaction is terminated by the addition of a sulphuric acid solution and the color change is measured spectrophotometrically at a wavelength of 450 nm.The concentration ofTRAPin the samples is then determined by comparing the O.D. of the samples to the standard curve.
5.组织标本：切割标本后，称取重量。加入一定量的PBS，PH7.4。用液氮迅速冷冻保存备用。标本融化后仍然保持2-8℃的温度。加入一定量的PBS（PH7.4），用手工或匀浆器将标本匀浆充分。离心20分钟左右（2000-3000转/分）。仔细收集上清。分装后一份待检测，其余冷冻备用。
6.标本采集后尽早进行提取，提取按相关文献进行，提取后应尽快进行实验。若不能马上进行试验，可将标本放于-20℃保存，但应避免反复冻融.
2.加样：分别设空白孔（空白对照孔不加样品及酶标试剂，其余各步操作相同）、待测样品孔。在酶标包被板上待测样品孔中先加样品稀释液40μl，然后再加待测样品10μl（样品最终稀释度为5倍）。加样将样品加于酶标板孔底部，尽量不触及孔壁，轻轻晃动混匀。
3.温育：用封板膜封板后置37℃温育30分钟。
4.配液：将30（48T的20倍）倍浓缩洗涤液用蒸馏水30（48T的20倍）倍稀释后备用。
大鼠抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)酶联免疫分析（ELISA）
试剂盒使用说明书
本试剂仅供研究使用目的：本试剂盒用于测定大鼠血清，血浆及相关液体样本中抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)的活性。
实验原理：
本试剂盒应用双抗原夹心法测定标本中大鼠抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)水平。用纯化的TRAP抗原包被微孔板，制成固相抗原，往包被抗原的微孔中依次加入抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)，再与HRP标记的酒石酸酸性磷酸酶抗原结合，形成抗原-抗体-酶标抗原复合物，经过彻底洗涤后加底物TMB显色。TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)呈正相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度（OD值），通过标准曲线计算样品中大鼠抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)浓度。
7.不能检测含NaN3的样品，因NaN3抑制辣根过氧化物酶的（HRP）活性。
操作步骤
1.标准品的稀释与加样：在酶标包被板上设标准品孔10孔，在第一、第二孔中分别加标准品100μl，然后在第一、第二孔中加标准品稀释液50μl，混匀；然后从第一孔、第二孔中各取100μl分别加到第三孔和第四孔，再在第三、第四孔分别加标准品稀释液50μl，混匀；然后在第三孔和第四孔中先各取50μl弃掉，再各取50μl分别加到第五、第六孔中，再在第五、第六孔中分别加标准品稀释液50ul，混匀；混匀后从第五、第六孔中各取50μl分别加到第七、第八孔中，再在第七、第八孔中分别加标准品稀释液50μl，混匀后从第七、第八孔中分别取50μl加到第九、第十孔中，再在第九第十孔分别加标准品稀释液50μl，混匀后从第九第十孔中各取50μl弃掉。（稀释后各孔加样量都为50μl，浓度分别为6m IU/ml，4m IU/ml，2m IU/ml，1m IU/ml，0.5m IU/ml）。
2-8℃保存
样品稀释液
3 ml×1瓶
6 ml×1瓶
2-8℃保存
显色剂A液
3 ml×1瓶
6 ml×1瓶
2-8℃保存
显色剂B液
3 ml×1瓶
6 ml×1瓶
2-8℃保存
终止液
3ml×1瓶
6ml×1瓶
2-8℃保存
浓缩洗涤液
（20ml×20倍）×1瓶
（20ml×30倍）×1瓶
2-8℃保存
样本处理及要求：
1.血清：室温血液自然凝固10-20分钟，离心20分钟左右（2000-3000转/分）。仔细收集上清，保存过程中如出现沉淀，应再次离心。
5．封板膜只限一次性使用，以避免交叉污染。
6．底物请避光保存。
7．严格按照说明书的操作进行，试验结果判定必须以酶标仪读数为准.
8．所有样品，洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。
9．本试剂不同批号组分不得混用。
10.如与英文说明书有异，以英文说明书为准。
计算：
以标准物的浓度为横坐标，OD值为纵坐标，
在坐标纸上绘出标准曲线，根据样品的OD
2.plasma-use suited EDTAorcitrateplasmaas an anticoagulant,mix10-20 mins ,centrifugation 20-minat the speed of2000-3000 r.p.m. removesupernatant,If precipitation appeared,Centrifugal again.
Materials provided with the kit
Materials provided with the kit
48determinations
96determinations
Storage
User manual
1
1
Closure plate membrane
2
2
Sealed bags
1
5.洗涤：小心揭掉封板膜，弃去液体，甩干，每孔加满洗涤液，静置30秒后弃去，如此重复5次，拍干。
6.加酶：每孔加入酶标试剂50μl，空白孔除外。
7.温育：操作同3。
8.洗涤：操作同5。
9.显色：每孔先加入显色剂A50μl，再加入显色剂B50μl，轻轻震荡混匀，37℃避光显色15分钟.
10.终止：每孔加终止液50μl，终止反应（此时蓝色立转黄色）。
值由标准曲线查出相应的浓度；再乘以稀释
倍数；或用标准物的浓度与OD值计算出标
准曲线的直线回归方程式，将样品的OD值
代入方程式，计算出样品浓度，再乘以稀释
倍数，即为样品的实际浓度。
Stop Solution
3ml×1 bottle
6ml×1 bottle
2-8℃
wash solution
（20ml×20fold）
×1bottle
（20ml×30fold）
×1bottle
2-8℃
Specimen requirements
1.serum-coagulation at room temperature 10-20 mins，centrifugation 20-minat the speed of2000-3000 r.p.m. removesupernatant,If precipitation appeared,Centrifugal again.
4.细胞培养上清：检测分泌性的成份时，用无菌管收集。离心20分钟左右（2000-3000转/分）。仔细收集上清。检测细胞内的成份时，用PBS（PH7.2-7.4）稀释细胞悬液，细胞浓度达到100万/ml左右。通过反复冻融，以使细胞破坏并放出细胞内成份。离心20分钟左右（2000-3000转/分）。仔细收集上清。保存过程中如有沉淀形成，应再次离心。
4.cell culture supernatant-detect secretory components,collect sue a sterile container,centrifugation 20-minat the speed of2000-3000 r.p.m. removesupernatant,detectthe composition of cells, Dilut cell suspension withPBS（PH7.2-7.4）,Cell concentration reached 1 million / ml,repeated freeze-thaw cycles,damage cells and release of intracellular components, centrifugation 20-minat the speed of2000-3000 r.p.m. removesupernatant,Ifprecipitation appeared,Centrifugal again.
6ml×1 bottle
2-8℃
Sample diluent
3ml×1 bottle6mLeabharlann ×1 bottle2-8℃
Chromogen Solution A
3ml×1 bottle
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2-8℃
Chromogen Solution B
3ml×1 bottle
6ml×1 bottle
Purpose
This kit allows for thedetermination ofTRAPinRatserum, blood plasma, and otherbiological fluids.
Principle of the assay
The kitassayRatTRAPlevel in thesample，usePurifiedRatTRAPantigento coatmicrotiter plate wells, makesolid-phaseantigen,thenaddTRAPtowells,CombinedTRAPantigenwhich WithHRPlabeled，becomeantigen-antibody- enzyme-antigencomplex, afterwashingCompletely,Add TMB substrate solution,TMB substrate becomes blue color At HRP enzyme-catalyzed,reaction is terminated by the addition of a sulphuric acid solution and the color change is measured spectrophotometrically at a wavelength of 450 nm.The concentration ofTRAPin the samples is then determined by comparing the O.D. of the samples to the standard curve.
5.组织标本：切割标本后，称取重量。加入一定量的PBS，PH7.4。用液氮迅速冷冻保存备用。标本融化后仍然保持2-8℃的温度。加入一定量的PBS（PH7.4），用手工或匀浆器将标本匀浆充分。离心20分钟左右（2000-3000转/分）。仔细收集上清。分装后一份待检测，其余冷冻备用。
6.标本采集后尽早进行提取，提取按相关文献进行，提取后应尽快进行实验。若不能马上进行试验，可将标本放于-20℃保存，但应避免反复冻融.
2.加样：分别设空白孔（空白对照孔不加样品及酶标试剂，其余各步操作相同）、待测样品孔。在酶标包被板上待测样品孔中先加样品稀释液40μl，然后再加待测样品10μl（样品最终稀释度为5倍）。加样将样品加于酶标板孔底部，尽量不触及孔壁，轻轻晃动混匀。
3.温育：用封板膜封板后置37℃温育30分钟。
4.配液：将30（48T的20倍）倍浓缩洗涤液用蒸馏水30（48T的20倍）倍稀释后备用。
大鼠抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)酶联免疫分析（ELISA）
试剂盒使用说明书
本试剂仅供研究使用目的：本试剂盒用于测定大鼠血清，血浆及相关液体样本中抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)的活性。
实验原理：
本试剂盒应用双抗原夹心法测定标本中大鼠抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)水平。用纯化的TRAP抗原包被微孔板，制成固相抗原，往包被抗原的微孔中依次加入抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)，再与HRP标记的酒石酸酸性磷酸酶抗原结合，形成抗原-抗体-酶标抗原复合物，经过彻底洗涤后加底物TMB显色。TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)呈正相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度（OD值），通过标准曲线计算样品中大鼠抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)浓度。
7.不能检测含NaN3的样品，因NaN3抑制辣根过氧化物酶的（HRP）活性。
操作步骤
1.标准品的稀释与加样：在酶标包被板上设标准品孔10孔，在第一、第二孔中分别加标准品100μl，然后在第一、第二孔中加标准品稀释液50μl，混匀；然后从第一孔、第二孔中各取100μl分别加到第三孔和第四孔，再在第三、第四孔分别加标准品稀释液50μl，混匀；然后在第三孔和第四孔中先各取50μl弃掉，再各取50μl分别加到第五、第六孔中，再在第五、第六孔中分别加标准品稀释液50ul，混匀；混匀后从第五、第六孔中各取50μl分别加到第七、第八孔中，再在第七、第八孔中分别加标准品稀释液50μl，混匀后从第七、第八孔中分别取50μl加到第九、第十孔中，再在第九第十孔分别加标准品稀释液50μl，混匀后从第九第十孔中各取50μl弃掉。（稀释后各孔加样量都为50μl，浓度分别为6m IU/ml，4m IU/ml，2m IU/ml，1m IU/ml，0.5m IU/ml）。
2-8℃保存
样品稀释液
3 ml×1瓶
6 ml×1瓶
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显色剂A液
3 ml×1瓶
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显色剂B液
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终止液
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2-8℃保存
浓缩洗涤液
（20ml×20倍）×1瓶
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2-8℃保存
样本处理及要求：
1.血清：室温血液自然凝固10-20分钟，离心20分钟左右（2000-3000转/分）。仔细收集上清，保存过程中如出现沉淀，应再次离心。
5．封板膜只限一次性使用，以避免交叉污染。
6．底物请避光保存。
7．严格按照说明书的操作进行，试验结果判定必须以酶标仪读数为准.
8．所有样品，洗涤液和各种废弃物都应按传染物处理。
9．本试剂不同批号组分不得混用。
10.如与英文说明书有异，以英文说明书为准。
计算：
以标准物的浓度为横坐标，OD值为纵坐标，
在坐标纸上绘出标准曲线，根据样品的OD
2.plasma-use suited EDTAorcitrateplasmaas an anticoagulant,mix10-20 mins ,centrifugation 20-minat the speed of2000-3000 r.p.m. removesupernatant,If precipitation appeared,Centrifugal again.
Materials provided with the kit
Materials provided with the kit
48determinations
96determinations
Storage
User manual
1
1
Closure plate membrane
2
2
Sealed bags
1
5.洗涤：小心揭掉封板膜，弃去液体，甩干，每孔加满洗涤液，静置30秒后弃去，如此重复5次，拍干。
6.加酶：每孔加入酶标试剂50μl，空白孔除外。
7.温育：操作同3。
8.洗涤：操作同5。
9.显色：每孔先加入显色剂A50μl，再加入显色剂B50μl，轻轻震荡混匀，37℃避光显色15分钟.
10.终止：每孔加终止液50μl，终止反应（此时蓝色立转黄色）。
值由标准曲线查出相应的浓度；再乘以稀释
倍数；或用标准物的浓度与OD值计算出标
准曲线的直线回归方程式，将样品的OD值
代入方程式，计算出样品浓度，再乘以稀释
倍数，即为样品的实际浓度。