扫描电镜细胞样品制备
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扫描电子显微镜(SEM)常规样品制备技术SEM常规制样方法(一)——试样的取材、固定、脱水和置换一、实验目的掌握扫描电镜制样过程:从取材、固定、脱水、置换、干燥、喷涂这一过程中样品怎样保持生活状态,从而得出接近生活状态的样品。
二、实验原理不论动物或植物组织,要求取材时操作必须快速,组织表面要清洁,必要时需超声波清洗,原理同TEM取材,但需强调的是SEM观察表面结构,所以应注意表面结构的清洁、完整和电镜下反应真实的形貌。
取材时动作要快、轻、准、大小在1mm-1cm之间,所用的器械要锋利、洁静,避免任何牵拉和挤揉样品表面的损伤,常用的固定剂有2-4%戊二醛和1%锇酸。
三、实验器材样品(动物或植物)、双面刀片、培养皿、l.5ml离心管、牙签、2-4%戊二醛、1%锇酸、0. 1M PBS缓冲液,乙醇、乙酸异戊酯。
四、实验步骤1、取材要求动作轻、迅速、准确,为了保持生活状态,应在固定前清洗掉表面杂质,即,迅速将标本放在PBS缓冲液中冲洗,也可超声波器中超10s-30s,使样品所带的污物除去(如:气管内壁上的粘液、植物叶上的灰尘等)。
2、固定(前固定)经过清洗的样品迅速投入2-4%戊二醛囤定液中,间歇振荡且室温固定约2-4小时即可。
样品固定的目的:使样品细胞的微细结构完整真实地保存下来。
如果样品没有很好地固定,那么样品在脱水时可能变形,破坏了样品的生活状态,也就是说,固定不好的材料,电镜下不能反映真实结构,所以这一步很重要。
3、冲洗0. 1M PH7.2 PBS缓冲液洗:30分钟中间换3-4次,因戊二醛与锇酸反应生成细微的沉淀,所以在后固定之前,用0. IM PBS缓冲液洗去多余的戊二醛之后,样品才可能进入锇酸固定液。
4、后固定:1%四氧化锇后固定1-2小时。
5、冲洗:重蒸水冲洗30分钟中间换3-4次,因四氧化锇与乙醇反应,所以在脱水前充分洗去残留的四氧化锇,样品才能进行脱水。
6、脱水脱水剂为乙醇,室温进行为了减少人工损伤,需要梯度脱水:30%、50%、70%、80%、90%、95%、100%,每级15-20分钟,如果是动物样品,脱水时间可5-10分钟,脱水要充分完全地进行直到除尽样品中的水份为止,最后100%乙醇要重复2-3次,保证样品绝对无水。
扫描电镜细胞样品制备步骤嘿,咱今儿就来讲讲扫描电镜细胞样品制备那些事儿哈!
你想想看,细胞那么小的玩意儿,咱要想好好观察研究它们,可得下一番功夫呢!就像咱要给一个小娃娃打扮得漂漂亮亮去参加重要活动一样。
首先呢,得把细胞好好地收集起来。
这就好比去果园摘果子,得小心翼翼地把果子从树上摘下来,不能弄伤了它们。
咱得用合适的方法把细胞从它们生长的地方轻轻地取出来,可不能太粗鲁啦!
然后呢,就是给细胞洗个澡啦!把它们身上那些不需要的杂质啥的都洗掉,让它们干干净净的。
这就像是咱自己洗澡一样,把身上的脏东西都洗掉,清清爽爽的。
接下来,就是固定啦!这可重要得很呢!就好像给细胞穿上了一件坚固的铠甲,让它们能保持住自己的形态,不会东倒西歪的。
不然等会儿咱观察的时候,它们都变形了,那可咋整呀!
再之后,就是脱水啦!把细胞里面多余的水分都去掉,就像咱把湿漉漉的衣服晾干一样。
这一步可得仔细着点儿,不能让细胞受损哦!
接着呢,是干燥啦!让细胞处在一个干燥舒适的环境里,这样它们才能好好地被我们观察呀!
再往下,就是镀膜啦!这就好像给细胞披上了一层神秘的外衣,让它们在电镜下能更好地显现出来。
最后,就可以把制备好的细胞样品放到扫描电镜里面去观察啦!哇塞,你能想象到吗,通过电镜看到细胞的那一刻,就好像打开了一个微观世界的大门,里面有着无数的奥秘等着我们去探索呢!
你说这是不是很神奇呀?咱通过这一步步的操作,就能看到细胞的各种奇妙之处啦!所以呀,可别小瞧了这扫描电镜细胞样品制备的步骤哦,每一步都马虎不得呢!咱得像对待宝贝一样精心地去处理这些细胞,这样才能得到最准确、最有价值的观察结果呀!这可不是闹着玩的事儿呢!大家可得认真对待哟!。
细菌样品冷冻干燥制样方法
1) 取样:取大量样品离心(转速3000r~4000r),去除上清液,加入适当PH(7.2~7.4)的0.1 M PBS清洗三遍;清洗时菌体温柔悬浮。
2) 固定:2.5%戊二醛固定3h(此步时间非绝对,1~12h都可),用PBS清洗两遍,每遍10min。
再用纯水清洗两遍。
3) 梯度脱水:用乙醇的水溶液按30%、50%、70%、80%、90%的浓度梯度对样品进行脱水,每步15min,之后在100%乙醇的水溶液中脱水15min×2 次;再将样品置于乙醇和叔丁醇1:1混合液中15min;最后置样品于叔丁醇中15min×2次。
(此步也可以尝试不做)4) 冷冻干燥:滴加处理好的样品于5*5 mm的盖玻片上,置-80度冰箱冷冻后放入冷冻干燥机中进行冷冻干燥。
5) 电镜观察:样品充分干燥后,进行扫描电镜观察。
2.5%戊二醛:
Step 1:
0.2M磷酸缓冲液的配制:(0.1M的就是稀释2倍)取50mL定容100mL
---------------------
磷酸二氢钠(NaH2PO4.H2O) 2.6克
磷酸氢二钠(Na2HPO4.12H2O)29克
双蒸馏水加至500毫升
pH调至7.4
Step 2:
戊二醛固定液的配制:
---------------------
25% 戊二醛1ml
双蒸馏水4ml
0.2mol/L磷酸缓冲液5ml
戊二醛最终浓度 2.5%
pH值7.3-7.4。
扫描电镜的样品制备
扫描电镜(Scanning Electron Microscope,SEM)是一种高分辨率的显微镜,对于复杂的样品结构、微观形态和表面形貌的分析非常有用。
然而,要获得良好的扫描电镜显像效果,样品的制备至关重要。
下面将介绍几种常用的扫描电镜样品制备技术。
1. 金属喷涂法
金属喷涂法是扫描电镜样品制备的经典方法。
该方法使用金属喷涂仪将金属颗粒喷在样品表面,使其形成一层均匀、导电性良好的金属膜,以便在扫描电镜中观察样品的表面结构。
该方法适用于非导电样品,如细胞、生物组织、聚合物等。
2. 离子切割法
离子切割法利用离子切割机将样品切割成纤细的薄片,以便于在扫描电镜中观察。
这种方法适用于非常薄的样品,如材料薄片、芯片等。
它可以提供非常高分辨率的图像,并且可以通过纵向切割获得样品的三维结构。
3. 冷冻切片法
冷冻切片法是一种用于生物样品的扫描电镜制备方法。
该方法使用超低温技术将样品冻结,并使用超薄刀片切割成极薄的切片,通常为50~200纳米。
这可以保留样品的水感性和原始形态,并使其在扫描电镜中观察更加清晰。
4. 化学蚀刻法
化学蚀刻法是用于金属样品的扫描电镜制备方法。
该方法使用酸或碱对样品表面进行蚀刻,以去除不需要观察的材料,形成清晰的样品结构。
该方法适用于金属薄膜、晶体和合金等金属材料。
总之,良好的扫描电镜样品制备是获得高品质扫描电镜图像的关键。
每种样品都有其独特的制备方法,为了获得最好的结果,在选择合适的制备方法时需要谨慎选择。
扫描电子显微镜生物样品制备与观察细胞生物学实验报告实验目的:通过使用扫描电子显微镜(SEM),观察并比较不同生物样品的细胞结构和形态特征。
实验材料:-不同种类的生物样品(如植物叶片、昆虫翅膀、细菌培养物)-10%磷酸盐缓冲液(PBS)-2.5%葡萄糖溶液-电镜显微镜台-SEM样品支架-SEM扫描电镜实验步骤:1.收集各种生物样品,并用PBS润湿样品表面,以去除杂质。
2.将样品放置在SEM样品支架上,用细菌镊子小心地将样品固定在支架上。
3.将SEM样品支架放入SEM扫描电镜中,并调节扫描电镜的参数,如电子束的加速电压和信号放大倍数。
4.将SEM样品支架移动到扫描电镜中心位置,并确保样品表面与电子束的垂直距离适当。
5.打开电子束,在视野范围内找到有代表性的细胞区域,并通过调整焦距和扫描速度来获取清晰的图像。
6.在观察过程中,可以尝试不同的电子束参数,以获得最佳的样品成像效果。
7.观察并记录每个样品的细胞结构和形态特征,注意细胞的大小、形状和细胞器的位置等。
实验结果与讨论:通过SEM观察,我们可以清晰地看到植物叶片的气孔细胞和叶绿体的内部结构。
气孔细胞呈现出多边形的形状,并且表面布满微小的细管,这些细管是用于气体交换的通道。
叶绿体则呈现出椭圆形,并且具有叶绿素颗粒的特征,这些颗粒是光合作用中的关键结构。
昆虫翅膀的观察结果显示,翅膀表面有许多微小的鳞片组成,这些鳞片具有复杂的纹理和形状。
昆虫通过这些鳞片可以完成特定的功能,如飞行和保护。
SEM的使用使我们能够更加详细地观察到翅膀表面的微观结构。
细菌样品的观察结果显示,细菌呈现出不规则形状的胞体,表面光滑且有不规则的突起。
通过SEM的高放大倍数,可以看到细菌细胞壁的纹理和孔隙结构,这些结构可能与细菌的生长和代谢有关。
通过SEM观察不同生物样品的细胞结构和形态特征,可以增进我们对细胞生物学的理解。
SEM的高分辨率能力使我们能够观察到细胞的微观结构,从而对细胞的功能和相互作用有更深入的认识。
悬浮细胞扫描电镜的标本的制备
悬浮细胞扫描电镜的标本制备是一个关键的步骤,它需要精确
的操作和耐心。
首先,我们需要准备一个含有悬浮细胞的样品。
这
些悬浮细胞可以来自培养物中的细胞,或者从组织中分离出来。
接
下来,我们需要将这些悬浮细胞固定在一个适当的载玻片上。
固定
的方法通常包括用乙醛或氧化铂等化学物质进行固定,或者使用冷
冻固定技术。
固定后,样品需要进行脱水处理,通常使用乙醇浓度
逐渐升高的方法。
然后,样品需要被干燥,可以通过自然干燥或者
使用临界点干燥法。
接下来是金属涂覆,通常使用金属如金或铂进
行喷涂,以增加样品的导电性。
最后,样品可以被放入扫描电镜中
进行观察和成像。
在整个制备过程中,需要严格控制各个步骤的时
间和条件,以确保最终的标本能够展现出清晰的细胞结构和形态特征。
此外,在操作过程中需要注意安全,避免对人体和环境造成伤害。
总的来说,悬浮细胞扫描电镜的标本制备需要细致的操作和严
格的控制,以确保最终观察到的细胞结构和形态信息是准确可靠的。
细胞电镜步骤一、引言细胞电镜(electron microscopy)是一种利用电子束代替光束进行显微观察的技术。
相比传统的光学显微镜,细胞电镜具有更高的分辨率和放大倍率,能够观察到更细微的细胞结构,为细胞学研究提供了重要的工具。
本文将介绍细胞电镜的主要步骤。
二、样品制备1. 固定要观察细胞的内部结构,首先需要将细胞固定在样品上。
常用的固定剂包括戊二醛、冰醋酸、乙醛等。
固定剂可以杀死细胞并保持其形态和结构。
2. 切片将固定的细胞组织进行切片,常用的切片工具有超薄切片机、刮刀等。
切片的厚度通常在50-100纳米之间。
3. 上膜将切片转移到铜或金网膜上,以便在电镜中观察。
上膜时需要小心操作,避免切片的损坏。
三、脱水和浸渍1. 脱水为了观察细胞的内部结构,需要将样品中的水分逐渐去除。
通常会使用一系列浓度递增的乙醇溶液进行脱水处理。
2. 浸渍脱水后,为了使样品能够在电镜中导电,并增加样品的稳定性,需要进行浸渍处理。
常用的浸渍剂有丙酮、环氧树脂等。
四、显微观察1. 扫描电镜(SEM)扫描电镜主要用于观察样品表面的形态结构。
在扫描电镜中,电子束通过扫描样品表面,与样品反射的二次电子或反射电子相互作用,形成图像。
通过调整电子束的扫描方式和参数,可以获得不同放大倍率和清晰度的图像。
2. 透射电镜(TEM)透射电镜主要用于观察样品的内部结构。
在透射电镜中,电子束穿过样品,与样品内部的结构相互作用,形成投影图像。
通过调整电子束的聚焦和对比度,可以获得高分辨率的细胞内部结构图像。
五、图像处理和分析1. 图像获取使用电镜观察样品后,需要将观察到的图像记录下来。
可以使用相机或数字图像采集系统将图像转换为数字信号,保存在计算机中。
2. 图像处理对于采集到的图像,可以使用图像处理软件进行处理和增强。
常见的处理方法包括去噪、增加对比度、调整亮度等。
3. 图像分析通过对处理后的图像进行分析,可以获取细胞内部结构的定量信息。
常见的分析方法包括测量细胞器的大小、计算细胞器的分布密度等。
扫描电镜细胞样品制备
(一)原理
超薄切片实际上是样品的二维切片,不能表达细胞的三维结构,而且在观察由切片所拍摄的显微照片时,容易造成错误的印象。
用扫描电子显微镜(Scanning electron microscope,SEM)能直接观察标本表面的三维空间结构,真实地反映各种细胞表面和断裂面的形貌特征。
其照明源与透射电镜基本相同,由电子枪发射的电子束经聚光镜会聚成极细的电子探针,电子探针受扫描发生器控制,在样品表面逐点逐线地扫描,样品被电子轰击所产生的二次电子被收集、转换、放大,在电视荧光屏上同步扫描成像。
二次电子的发射量与样品的表面形貌有关,从而在荧光屏上出现表面起伏的样品的立体图像。
扫描电镜细胞样品的预处理包括取材、固定、脱水等。
(二)基本步骤
(1)取材一般原则与超薄切片相似,但用于扫描电镜观察的样品块略大,通常为5×8mm左右。
(2)固定铺片培养的细胞取出浸入PBS中,漂洗细胞表面。
然后将细胞铺片放入青霉素小瓶中,加4℃预冷的3% 戊二醛,在4℃固定2小时或过夜,吸出固定剂,用PBS浸洗2次,每次10分钟,再用4℃预冷的1% 锇酸,在4℃固定1小时,然后用PBS浸洗2次,每次10分钟。
(3)脱水丙酮/醋酸异戊酯(1:1)10分钟,接下来醋酸异戊酯30分钟,或用系列梯度酒精(30%、50%、70%、80%、90%、95%和100%)脱水,每种浓度酒精通过2次,每次15分钟。
(4)干燥以临界干燥法最理想,但必需要有专门的仪器,当实验室不具备此种仪器时,可采用冰冻干燥法和乙腈干燥法。
乙腈干燥法的关键是乙腈置换。
样品经上述处理后,浸入50%的乙腈水溶液中,然后依次更换70%、80%、90%、95%、100%的乙腈溶液,每次浸泡15~20分钟,最后再换100%乙腈。
然后进行真空干燥。
即将乙腈置换后的样品连同青霉素瓶一起放到真空镀膜台的空中置内,抽低真空,一般需30~50分钟。
样品干燥后,待其温度升至室温时再放气,取出样品。
(5)样品导电处理:用真空喷镀法。
所用仪器为真空喷镀仪,样品被安置在离蒸发源约10~15cm处的样品台上,样品进行旋转活动,先喷碳,后喷金,喷镀应均匀,完成后待镜下观察。