实验五过氧化物同工酶PAG讲义E分析
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实验五聚丙烯酰胺凝胶电泳分离过氧化物同工酶一、目的同工酶是指能催化同一种化学反应,但其酶蛋白本身的分子结构组成却有所不同的一组酶。
研究表明,植物在发育过程中,所含同工酶的种类和比例都不相同,它们与植物的遗传、生长发育、代谢调节及抗性等都有一定关系,因此作为基因表达的产物,测定同工酶谱是认识基因存在和表达的一种工具,在植物的种群、发育及杂交遗传的研究中有重要的意义。
过氧化物酶是植物体内普遍存在的、活性较高的一种酶。
它与呼吸作用、光合作用及生长素的氧化等都有关系。
在植物生长发育过程中它的活性不断发生变化,测定这种酶的活性或其同工酶,可以反映某一时期植物体内代谢的变化。
利用聚丙烯酰胺凝胶电泳测定同工酶,方法简便,灵敏度高,重现性强,测定结果便于观察、记录和保存。
本实验采用聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳技术,分离小麦幼苗过氧化物酶同工酶,根据酶的生物化学反应,通过染色方法显示出酶的不同区带,以鉴定小麦幼苗过氧化物酶同工酶。
通过本实验要掌握电泳技术的原理、方法、装置、凝胶配制等知识,熟悉主要的操作过程,同时对同工酶有一个感性的认识。
二、原理1.电泳带电粒子在电场中向与其自身带相反电荷的电极移动,这种现象称为电泳。
近几十年来,电泳作为一项有效的分析、分离和制备技术发展很快,在生产、科研和医疗工作中得到了广泛应用。
用电泳技术分离、分析蛋白质、酶、核酸等生物大分子,有较高的分辨率,目前已成为生物科学研究中必不可少的手段之一。
2.影响电泳的主要因素若将带净电荷q的粒子放入电场,则该粒子所受到的引力F引可用数学式表示如下:F引=E·q(1)式中E为电场强度,单位为“v/cm”,表示电场中单位距离上的电位差。
如果这种情况发生在真空中,则带电粒子会朝着电极加速前进并且最后与电极相撞。
但在溶液中,由于电场的牵引力F引与加速运动的粒子和溶液之间产生的阻力(即摩擦力)F阻相对抗。
故上述现象不会发生。
根据Stokes公式,阻力的大小取决于粒子的大小和形状以及所在介质的粘度:F阻=6πrηv (2)式中F阻是球形粒子所受的阻力,r是球形粒子的半径,η是溶液的粘度,v是粒子移动的速度。
过氧化物酶同工酶电泳分析实验原理(1)凝胶板由上、下两层胶组成,两层凝胶的孔径不同。
上层为大孔径的浓缩胶,下层为小孔径的分离胶。
(2)缓冲液离子组成及各层凝胶的pH不同。
本实验采用碱性系统。
电极缓冲液为pH8.3的Tris-甘氨酸缓冲液,浓缩胶为pH6.7的Tris-HCl缓冲液。
而分离胶为pH8.9的Tris-HCl缓冲液。
(3)在电场中形成不连续的电位梯度。
在这样一个不连续的系统里,存在三种物理效应,即电荷效应、分子筛效应和浓缩效应。
在这三种效应的共同作用下,待测物质被很好地分离开来。
下面以本实验要分离的小麦苗过氧化物酶同工酶为例,分别说明三种效应的作用:(1)电荷效应:各种酶蛋白按其所带电荷的种类及数量,在电场作用下向一定电极,以一定速度泳动。
(2)分子筛效应:分子量小,形状为球形的分子在电泳过程中受到阻力较小,移动较快;反之,分子量大、形状不规则的分子,电泳过程中受到的阻力较大,移动较慢。
这种效应与凝胶过滤过程中的情况不同。
(3)浓缩效应:待分离样品中的各组分在浓缩胶中会被压缩成层,而使原来很稀的样品得到高度浓缩。
其原因如下:①由于两层凝胶孔径不同,酶蛋白向下移动到两层凝胶界面时,阻力突然加大,速度变慢。
使得在该界面处的待分离酶蛋白区带变窄,浓度升高。
②在聚丙烯酰胺凝胶中,虽然浓缩胶和分离胶用的都是Tris-HCl缓冲液,但上层浓缩胶为pH 6.7,下层分离胶为pH 8.9。
HCl是强电解质,不管在哪层胶中,HCl几乎都全部电离,Cl-布满整个胶板。
待分离的酶蛋白样品加在样品槽中,浸在pH8.3和Tris-甘氨酸缓冲液中。
电泳一开始,有效泳动率最大的Cl-迅速跑到最前边,成为快离子(前导离子)。
在pH6.7条件下解离度仅有0.1~1%的甘氨酸(pI = 6.0 )有效泳动率最低,跑在最后边,成为慢离子(尾随离子)。
这样,快离子和慢离子之间就形成了一个不断移动的界面。
在pH6.7条件下带有负电荷的酶蛋白,其有效泳动率介于快慢离子之间,被夹持分布于界面附近,逐渐形成一个区带。
烯酰胺凝胶电泳分离过氧化物同工酶实验八聚丙烯酰胺凝胶电泳分离过氧化物同工酶一、实验目的1学习聚丙烯酰胺凝胶电泳原理。
2掌握聚丙烯酰胺凝胶垂直板(及同盘)电泳的操作技术。
3掌握同工酶定义、理化性质的差异,了解过氧化物酶的染色原理。
4掌握过氧化物酶的活性的测定。
二实验原理聚丙烯酰胺凝胶是由单体丙烯酰胺(Acr)和交联剂(即共聚体的N,N -甲叉双丙烯酰胺Bis)在加速剂(N,N,N',N'-四甲基乙二胺TEMED)和催化剂(过硫酸胺(NH4)4S2O8 简称AP)的作用下聚合交联成三维网状结构的凝胶。
(一)聚丙烯酰胺凝胶聚合原理及相关特性1聚合反应聚丙烯酰胺是由Acr和Bis在催化剂(AP)或核黄素(C17H20O6N4)和加速剂(TEMDA)的作用下聚合而成的三维网状结构。
催化剂和加速剂的种类很多,目前常用的有2种催化体系:①AP-TEMED 属化学聚合作用②核黄素-TEMED 属光聚合作用2凝胶孔径的可调性及其相关性质①凝胶性能与总浓度及交联度的关系凝胶的孔径、机械性能、弹性、透明度、粘度和聚合程度取决于凝胶总浓度和Acr与Bis之比: a:b<10 脆硬乳白交联度: a:b>100糊状易断②凝胶浓度与孔径的关系T(Acr和Bis总浓度)增加孔径减小移动颗粒穿过网孔阻力增加③凝胶浓度与被分离物分子量的关系分子量增加阻力增加移动速度减慢。
同时还与分子形状及分子电荷有关系。
在操作时,可以选用凝胶。
因为生物体内大多数蛋白质在此范围内电泳均可取得满意的结果。
3试剂对凝胶聚合的影响水中金属离子或其他成分对凝胶电泳的电泳速度、分离效果等有影响。
(二)聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)原理根据有无浓缩效应可分为:连续系统:电泳体系中由于缓冲液PH值及凝胶浓度相同,带电颗粒在电场中主要靠电荷及分子筛效应。
不连续系统:电泳体系中由于缓冲液离子成分、PH、凝胶浓度及电位梯度的不连续性,带电颗粒在电场中泳动不仅有电荷效应,分子筛效应,还有浓缩效应。
班级:植物142 姓名:刘国强学号:1401080229实验六:聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析过氧化物酶同工一、研究背景及目的同工酶是指能催化同一种化学反应,但其酶蛋白本身的分子结构组成却有所不同的一组酶。
它们是DNA 编码的遗传信息表达的结果。
研究表明,同工酶与生物的遗传、生长发、代谢调节及抗性等都有一定的关系。
因此,测定同工酶在理论上和实践上都有重要的意义。
用聚丙烯酰胺凝胶电泳测定同工酶,方法简便、灵敏度高,重现性强,测定结果便于观察、记录和保存。
过氧化物酶是植物体内普遍存在的、活性较高的一种酶。
它与呼吸作用、光合作用及生长素的氧化等都有关系。
在植物生长发育过程中它的活性不断发生变化。
因此,测定这种酶的活性或其同工酶的变化情况,可以反映某一时期植物体内代谢的变化。
本实验采用聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳技术,分离小麦幼叶叶片和根部的过氧化物酶同工酶,通过染色方法显示出酶的不同区带,以鉴定小麦幼苗过氧化物酶同工酶。
通过本实验,主要要掌握电泳技术的原理、方法、设计、装置、凝胶配制等问题,熟悉所有的操作过程二、实验原理本实验采用不连续聚丙烯酰胺凝胶系统,分离小麦幼叶叶片和根部的过氧化物酶同工酶。
利用过氧化物酶在分解过氧化氢的过程中产生自由氧基,从而将联大茴香胺连接到过氧化物酶分子上,使之呈现棕褐色,将电泳后的凝胶置于含有过氧化氢的联大茴香胺染色液中浸泡,有过氧化酶同工酶蛋白的部位便可以观察到褐色的谱带。
通过这些谱带的数量、位置等获得相关信息。
三、仪器试剂1.实验材料小麦幼苗2.仪器:垂直板电泳槽(型号:DYY-III28A型电泳槽厂家:北京市六一仪器厂) 电泳仪(型号:DYY-III2稳压稳流电泳仪厂家:北京市六一仪器厂)主要器具:移液器、微量进样器、培养皿一套(直径15cm)、小烧杯3.试剂(1)分离胶缓冲液(pH8.9 Tris-HCl缓冲液):称取48 mL 1mol/L HCl,Tris36.8g,用无离子水溶解后定容至100 mL。
实验项目名称过氧化物酶特性的测定一、实验目的1.学习利用分光光度计的时间扫描法测定酶的催化活性,掌握酶活力的计算和表达方法,了解过氧化物酶的作用特征,并对过氧化物酶的催化作用有所认识。
2.巩固利用紫外吸收法测定蛋白质浓度二、实验原理白萝卜中含有较多的过氧化物酶,通过研磨白萝卜的肉质、破碎细胞可使过氧化物酶溶出,制备粗酶提取液。
过氧化氢通过自身的分解能够氧化邻苯二胺成为 2,3-二氨基吩嗪,反应式如下:过氧化物 H2O2能被过氧化物酶催化分解,从而使以上反应大大加快。
过氧化物酶是一类含血红素的酶。
由铁与卟啉环络合,结合在卟啉环中央组成血红素。
由于血红素中铁的价位可发生变化而起氧化还原反应,血红素可作为辅酶参与许多酶的组成,过氧化物酶只是含血红素的众多酶中的一种。
邻苯二胺被 H2O2 氧化成为具颜色的 2,3-二氨基吩嗪,后者在 426 nm 处有最大吸收峰,故产物形成的量可通过测定 426 nm 处的吸光值而求得。
在一定条件下,可用单位时间里产物形成的量来表示酶促反应速度。
酶促反应速度越快,单位时间里形成的产物的量越多,酶活性越高。
本实验中,产物的量可直接用 426 nm 处的吸光值来表示,所以,在温度、H2O2、底物的量等固定后(H2O2和底物为过量),加入酶催化剂后通过时间扫描就可测知其酶活力。
以水代替酶催化剂作为空白对照。
酶活力大小的表达以比活力表述为最好,即以单位重量的酶蛋白所具有的催化速度来表示,所以,要测定酶样液中酶蛋白的含量。
利用蛋白质在紫外光 280 nm 处有最大吸收峰的特性,通过与已知含量的蛋白质标样在此波长处的吸收值进行比较可计算出样品中蛋白的含量三、实验仪器及试剂可见-紫外分光光度计,离心机,研钵,离心管,移液枪,白萝卜,30%H2O2,20 mM 邻苯二胺,1 mg/mL BSA (牛血清白蛋白)标样,蒸馏水等四、实验步骤1.酶样液的准备及其酶蛋白含量的测定白萝卜削皮取肉质,切成小粒或薄片,称取 3.094 g,在研钵上加 3 mL 蒸馏水研磨成稀泥状,一起移至离心管中,用 3 mL 蒸馏水冲洗干净研钵,一起并入离心管,以 4000 rpm 离心 10 分钟,取上清液,为粗酶样液。
实验五 聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分析过氧化物酶同工酶一、目的同工酶是指能催化同一种化学反应, 但其酶蛋白本身的分子结构组成却有所不同的一组 酶。
它们是 DNA 编码的遗传信息表达的结果。
最近的研究表明,同工酶与生物的遗传、生 长发、代谢调节及抗性等都有一定的关系。
因此,测定同工酶在理论上和实践上都有重要的 意义。
用聚丙烯酰胺凝胶电泳测定同工酶,方法简便、灵敏度高,重现性强,测定结果便于 观察、记录和保存。
过氧化物酶是植物体内普遍存在的、活性较高的一种酶。
它与呼吸作用、光合作用及生 长素的氧化等都有关系。
在植物生长发育过程中它的活性不断发生变化。
因此,测定这种酶 的活性或其同工酶的变化情况,可以反映某一时期植物体内代谢的变化。
本实验采用聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳技术,分离小麦幼苗过氧化物酶同工酶,根据酶 的生物化学反映,通过染色方法显示出酶的不同区带,以鉴定小麦幼苗过氧化物酶同工酶。
通过本实验,主要要掌握电泳技术的原理、方法、设计、装置、凝胶配制等问题,熟悉所有 的操作过程,另外,对同工酶有一个感性的认识。
二、原理1.电泳现象带电粒子在电场中向与其自身带相反电荷的电极移动,这种现象称为电泳。
由于带电胶粒或分子中各种成份,所具有的电荷和分子量不同,在电场中将以不同的速 度移动,因而在电泳进行过程中,不同的成份将按照各自的迁移速度得到有效的分离。
2.影响电泳的主要因素若将带净电荷 q 的粒子放入电场,则该粒子所受到的引力 F 引可用数学式表示如下:F 引 =E × q (1)式中 E 为电场强度,单位为“伏特/厘米” ,表示电场中单位距离上的电位差。
如果这种情况发生在真空中,则带电粒子会朝着电极加速前进并且最后与电极相撞。
但 在溶液中,由于电场的牵引力 F 引与加速运动的粒子和溶液之间产生的阻力(即摩擦力)F 阻 相对抗,故上述现象不会发生。
根本 Stokes 公式,阻力的大小取决于粒子的大小和形状以 及所在介质的粘度:F 阻 = 6pghn(2) 式中 F 阻是球形粒子所受的阻力,g 是球形粒子的半径,h 是溶液的粘度,n 是粒子移动的速度。
过氧化物酶活性的测定实验报告过氧化物酶活性的测定实验报告引言:过氧化物酶(peroxidase)是一类广泛存在于生物体内的酶,具有氧化还原催化作用。
它能够催化过氧化物的分解,将有害的过氧化物转化为无害的物质,起到保护生物体的作用。
本实验旨在通过测定过氧化物酶活性的方法,了解该酶在不同条件下的活性变化。
材料与方法:1. 实验材料:- 过氧化氢(H2O2)溶液- 过氧化苯胺(TMB)溶液- 过氧化物酶提取液- 磷酸盐缓冲液(pH 6.0)- 96孔微孔板- 酶标仪2. 实验步骤:1) 在96孔微孔板中加入100μL过氧化物酶提取液;2) 加入100μL磷酸盐缓冲液和100μL过氧化苯胺溶液;3) 加入100μL过氧化氢溶液;4) 快速混匀,放置在酶标仪中;5) 设置酶标仪的波长为450nm,记录吸光度的变化;6) 每隔10秒记录一次吸光度值,持续测定3分钟。
结果与讨论:实验结果显示,随着时间的推移,吸光度值逐渐增加,说明过氧化物酶催化反应正在进行。
吸光度的变化趋势反映了过氧化物酶的活性。
进一步分析发现,在实验开始时,吸光度值的增加速度较快,随后逐渐减缓,最终趋于平稳。
这说明过氧化物酶的活性在反应初期较高,随着反应的进行,底物浓度逐渐降低,酶的反应速率也随之降低。
这种现象与酶的底物浓度和酶-底物复合物的形成有关。
此外,我们还进行了不同条件下过氧化物酶活性的比较。
将实验分为两组,分别在室温和低温条件下进行。
结果显示,在室温下,酶的活性较高,吸光度值增加的速度更快。
而在低温条件下,酶的活性明显降低,吸光度值的增加速度也较慢。
这表明过氧化物酶的活性受到温度的影响,适宜的温度有利于酶的催化活性。
结论:通过本实验的测定,我们成功地测定了过氧化物酶的活性,并观察到了其在不同条件下的活性变化。
实验结果表明,过氧化物酶的活性受到底物浓度和温度的影响。
在反应初期,酶的活性较高,随着反应进行,活性逐渐降低。
适宜的温度有利于酶的催化活性。