血涂片的制备与染色
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血涂片制备与染色一、血涂片制备【器材】清洁、干燥、无尘、无油脂的载玻片(25 mm x75 mm ,厚度为0.8-1.2mm) 。
【操作】血涂片制备方法很多,目前临床实验室普遍采用的是手工推片法,在玻片近端1/3 处,加一滴(约0.05 ml) 充分混匀的血液,握住另一张边缘光滑的推片,以30°- 45°角使血滴沿推片迅速散开,快速、平稳地推动推片至载玻片的另一端。
【附注】1. 血涂片通常呈舌状或楔形,分头、体、尾三部分。
2. 推好的血涂片应在空气中晃动,使其尽快干燥。
天气寒冷或潮湿时,应于37℃恒温箱中保温促干,以免细胞变形缩小。
3. 涂片的厚薄、长度与血滴的大小、推片与载玻片之间的角度、推片时的速度及红细胞比容有关。
一般认为血滴大、角度大、速度快则血膜厚;反之则血膜薄。
红细胞比容高于正常时,血液黏度较高,保持较小的角度,可得满意结果;相反,红细胞比容低于正常时,血液较稀,则应用较大角度、推片速度应较快。
4. 血涂片应在1 h 内染色或在1 h 内用无水甲醇(含水量<3% )固定后染色。
5. 新购置的载破片常带有游离碱质,必须用浓度约1 mol/LHCL浸泡24 h 后,再用清水彻底冲洗,擦干后备用。
用过的载玻片可放人含适量肥皂或其他洗涤剂的清水中煮沸20 min ,洗净,再用清水反复冲洗,蒸馆水最后浸洗,擦干备用。
使用时,切勿用手触及玻片表面。
二、血涂片染色(一)瑞氏( Wright) 染色法【原理】瑞氏染色法使细胞着色既有化学亲和反应,又有物理吸附作用。
各种细胞由于其所含化学成分不同,对染料的亲合力也不一样,因此,染色后各种细胞呈现出各自的染色特点。
【试剂】1.瑞氏染液(1)瑞氏染料0.1 g(2)甲醇(AR) 60.0 ml 。
瑞氏染料由酸性染料伊红和碱性染料美蓝的氧化物(天青)组成。
将瑞氏染料放人清洁干燥研钵里,先加少量甲醇,充分研磨使染料溶解,将己溶解的染料倒人棕色试剂瓶中,未溶解的再加少量甲醇研磨,直至染料完全溶解,甲醇全部用完为止。
血涂片的制备与染色实验报告血涂片的制备与染色实验报告简介本报告旨在介绍血涂片的制备与染色实验方法及步骤,以及相关注意事项和结果分析。
实验步骤1.准备所需材料:–血液样本–血涂片载玻片–血液涂片器–双氧水–细胞染色剂–拖尾液–显微镜片2.制备血涂片:–取一滴血液样本,滴于载玻片中。
–使用血涂片器,将血液涂片器顶端垂直贴附在载玻片上。
–慢慢向后移动血涂片器,使血液样本均匀地涂布于载玻片上。
3.干燥血涂片:–将制备好的血涂片放置于通风处,自然晾干。
4.染色处理:–将已干燥的血涂片浸入双氧水中,浸泡5分钟,用来溶解红细胞。
–用显微镊子夹取血涂片,轻轻晃动10次,使红细胞充分分散。
–轻轻将血涂片冲洗干净,以去除残留的双氧水。
–将血涂片浸入细胞染色剂中,染色1分钟。
–将血涂片冲洗干净,确保没有染色剂残留。
5.拖尾处理:–取适量拖尾液滴在盖玻片上。
–将染色好的血涂片倒置放在盖玻片上,使其与拖尾液接触。
–轻轻拖动血涂片,使细胞核进入拖尾液。
6.结果观察与分析:–将染色好的血涂片放置在显微镜下进行观察。
–分析细胞形态、染色程度等指标,记录结果。
注意事项•实验过程中需戴好实验手套,避免直接接触血液。
•制备血涂片时,务必将血液涂布均匀,以免影响结果。
•双氧水具有漂白作用,使用时需小心避免溅到衣物或皮肤上。
•染色剂使用过程中,应注意避免吸入或误食。
•结果分析时,应根据实验要求和标准参考范围进行判断。
结论通过本实验,我们成功制备了血涂片并进行了染色处理。
观察结果可为后续血液相关研究提供重要数据和参考。
在实验过程中,我们严格遵守实验室操作规程,并注意了安全事项。
希望本报告对今后的血涂片制备与染色实验有所帮助。
参考文献:无。
血涂片制备与染色临床应用血涂片制备是临床实验室中常见的实验操作,用于观察和诊断患者的血液情况。
正确的血涂片制备与染色技术将有助于提高血涂片的质量,为临床医生提供准确的诊断信息。
本文将介绍血涂片制备的步骤以及常用的染色方法,并探讨其在临床应用中的意义。
一、血涂片制备步骤1. 准备工作:首先需要准备好检测所需的材料,包括玻璃片、无菌注射器、消毒酒精、无纺布等。
确保工作台面整洁,无尘无菌。
2. 采集血液样本:选择合适的采血部位,用无菌注射器采集血样,并将血样滴在玻璃片上。
3. 制备血涂片:将另一块玻璃片平行放在血样上,以45度角倾斜,缓慢向前移动,使血涂片的宽度均匀。
4. 干燥固定:将制备好的血涂片晾干,或者用火焰烘干,使细胞固定在玻璃片上。
5. 染色处理:根据需要选择合适的染色方法进行处理,使细胞核、胞质等结构清晰可见。
二、血涂片染色1. Giemsa染色:是血涂片最常用的染色方法之一,可用于观察红细胞形态、白细胞分类及寄生虫等。
染色时间和比例需控制好,避免染色过度或不足。
2. Wright染色:适用于白细胞分类和形态分析,特别是嗜酸性粒细胞和嗜碱性粒细胞的染色效果较好。
3. 厌氧染色:用于观察寄生虫、真菌等微生物,需要较长的染色时间和特殊的操作条件。
三、血涂片在临床应用中的意义1. 诊断疾病:通过观察血涂片中各种细胞的数量、形态、分布等特征,可以帮助医生诊断贫血、感染、白血病等疾病。
2. 指导治疗:血涂片可以反映患者的血液情况,指导医生制定合理的治疗方案,监测治疗效果。
3. 预后评估:血涂片中某些指标的变化可以反映患者病情的进展和预后情况,有助于医生及时调整治疗策略。
综上所述,正确的血涂片制备与染色技术对于临床医学具有重要意义。
通过规范操作和严格控制,可以提高血涂片的质量,为临床诊断提供可靠的依据。
希望本文对于血涂片制备与染色临床应用有所帮助,谢谢!。
血涂片制作与染色1.血涂片的制备血涂片的制备需要用到标本采集工具如无菌化的注射器、针头、试管、硅化玻璃片以及一些实验室试剂如无菌生理盐水、巴氏溶液和电解溶液等。
具体步骤如下:(1)将患者指尖的表面清洁卫生。
(2)选择一个适合的静脉穿刺点,通常是患者的中指或无名指。
(3)用酒精棉球清洁穿刺点,使其干燥。
(4)将无菌化的注射器连接到无菌生理盐水的瓶口上,并抽取一定量的生理盐水。
(5)将针头插入穿刺点后,将生理盐水匀速注射入患者的静脉内。
(6)在生理盐水滴入试管的同时,用眼微观检查,如果有血液进入注射器和管道内,即可采集。
宜用自来水洗净试管外表面,先不带盖座放倾空液。
(7)用试管夹夹住注射针,将针头推入试管内,然后轻轻射入试管底部液面下,同时向上抽手,保持抽液缓慢,可避免气泡产生。
(8)将采集到的血液缓缓带走,同时注入试管内,让其与100ml巴氏溶液进行搅拌。
(9)将混合液倾入瓷漏斗中,从中取出干燥了的血细胞。
2.血涂片的染色血涂片染色可使用湿涂片法或干涂片法,其中湿涂片法应用更广泛。
下文将以湿涂片法为例进行介绍。
(1)取一根硅化玻璃片,用纸巾或棉球擦拭干净。
(2)用血涂片染色钳将准备好的血涂片床放在玻璃片上。
(3)将一滴适量的Wright液倒在血涂片的中段。
Wright液包含了染色剂和辅助剂,其中主要成分是吡啶基甲重氮盐和三氧二氮菲盐。
(4)用另一根玻璃片的尾部将液滴均匀地扩开,并迅速在血涂片上来回涂抹,在染液与血涂片上充分接触并混合。
(5)保持血涂片在室温下静置5-10分钟,以促进染色反应的进行。
(6)用蒸馏水冲洗玻璃片上的染料,并将其晾干。
3.血涂片的观察与分析观察血涂片需用光学显微镜,常规放大倍数为1000倍。
观察血涂片时,应注意血细胞的形态、大小、核形态、细胞质染色情况及相关细胞间的比例等。
根据各种细胞的数量和比例,可以初步评估出是否存在异常细胞,及其可能的病理性质,如感染、贫血等。
总结:血涂片制作与染色是血液检查中重要的步骤之一,它能够帮助医生判断病情,制定治疗方案。
实验四血涂片的制备与染色【目的】掌握血涂片的制备和染色方法(preparation and staining of thin blood films)。
【原理】将一小滴血液均匀涂在玻片上,呈单层紧密分布,制成薄血片。
用含天青B和伊红的Romannowsky类染料进行染色。
细胞中的碱性物质如RBC中的血红蛋白及嗜酸性粒细胞胞质中的嗜酸性颗粒等与酸性染料伊红结合染成红色;细胞中的酸性物质如淋巴细胞胞质及嗜碱性粒细胞质中的嗜碱性颗粒等与碱性染料亚甲蓝结合染成蓝色;中性粒细胞的中性颗粒呈等电状态与伊红和美蓝均可结合,染成淡紫红色。
【器材】1.载玻片使用前,必须仔细清洗,并用乙醇或软布清洁。
2.推片选择边缘光滑的载玻片,在两角分别作斜线标记,然后用玻璃切割刀裁去两角,制成约15mm 宽度的推片。
3.吸耳球。
4.显微镜。
5.酒精灯或Bunsen灯。
6.采血针。
7.注射器和针头。
【试剂】1.瑞氏(Wright)染液(1)Ⅰ液:包含瑞氏染料1.0g、纯甲醇(AR级以上)600ml、甘油15ml。
将全部染料放入清洁干燥的乳钵中,先加少量甲醇慢慢地研磨(至少30min),以使染料充分溶解,再加一些甲醇混匀,然后将溶解的部分倒入洁净的棕色瓶内,乳钵内剩余的未溶解的染料,再加入少许甲醇细研,如此多次研磨,直至染料全部溶解,甲醇用完为止。
再加15ml甘油密闭保存。
(2)Ⅱ液:磷酸盐缓冲液(pH6.4~6.8),包含磷酸二氢钾(KH2PO4)0.3g、磷酸氢二钠(Na2HPO4)0.2g、蒸馏水加至1000ml。
配好后用磷酸盐溶液校正pH,塞紧瓶口贮存。
如无缓冲液可用新鲜蒸馏水代替。
2.吉姆萨染液包含吉姆萨染料0.75g、甘油35ml、甲醇65ml。
将吉姆萨染料、甘油和甲醇放入含玻璃珠的容器内,每天混匀3次,连续4天,最后过滤备用。
3.瑞-吉复合染液(1)I液:包含瑞氏染料1g、吉姆萨染料0.3g、甲醇500ml、中性甘油10ml。
血涂片染色的实验报告血涂片染色的实验报告引言:血涂片染色是一项常见的实验技术,用于观察和分析血液中的细胞形态和数量。
通过染色,我们可以更好地了解血液中的不同细胞类型,从而帮助医生进行疾病的诊断和治疗。
本实验报告旨在介绍血涂片染色的实验步骤、原理以及实验结果的分析。
实验步骤:1. 收集血液样本:首先,我们需要从被试者的指尖或静脉采集一小滴血液样本。
为了确保实验的准确性,我们使用无菌针头和管子进行采集,并严格遵守消毒措施。
2. 制备血涂片:将采集到的血液样本滴在玻片上,然后使用另一片玻片将其涂抹开来。
这样,我们就得到了一张薄薄的血涂片。
3. 固定与染色:将制备好的血涂片在室温下晾干,然后将其浸入甲醇中进行固定。
固定后,我们可以选择不同的染色方法,如吉姆萨染色、伊昭染色等,以展现细胞的不同特征。
4. 镜检与分析:使用显微镜观察染色后的血涂片。
通过调整镜头和光源,我们可以清晰地看到血液中的各种细胞,如红细胞、白细胞和血小板。
根据它们的形态、大小和数量,我们可以进行进一步的分析和诊断。
实验原理:血涂片染色的原理基于细胞的结构和染色剂的特性。
不同的染色剂会与细胞的不同成分发生特异性反应,从而使细胞在显微镜下呈现出不同的颜色和形态。
例如,吉姆萨染色中的嗜碱性染料会与细胞核和某些细胞器结合,使其呈现出蓝色或紫色;而伊昭染色则能够染色红细胞,使其呈现出红色。
实验结果分析:通过观察血涂片,我们可以得到以下信息:1. 红细胞数量和形态:红细胞是血液中最常见的细胞类型,其数量和形态可以反映出机体的贫血程度和红细胞的功能状态。
正常情况下,红细胞应呈现出均匀的圆盘状,数量适中。
若红细胞过少或过多,或者形态异常,可能提示贫血、炎症或其他疾病的存在。
2. 白细胞分类和计数:白细胞是免疫系统的重要组成部分,通过观察血涂片,我们可以对白细胞进行分类和计数。
常见的白细胞类型有中性粒细胞、淋巴细胞、单核细胞、嗜酸性粒细胞和嗜碱性粒细胞。
血涂片制备与染色
血涂片是通过特定的方法将血液按一定方向均匀涂开的过程,微观上使细胞是由球形变为平面形或近平面形平铺在载玻片上。
血涂片的显微镜检查是血液细胞形态学检查的基本步骤,特别是对于各种血液病的诊断和鉴别诊断,具有重要价值。
血涂片制备是否合格、染色的好坏直接关系到检验结果的质量。
(一)血涂片制备
1.载玻片的准备
新载玻片常带有游离碱质,须用浓度为lmol/L的HCl浸泡24h,再用清水彻底冲洗,干燥后备用。
旧载玻片要用含洗涤剂的清水中煮沸20min,洗掉血膜,再用清水反复冲洗,最后用0.95L/L乙醇浸泡1h,干燥备用。
使用载玻片时,不要用手触及玻片表面,保持玻片清洁、干燥、中性、无油腻。
2.血涂片制作方法
取血液标本一滴置载玻片的一端,以边缘平滑的推片一端,从血滴前沿方向接触血液,使血液沿推片散开,推片与载玻片保持30~45○夹角,平稳地向前推动,血液即在载玻片上形成薄层血膜。
涂片的厚薄与血滴大小、推片与载玻片之间的角度、推片时的速度及血细胞比容有关。
血滴大、角度大、速度快则血膜越厚;反之则血膜越薄。
一张良好的血涂片,要求厚薄适宜,头体尾明显,细胞分布均匀,血膜边缘整齐并留有的空隙。
(二)血涂片染色
染色的目的是使细胞的主要结构,如细胞膜、细胞质、细胞核等染上不同的颜色,以便于镜下观察识别。
血涂片染色包括两个过程:固定和染色。
固定是将细胞蛋白质和多糖等成分迅速交联凝固,以保持细胞原有形态结构不发生变化。
常用的染色方法有瑞特染色法(Wright)、姬姆萨染色法(Giemsa)等。
1.瑞特(Wright)染色法
为发观察细胞内部结构,识别各种细胞及其异常变化,血涂片必须嘲行染色。
血涂片的各种染色方法大多是罗氏染色法衍变来的。
目前常用瑞特染色法。
(1)瑞特染料是由酸性染料伊红和碱性染料亚甲蓝组成有复合染料。
亚甲蓝为四甲基硫堇染料,有对醌型和邻醌型两种结构。
通常为氯盐,即氯化美蓝。
美蓝容易氧化为一、二、三甲基硫堇等次级染料。
市售美蓝中部分已被氧化为天青。
伊红通常为钠盐。
即伊红和伊混合后,产生一种憎液性胶体伊红美蓝中性沉淀,即瑞特染料。
(2)细胞的染色既有物理的吸附作用,又有化学的亲和作用,各种细胞成分化学性质不同,对各种染料的亲和力也不一样。
因此,用本染料液染色后,在同一血片上,可以看到各种不同的色彩,例如血红蛋白,嗜酸性颗粒为碱性蛋白质,与酸性染料伊红结果,染粉红色,称为嗜酸性物质;细胞核蛋白和淋巴细胞胞浆为酸性,与碱性染料美蓝或天青结合,染紫蓝色,称为嗜碱性物质;中性颗粒呈等电状态与伊红和美蓝均可结合,染淡紫色,称为中性物质。
(3)PH对细胞染色有影响。
细胞各种成分均不蛋白质,由于蛋白质系两性电解质,所带电荷随溶液PH而定,在偏酸性环境中下在电荷增多,易与伊红结合,染色偏红;在偏三性环境中负电荷增多,易与美蓝或天青结合,染色偏蓝。
因此细胞染色对氢离子浓度十分敏感,染色用正经片必须清洁,无酸碱污染。
配制瑞特液必须用优质甲醇,稀释染色必须用缓冲液,冲洗用水应近中性,否则可导致各种细胞染色反应异常,以致识别困难,甚至造成错误。
新鲜配制的染料偏碱,须在室温或是37℃下贮存一定时间,待染料成熟,主要是美蓝逐渐转变为天青B后才能使用,贮存时愈久,染色效果愈好。
EAMGILLILAND等采用吸光度比值作为顼特染液的质量规格。
RA测定方法如下:取瑞特染液15-25μl(视染液浓度而定),加甲醇10ml稀释,混匀后以甲醇为空折管,分别以波长650nm和25nm比色。
Ra=a650/a525.因为美蓝吸收峰小组长为650nm,伊红吸收峰波长为525nm;天青B吸收峰也为650nm但吸光度A约为美蓝的一半。
所以新配染料RA接近2,随着美蓝逐渐氧化为天青B,RA也相应下降。
RA下降到1.3±0.1时即可使用。
瑞特染液贮存过程中,以防止甲醇挥发和被氧化成甲酸。
有人主张在配方中加入甘油30ml,防止甲醇挥发,为了细胞染色清晰。
甲醇必须纯净,如甲醇中丙酮含量过多,染色偏酸,使白细胞着色不良。
本法的特点是将固定和染色合并在一起进行,手续简便,染色时间短,对白细胞特异性颗粒着色较好,但对核的着色略差。
2.姬姆萨(Giemsa)染色法姬姆萨染料由天青和酸性染料伊红组成的复合染料。
染色原理、缓冲液与瑞特染色法大致相同。
本法对细胞核结构和寄生虫着色较好,结构显示更为清晰,但细胞质和颗粒着色较差。
3.瑞-姬染色法
瑞特染色液和姬姆萨染色液对细胞进行染色时有各自的显色特征,前者对细胞浆和颗粒着色较好,后者对对细胞核结构显示清晰。
因此将瑞特染料和姬姆萨染料混合,甲醇溶解后组成瑞-姬染色液能取长补短,优势互补,其中所使用的缓冲液与瑞特染色法相同。
用该混合染液对血细胞进行染色,细胞核、细胞浆和细胞内颗粒着色均有上佳表现,着色鲜艳,对比鲜明,是临床上广泛使用的方法。