实验一蛙坐骨神经
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一、实验目的1. 了解蛙坐骨神经的解剖结构,掌握坐骨神经的分离方法。
2. 观察坐骨神经的生理特性,了解神经兴奋传导的原理。
3. 掌握电刺激神经的方法,观察神经兴奋传导时的生物电现象。
二、实验原理蛙坐骨神经是人体重要的神经之一,负责下肢的感觉和运动。
坐骨神经兴奋传导过程中,会产生生物电现象,通过电刺激可以观察到神经兴奋传导的特点。
本实验通过分离蛙坐骨神经,观察神经兴奋传导过程,了解神经兴奋传导的原理。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:青蛙、剪刀、镊子、手术刀、电刺激器、任氏液、培养皿、生理盐水等。
2. 实验仪器:显微镜、放大镜、示波器、刺激器控制台、电极等。
四、实验步骤1. 准备实验材料:将青蛙解剖,取出坐骨神经,用任氏液清洗,备用。
2. 分离坐骨神经:用剪刀和镊子小心分离坐骨神经,注意保护神经纤维的完整性。
3. 制作神经标本:将分离好的坐骨神经固定在培养皿中,用生理盐水浸泡。
4. 观察神经兴奋传导:将电极连接到示波器,调整电极位置,观察神经兴奋传导时的生物电现象。
5. 电刺激神经:调整电刺激器,给予坐骨神经一定强度的电刺激,观察神经兴奋传导情况。
6. 记录实验数据:观察并记录神经兴奋传导的速度、幅度等参数。
五、实验结果与分析1. 观察到坐骨神经在电刺激下,兴奋传导速度快,传导过程中出现明显的生物电现象。
2. 实验结果显示,神经兴奋传导速度与电刺激强度呈正相关,即电刺激强度越大,神经兴奋传导速度越快。
3. 实验结果还显示,神经兴奋传导过程中,生物电幅度随距离的增加而逐渐减小。
六、实验结论1. 本实验成功分离了蛙坐骨神经,观察到了神经兴奋传导的生物电现象。
2. 通过电刺激神经,验证了神经兴奋传导的速度与电刺激强度呈正相关。
3. 本实验有助于加深对神经兴奋传导原理的理解,为生理学研究和临床应用提供实验依据。
七、实验讨论1. 本实验中,神经兴奋传导速度受多种因素影响,如温度、神经纤维的完整性等。
2. 在实验过程中,应注意保护神经纤维的完整性,避免损伤神经。
生理学实验1 蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备一、目的和原理蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动与温血动物近似,但其离体组织所需的生活条件比较简单,且易于控制,因此在生理学实验中常用其离体组织或器官作为实验标本。
例如:蛙或蟾蜍的坐骨神经腓肠肌标本,可用来观察和研究兴奋性、兴奋过程、刺激引起兴奋的条件、兴奋在神经-肌接头处的传递、肌肉收缩的特点等多种生理现象,所以,制备坐骨神经-腓肠肌标本,是生理学实验的一项基本操作技术。
本实验的目的是:学习并掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的方法,为以后的神经肌肉实验打下基础。
二、实验对象蛙或蟾蜍三、器材和用品蛙板、蛙针、蛙钉、剪刀(2把)、镊子(2把)、玻璃针、锌铜弓、培养皿、滴管、棉线、棉球、尸体盘(以上用品合称蛙类解剖器械一套)及任氏液。
四、方法与步骤1.破坏脑脊髓选一活泼健壮的蛙或蟾蜍,用清水冲洗干净。
左手握蛙,用食指下压吻端,拇指按压背部,使头前俯;右手持蛙针由吻端沿正中线向尾端触划,所触到的凹陷处即是枕骨大孔所在部位。
将蛙针由此垂直刺入皮下,再将针尖折向前方,经枕骨大孔进入颅腔,左右搅动捣毁脑组织(图1-1)。
然后将蛙针退出至刺入点皮下,再将针尖向后插入椎管捣毁脊髓。
图1-12.剪除前部躯干及内脏在骶髂关节以上1厘米处用粗剪刀剪断脊柱,并将前部躯干及所有内脏一并剪去,仅保留一段腰骶部脊柱和后肢。
在所留脊柱的腹侧两旁可看到坐骨神经丛。
剪下的部分置于尸体盘内。
3.剥皮左手捏住脊柱断端,右手捏住断端边缘的皮肤,向下剥掉后肢的全部皮肤,标本置于盛有任氏液的培养皿中待用,皮肤弃去。
洗净双手和器械,以免蛙或蟾蜍皮肤的分泌物损害神经和肌肉。
4.分离两后肢将下肢标本腹侧向上用蛙钉固定于蛙板上,用玻璃针沿脊柱两侧分离两条坐骨神经;在两条坐骨神经下各穿一线,于靠近脊柱处将其分别结扎,并在扎线与脊柱之间剪断神经;左手用结扎线提起坐骨神经,右手持剪刀或玻璃针向下游离,直至坐骨神经出盆腔处;将游离的两条坐骨神经分别置于两侧大腿的肌肉上。
蛙坐骨神经干动作电位实验报告实验目的:了解蛙坐骨神经干的解剖结构及生理特性,掌握神经肌肉接头的测定方法和技巧,学习蛙坐骨神经干动作电位的记录和分析方法,深入了解神经传导的基本机理。
实验原理:蛙坐骨神经干是神经传导的重要组织,由大量神经纤维构成,是神经冲动的传递通路。
神经冲动传导是指类似于电流的生物信号通过神经纤维传递到靶细胞上的过程。
神经冲动引起神经肌肉接头产生动作电位,反映神经冲动的传递情况。
动作电位的测量是研究神经传导机制的重要方法之一。
实验器材:蛙、麻醉器,放大器,隔离器,逆止器,刺激极,探针极,银线,电极膏,实验记录纸等。
实验步骤:1、用适量麻醉剂将蛙麻醉。
2、用剪刀剪去蛙的一部分肌肉,找到大约5毫米左右的坐骨神经干,用银线轻轻固定。
3、将刺激极粘在蛙的大腿部肌肉上,将探针极插入神经干上。
4、将放大器、隔离器、逆止器与刺激极、探针极连接。
5、调整隔离器、逆止器、放大器的参数,使所测波形在记录纸上清晰可见且无噪音干扰。
6、改变刺激极输入电量的大小,记录神经肌肉接头的相应电位。
反复测量并记录数据。
7、根据神经肌肉接头产生的电位波形特征和输入电量的大小,计算神经冲动传导的速度。
实验结果:通过实验记录,测量了神经肌肉接头产生的电位波形特征和输入电量的大小,计算了神经冲动传导的速度。
根据实验结果,可以得到蛙坐骨神经干的生理特性和传导速度,深入了解神经传导机制的基本机理。
实验总结:通过本次实验,我了解了神经冲动传导的基本机理,掌握了神经肌肉接头测定方法和技巧,学习了神经冲动传导速度的计算方法。
同时,还深刻认识到实验操作的安全性和重要性,要时刻保持实验室的安全和高效运作。
第1篇一、实验目的1. 学习蛙的解剖结构,掌握青蛙坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
2. 了解神经和肌肉的兴奋、兴奋性,刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征。
3. 掌握蛙心灌流实验方法,观察心脏活动的影响因素。
二、实验原理1. 蛙的坐骨神经-腓肠肌标本制备:蛙的坐骨神经和腓肠肌在生理条件下具有兴奋性和传导性,通过制备坐骨神经-腓肠肌标本,可以观察神经和肌肉的兴奋、兴奋性,刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征。
2. 蛙心灌流实验:离体心脏灌流实验是研究心脏生理功能的重要方法,通过改变灌流液的成分,可以观察其对心脏活动的影响,了解心脏的正常节律性活动。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:青蛙、任氏液、生理盐水、剪刀、手术剪、眼科镊、金属探针、玻璃分针、蛙板、蛙钉、细线、培养皿、滴管、电子刺激器、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、套管夹、65%NaCl、2%CaCl2、1%KCl、1:10000肾上腺素、1:10000乙酰胆碱、3%乳酸。
2. 实验仪器:蛙类解剖台、显微镜、电生理实验系统、刺激器、数据采集系统、蛙心灌流装置。
四、实验方法与步骤1. 蛙的坐骨神经-腓肠肌标本制备:(1)取青蛙一只,用生理盐水冲洗干净,左手握住蛙,使其背部向上。
(2)用眼科镊和剪刀在青蛙的坐骨神经和腓肠肌处剪开,分离出坐骨神经和腓肠肌。
(3)将坐骨神经和腓肠肌置于任氏液中,用玻璃分针轻轻拨动腓肠肌,观察肌肉收缩情况。
2. 蛙心灌流实验:(1)将青蛙的左心耳和左肺静脉用细线结扎,然后剪断,使心脏与体循环分离。
(2)将心脏置于蛙心灌流装置中,连接计算机采集系统和刺激器。
(3)将灌流液(任氏液)通过灌流装置注入心脏,观察心脏搏动情况。
(4)改变灌流液的成分,如加入肾上腺素、乙酰胆碱、乳酸等,观察心脏活动的影响。
五、实验结果与分析1. 蛙的坐骨神经-腓肠肌标本制备成功,腓肠肌在刺激下产生明显的收缩反应。
2. 蛙心灌流实验成功,心脏在灌流液的作用下保持节律性搏动。
蛙的坐骨神经实验报告蛙的坐骨神经实验报告一、引言在生物学研究中,动物模型的使用对于理解生物体结构和功能起着重要的作用。
蛙作为一种常见的实验动物,其神经系统的研究对于人类疾病的治疗和神经科学的发展具有重要意义。
本实验旨在通过研究蛙的坐骨神经,探究其功能和特性。
二、材料与方法1. 实验动物:成年蛙(学名:Rana temporaria)2. 实验器材:手术刀、显微镜、注射器、生理盐水等3. 实验步骤:a. 麻醉蛙:将蛙置于麻醉盒中,使用适量的麻醉剂使其进入麻醉状态。
b. 手术准备:在麻醉后,将蛙固定在实验台上,清洁手术区域。
c. 手术操作:使用手术刀小心地切开蛙的皮肤和肌肉,暴露出坐骨神经。
d. 神经刺激:使用注射器中的生理盐水,以适当的电流刺激坐骨神经,观察蛙的反应。
e. 数据记录:记录不同电流强度下蛙的反应情况,包括肌肉收缩、蛙腿的运动等。
f. 结束实验:将蛙的伤口缝合,放回饲养箱中恢复。
三、结果与讨论1. 坐骨神经的位置和特点:通过手术操作,我们成功地暴露出了蛙的坐骨神经。
坐骨神经位于蛙的后肢内侧,与股骨平行且相对较深。
它是一条粗大的神经,负责传递感觉和运动信号。
2. 坐骨神经的刺激效果:在实验中,我们使用不同强度的电流刺激坐骨神经,并观察蛙的反应。
随着电流强度的增加,蛙的肌肉逐渐收缩,蛙腿也会出现运动。
这表明坐骨神经对于蛙的运动功能起着重要作用。
3. 坐骨神经的功能:坐骨神经是蛙的主要运动神经之一,它与蛙的肌肉直接相连,并负责传递运动指令。
通过刺激坐骨神经,我们可以观察到蛙的肌肉收缩和蛙腿的运动,这进一步证实了坐骨神经在蛙的运动中的重要性。
4. 坐骨神经的临床意义:蛙的神经系统与人类的神经系统在结构和功能上有许多相似之处。
通过研究蛙的坐骨神经,我们可以更好地理解人类神经系统的运作机制。
此外,坐骨神经的研究还有助于揭示一些神经系统疾病的发病机制,并为相关疾病的治疗提供新的思路和方法。
四、结论通过本实验,我们成功地研究了蛙的坐骨神经,并观察到了其在蛙的运动中的重要作用。
一、实验目的1. 观察牛蛙坐骨神经干的结构特点。
2. 学习神经传导的基本原理和实验方法。
3. 了解神经兴奋传导过程中动作电位的变化规律。
4. 掌握神经生理学实验的基本操作技术。
二、实验原理牛蛙坐骨神经干是神经传导的重要组织,由大量神经纤维构成,是神经冲动的传递通路。
神经冲动传导是指类似于电流的生物信号通过神经纤维传递到靶细胞上的过程。
在实验中,通过观察牛蛙坐骨神经干在兴奋传导过程中的动作电位变化,可以了解神经传导的基本原理和规律。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:牛蛙一只,任氏液,生理盐水,细线,剪刀,手术刀,眼科镊,玻璃分针,蛙板,蛙钉,培养皿,滴管,电子刺激器。
2. 实验仪器:生物显微镜,神经生理实验装置,记录仪,示波器。
四、实验步骤1. 准备工作:将牛蛙处死,置于生理盐水中浸泡,使其肌肉松弛。
将牛蛙背部朝上,用剪刀剪开皮肤,暴露坐骨神经干。
2. 制备标本:用眼科剪和眼科镊小心地分离坐骨神经干,将其固定在蛙板上。
用生理盐水清洗坐骨神经干,去除杂质。
3. 连接仪器:将牛蛙坐骨神经干与神经生理实验装置连接,确保连接牢固。
将记录仪和示波器连接到实验装置上。
4. 观察动作电位:调整刺激器的参数,对坐骨神经干进行电刺激。
观察示波器上动作电位的变化,记录动作电位波形。
5. 重复实验:改变刺激强度和频率,重复实验,观察动作电位的变化规律。
6. 数据处理:将实验数据记录在表格中,分析动作电位的变化规律。
五、实验结果与分析1. 观察到牛蛙坐骨神经干的结构特点,包括神经纤维、神经膜和神经髓鞘等。
2. 在实验过程中,随着刺激强度的增加,动作电位幅度逐渐增大;随着刺激频率的增加,动作电位潜伏期逐渐缩短。
3. 当刺激强度达到一定值时,动作电位幅度达到最大,此时称为阈刺激强度。
在此强度以下,动作电位幅度逐渐增大;在此强度以上,动作电位幅度保持不变。
4. 随着刺激频率的增加,动作电位潜伏期逐渐缩短,说明神经传导速度与刺激频率有关。
一、实验目的1. 熟悉蛙类神经系统的基本结构。
2. 学习蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制作方法。
3. 观察神经兴奋传导现象,测量神经传导速度。
4. 探讨神经兴奋传导的生理机制。
二、实验原理蛙类神经系统主要由中枢神经系统和周围神经系统组成。
中枢神经系统包括大脑和脊髓,周围神经系统包括脑神经和脊神经。
坐骨神经是脊神经的一部分,负责下肢的运动和感觉。
在实验中,通过刺激坐骨神经,观察腓肠肌的收缩反应,可以了解神经兴奋传导的过程。
神经兴奋传导速度是衡量神经传导功能的重要指标。
三、实验材料1. 实验动物:健康青蛙一只。
2. 实验器材:蛙板、蛙钉、手术剪、组织剪、眼科剪、镊子、探针、玻璃分针、细线、培养皿、滴管、电子刺激器、生理盐水、任氏液。
3. 实验药品:生理盐水、任氏液。
四、实验步骤1. 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制作- 将青蛙用蛙钉固定在蛙板上。
- 用手术剪剪开青蛙的皮肤,暴露坐骨神经。
- 在坐骨神经上方用组织剪剪一小段,并使用细线结扎。
- 在结扎线以下用眼科剪剪断坐骨神经,并使用细线结扎。
- 在腓肠肌上做一个切口,暴露肌肉组织。
- 将坐骨神经和腓肠肌用任氏液浸泡,保持湿润。
2. 神经兴奋传导实验- 将电子刺激器连接到坐骨神经上。
- 设置刺激参数,进行刺激。
- 观察腓肠肌的收缩反应。
- 记录刺激频率和腓肠肌收缩时间。
3. 神经传导速度测量- 在坐骨神经上设置刺激点A和B。
- 在腓肠肌上设置收缩反应点C。
- 使用电子刺激器分别刺激A点和B点。
- 记录A点和B点刺激时间以及C点收缩反应时间。
- 根据A、B、C三点间的距离和刺激时间,计算神经传导速度。
五、实验结果1. 观察到在刺激坐骨神经后,腓肠肌发生收缩反应。
2. 记录到的刺激频率和腓肠肌收缩时间如下:| 刺激频率(Hz) | 收缩时间(s) || -------------- | ------------ || 1 | 0.1 || 5 | 0.05 || 10 | 0.02 |3. 根据实验数据,计算神经传导速度如下:| 刺激频率(Hz) | 传导速度(m/s) || -------------- | -------------- || 1 | 0.1 || 5 | 0.5 || 10 | 1.0 |六、实验分析1. 观察到在刺激坐骨神经后,腓肠肌发生收缩反应,说明神经兴奋传导是有效的。
实验一蛙坐骨神经腓肠肌标本制备[目的] 熟悉蛙(或蟾蜍) 的坐骨神经腓肠肌标本的制备方法,初步掌握几项基本实验操作。
[原理] 蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相类似,而其组织在离体状态下,易于控制和掌握,所以蛙类的神经一肌肉标本常用以研究兴奋性、兴奋过程、刺激的一些规律和特性。
[实验动物] 蛙(或蟾蜍)[器材及药品] 解剖器械,锌铜弓,培养皿,烧杯,任氏液,棉花,线。
[方法及步骤]1.破坏脑脊髓:取蛙或蟾蜍一只,用蛙针从枕骨大孔垂直插入,向前伸人颅腔,捣毁脑髓;向后插入椎管,捣毁脊髓。
如果蛙处于瘫痪状态,表示脑和脊髓完全破坏。
然后沿两侧腹部将蛙横断为上下两半。
并将前半段弃去,保留后半段备用。
2.剥离皮肤:先剪去尾椎末端及泄殖腔附近的皮肤,然后从脊柱的断端撕下皮肤,将其全部剥去,直至趾端。
除去内脏,将标本放在滴有任氏液的蛙玻璃板上。
将手及使用过的解剖器械洗净。
3.分离标本为两部分:沿脊柱正中线将标本匀称地剪成左右两半,一半浸入盛有任氏液的烧杯中备用,另一半作进一步剥制。
4.分离坐骨神经:在大腿背侧的半膜肌与股二头肌之间用玻璃分针分离出坐骨神经。
注意:分离时要仔细用剪刀剪断坐骨神经的分支,向上分离至基部,向下分离到腘窝。
保留与坐骨神经相连的一小块脊柱,将分离出来的坐骨神经搭于腓肠肌上;去除膝关节周围以上的全部大腿肌肉,刮净股骨上附着的肌肉,保留的部分就是坐骨神经及股骨。
5.分离腓肠肌:在跟键上扎一线,提起结线,剪断结线后的跟腱,腓肠肌即可分离出来。
此时在膝关节下方将其他所有组织全部剪去,到此为止,带有股骨的坐骨神经腓肠肌标本制备完成。
6.标本的检验:将坐骨神经腓肠肌标本放置在蛙玻璃板上,用锌铜弓刺激坐骨神经,若腓肠肌迅速发生收缩反应,说明标本机能良好,制备成功。
应及时移放入盛有任氏液的培养皿中,供实验之用。
[注意事项]1.剥制标本时,切忌用金属器械牵拉或触碰神经干。
2. 分离肌肉时应按层次剪切。