1398酶米氏常数Km的测定

过氧化氢酶米氏常数的测定——学习指南
l 学习重点 1. 了解米氏常数的意义。

2. 掌握过氧化氢酶米氏常数的测定方法和操作。

l 知识要点
1. 米氏常数：酶反应速度达到最大反应速度（V max ）一半时的底物浓度，用K m 来表示，单位与浓度单位相同。

K m 值与酶的种类和作用底物有关，与酶浓度、底物浓度无关。

2. 双倒数作图法求K m 值：将米氏方程转变如下：
m max max
K 111v V [S]V =×+ 以1/v~1/[S]作图，可求得K m 值。

m
3. 过氧化氢酶：催化H 2O 2分解，产生H 2O 和O 2。

2H 2O 2 ¾¾¾¾¾
®过氧化氢酶 2H 2O ＋O 2↑ l 试剂 1. 0.02mol/L 磷酸缓冲液（pH7.0）。

2. 0.01mol/L KMnO 4溶液。

3. 0.1mol/L H 2O 2溶液。

4. 25% H 2SO 4溶液。

l 材料
新鲜马铃薯
l 仪器 电子天平、组织匀浆器、循环水泵、抽滤装置、滴定管、滴定架、定时器、移液器、温度计
l 操作
l 注意事项
1. 准确控制每个体系的反应时间。

2.
酶浓度须均一，若酶浓度过大，反应时间过短，会造成较大误差
，应适当稀释。

实验五固体发酵纤维素酶米氏常数Km的测定一、目的了解纤维素酶的种类和测定原理，掌握其活力的测定方法。

二、原理纤维素酶在一定温度和pH条件下，将纤维素底物(滤纸)水解，释放出还原糖。

在碱性、煮沸条件下，3，5一二硝基水杨酸(DNS试剂)与还原糖发生显色反应，其颜色的深浅与还原糖(以葡萄糖计)含量成正比。

通过在540 run测其吸光度，可得到产生还原糖的量，计算出纤维素酶的滤纸酶活力。

以此代表纤维素酶的酶活力。

酶活定义以滤纸为底物，在一定反应条件（50℃，pH4.8，恒温1h）下，以水解反应中每小时催化底物水解形成1μmol葡萄糖的酶量为一个单位（U）。

三、试剂和溶液(一) 除非另有说明，在分析中仅使用确认为分析纯的试剂和蒸馏水或去离子水或相当纯度的水。

1 DNS试剂称取3，5一二硝基水杨酸(10士0. 1)g，置于约600 mL水中，逐渐加入氢氧化钠log，在50℃水浴中(磁力)搅拌溶解，再依次加入酒石酸甲钠200 g、苯酚(重蒸)2g和无水亚硫酸钠5g，待全部溶解并澄清后，冷却至室温，用水定容至I 000mL，过滤。

贮存于棕色试剂瓶中，于暗处放置7d后使用。

2柠檬酸缓冲液，0. 05 mol/L pH 4.8(适用于酸性纤维素酶)称取一水柠檬酸4.83 g，溶于约750 mL水中，在搅拌情况下，加入柠檬酸三钠7.94g，用水定容至1000 mL。

调节溶液的pH到(4.8士0.05)备用。

注:也可采用pH4.8乙酸缓冲溶液:称取三水乙酸钠8. 16 g，溶于约750 ml，水中，加入乙酸2.31 ml，用水定容至1 000 ml.调节溶液的pH到(4.810.05)备用3葡萄糖标准贮备溶液（4mg/ml）同实验四上述系列浓度应根据需要自行调整。

.5快速定性滤纸(杭州新华一号滤纸)沪15 cm(每批滤纸，使用前用标准酶加以校正)。

(二) 仪器除普通实验室仪器外，还应有:1分光光度计2酸度计精度10.01 pH 3恒温水浴(50士0.l)0C4分析天平感量0.1 mg 5磁力搅拌器6秒表或定时钟7沸7k洛(可用800W申炉和高脚烧杯、楠夸量杯或茸楠奔器切成) 8具塞刻度试管25 mL四、操作步骤4.1绘制标准曲线按表A. l规定的量，分别吸取葡萄糖标准使用溶液(A.2.5)、缓冲溶液(A.2.2或A.2.3)和DNS试剂(A.2.1)于各管中(每管号平行作3个样)，混匀。

酶活米氏常数实验一、实验前准备1、24孔板洗净烘干，准备足够枪头。

2、准备催化剂，在光下呈透明状为分散性较好，否则用超声清洗器（位于化学间）超声分散5min，期间准备底物（如TMB或者ABTS），浓度依照自己实验的要求定（10mg/mL 或5mg/mL），一般1mL足够用，可在1.5mL离心管中溶解。

TMB（外间冰箱上层）溶于DMSO（二甲亚砜，位于化学间王春雨的柜子里），ABTS（与TMB放在一起）溶于二次水。

3、将缓冲液、催化剂、底物、H2O2、200µL和10µL移液枪、50µL排枪（位于称量处上方模拟酶专用枪的柜中）、96孔板、24孔板、卷纸一起放入纸盒中，放到对面酶标仪前，开空调定室温（25℃，提醒其他人随手关门），24孔板中其中一排加入适量H2O2（每孔1mL 左右，注意避光，可在板上盖一张卷纸），将缓冲液、催化剂、底物放实验台上，静置0.5-1h。

4、记录本上提前写好实验的加样顺序：催化底物TMB（或ABTS）的酶促动力学过程加样顺序：①200µL缓冲液②10µL催化剂③底物TMB（ABTS）(0，0.5，1，2，4，6，8，10µL) ④32µLH2O2（排枪加）催化底物H2O2的酶促动力学过程加样顺序：①200µL缓冲液②10µL催化剂③H2O2（2，4，6，8，10，16，32，64µL）④10µL底物TMB（ABTS）（排枪加）数据记录按下表记，Code为每次读板时的微孔板编号，Time为对应的读板时的时间，一般30s读板一次，可根据反应的快慢来确定读板的时间。

Code 1 2 3 4 5 6 7TimeTMB 0 0.5 1 2 4 6 8 10V01Code 1 2 3 4 5 6 7TimeH2O2 2 4 6 8 10 16 32 64V01二、实验1、打开酶标仪（开关在仪器后部，若仪器没反应，请检查电源是否接通），密码为5个0，按Enter键进入系统。

【米氏常数】米氏常数测定实验的报告.docx米氏常数是一个经验参数，它是用于测量基质和溶质之间相互作用的重要参数。

米氏常数的测定涉及到溶质和基质的相互作用，主要是通过溶解度进行测定。

下面就是本实验的报告。

实验背景米氏常数是用来描述溶质在溶液中浓度度量的非线性关系的参数。

米氏方程如下：Ksp = [A+]^m [B-]^n其中Ksp是溶解度积常数，[A+]和[B-]分别表示电离度为1的正离子和负离子的浓度，m和n分别为正离子和负离子在配位物中的摩尔数。

溶解度积（或离解平衡常数）是可以直接从溶解度数据中获得的参数，这些参数是根据溶解度测量推导出来的，通常采用天平法或者滴定法进行测量。

实验目的本实验的目的是测定铅酸盐的米氏常数，用溶解度法测定铅酸盐的溶度积常数，并根据米氏方程计算米氏常数。

实验原理铅酸盐在水溶液中的离解方程式：PbSO4(s) ⇆ Pb2+(aq) + SO42-(aq)溶解度积常数是根据溶解度求出的：对于低溶度度超取6.5，我们软件系统一压根对孔直接忽略其离子反应方程中的y。

实验流程1. 准备1 L的稀铅酸溶液（2 × 10-5 mol/L）2. 取0.2 mL的稀铅酸热解，目测重量大概是0.03 g左右。

3. 将稀铅酸加入100 mL的无铅纯水溶液中，然后调整pH值，使稀铅酸与水达到最大的平衡浓度。

4. 记录溶解度数值，并计算铅酸盐的溶解度积常数。

实验结果1. 初始重量为0.03 g的铅酸盐溶解后，其溶解度为5.5 × 10-5 mol/L。

2. 根据铅酸盐的溶解度计算溶解度积常数Ksp为3.025 × 10-9。

3. 根据米氏方程Ksp = [Pb2+][SO42-]，计算出米氏常数为1.79。

一、实验目的1. 理解并掌握米氏常数（Km）及其与最大反应速度（Vmax）的关系。

2. 通过实验测定酶的米氏常数，了解酶与底物之间的亲和力。

3. 学习并掌握酶促反应动力学的基本原理和实验方法。

二、实验原理米氏常数（Km）是酶的特征性常数，表示酶与底物结合的亲和力。

在一定的实验条件下，酶促反应的初速度（v）与底物浓度（[S]）之间的关系可用米氏方程表示：\[ v = \frac{V_{max} [S]}{Km + [S]} \]当底物浓度很低时，酶促反应速度与底物浓度成正比，随着底物浓度的增加，反应速度逐渐加快，但增速逐渐减慢。

当底物浓度增加到一定程度时，反应速度达到最大值（Vmax），此时酶已全部被底物饱和。

本实验采用分光光度法测定酶的米氏常数。

实验中，通过改变底物浓度，测定不同浓度下酶促反应的初速度，根据米氏方程绘制v/[S]对1/[S]的曲线，通过线性回归分析求出曲线的斜率和截距，进而计算出Km和Vmax。

三、实验材料与仪器材料：1. 酶制剂（如蔗糖酶、淀粉酶等）2. 底物溶液（如葡萄糖溶液、淀粉溶液等）3. 碳酸盐缓冲液4. 4-氨基安替比林5. 铁氰化钾6. 0.1 mol/L NaOH溶液7. 葡萄糖标准溶液仪器：1. 分光光度计2. 移液管3. 移液器4. 恒温水浴5. 试管6. 比色皿四、实验步骤1. 制备酶溶液：将酶制剂溶解于适量的碳酸盐缓冲液中，调节pH值至最适值，稀释至一定浓度。

2. 制备底物溶液：将底物溶液稀释至不同浓度，备用。

3. 测定酶促反应初速度：a. 将不同浓度的底物溶液分别加入试管中，加入适量的酶溶液。

b. 将试管放入恒温水浴中保温一段时间。

c. 取出试管，立即加入适量的4-氨基安替比林和铁氰化钾，充分混匀。

d. 在分光光度计上测定溶液的吸光度，记录数据。

4. 数据处理：a. 以底物浓度[S]为横坐标，酶促反应速度v为纵坐标，绘制v/[S]对1/[S]的曲线。

b. 对曲线进行线性回归分析，求出曲线的斜率和截距。

米氏方程中km和vmax的测定引言米氏方程是描述酶与底物之间反应速率的重要工具。

其中的两个关键参数是Km和Vmax，分别代表了底物浓度为一半时的反应速率和最大反应速率。

测定这两个参数对于了解酶的底物亲和性和催化效率至关重要。

本文将介绍两种常用的方法来测定Km和Vmax。

正文1. 双倒数法（Lineweaver-Burk plot）双倒数法是一种常见且简便的测定Km和Vmax的方法。

该方法基于米氏方程的倒数形式，可以将实验数据转化为线性关系，从而确定Km和Vmax。

实验步骤如下：1.1 准备一系列底物浓度的反应混合物，反应时间相同。

1.2 测定每个反应混合物的反应速率。

1.3 计算每个浓度下的倒数，即1/[S]和1/v。

1.4 绘制1/v和1/[S]的双倒数图。

1.5 通过拟合直线确定斜率（Km/Vmax）和截距（1/Vmax）。

1.6 由斜率和截距计算Km和Vmax。

该方法的优点是操作简单，不需要复杂的仪器设备。

然而，由于双倒数法在计算过程中引入了测量误差，因此结果可能存在一定的偏差。

2. 非线性回归法（Nonlinear regression）非线性回归法是一种更精确的测定Km和Vmax的方法。

该方法通过拟合米氏方程，直接得出Km和Vmax的数值。

实验步骤如下：2.1 准备一系列底物浓度的反应混合物，反应时间相同。

2.2 测定每个反应混合物的反应速率。

2.3 将实验数据带入米氏方程进行拟合，得到Km和Vmax的数值。

非线性回归法的优点是准确性高，结果更可靠。

然而，该方法需要借助计算机软件进行数据拟合，操作相对较复杂。

讨论通过以上两种方法，可以准确测定酶的Km和Vmax。

Km是衡量底物与酶之间亲和力的指标，Km越小，底物与酶结合越紧密；Vmax是酶催化反应的最大速率，反映了酶的催化效率。

在实际应用中，选择合适的测定方法需要考虑多个因素，包括实验条件、酶的性质以及研究目的。

双倒数法适用于简单的酶底物体系，操作简单快捷；非线性回归法适用于复杂的酶底物体系，结果更为准确可靠。

酶的米氏常数测定实验报告背景酶是一种生物催化剂，能够加速化学反应的速率。

酶的活性常常通过测定其米氏常数来评估，米氏常数也被称为酶的催化效能常数。

米氏常数能够反映出酶与底物之间的亲和力以及酶对底物的催化速率。

米氏常数（Km）表示在酶浓度不变的情况下，酶对底物的亲和力。

它是底物浓度达到一半时的酶活性的浓度。

Km值越小，说明酶与底物结合的亲和力越大，反之亦然。

在本次实验中，我们选择使用酸性磷酸酯酶作为模型酶，它催化对硫酸酚酸酯的水解反应。

通过测定酶的活性随底物浓度变化的情况，来确定酶的米氏常数。

实验设计实验材料•酸性磷酸酯酶提取物•磷酸二氢钠溶液•氯化亚铁(III)溶液•硫酸酚酸酯溶液•无水醋酸溶液•pH 7缓冲溶液实验步骤1.准备一系列不同浓度的硫酸酚酸酯溶液（如0.1 mM、0.2 mM、0.3 mM等），并标记每个溶液的浓度。

2.分别向多个试管中加入相同体积的pH 7缓冲溶液、酸性磷酸酯酶提取物和不同浓度的硫酸酚酸酯溶液，混合均匀。

3.将试管放入恒温水浴中，保持温度稳定。

4.在0、5、10、15等不同时间点，取出一部分反应液，立即加入冰冷的无水醋酸溶液停止反应。

5.加入氯化亚铁(III)溶液以生成可检测的产物。

6.使用分光光度计测定反应液的吸光度，根据吸光度与产物浓度的线性关系，得到各个时间点的反应速率。

7.根据浓度和时间的关系，绘制酶活性随底物浓度变化的图谱。

8.根据实验数据，计算出酶的米氏常数。

分析通过实验数据的收集和处理，我们得到了酶活性随底物浓度变化的曲线图。

根据实验结果，我们可以进行如下分析：1.绘制酶活性随底物浓度变化的图谱，可以观察到反应速率随着底物浓度的增加而增加，但当底物浓度达到一定水平时，反应速率趋于饱和，不再显著增加。

这可能是由于酶与底物结合的位点有限，或者由于酶的饱和度导致的。

2.根据实验数据，我们可以使用米氏方程来计算酶的米氏常数。

米氏方程可以表示为：其中V是反应速率，Vmax是最大反应速率，[S]是底物浓度，Km是米氏常数。

酶工程实验报告五(纤维素酶米氏常数—Km的测定)引言在酶工程中，了解和研究酶的基本特性是非常重要的。

米氏常数(Km)是一种描述酶的底物浓度与酶速率之间关系的参数，它能够给出底物与酶的结合强度和底物浓度对反应速率的影响程度。

本实验旨在通过测定纤维素酶的米氏常数，来探讨纤维素酶与底物纤维素之间的结合情况以及底物浓度对纤维素酶催化反应速率的影响。

实验方法实验材料和仪器•纤维素酶溶液•含有不同浓度纤维素的底物溶液•pH缓冲液•活化剂•酶解试管•恒温水浴•分光光度计实验步骤1.准备一系列不同浓度的纤维素底物溶液。

2.将50 μL纤维素酶溶液加入酶解试管中。

3.加入100 μL纤维素底物溶液和150 μL pH缓冲液。

4.加入适量的活化剂，混匀试管中的液体。

5.将试管放入恒温水浴中，在37°C恒温条件下进行酶解反应。

6.设定分光光度计波长为适当的值，测定反应体系中的底物浓度随时间的变化。

7.重复以上步骤，并分别用不同浓度的纤维素底物进行实验。

实验结果通过分光光度计测定反应体系中的底物浓度随时间的变化，得到了以下数据：时间 (min) 底物浓度 (mmol/L)0 105 8.710 7.515 6.220 5.025 3.730 2.535 1.240 0.0根据实验数据，我们可以绘制底物浓度随时间的变化曲线图。

通过拟合得到的曲线，可以确定纤维素酶的米氏常数。

数据处理与分析根据实验数据，我们可以将底物浓度随时间的变化绘制成一条曲线。

通过拟合得到的曲线，可以确定纤维素酶的米氏常数。

假设底物浓度随时间的变化符合酶动力学方程：V = Vmax * [S] / (Km + [S])其中，V为反应速率，[S]为底物浓度，Vmax为最大反应速率，Km为米氏常数。

我们可以通过将实验数据代入上述方程进行拟合，得到最优的Vmax和Km的估计值。

结果与讨论通过将实验数据代入酶动力学方程进行拟合，我们得到了纤维素酶的米氏常数(Km)的估计值。

测定km值的方法KM值（也称为Michaelis-Menten常数）是指在酶催化反应中衡量酶与底物结合紧密程度的常数。

它是酶底物相互作用的一个重要参数，也是评价酶的亲和性和活性的重要指标之一。

测定KM值对于了解酶的特性以及酶催化机理具有重要意义，因此有很多方法能够用来测定KM值，下面将介绍几种常用的方法。

首先，最常见的测定KM值的方法之一是通过酶动力学实验。

在酶动力学实验中，我们可以通过测定不同底物浓度下酶的催化速率来计算KM值。

通过将底物的浓度逐渐增加，然后测定不同浓度下的酶催化速率，然后根据Michaelis-Menten方程进行拟合，就可以得到KM值。

这种方法简单易行，可以在实验室中进行。

其次，还可以利用双底物试验来测定KM值。

在双底物试验中，我们通过在反应体系中同时加入两种底物，然后测定酶的催化速率随着两种底物的浓度变化而变化。

根据双底物试验得到的实验数据，可以利用特定的方程和算法计算出KM 值。

这种方法适用于那些对底物相互作用行为感兴趣的研究者。

另外，还可以利用工程学方法来测定KM值。

工程学方法主要是通过对酶的结构和功能进行分子模拟和计算来预测酶的KM值。

这种方法适合于那些缺乏实验条件或者需要快速筛选大量酶的研究者。

此外，还可以利用进化学方法来测定KM值。

进化学方法是通过构建和筛选突变库来获得具有不同KM值的酶变体，然后通过比较不同变体的KM值来揭示影响KM值的关键位点和基团。

这种方法适合于那些想要了解酶中不同位点对KM值的影响的研究者。

最后，还可以利用光谱学方法来测定KM值。

光谱学方法是通过利用酶与底物结合产生的光谱变化来测定KM值。

这种方法适合于那些想要在不破坏酶的自然状态下测定KM值的研究者。

总的来说，测定KM值的方法有很多种，每种方法都有其独特的优势和局限性。

选择适合的方法取决于研究者研究的具体问题和实验条件。

希望以上介绍的几种方法能够帮助研究者更好地测定KM值，从而深入了解酶的特性和酶催化机理。

酶活米氏常数实验一、实验前准备1、24孔板洗净烘干，准备足够枪头。

2、准备催化剂，在光下呈透明状为分散性较好，否则用超声清洗器（位于化学间）超声分散5min，期间准备底物（如TMB或者ABTS），浓度依照自己实验的要求定（10mg/mL 或5mg/mL），一般1mL足够用，可在1.5mL离心管中溶解。

TMB（外间冰箱上层）溶于DMSO（二甲亚砜，位于化学间王春雨的柜子里），ABTS（与TMB放在一起）溶于二次水。

3、将缓冲液、催化剂、底物、H2O2、200µL和10µL移液枪、50µL排枪（位于称量处上方模拟酶专用枪的柜中）、96孔板、24孔板、卷纸一起放入纸盒中，放到对面酶标仪前，开空调定室温（25℃，提醒其他人随手关门），24孔板中其中一排加入适量H2O2（每孔1mL 左右，注意避光，可在板上盖一张卷纸），将缓冲液、催化剂、底物放实验台上，静置0.5-1h。

4、记录本上提前写好实验的加样顺序：催化底物TMB（或ABTS）的酶促动力学过程加样顺序：①200µL缓冲液②10µL催化剂③底物TMB（ABTS）(0，0.5，1，2，4，6，8，10µL) ④32µLH2O2（排枪加）催化底物H2O2的酶促动力学过程加样顺序：①200µL缓冲液②10µL催化剂③H2O2（2，4，6，8，10，16，32，64µL）④10µL底物TMB（ABTS）（排枪加）数据记录按下表记，Code为每次读板时的微孔板编号，Time为对应的读板时的时间，一般30s读板一次，可根据反应的快慢来确定读板的时间。

Code 1 2 3 4 5 6 7TimeTMB 0 0.5 1 2 4 6 8 10V01Code 1 2 3 4 5 6 7TimeH2O2 2 4 6 8 10 16 32 64V01二、实验1、打开酶标仪（开关在仪器后部，若仪器没反应，请检查电源是否接通），密码为5个0，按Enter键进入系统。

双倒数法测定过氧化物酶的米氏常数学院/专业/班级____________________________________________ 姓名_______________ 合作者___________________________________________________ 教师评定___________【实验目的】以过氧化物酶为例，掌握测定酶促反应初速率和米氏常数的原理及方法【实验原理】1913年，Michaelis 和Menten 运用酶反应过程中形成中间络合物的原理，首先提出了底物浓度和酶促反应速率的关系式，即著名的米氏方程：[][]S K S V v m max +⋅= 式中：v 为反应初速率（微摩尔浓度变化/min ）；V max 为最大反应速率（微摩尔浓度变化/min ）；[S ]为底物浓度（mol/L ）；K m 为米氏常数（mol/L ）。

这个方程式表明当已知K m 及V max 时，酶反应速率与底物浓度之间的定量关系。

K m 值等于酶促反应速率达到最大反应速率一半时所对应的底物浓度，是酶的特征常数之一。

不同酶的K m 值不同，同一种酶与不同底物反应K m 值也不同，K m 值可以近似的反应酶与底物的亲和力大小：K m 越大表明亲和力越小；K m 越小表明亲和力越大。

大多数纯酶的K m 值在0.01~100 mmol/L 。

通过米氏方程的不同变形，可有多种求算米氏常数的方法，一般较常用的双倒数法，即取米氏方程的倒数式：[]max max m V 1S 1V K v 1+⋅=以v 1对[]S 1作图得一直线，该直线与横轴截距[]m K 1S 1=-。

过氧化物酶是一种对氢受体（H 2O 2） 底物有特异性，对氢供体底物缺乏特异性的酶，它可催化过氧化氢氧化许多多元酚或多元胺类底物发生显色、荧光或化学发光反应，可用于微量过氧化氢含量测定，也可以和其它酶反应系统偶联可用于测定许多与生命相关的物质：如葡萄糖、半乳糖、氨基酸、尿酸及胆甾醇等，亦是免疫分子和核酸分析中常用的标记物。

酵母蔗糖酶米氏常数的测定［原理］当环境的温度、pH 和酶浓度等条件恒定时，酶促反应的初速度 V 随底物的浓度［S ］增高 而加快，直至达到一极限，即最大反应速度 Vmax 根据底物浓度和反应速度的这种关系，Michaelis-Me nten 推导得出如下公式：Vmax[S] Km +[S]式中Km 为米氏常数。

它是酶的特征性常数。

测定 Km 是研究酶的一项重要工作。

大多 数酶Km 在 10-3〜10-5mol/L 左右。

但是 Michaelis-Menten 方程中反应速度 V 与底物浓度［S ］之间为双曲线关系，通过作图求 Km 值极不方便。

Lin eweaver-Burk 根据米氏方程又推导出如下直线方程：1 Km 1 1 = ----------- • + -------------------------- V Vmax ［S ］ Vmax以1/［S ］为横坐标，1/V 为纵坐标，将各点连成一直线，此线向左延长与横轴相交处即 为米氏常数（Km ）的负值。

本实验是用比色法测定一定时间内、 一定量的蔗糖酶作用于不同浓度的底物 （蔗糖）生 成产物的量，即葡萄糖的量。

此产物的生成量为反应速度，然后按Lineweaver-Burk 双倒数 作图法作图（图14），就可以求出 Km 值。

[S]图14 Lin eweaver-Burk 双倒数作图法［试剂］1. 0.03mol/L 蔗糖溶液。

2. 0.2mol/L pH5.0 醋酸缓冲液：取 0.2mol/L 醋酸钠溶液 70ml 与0.2mol/L 乙酸溶液1Km30ml相混合。

3. 蔗糖酶溶液：干酵母 2.5g置研钵中，加蒸馏水4ml，用力研磨10分钟，转移到离心管中，用25ml蒸馏水洗研钵，并将洗涤液一起转移到离心管中，摇匀，静置50分钟，离心(2000r/min 5min ),小心取出上清夜备用。

置冰箱保存。

实验时根据需要用蒸馏水适当稀释。

(约25倍稀释)4. 碱性硫酸铜溶液：取无水Na t CO40g溶于400ml蒸馏水中；酒石酸7.5g溶于350ml蒸馏水中；结晶硫酸铜(CuSO • 5fO) 4.5g溶于200ml蒸馏水中，以上分别加热促溶。