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大学生创新课题关于公布2009-2010学年学生课外科技学术活动立项项目及2010年广东省“大学生创新实验计划”项目的通知各学院、附属医院,教辅机构,根据《关于做好2009-2010学年学生课外科技学术活动课题申报及开展2010年广东省“大学生创新实验计划”项目申报的通知》(校教字[2010]395)号文件要求,由学生自主申请,各学院审核推荐,共有38项理科项目,10项文科项目被列入2010年广东省“大学生创新实验计划”项目,学校专项资金资助理科项目2000元,文科项目1000元,资助金额共计86000元。
共150个项目被批准为学生课外科技学术活动项目立项,其中自然科学类项目83项,每项资助800元,科技发明类项目20项,每项资助800元,哲学社会科学类项目47项,每项资助500元,资助金额共计105900元。
现予以公布,见附件,。
为了保证学生课外科研学术活动的顺利实施,并取得实质性成果,现就项目管理的有关事宜通知如下,一、广东省大学生创新实验项目1、广东省“大学生创新实验计划”项目开展时间从2010年6月30日开始计算。
大学生创新实验项目研究时间跨度为1-2年。
学校对项目进展进行跟踪管理,定期或不定期查阅实验工作记录、实施中期检查,查阅学生实验原始数据、实验报告和文献综述。
学校每年12月30日前向学校递交创新实验项目实施情况,填写中期检查报告,同结题验收书,。
学校根据实施进展情况进行总结并向教育厅报告项目进展情况。
2、项目结束后,由项目负责人提出结项申请,经学校教改项目管理部门组织专家组进行结项论证,省教育厅视学校提交结项材料情况或组织专家进行验收。
具体事项按有关规定执行,未在规定期限内完成的项目将予以公布或撤销。
评审结果报省教育厅备案。
3、根据《南方医科大学大学生创新性实验计划项目管理办法,试行,》和《南方医科大学大学生创新性实验计划项目实施方案,试行,》文件要求,请按《广东省大学生创新实验项目任务书》,填报一式四份于12月15日前报学校教务处综合计划科。
年广东高校省级重点平台和重大科研项目要求—————-——————---—————————————————作者：--—————--—-——-———————--———————-- 日期:附件12017年广东高校省级重点平台和重大科研项目认定申报要求一、重点建设平台只接受历年来获省教育厅立项的各类科研创新平台总数不超过6个的本科高校申报。
已通过省教育厅组织的验收，且已成功升格为省部级以上科研创新平台的，可不计入统计范围.（一）广东省普通高校重点实验室1。
学科建设基础好。
实验室所在学科应为省部级以上重点学科，原则上应具有硕士以上学位授予权（新兴学科、交叉学科或具有明显地方特色的学科除外）。
2。
研究方向和目标明确。
契合广东高校学科特点和重点学科布局，符合广东经济、社会发展的重大需求，研究领域属优先或重点发展方向，所从事的研究工作在本学科领域达到国内先进行列或较高水平，在国内同行中具备一定的优势，特色明显.具备承担国家或省部级重大、重点科研项目和培养高层次人才的能力，能积极开展国际合作研究与学术交流。
3。
学术团队结构合理.在所从事的研究领域内有知名度较高的学术带头人、优秀中青年学术骨干和团结协作、管理能力较强的领导班子；研究团队学术水平高、年龄和知识结构合理,研究人员中具有高级职称（含正高、副高）的人员在10名以上，实验室近5年承担省部级以上科研项目10项、并获得项目经费500万元以上；有良好的科研传统和学术氛围。
4。
科研实验条件良好。
实验室面积原则上不低于2000平方米,并相对集中；比较先进的、技术状态良好仪器设备原值不低于800万元（部分纯基础学科除外）。
有稳定的管理、技术人员队伍及比较健全的管理制度。
5.支持保障有力。
依托学校能保障实验室建设的经费投入，有必要的技术支撑、后勤保障、国内外合作与交流的条件。
(二)广东省普通高校工程技术研究(开发）中心1.工程研究中心应具备以下条件：①依托学校的优势学科专业，具有相关支撑学科、技术的系统集成条件，在某一技术领域有坚实的工程技术研发和成果转化的工作基础、特色和业绩.近三年来已与2个或以上企业合作,成功进行工程技术研发和成果转化2项或以上。
广东培训自然科学基金项目立项选题及研究方法全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：广东是中国南方的一个重要省份，也是我国经济最发达的地区之一。
在广东，为了促进科技创新和提升自然科学研究水平，广东省教育厅设立了广东培训自然科学基金项目，用于支持广东省内各高校和科研机构的自然科学研究项目。
立项选题是一个科研项目从立项到结题的全过程中最为关键的一环。
选择一个合适的研究选题不仅意味着项目的成功与否，更代表着研究者在这一领域的学术水平和科研能力。
在广东培训自然科学基金项目中，研究者需要遵循一定的评审标准和程序来选择合适的研究选题。
研究选题必须符合广东培训自然科学基金项目的研究方向和目标。
广东培训自然科学基金项目通常会设定一些研究方向和重点领域，研究者需要根据这些方向和领域来选择自己的研究选题。
广东培训自然科学基金可能会重点支持生物医学、新材料、清洁能源等方向的研究项目，研究者就需要在这些领域中选择一个能够符合基金项目要求的研究选题。
研究选题必须具有一定的新颖性和前瞻性。
广东培训自然科学基金项目鼓励研究者在科研领域中寻找研究热点和前沿问题，提出有创新性的研究选题。
在选择研究选题时，研究者要结合自己的科研领域和专长，找到一个能够在该领域中有所突破和贡献的研究课题。
研究选题必须具有一定的实用性和推广性。
广东培训自然科学基金项目是为了促进科研成果的转化和应用，因此研究选题必须具有一定的实用性和推广性。
研究者在选择研究选题时要考虑到该研究成果是否能够为社会和产业发展带来实际利益，是否具有一定的推广和应用前景。
在确定了研究选题后，研究者就需要设计合适的研究方法和方案来开展研究工作。
在广东培训自然科学基金项目中，研究方法的选择对于研究项目的成功至关重要。
研究者需要根据自己的研究选题和研究目标来确定合适的研究方法，以确保研究工作能够顺利进行并取得预期的成果。
第二篇示例：广东是我国经济最为发达的省份之一，广东的科技实力和创新能力一直备受关注。
广东省自然科学基金项目年度综合报告
（年度）
填报单位（盖章）：
填报人（签章）：
单位负责人（签章）：
填报日期：
联系电话与传真：
E —mail 地址：
广东省科学技术厅基础研究处
2001年制
填表说明
一、每年12月15日前各单位将此文字材料与电子报表上报广
东省科学技术厅基础研究处；
二、上报材料应包括如下内容：（表格附后）
1、本年度在研项目、结题项目、跟踪项目清单；
2、本年度在研项目情况汇总表；
3、本年度结题项目情况汇总表；
4、本年度跟踪项目情况汇总表；
5、本年度重要在研项目、结题项目、跟踪项目简介；
6、本年度基金项目管理情况（经验、问题、建议）；
7、本单位学科建设情况；
8、本单位重点实验室建设情况和承担在研项目、跟踪项
目的基本情况。
三、各类统计数据必须真实，必须有广东省基金资助的标注，
数据的审核请各单位严格把关；
四、年度统计时间为：上年度12月—本年度11月；
附：一、本年度在研项目、结题项目、跟踪项目清单表栏内容：
四、年度跟踪项目进展情况汇总表应跟踪：项，此处统计跟踪：项。
广东省自然科学基金自由申请项目重点博士启动申请书项目名称：多巴胺受体对吗啡诱导的信号传导和基因表达的调控作用申请者：张璐所在单位：南方医科大学（原第一军医大学）基础部邮政编码：510515通讯地址：广州同和南方医科大学申请者电话： 020-6传真：电子邮件：申请日期：2005-3-5广东省自然科学基金管理委员会二○○一年制填报说明一、填写申请书前，请先查阅广东省自然科学基金有关项目申请办法及规定。
申请书各项内容，应实事求是，逐条认真填写。
表达要明确、严谨，字迹清晰易辨。
外来语要同时用原文和中文表达。
第一次出现的缩写词，须注出全称。
二、申请书请用A4复印纸，于左侧装订成册。
第三页起各栏空格不够时，请自行加页。
一式八份（至少一份为原件），由所在单位审查签署意见后，按申报通知送广东省自然科学基金管理委员会办公室。
三、封面右上角“顺序号”由各单位根据广东省自然科学基金管理委员会办公室的要求填写；“项目类别”栏由申请者填写, 申请“省自然科学基金自由申请项目”此栏为“A”, “省自然科学基金重点项目”为“C”，“省自然科学基金博士启动项目”为“D”。
简表填写要求一、简表内容必须逐项认真填写，采用国家公布的标准简化汉字。
简表中所有代码，以国家自然科学基金规定的代码为准填写。
二、凡选择性栏目，将相应提示符Ａ、Ｂ等之一填入该栏的右下角。
三、部分栏目填写要求：项目名称──应确切反映研究内容和范围，最多不超过２５个汉字（包括标点符号）。
基础研究──指以认识自然现象、探索自然规律为目的，不直接考虑应用目标的研究活动。
应用基础研究──指有广泛应用前景,但以获取新原理、新知识、新方法为主要目的的研究。
申报学科──申请项目所属的最基础学科。
如涉及多学科可填写两个，先填写主学科。
申请金额──以万元为单位，用阿拉伯数字表示。
研究期限──研究期限一般从申请的次年１月算起。
终止时间为完成年度的１２月。
所用实验室──系指研究项目将利用的实验室。
取水许可水源类型□普通□地热水□矿泉水□其他年申请取水量（万m3）取水地点地点名称： ______省（自治区） ______县（市、区） ______ 乡（镇）位置坐标：东经 ______ ° ______ ′ ______ ″，北纬 ______ ° ______ ′______ ″（坐标测量方法：____________ ）取水方式□单井□井群□自流□单井□井群□自流□单井□井群□自流□单井□井群□自流计量方式最大取水流量(m³/s)日最大取水量（m3/d）申请取水期限申请在地方级自然保护区修筑设施审批/永久、临时占用林地审核使用林地性质使用期限应缴森林植被恢复费（元）使用林地类型总计防护林林地特用林林地用材林林地经济林林地薪炭林林地苗圃地其他林地面积（公顷）计国有集体蓄积（立方米）计国有集体林地保护等级国家级公益林地自然保护区林地级别面积（公顷）级别面积（公顷）级别面积（公顷）Ⅰ一国家级Ⅱ二省级Ⅲ三Ⅳ森林公园林地湿地公园林地风景名胜区林地级别面积（公顷）级别面积（公顷）级别面积（公顷）国家级国家级国家级省级省级省级重点保护野生动物栖息地重点保护植物及生境古树名木及保护范围使用地方公益林地面积（公顷）省级公益林其他公益林在草原上修建直接为草原保护和畜牧业生产服务的工程设施使用草原审批草原征占用类别□征用使用□临时占用□修建服务用工程设施拟征占用草原的时限拟征占用草原具体用途拟征占用草原的基本情地点______省（区、市）______市（地、州、盟）______ 县（市、旗） ______乡（镇） 村权属草原所有者或使用者状况草原承包经营权者证书编号面积总面积公顷（折合 亩）天然草原公顷（折合______亩）人工草地公顷（折合______亩）其中基本草原公顷（折合______亩）补偿及征收费用合计（万元）草地补偿费牧草补偿费安置补助费植被恢复费涉及国家安全事项的建设项目审批项目外文名称用地批号规划许可批号土地权属建筑高度层数。
㊀山东农业科学㊀２０２３ꎬ５５(１０):１５~２１ＳｈａｎｄｏｎｇＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ㊀ＤＯＩ:１０.１４０８３/ｊ.ｉｓｓｎ.１００１－４９４２.２０２３.１０.００３收稿日期:２０２２－１２－２０基金项目:广东省基础与应用基础研究基金项目(２０２３Ａ１５１５０１０３３６ꎬ２０２１Ａ１５１５０１１２３６)ꎻ广东省普通高校重点领域专项(２０２２ＺＤＺＸ４０４７)ꎻ韶关学院重点项目(ＳＺ２０２２ＫＪ０５)ꎻ国家自然科学基金项目(３１９０１５３７)ꎻ韶关学院博士启动基金项目(９９０００６１５)ꎻ国家级大学生创新创业训练计划项目(２０２３１０５７６００９)作者简介:曾坚(１９８７ )ꎬ男ꎬ博士ꎬ副教授ꎬ从事植物基因功能研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:ｚｅｎｇｊｉａｎ＠ｓｇｕ.ｅｄｕ.ｃｎ通信作者:胡伟(１９８２ )ꎬ男ꎬ博士ꎬ研究员ꎬ从事植物基因分子生物学研究ꎮＥ－ｍａｉｌ:ｈｕｗｅｉ２０１０９１６＠１２６.ｃｏｍ香蕉中ＡＢＡ醛氧化酶基因家族的鉴定及其表达分析曾坚１ꎬ周洁薇１ꎬ王舒婷１ꎬ胡伟２(１.韶关学院广东省粤北食药资源利用与保护重点实验室/英东生物与农业学院ꎬ广东韶关㊀５１２００５ꎻ２.中国热带农业科学院热带生物技术研究所ꎬ海南海口㊀５７１１０１)㊀㊀摘要:ＡＢＡ醛氧化酶(ａｂｓｃｉｓｉｃａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅꎬＡＡＯ)在植物生长发育和对生物/非生物胁迫的响应中起着重要作用ꎮ本研究从香蕉基因组中鉴定出３个ＭａＡＡＯｓ基因ꎬ并对其遗传进化关系㊁结构域㊁理化性质及在不同组织㊁不同果实发育阶段和逆境处理下的表达情况进行了分析ꎮ结果表明ꎬ这３个ＭａＡＡＯｓ分为两个亚族ꎬ相同亚族的基因呈现出类似的结构域组成和基因结构ꎬ与系统发育树的构建结果相一致ꎮＭａＡＡＯ１基因在果实的发育和成熟阶段都表现出显著的高表达水平ꎬ暗示着其在香蕉果实发育过程中可能发挥着重要功能ꎮ另外ꎬＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ２基因可能对渗透胁迫有响应ꎬＭａＡＡＯ２基因还可能对Ｆｏｃ４病菌的侵染有响应ꎮ基于以上结果推断ＭａＡＡＯｓ基因在香蕉的生长发育调控以及逆境响应中具有重要作用ꎮ该结果不仅丰富了我们对ＭａＡＡＯｓ基因家族的认识ꎬ也为进一步揭示其在香蕉生长发育和应激响应机制方面的功能提供了线索ꎮ关键词:香蕉ꎻＡＢＡ醛氧化酶(ＡＡ０)ꎻ基因鉴定ꎻ基因表达中图分类号:Ｓ６６８.１ꎻＱ７８１㊀㊀文献标识号:Ａ㊀㊀文章编号:１００１－４９４２(２０２３)１０－００１５－０７ＩｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＡｎａｌｙｓｉｓｏｆＡＡＯＧｅｎｅｓｉｎＢａｎａｎａＺｅｎｇＪｉａｎ１ꎬＺｈｏｕＪｉｅｗｅｉ１ꎬＷａｎｇＳｈｕｔｉｎｇ１ꎬＨｕＷｅｉ２(１.ＧｕａｎｇｄｏｎｇＰｒｏｖｉｎｃｉａｌＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＵｔｉｌｉｚａｔｉｏｎａｎｄＣｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎｏｆＦｏｏｄａｎｄＭｅｄｉｃｉｎａｌＲｅｓｏｕｒｃｅｓｉｎＮｏｒｔｈｅｒｎＲｅｇｉｏｎ/ＨｅｎｒｙＦｏｋＳｃｈｏｏｌｏｆＢｉｏｌｏｇｙａｎｄＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅꎬＳｈａｏｇｕａｎＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬＳｈａｏｇｕａｎ５１２００５ꎬＣｈｉｎａꎻ２.ＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＴｒｏｐｉｃａｌＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅａｎｄＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬＣｈｉｎｅｓｅＡｃａｄｅｍｙｏｆＴｒｏｐｉｃａｌＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅｓꎬＨａｉｋｏｕ５７１１０１ꎬＣｈｉｎａ)Ａｂｓｔｒａｃｔ㊀Ａｂｓｃｉｓｉｃａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅ(ＡＡＯ)ｐｌａｙｓｉｍｐｏｒｔａｎｔｒｏｌｅｓｉｎｐｌａｎｔｇｒｏｗｔｈａｎｄｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏｂｉｏｔｉｃａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｅｓ.ＩｎｔｈｉｓｓｔｕｄｙꎬｔｈｒｅｅＡＡＯｇｅｎｅｓ(ＭａＡＡＯｓ)ｗｅｒｅｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄｆｒｏｍｂａｎａｎａｇｅｎｏｍｅꎬａｎｄｔｈｅｉｒｇｅｎｅｔｉｃｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐꎬｓｔｒｕｃｔｕｒａｌｄｏｍａｉｎꎬｐｈｙｓｉｃａｌａｎｄｃｈｅｍｉｃａｌｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓꎬａｎｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｐａｔｔｅｒｎｉｎｄｉｆｆｅｒｅｎｔｔｉｓｓｕｅｓꎬａｔｄｉｆｆｅｒｅｎｔｆｒｕｉｔｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｓｔａｇｅｓａｎｄｕｎｄｅｒｄｉｆｆｅｒｅｎｔｓｔｒｅｓｓｔｒｅａｔｍｅｎｔｓｗｅｒｅａｎａｌｙｚｅｄ.ＴｈｅｒｅｓｕｌｔｓｓｈｏｗｅｄｔｈａｔｔｈｅｔｈｒｅｅＭａＡＡＯｇｅｎｅｓｃｏｕｌｄｂｅｄｉｖｉｄｅｄｉｎｔｏｔｗｏｓｕｂｇｒｏｕｐｓꎬａｎｄｔｈｅｇｅｎｅｓｉｎｔｈｅｓａｍｅｇｒｏｕｐｅｘｈｉｂｉｔｅｄｓｉｍｉｌａｒｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓｏｆｓｔｒｕｃｔｕｒａｌｄｏｍａｉｎｓａｎｄｇｅｎｅｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓꎬｗｈｉｃｈｗｅｒｅｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔｗｉｔｈｔｈｅｆｉｎｄｉｎｇｓｆｒｏｍｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｔｒｅｅａｎａｌｙｓｉｓ.ＴｈｅＭａＡＡＯ１ｇｅｎｅｄｉｓｐｌａｙｅｄｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｈｉｇｈｅｘ￣ｐｒｅｓｓｉｏｎｌｅｖｅｌｓｄｕｒｉｎｇｆｒｕｉｔｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｒｉｐｅｎｉｎｇｐｅｒｉｏｄｓꎬｓｕｇｇｅｓｔｉｎｇｉｔｓｐｏｔｅｎｔｉａｌｉｍｐｏｒｔａｎｃｅｉｎｂａｎａｎａｆｒｕｉｔｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ.ＦｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬｂｏｔｈＭａＡＡＯ１ａｎｄＭａＡＡＯ２ｍｉｇｈｔｅｘｈｉｂｉｔｓｅｎｓｉｔｉｖｅｒｅｓｐｏｎｓｅｓｔｏｏｓｍｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓꎬａｎｄｔｈｅＭａＡＡＯ２ｇｅｎｅｍｉｇｈｔｂｅｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｔｏｔｈｅｉｎｖａｓｉｏｎｏｆＦｏｃ４ｐａｔｈｏｇｅｎ.ＢａｓｅｄｏｎｔｈｅｓｅｒｅｓｕｌｔｓꎬｉｔｗａｓｉｎｆｅｒｒｅｄｔｈａｔＭａＡＡＯｇｅｎｅｓｐｌａｙｅｄｐｉｖｏｔａｌｒｏｌｅｓｉｎｒｅｇｕｌａｔｉｎｇｂａｎａｎａｇｒｏｗｔｈꎬｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｎｄｒｅｓｐｏｎｓｅｓｔｏｂｉｏｔｉｃａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｅｓ.ＴｈｅｓｅｆｉｎｄｉｎｇｓｗｏｕｌｄｎｏｔｏｎｌｙｅｎｈａｎｃｅｏｕｒｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｏｎｔｏｔｈｅＭａＡＡＯｇｅｎｅｆａｍｉ￣ｌｙｉｎｂａｎａｎａꎬｂｕｔａｌｓｏｐｒｏｖｉｄｅａｒｅｆｅｒｅｎｃｅｆｏｒｆｕｒｔｈｅｒｕｎｒａｖｅｌｉｎｇｔｈｅｉｒｍｅｃｈａｎｉｓｍｓｏｆａｃｔｉｏｎｉｎｇｒｏｗｔｈꎬｄｅｖｅｌ￣ｏｐｍｅｎｔａｎｄｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓｏｆｂａｎａｎａ.Ｋｅｙｗｏｒｄｓ㊀ＢａｎａｎａꎻＡｂｓｃｉｓｉｃａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅ(ＡＡＯ)ꎻＧｅｎｅｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎꎻＧｅｎｅｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ㊀㊀脱落酸(ａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄꎬＡＢＡ)属于六种植物激素之一ꎬ１９６３年首次在脱落果实中被鉴定为生长抑制剂[１]ꎬ随后发现其在种子休眠㊁萌发㊁气孔开合㊁果实发育等多种生理过程中发挥着重要作用[２－４]ꎬ在水杨酸介导的生物胁迫以及高盐㊁干旱和寒冷等非生物胁迫中也起着关键作用[３ꎬ５]ꎮＡＢＡ的代谢过程已有相关研究综述进行了详细总结[６]ꎮＡＢＡ合成过程主要涉及玉米黄质环氧化酶(ｚｅａｘａｎｔｈｉｎｅｐｏｘｉｄａｓｅꎬＺＥＰ)㊁９－顺环氧类胡萝卜素双加氧酶(９－ｃｉｓ－ｅｐｏｘｙｃａｒｏｔｅｎｏｉｄｄｉｏｘｙｇｅｎ￣ａｓｅｓꎬＮＣＥＤｓ)㊁短链醇脱氢酶/还原酶(ｓｈｏｒｔ－ｃｈａｉｎｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅｓ/ｒｅｄｕｃｔａｓｅｓꎬＳＤＲ)㊁ＡＢＡ醛氧化酶(ａｂｓｃｉｓｉｃａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅꎬＡＡＯ)[７]ꎬ其中ＡＡＯ参与ＡＢＡ合成途径中的最后一步ꎮ虽然ＡＢＡ合成相关基因的研究比较多[８]ꎬ但关于ＡＡＯ基因的研究较少ꎬ目前只对少数几个物种如拟南芥[９]㊁水稻[１０]㊁小麦[１１]等的ＡＡＯ基因家族进行了鉴定分析ꎮ如:在拟南芥中ꎬＡｔＡＡＯ３基因的突变会导致ＡＢＡ含量降低[９]ꎻ番茄ＡＢＡ缺陷型突变体中的ＡＡＯ活性远低于野生型的[１２]ꎬ大麦中也存在类似的ＡＡＯ缺失或活性降低的现象[１３]ꎮ香蕉(Ｍｕｓａｓｓｐ.)是世界上重要的热带水果之一ꎬ也是重要的粮食作物之一[１４]ꎮ香蕉在生长过程中会遭受到低温㊁干旱㊁香蕉枯萎病等不同逆境的影响ꎬ对其产量和最终果实品质产生重要影响[１５－１６]ꎮＡＢＡ在这些过程中都扮演着重要的角色ꎬ因此ꎬ研究香蕉ＡＡＯ家族基因种类及其在不同逆境处理下的表达情况具有重要意义ꎮ本研究从香蕉基因组中鉴定得到了ＡＡＯ家族基因ꎬ并分析了它们的进化关系㊁基因结构和蛋白结构域ꎬ同时分析了其在不同组织㊁果实发育和成熟的不同阶段及对非生物/生物胁迫响应的表达模式ꎬ以期为进一步明确ＭａＡＡＯｓ基因在香蕉生长发育和胁迫反应过程中的功能提供参考ꎮ１㊀材料与方法１.１㊀试验材料选用口味优良的香蕉品种粉蕉(ＭｕｓａＡＢＢＰｉｓａｎｇＡｗａｋꎬＦＪ)进行试验ꎮ将粉蕉组培苗种植于塑料盆中(无菌土壤)ꎬ培养于生长室(２８ħꎬ７０％湿度ꎬ光周期为１６ｈ光/８ｈ暗ꎬ光照强度为２００μｍｏｌ ｍ－２ ｓ－１)ꎮ组培苗种植取样周期为２０１５年６月 ２０１６年８月ꎮ１.２㊀试验处理与样品采集方法(１)不同组织样品采集:组培苗种植约７０天后达到五叶期ꎬ此时选取叶和根ꎻ组培苗种植约１０个月开始开花ꎬ于开花后０天(０ＤＡＦ)㊁２０ＤＡＦ和８０ＤＡＦ选取果实ꎻ组培苗种植１２~１３个月后采收ꎬ选取采收后３天(３ＤＰＨ)和６ＤＰＨ的果实ꎮ每个样本进行两次生物学重复ꎬ用于分析基因在不同组织和果实发育不同阶段的表达情况ꎮ(２)非生物胁迫处理方法及取样:分别用３００ｍｍｏｌ Ｌ－１ＮａＣｌ和２００ｍｍｏｌ Ｌ－１甘露醇灌溉五叶期香蕉幼苗ꎬ进行盐胁迫和渗透胁迫处理ꎬ处理７ｄ后取样ꎻ将五叶期香蕉幼苗置于４ħ生长室(７０％湿度ꎬ光周期为１６ｈ光/８ｈ暗ꎬ光照强度为２００μｍｏｌ ｍ－２ ｓ－１)进行冷胁迫处理ꎬ２２ｈ后取样ꎮ采集对应处理时间后的叶片样本进行非生物胁迫处理下基因的表达分析ꎮ(３)尖孢镰刀菌侵染处理及取样:将五叶期香蕉幼苗根部浸泡在Ｆ.ｏｘｙｓｐｏｒｕｍｒａｃｅ４(Ｆｏｃ４)孢子悬液(１０６个分生孢子/ｍＬ)中２ｈꎬ以浸入无菌蒸馏水(ｄｄＨ２Ｏ)中的为对照ꎻ然后移栽到装有无菌土壤的塑料盆中ꎬ在生长室中培养(２８ħꎬ７０％湿度ꎬ光周期为１６ｈ光/８ｈ暗ꎬ光照强度为２００μｍｏｌ ｍ－２ ｓ－１)ꎻ培养２ｄ后ꎬ采集根系样品进行基因表达分析ꎮ每份样本包含两个生物重复样６１㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第５５卷㊀本ꎮ１.３㊀香蕉ＡＡＯ基因家族的鉴定及系统发育分析利用拟南芥ＡｔＡＡＯｓ基因的序列构建ＨＭＭ模型ꎬ从香蕉Ａ基因组中搜索得到香蕉ＡＡＯｓ序列ꎻ利用得到的香蕉ＡＡＯｓ序列构建新的ＨＭＭ模型ꎬ利用新的ＨＭＭ模型从Ａ基因组中搜索鉴定ＭａＡＡＯｓ基因ꎮ使用保守结构域数据库(ｈｔｔｐ://ｗｗｗ.ｎｃｂｉ.ｎｌｍ.ｎｉｈ.ｇｏｖ/ｃｄｄ/)和ＰＦＡＭ数据库(ｈｔ￣ｔｐ://ｐｆａｍ.ｓａｎｇｅｒ.ａｃ.ｕｋ/)验证得到的ＭａＡＡＯｓ基因ꎮ利用下载得到的ＡｔＡＡＯｓ和水稻ＯｓＡＡＯｓ蛋白序列ꎬ以ＭＥＧＡ－Ｘ中的ＭＵＳＣＬＥ方法进行序列比对ꎬ使用Ｎｅｉｇｈｂｏｒ－ｊｏｉｎｉｎｇ法构建系统发育树ꎬＢｏｏｔｓｔｒａｐ值设置为１０００ꎮ１.４㊀香蕉ＡＡＯ基因家族的蛋白质特性和序列分析通过ＥｘＰＡＳｙ数据库(ｈｔｔｐ://ｅｘｐａｓｙ.ｏｒｇ/)对分子质量和等电点等理化性质进行预测ꎮ利用ＭＥＭＥ软件和ＩｎｔｅｒＰｒｏＳｃａｎ数据库对蛋白结构域序列进行鉴定ꎮ采用ＧＳＤＳ数据库对基因结构进行分析(ｈｔｔｐ://ｇｓｄｓ.ｃｂｉ.ｐｋｕ.ｅｄｕ.ｃｎ/)ꎮ１.５㊀转录组分析ＲＮＡ测序中的ＲＮＡ提取㊁文库制备和测序等工作均由美吉生物技术有限公司(中国上海)完成ꎮＲＮＡ－ｓｅｑ分析样本的收集过程参考前人的研究[１７]ꎮ每个样本包含两个生物重复序列ꎮ测序平台为ＩｌｌｕｍｉｎａＧＡＩＩ(ＩｌｌｕｍｉｎａꎬＳａｎＤｉｅｇｏꎬＣＡꎬＵＳＡ)ꎮＦＡＳＴＸ(ｈｔｔｐ://ｈａｎｎｏｎｌａｂ.ｃｓｈｌ.ｅｄｕ/ｆａｓｔｘ＿ｔｏｏｌｋｉｔ/)和ＦａｓｔＱＣ(ｈｔｔｐ://ｗｗｗ.ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔ￣ｉｃｓ.ｂａｂｒａｈａｍ.ａｃ.ｕｋ/ｐｒｏｊｅｃｔｓ/ｆａｓｔｑｃ/)用于删除接头序列和低质量序列ꎮ通过ＴｏｐｈａｔＶ.２.０.１０将粉蕉样本的ｃｌｅａｎｒｅａｄｓ与香蕉基因组进行比对[１８]ꎬ使用Ｃｕｆｆｌｉｎｋｓ进行转录组组装[１９]ꎮ基因的表达值使用ＦＰＫＭ值表示ꎮ使用ＤＥＧｓｅｑ工具鉴定差异表达基因(ＤＥＧｓ)(ｌｏｇ２－ｂａｓｅｄｆｏｌｄｃｈａｎｇｅ>１ꎻｌｏｇ２－ｂａｓｅｄｆｏｌｄｃｈａｎｇｅ<－１)ꎮ２㊀结果与分析２.１㊀ＭａＡＡＯｓ基因的鉴定利用香蕉ＡＡＯ基因序列的保守结构域构建ＨＭＭ模型ꎬ从香蕉Ａ基因组中鉴定得到了３个ＭａＡＡＯｓ基因ꎬ分别命名为ＭａＡＡＯ１㊁ＭａＡＡＯ２㊁ＭａＡＡＯ３(表１)ꎬ其氨基酸残基数量分别为１３６５㊁１３９３㊁１３９９个ꎬ编码蛋白的分子量范围为１５.０５~１５.２６ｋｕꎬ等电点范围是６.５９~６.６２ꎮ为分析ＭａＡＡＯｓ的进化关系ꎬ分别下载了水稻和拟南芥ＡＡＯ基因家族的蛋白质序列(表１)ꎬ采用ＮＪ法构建了系统发育树(图１)ꎮ可见ꎬ所有ＡＡＯ蛋白可以分成两类ꎬＭａＡＡＯ２和ＭａＡＡＯ３与所有ＡｔＡＡＯｓ及大部分ＯｓＡＡＯｓ聚在一个亚类ꎬ而ＭａＡＡＯ１则与两个ＯｓＡＡＯｓ聚成一个亚类ꎮ㊀㊀表１㊀ＡＡＯ基因信息基因名基因编号基因位置氨基酸数量/个分子量/ｋｕ等电点ＭａＡＡＯ１Ｍａ０６＿ｔ２６７２０.１ｃｈｒ６:２８５８０５１０－２８６１３３３９１３６５１５.０５６.６２ＭａＡＡＯ２Ｍａ０９＿ｔ１００８０.２ｃｈｒ９:６８８３０９７－６８９５０４７１３９３１５.１９６.３７ＭａＡＡＯ３Ｍａ０９＿ｔ１０１００.１ｃｈｒ９:６８９６４８０－６９０８６５４１３９９１５.２６６.５９ＡｔＡＡＯ１ＡＴ５Ｇ２０９６０.１ｃｈｒ５:７１１６４５５－７１２２７４７１３６８１４.９６６.３４ＡｔＡＡＯ２ＡＴ３Ｇ４３６００.１ｃｈｒ３:１５５１１８３２－１５５１７５４５１３２１１４.４６５.４１ＡｔＡＡＯ３ＡＴ２Ｇ２７１５０.１ｃｈｒ２:１１６０１７２７－１１６０７１９９１３３２１４.６７６.６３ＡｔＡＡＯ４ＡＴ１Ｇ０４５８０.１ｃｈｒ１:１２５２００５－１２５７８９３１３３７１４.７３６.２８ＯｓＡＡＯＬＯＣ＿Ｏｓ０３ｇ３１５５０.１ｃｈｒ３:１７９８５５６３－１７９９８４９８１３７０１５.０２６.９９ＬＯＣ＿Ｏｓ０３ｇ３１５５０.２ｃｈｒ３:１７９８５５６３－１７９９８４９８１２７３１３.９９７.２７ＬＯＣ＿Ｏｓ０７ｇ０７０５０.２ｃｈｒ７:３４７６２８８－３４７１８３４５４８６.０３７.４７ＬＯＣ＿Ｏｓ０７ｇ０７０５０.１ｃｈｒ７:３４７６９２１－３４７１７８９６０５６.６８８.４４ＬＯＣ＿Ｏｓ０３ｇ５７６８０.１ｃｈｒ３:３２８７７２０６－３２８６９４８２１３５７１４.５３６.４５ＬＯＣ＿Ｏｓ０３ｇ５７６９０.１ｃｈｒ３:３２８８６２６６－３２８７９５６６１３５６１４.５１６.１７ＬＯＣ＿Ｏｓ１０ｇ０４８６０.１ｃｈｒ１０:２３５８７９０－２３６８７３２１３５９１４.５５６.４２ＬＯＣ＿Ｏｓ０７ｇ１８１２０.１ｃｈｒ７:１０７２４５９９－１０７３８０１９１３６６１４.８５７.２４ＬＯＣ＿Ｏｓ０７ｇ１８１５４.１ｃｈｒ７:１０７４８７４６－１０７６０８４８８４５９.２１６.６５ＬＯＣ＿Ｏｓ０７ｇ１８１５４.２ｃｈｒ７:１０７４８７４６－１０７６０８３３７２７７.９２６.７８㊀㊀注:基因名中Ｍａ代表香蕉ꎬＡｔ代表拟南芥ꎬＯｓ代表水稻ꎮ７１㊀第１０期㊀㊀㊀㊀㊀曾坚ꎬ等:香蕉中ＡＢＡ醛氧化酶基因家族的鉴定及其表达分析图１㊀ＡＡＯ家族蛋白系统进化树２.２㊀ＭａＡＡＯｓ基因家族的结构域和基因结构分析利用ＭＥＭＥ数据库从ＭａＡＡＯｓ基因中鉴定得到１０个保守结构域ꎬ并用ＩｎｔｅｒＰｒｏ数据库进行了注释ꎮ由结果(图２㊁表２)可见ꎬ３个ＭａＡＡＯｓ基因表现出类似的结构域组成ꎬ仅ＭａＡＡＯ１缺少了Ｍｏｔｉｆ８ꎻ除了Ｍｏｔｉｆ７ꎬ其余９个Ｍｏｔｉｆ都含有结构域ＩＰＲ０１６２０８ꎬ其功能被注释为醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶ꎮ随后对ＭａＡＡＯｓ基因结构进行分析ꎬＭａＡＡＯ２和ＭａＡＡＯ３有类似的基因结构ꎬ都有１０个内含子ꎻ而ＭａＡＡＯ１的内含子则是１４个(图３)ꎮ表明相同聚类有类似的结构域组成和基因结构ꎬ与系统发育树的分析结果相一致ꎮ图２㊀ＭａＡＡＯｓ基因结构域㊀㊀表２㊀ＭａＡＡＯｓ基因结构域的注释编号序列结构域(注释)Ｍｏｔｉｆ１ＣＬＴＬＬＣＳＩＮＦＣＳＶＩＴＳＥＧＬＧＮＳＫＤＧＦＨＰＩＨＥＲＦＡＧＦＨＡＳＱＣＧＦＣＴＰＧＭＣＭＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ２ＬＲＲＰＶＲＭＹＬＤＲＫＴＤＭＩＭＴＧＧＲＨＰＭＫＩＮＹＳＶＧＦＫＳＤＧＫＩＴＡＬＨＶＤＩＦＩＮＡＧＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ３ＥＶＥＶＤＶＬＴＧＧＴＩＩＬＲＴＤＬＩＹＤＣＧＱＳＬＮＰＡＶＤＬＧＱＩＥＧＡＦＶＱＧＩＧＦＦＭＬＥＥＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ４ＡＩＰＤＥＤＮＣＩＬＶＹＳＳＴＱＣＰＥＩＡＱＧＶＩＡＫＣＬＧＩＰＤＨＮＶＲＶＩＴＲＲＶＧＧＧＦＧＧＫＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ５ＮＳＤＧＬＶＩＳＤＧＴＷＴＹＫＩＰＴＩＤＢＩＰＫＱＦＮＶＫＬＬＫＳＧＨＨＥＫＲＶＬＳＳＫＡＳＧＥＰＰＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ６ＫＩＴＫＦＥＡＥＫＡＩＡＧＮＬＣＲＣＴＧＹＲＰＩＶＤＶＣＫＳＦＡＡＢＶＤＬＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ７ＧＤＡＰＥＹＴＬＰＡＪＩＤＥＬＡＳＳＡＤＹＬＤＲＬＥＩＩＲＨＦＮＳＣＮＫＷＲＫＲＧＩＳＬＶＰＶＶＹ无Ｍｏｔｉｆ８ＥＬＨＳＮＥＲＬＶＦＳＫＩＡＤＨＭＤＫＶＡＳＰＦＩＲＮＭＡＳＬＧＧＮＬＩＭＡＱＲＳＱＦＡＳＤＶＡＴＩＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ９ＹＮＷＧＡＬＳＦＤＡＲＩＣＫＴＮＦＰＴＫＳＡＭＲＧＰＧＤＶＱＧＳＦＩＡＥＳＶＩＥＨＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)Ｍｏｔｉｆ１０ＦＴＧＰＫＬＧＣＧＥＧＧＣＧＡＣＶＶＬＬＳＴＹＤＰＶＳＧＱＶＫＥＦＩＰＲ０１６２０８(醛氧化酶/黄嘌呤脱氢酶)８１㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第５５卷㊀图３㊀ＭａＡＡＯｓ基因的结构分析２.３㊀ＭａＡＡＯｓ在粉蕉不同组织中的表达如图４Ａ所示ꎬ粉蕉根中ＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ３基因高表达(ＦＰＫＭ>５)ꎬ叶中３个ＭａＡＡＯｓ基因都表现出高表达ꎬ而果实(８０ＤＡＦ)中则只有ＭａＡＡＯ１表现出高表达ꎮ３个ＭａＡＡＯｓ基因中ꎬ只有ＭａＡＡＯ１在粉蕉根㊁叶和果实中都呈现出高表达ꎮ图４㊀ＭａＡＡＯｓ基因在香蕉不同组织(Ａ)㊁果实不同发育阶段(Ｂ)㊁不同逆境处理(Ｃ)中的表达分析２.４㊀ＭａＡＡＯｓ在粉蕉果实不同发育阶段中的表达为明确ＭａＡＡＯｓ基因在香蕉果实发育过程中的功能ꎬ对其在不同发育阶段果实中的表达情况进行了分析ꎬ结果(图４Ｂ)显示ꎬ只有ＭａＡＡＯ１在果实发育早期(０ＤＡＦ和２０ＤＡＦ)和后期(８０ＤＡＦ㊁３ＤＰＨ)中表现出高表达(ＦＰＫＭ>５)ꎬ且以３ＤＰＨ果实中的表达量最高ꎻＭａＡＡＯ２在果实发育整个阶段的表达都极低ꎻＭａＡＡＯ３在果实各发育阶段的表达水平相比ＭａＡＡＯ２要高ꎬ但除２０ＤＡＦ外均没有达到高表达ꎮ因此推测ＭａＡＡＯ１可能在果实发育过程中发挥着重要作用ꎮ２.５㊀ＭａＡＡＯｓ在不同逆境处理下的表达为分析ＭａＡＡＯｓ基因在粉蕉应对逆境胁迫中的功能ꎬ设置生物和非生物胁迫处理ꎬ分析３个ＭａＡＡＯｓ基因在粉蕉植株根中的表达情况ꎬ结果(图４Ｃ)显示ꎬ在Ｆｏｃ４处理下ꎬＭａＡＡＯ２基因表现出上调(ｌｏｇ２－ｂａｓｅｄｆｏｌｄｃｈａｎｇｅ>１)ꎻ在渗透胁迫下ꎬＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ２基因表现出上调ꎻ在冷和盐胁迫下ꎬ３个基因均未表现出明显的上调表达ꎻＭａＡＡＯ３基因在所有逆境处理中都没有表现出显著变化ꎮ３㊀讨论香蕉既是一种重要的热带和亚热带水果ꎬ也是全球１３０多个国家的主粮ꎬ但其研究进展相比其它作物要慢[２０]ꎮＡＢＡ在植物的生长发育和生物/非生物胁迫响应中起着重要作用[２１]ꎬ而ＡＡＯ是ＡＢＡ合成途径中的重要合成酶ꎬ但香蕉ＡＡＯ基因家族的情况仍不清楚ꎮ本研究从香蕉Ａ基因组中鉴定出３个ＭａＡＡＯｓ基因ꎬ保守结构域分析证明这３个基因属于ＡＡＯ家族ꎬ并根据系统发育树将其分为两个亚类ꎬ其中ＭａＡＡＯ２和ＭａＡＡＯ３聚为一类ꎮ拟南芥的ＡＡＯ基因数量是４个[９]ꎬ水稻中可能是５个[１０]ꎬ小麦中是３个[１１]ꎬ数量均较少ꎬ表明ＡＡＯ蛋白可能属于小基因家族编码的蛋白质ꎮ９１㊀第１０期㊀㊀㊀㊀㊀曾坚ꎬ等:香蕉中ＡＢＡ醛氧化酶基因家族的鉴定及其表达分析香蕉果实的发育和成熟过程决定着果实的品质和产量[１４]ꎮ研究表明ꎬＡＢＡ信号参与了果实的生长发育并影响着果实的成熟过程和最终品质ꎻ未成熟水果中的内源ＡＢＡ含量通常较低ꎬ施加外源ＡＢＡ能促进果实成熟及果肉软化ꎻ果实成熟过程中ＡＢＡ合成相关基因的表达上调导致内源ＡＢＡ大量积累[２２]ꎮ这些结果表明ＡＢＡ在水果成熟过程中发挥着重要作用ꎮ在本研究中ꎬ不同ＭａＡＡＯｓ基因在粉蕉果实不同发育阶段表现出不同的表达模式ꎬＭａＡＡＯ１基因在早期和晚期都表现出高表达ꎬ而ＭａＡＡＯ２和ＭａＡＡＯ３几乎不表达ꎻ此外ꎬＭａＡＡＯ１在粉蕉叶㊁根㊁果实中均表现出高表达ꎬ推测ＭａＡＡＯ１基因在香蕉果实发育和成熟过程中可能具有重要作用ꎮ香蕉生长过程中常会遇到干旱㊁盐㊁寒冷以及枯萎病菌感染等非生物和生物逆境ꎬ对果实品质及产量造成影响[１５－１６]ꎮ在拟南芥中ꎬＡｔＡＡＯ３和ＡｔＡＡＯ１基因表达明显受到干旱胁迫的诱导[９ꎬ２３]ꎻ在拟南芥中过表达花生ＡｈＡＡＯ２基因也能显著提高植株抵抗干旱胁迫的能力[２４]ꎮ本研究发现ꎬＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ２基因受渗透胁迫诱导上调表达ꎬ但受冷和盐胁迫的影响很小ꎻＭａＡＡＯ３基因的表达在３种胁迫下均无显著变化ꎮ表明ＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ２基因可能在香蕉响应干旱胁迫中发挥作用ꎮ香蕉的种植生产也受到香蕉枯萎病的严重影响ꎮ有研究表明ＡＢＡ能负向调控水杨酸(ＳＡ)介导的病原体反应ꎬ例如ꎬ提高植株中ＡＢＡ的含量ꎬ会显著促进细菌的生长[２５]ꎮ在本研究中ꎬ仅ＭａＡＡＯ２基因的表达显著受到Ｆｏｃ４处理的诱导ꎬ表明这个基因可能参与了响应Ｆｏｃ４侵染的过程ꎮ４㊀结论本研究从香蕉Ａ基因组中鉴定得到了３个ＭａＡＡＯｓ基因ꎬ经系统发育分析㊁蛋白结构域和基因结构分析ꎬ确定属于ＡＡＯ基因家族ꎮＭａＡＡＯｓ基因参与了香蕉的生长发育㊁果实成熟和对生物/非生物胁迫的响应等过程ꎮ其中ꎬＭａＡＡＯ１基因在果实发育早期和成熟阶段都表现出高表达ꎻＭａＡＡＯ１和ＭａＡＡＯ２基因对渗透胁迫有响应ꎻＭａＡＡＯ２基因的表达被Ｆｏｃ４诱导ꎬ可能响应该病菌的侵染ꎮ参㊀考㊀文㊀献:[１]㊀ＥａｇｌｅｓＣＦꎬＷａｒｅｉｎｇＰＦ.ＤｏｒｍａｎｃｙＲｅｇｕｌａｔｏｒｓｉｎｗｏｏｄｙｐｌａｎｔｓ:ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｉｎｄｕｃｔｉｏｎｏｆｄｏｒｍａｎｃｙｉｎＢｅｔｕｌａｐｕｂｅｓｃｅｎｓ[Ｊ].Ｎａｔｕｒｅꎬ１９６３ꎬ１９９(４８９６):８７４－８７５.[２]㊀ＣｈｅｒｎｙｓＪＴꎬＺｅｅｖａａｒｔＪＡ.Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆｔｈｅ９￣ｃｉｓ￣ｅｐｏｘｙ￣ｃａｒｏｔｅｎｏｉｄｄｉｏｘｙｇｅｎａｓｅｇｅｎｅｆａｍｉｌｙａｎｄｔｈｅｒｅｇｕｌａｔｉｏｎｏｆａｂ￣ｓｃｉｓｉｃａｃｉｄｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓｉｎａｖｏｃａｄｏ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ２０００ꎬ１２４(１):３４３－３５３.[３]㊀ＬｅｅＳＣꎬＬｕａｎＳ.ＡＢＡｓｉｇｎａｌｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎａｔｔｈｅｃｒｏｓｓｒｏａｄｏｆｂｉｏｔｉｃａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓ[Ｊ].ＰｌａｎｔＣｅｌｌａｎｄＥｎｖｉｒｏｎ￣ｍｅｎｔꎬ２０１２ꎬ３５(１):５３－６０.[４]㊀ＹｏｓｈｉｄａＴꎬＭｏｇａｍｉＪꎬＹａｍａｇｕｃｈｉ￣ＳｈｉｎｏｚａｋｉＫ.ＡＢＡ￣ｄｅｐｅｎｄ￣ｅｎｔａｎｄＡＢＡ￣ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔｓｉｇｎａｌｉｎｇｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏｏｓｍｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｉｎｐｌａｎｔｓ[Ｊ].ＣｕｒｒｅｎｔＯｐｉｎｉｏｎｉｎＰｌａｎｔＢｉｏｌｏｇｙꎬ２０１４ꎬ２１:１３３－１３９.[５]㊀ＳｈｉｎｏｚａｋｉＫꎬＹａｍａｇｕｃｈｉ￣ＳｈｉｎｏｚａｋｉＫꎬＳｅｋｉＭ.Ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙｎｅｔ￣ｗｏｒｋｏｆｇｅｎｅｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｉｎｔｈｅｄｒｏｕｇｈｔａｎｄｃｏｌｄｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓ[Ｊ].ＣｕｒｒｅｎｔＯｐｉｎｉｏｎｉｎＰｌａｎｔＢｉｏｌｏｇｙꎬ２００３ꎬ６(５):４１０－４１７.[６]㊀ＺｅｅｖａａｒｔＪＡＤꎬＣｒｅｅｌｍａｎＲＡ.Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍａｎｄｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙｏｆａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄ[Ｊ].ＡｎｎｕａｌＲｅｖｉｅｗｏｆＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙａｎｄＰｌａｎｔＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙꎬ１９８８ꎬ３９(１):４３９－４７３. [７]㊀ＮａｍｂａｒａＥꎬＭａｒｉｏｎ￣ＰｏｌｌＡ.Ａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓａｎｄｃａ￣ｔａｂｏｌｉｓｍ[Ｊ].ＡｎｎｕａｌＲｅｖｉｅｗｏｆＰｌａｎｔＢｉｏｌｏｇｙꎬ２００５ꎬ５６:１６５－１８５.[８]㊀ＣｈｅｎＫꎬＬｉＧＪꎬＢｒｅｓｓａｎＲａｙＡꎬｅｔａｌ.Ａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄｄｙｎａｍ￣ｉｃｓꎬｓｉｇｎａｌｉｎｇꎬａｎｄｆｕｎｃｔｉｏｎｓｉｎｐｌａｎｔｓ[Ｊ].ＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｎｔｅｇｒａ￣ｔｉｖｅＰｌａｎｔＢｉｏｌｏｇｙꎬ２０２０ꎬ６２(１):２５－５４.[９]㊀ＳｅｏＭꎬＰｅｅｔｅｒｓＡＪꎬＫｏｉｗａｉＨꎬｅｔａｌ.ＴｈｅＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅ３(ＡＡＯ３)ｇｅｎｅｐｒｏｄｕｃｔｃａｔａｌｙｚｅｓｔｈｅｆｉｎａｌｓｔｅｐｉｎａｂ￣ｓｃｉｓｉｃａｃｉｄｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓｉｎｌｅａｖｅｓ[Ｊ].ＰＮＡＳꎬ２０００ꎬ９７(２３):１２９０８－１２９１３.[１０]ＢａｔｔｈＲꎬＳｉｎｇｈＫꎬＫｕｍａｒｉＳꎬｅｔａｌ.Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｐｒｏｆｉｌｉｎｇｒｅｖｅａｌｓｔｈｅｐｒｅｓｅｎｃｅｏｆａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓａｎｄｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌｓｔａｇｅｓｐｅｃｉｆｉｃａｓｃｏｒｂａｔｅｏｘｉｄａｓｅｇｅｎｅｓｉｎｐｌａｎｔｓ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＰｌａｎｔＳｃｉ￣ｅｎｃｅꎬ２０１７ꎬ８:１９８.[１１]ＣｏｌａｓｕｏｎｎｏＰꎬＭａｒｃｏｔｕｌｉＩꎬＬｏｚｉｔｏＭＬꎬｅｔａｌ.Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅ(ＡＯ)ｇｅｎｅｓｉｎｖｏｌｖｅｄｉｎｔｈｅａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎｏｆｃａｒｏｔｅｎｏｉｄｐｉｇｍｅｎｔｓｉｎｗｈｅａｔｇｒａｉｎ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅꎬ２０１７ꎬ８:８６３.[１２]ＳａｇｉＭꎬＦｌｕｈｒＲꎬＬｉｐｓＳＨ.Ａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅａｎｄｘａｎｔｈｉｎｅｄｅ￣ｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅｉｎａｆｌａｃｃａｔｏｍａｔｏｍｕｔａｎｔｗｉｔｈｄｅｆｉｃｉｅｎｔａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄａｎｄｗｉｌｔｙｐｈｅｎｏｔｙｐｅ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ１９９９ꎬ１２０(２):５７１－５７８.[１３]Ｗａｌｋｅｒ￣ＳｉｍｍｏｎｓＭꎬＫｕｄｒｎａＤＡꎬＷａｒｎｅｒＲＬ.Ｒｅｄｕｃｅｄａｃｃｕ￣ｍｕｌａｔｉｏｎｏｆＡＢＡｄｕｒｉｎｇｗａｔｅｒｓｔｒｅｓｓｉｎａｍｏｌｙｂｄｅｎｕｍｃｏｆａｃｔｏｒｍｕｔａｎｔｏｆｂａｒｌｅｙ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ１９８９ꎬ９０(２):７２８－７３３.０２㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第５５卷㊀[１４]ＨｕＷꎬＺｕｏＪꎬＨｏｕＸＷꎬｅｔａｌ.Ｔｈｅａｕｘｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｆａｃｔｏｒｇｅｎｅｆａｍｉｌｙｉｎｂａｎａｎａ:ｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎａｎａｌｙｓｅｓｄｕｒｉｎｇｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔꎬｒｉｐｅｎｉｎｇꎬａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅꎬ２０１５ꎬ６:７４２.[１５]ＲａｓｈａｄＹＭꎬＦｅｋｒｙＷＭＥꎬＳｌｅｅｍＭＭꎬｅｔａｌ.Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｍｙ￣ｃｏｒｒｈｉｚａｌｃｏｌｏｎｉｚａｔｉｏｎｏｎｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｌｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆｔｈｅｒｅ￣ｓｐｏｎｓｉｖｅｆａｃｔｏｒＪＥＲＦ３ａｎｄｓｔｒｅｓｓ￣ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｇｅｎｅｓｉｎｂａｎａｎａｐｌａｎｔｌｅｔｓｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｔｏｃｏｍｂｉｎｅｄｂｉｏｔｉｃａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｅｓ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅꎬ２０２１ꎬ１２:７４２６２８. [１６]ＸｕＹꎬＬｉｕＪＨꎬＪｉａＣＨꎬｅｔａｌ.ＯｖｅｒｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆａｂａｎａｎａａｑｕａｐｏｒｉｎｇｅｎｅＭａＰＩＰ１ꎻ１ｅｎｈａｎｃｅｓｔｏｌｅｒａｎｃｅｔｏｍｕｌｔｉｐｌｅａｂｉ￣ｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｅｓｉｎｔｒａｎｓｇｅｎｉｃｂａｎａｎａａｎｄａｎａｌｙｓｉｓｏｆｉｔｓｉｎｔｅｒａｃｔｉｎｇｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒｓ[Ｊ].ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＰｌａｎｔＳｃｉｅｎｃｅꎬ２０２１ꎬ１２:６９９２３０.[１７]ＸｕＹꎬＴｉｅＷＷꎬＹａｎＹꎬｅｔａｌ.ＩｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆｔｈｅＢＡＨＤｆａｍｉｌｙｄｕｒｉｎｇｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔꎬｒｉｐｅｎｉｎｇꎬａｎｄｓｔｒｅｓｓｒｅ￣ｓｐｏｎｓｅｉｎｂａｎａｎａ[Ｊ].ＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙＲｅｐｏｒｔｓꎬ２０２１ꎬ４８(２):１１２７－１１３８.[１８]ＰｏｌｌｉｅｒＪꎬＲｏｍｂａｕｔｓＳꎬＧｏｏｓｓｅｎｓＡ.ＡｎａｌｙｓｉｓｏｆＲＮＡ￣ＳｅｑｄａｔａｗｉｔｈＴｏｐＨａｔａｎｄＣｕｆｆｌｉｎｋｓｆｏｒｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎａｎａｌｙｓｉｓｏｆｊａｓｍｏｎａｔｅ￣ｔｒｅａｔｅｄｐｌａｎｔｓａｎｄｐｌａｎｔｃｕｌｔｕｒｅｓ[Ｊ].ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙꎬ２０１３ꎬ１０１１:３０５－３１５.[１９]ＴｒａｐｎｅｌｌＣꎬＲｏｂｅｒｔｓＡꎬＧｏｆｆＬꎬｅｔａｌ.ＤｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌｇｅｎｅａｎｄｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎａｎａｌｙｓｉｓｏｆＲＮＡ￣ＳｅｑｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓｗｉｔｈＴｏ￣ｐＨａｔａｎｄＣｕｆｆｌｉｎｋｓ[Ｊ].ＮａｔｕｒｅＰｒｏｔｏｃｏｌｓꎬ２０１２ꎬ７(３):５６２－５７８.[２０]ＨｕＷꎬＷａｎｇＬＺꎬＴｉｅＷＷꎬｅｔａｌ.Ｇｅｎｏｍｅ￣ｗｉｄｅａｎａｌｙｓｅｓｏｆｔｈｅｂＺＩＰｆａｍｉｌｙｒｅｖｅａｌｔｈｅｉｒｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔｉｎｔｈｅｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔꎬｒｉｐｅｎｉｎｇａｎｄａｂｉｏｔｉｃｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｉｎｂａｎａｎａ[Ｊ].ＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃＲｅｐｏｒｔｓꎬ２０１６ꎬ６(１):３０２０３.[２１]ＨａｒａｋａｖａＲ.ＧｅｎｅｓｅｎｃｏｄｉｎｇｅｎｚｙｍｅｓｏｆｔｈｅｌｉｇｎｉｎｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓｐａｔｈｗａｙｉｎＥｕｃａｌｙｐｔｕｓ[Ｊ].ＧｅｎｅｔｉｃｓａｎｄＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙꎬ２００５ꎬ２８(３):６０１－６０７.[２２]杨方威ꎬ段懿菲ꎬ冯叙桥.脱落酸的生物合成及对水果成熟的调控研究进展[Ｊ].食品科学ꎬ２０１６ꎬ３７(３):２８５－２９１. [２３]ＹｅｓｂｅｒｇｅｎｏｖａＺꎬＹａｎｇＧＨꎬＯｒｏｎＥꎬｅｔａｌ.ＴｈｅｐｌａｎｔＭｏ￣ｈｙｄｒｏｘｙｌａｓｅｓａｌｄｅｈｙｄｅｏｘｉｄａｓｅａｎｄｘａｎｔｈｉｎｅｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅｈａｖｅｄｉｓｔｉｎｃｔｒｅａｃｔｉｖｅｏｘｙｇｅｎｓｐｅｃｉｅｓｓｉｇｎａｔｕｒｅｓａｎｄａｒｅｉｎｄｕｃｅｄｂｙｄｒｏｕｇｈｔａｎｄａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄ[Ｊ].ＰｌａｎｔＪｏｕｒｎａｌꎬ２００５ꎬ４２(６):８６２－８７６.[２４]ＹａｎｇＬꎬＬｉａｎｇＪꎬＺｈｏｕＷꎬｅｔａｌ.ＩｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆｔｈｅＡｌｄｅｈｙｄｅＯｘｉｄａｓｅ２ｇｅｎｅｆｒｏｍＡｒａｃｈｉｓｈｙｐｏｇａｅａＬ.[Ｊ].ＰｌａｎｔＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙＲｅｐｏｒｔｅｒｓꎬ２０１１ꎬ２９(３):５４４－５５３. [２５]ＦａｎＪꎬＨｉｌｌＬꎬＣｒｏｏｋｓＣꎬｅｔａｌ.Ａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄｈａｓａｋｅｙｒｏｌｅｉｎｍｏｄｕｌａｔｉｎｇｄｉｖｅｒｓｅｐｌａｎｔ￣ｐａｔｈｏｇｅｎｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｈｙｓ￣ｉｏｌｏｇｙꎬ２００９ꎬ１５０(４):１７５０－１７６１.１２㊀第１０期㊀㊀㊀㊀㊀曾坚ꎬ等:香蕉中ＡＢＡ醛氧化酶基因家族的鉴定及其表达分析。
