大鼠的骨髓间充质干细胞提取
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大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养及鉴定燕学波;杜运华;吕安林;邢玉洁;胡朝晖;胡新君;岳峰【摘要】目的研究大鼠骨髓间充质干细胞分离培养及鉴定方法.方法采用颈椎脱臼法处死大鼠,用淋巴细胞分离液通过密度梯度离心法分离出骨髓间充质干细胞.然后通过换液培养去除悬浮不贴壁的细胞.待原代细胞长满培养瓶底85%左右时传代.倒置显微镜下观察骨髓间充质干细胞培养传代过程中细胞形态变化,流式细胞仪鉴定骨髓间充质干细胞表面抗原 CD44、CD45表达情况.结果在倒置显微镜下,刚接种的骨髓间充质干细胞呈圆形或球形,体积小,折光性强.3 d 后大部分细胞贴壁,体积较小,形态多样,为椭圆形、短梭形.2周形成集落,细胞数量明显增多,体积增大,以长梭形为主,呈放射状向四周扩展.传代后细胞生长旺盛,呈长梭形、旋涡状生长,且细胞形态均一,趋向一致.流式细胞仪测定骨髓间充质干细胞表面抗原 CD44阳性表达率为(89.98±1.29)%,CD45阳性表达率为(2.14±0.22)%.结论联合细胞形态学变化及细胞表面标记抗原 CD44和 CD45的鉴定,采用密度梯度离心法联合差速贴壁法能够获得纯化的大鼠骨髓间充质干细胞.% Objective To investigate isolation, culture and identification of rat BMMSCs. Methods Rats were killed by cervical dislocation, BMMSCs were isolated from bone marrow of SD rats by density gradient centrifugation. Other cells mixed in BMMSCs were removed by differential adhesion method, then the purified BMMSCs were obtained. The cells grown to 85 % confluence were digested and passaged at the ratio of 1:2 till fourth passage in vitro. The morphological changes were observed under phase contrast microscope during the culture and passage of BMMSCs.The positive surface marker CD44 and negative marker CD45 of cells were detected for the identification of BMMSCs withflow cytometry. Results Primary BMMSCs were smaller and had varied shapes, most of cells were of oval or short spindle and had strong refraction. The majority adhered after 3 d, and the cells showed morphological diversity ranging from oval, short spindle, to triangular or star-shaped. After 2 w, the adherent cells rapidly proliferated and formed large or small colonies. After passage, the cells were larger than the original cells and showed elongated spindle, arranged the same trend. The results of flow cytometry showed that CD44 expression of BMMSCs was (89.98±1.29)%, CD45 positive expression rate was (2.14±0.22)%. Conclusion The purified BMMSCs were obtained by density gradient centrifugation combined differential adhesion method. The purified BMMSCs could be identified by detecting positive surface antigen CD44 and negative surface antigen CD45.【期刊名称】《实用医药杂志》【年(卷),期】2012(000)010【总页数】3页(P931-933)【关键词】骨髓间充质干细胞;CD44;CD45;分离;鉴定【作者】燕学波;杜运华;吕安林;邢玉洁;胡朝晖;胡新君;岳峰【作者单位】河南信阳,154 医院心肾内科;河南信阳,154 医院心肾内科;陕西西安,解放军第四军医大学西京医院心内科;陕西西安,解放军第四军医大学西京医院心内科;河南信阳,154 医院心肾内科;河南信阳,154 医院心肾内科;河南信阳,154 医院心肾内科【正文语种】中文【中图分类】Q2-33近几年自体骨髓间充质干细胞(BMMSCs)移植技术发展迅速,逐渐成为治疗心肌梗死后心衰的有效办法之一。
大鼠骨髓间充质干细胞的分离与培养方法优化祝旭龙;颜谭;姚维杰;王永恒;程冲;向俊西;吕毅;高庆东;李建辉【期刊名称】《南方医科大学学报》【年(卷),期】2014(000)011【摘要】目的:建立一个分离、培养、纯化大鼠的骨髓间充质干细胞的方法。
方法使用贴壁法分离大鼠的骨髓间充质干细胞,通过培养初期的频繁换液和传代过程中减少胰蛋白酶的暴露时间,达到骨髓间充质干细胞的纯化。
流式细胞仪检测细胞表面标志物,MTT法检测细胞生长状况,暴露于不同的诱导培养基使细胞成骨、成脂,并向肝胆系分化。
结果分离所得的细胞阳性表达CD29、CD44、CD90,而对于造血细胞标志物CD45呈阴性。
在成骨、成脂培养基的诱导下,细胞ALP、茜素红、油红O染色均呈阳性,并发现传至10代的细胞仍保持分化功能。
将骨髓间充质干细胞贯续暴露于不同的细胞因子和激素,得到了表达肝细胞、胆管上皮细胞特异标志的子代细胞。
结论通过改良后的方法可以高效、简洁地分离出形态均一的大鼠骨髓间充质干细胞,并能够向多胚层的细胞分化。
%Objective To optimize the protocols for isolation and culture of mesenchymal stem cells from rat bone marrow (BMSCs). Methods BMSCs were isolated by adherence to plastic with frequent medium change and reduced trypsinization time. The cell growth curves were drawn and the surface markers of BMSCs were detected by flow cytometry. The cells were induced to differentiate into osteogenic, adipogenic, hepatic and cholic lineages. Results The cells isolated using this method were positive forCD29, CD44, and CD90 and negative for the hematopoietic surfacemarkers CD45. The osteogenic and adipogenic differentiation of the BMSCs was verified by alkaline phosphatase staining, Alizarin red staining and Oil red staining. The cell subcultures up to passage 10 maintained capacities of differentiation into osteogenic and adipogenic lineages. The BMSCs induced with sequential addition of growth factors, cytokines and hormones differentiated into cells expressing hepatocyte-and cholangiocyte-specific markers. Conclusion The optimized method allows efficient isolation of homogenous populations of MSCs from rat bone marrow, which can be induced into multiple cell lineages.【总页数】7页(P1621-1626,1631)【作者】祝旭龙;颜谭;姚维杰;王永恒;程冲;向俊西;吕毅;高庆东;李建辉【作者单位】陕西省人民医院/西安交通大学第三附属医院肿瘤外科,陕西西安710068; 延安大学医学院,陕西延安716000;陕西省人民医院/西安交通大学第三附属医院肿瘤外科,陕西西安 710068; 延安大学医学院,陕西延安716000;陕西省人民医院/西安交通大学第三附属医院肿瘤外科,陕西西安 710068;陕西省人民医院/西安交通大学第三附属医院肿瘤外科,陕西西安 710068;陕西省人民医院/西安交通大学第三附属医院肿瘤外科,陕西西安 710068;西安交通大学第一附属医院肝胆外科,陕西西安 710061;西安交通大学第一附属医院肝胆外科,陕西西安 710061;陕西省人民医院/西安交通大学第三附属医院肿瘤外科,陕西西安710068; 延安大学医学院,陕西延安716000;陕西省人民医院/西安交通大学第三附属医院肿瘤外科,陕西西安 710068【正文语种】中文【相关文献】1.全骨髓贴壁改良培养法体外分离培养大鼠骨髓间充质干细胞 [J], 阳玉群;莫雪安;农伟东;杨龙秀;孔德燕;张泰鹏;刘金萍2.密度梯度离心及贴壁分离筛选相结合分离培养大鼠骨髓间充质干细胞 [J], 王英慧;郑瑞;陈莉3.密度梯度离心及贴壁分离筛选相结合分离培养大鼠骨髓间充质干细胞 [J], 王英慧;郑瑞;陈莉;4.大鼠骨髓间充质干细胞的分离与培养贴壁分离和消化控制相结合可否为简便高效的技术方法 [J], 刘品端;王伟;梅晰凡5.全骨髓培养法对大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养与鉴定 [J], 李大伟;高广周;李欣;孙涛因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
大鼠骨髓间质干细胞免疫原性观察
大鼠骨髓间质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)具有多向分化潜能和免疫调节功能,被广泛应用于临床和实验研究中。
MSCs的免疫原性问题一直存在争议。
本文将对大鼠骨髓间质干细胞的免疫原性进行观察和探讨。
研究人员收集了大鼠骨髓组织,并从中分离出骨髓间质干细胞。
通过流式细胞术和免疫荧光染色,研究人员确认了分离出的细胞具有表面标记物CD29、CD44和CD90,同时不表达CD34和CD45,符合MSCs的表型特征。
接下来,研究人员通过体外培养的方法对MSCs进行增殖和扩增。
在培养期间,研究人员观察到MSCs呈现典型的纤维状形态,并且呈现出稳定的生长曲线和增殖能力。
随后,研究人员进行了免疫活性实验来评估MSCs的免疫原性。
研究人员将MSCs与淋巴细胞进行共培养,并观察到在MSCs的存在下,淋巴细胞的增殖能力显著降低。
进一步的实验发现,MSCs还能抑制淋巴细胞的细胞毒性功能,减少细胞因子的释放。
研究人员还进行了淋巴细胞的亚群分析,并发现在MSCs的存在下,CD4+和CD8+淋巴细胞的比例显著降低。
MSCs还能够诱导CD4+淋巴细胞向调节性T细胞(Treg)方向分化,从而进一步抑制免疫应答。
研究人员通过小鼠移植实验来评估MSCs的免疫原性。
将MSCs注射至小鼠体内后,观察到小鼠的免疫反应没有明显变化,并且MSCs在体内存活时间较长。
大鼠骨髓间质干细胞具有较低的免疫原性,能够抑制淋巴细胞增殖和细胞毒性,调节免疫应答。
这些结果表明,大鼠骨髓间质干细胞具有潜在的免疫治疗应用价值,并为进一步研究MSCs的免疫学特性提供了基础。
大鼠骨髓间充质干细胞的分离纯化与成骨鉴定作者:李显澎樊粤光刘建仁范海蛟江晓兵孙志刚曾建春阳建权【摘要】【目的】研究大鼠骨髓间充质干细胞(MSCs)的分离纯化和在诱导条件下的成骨能力。
【方法】取SPF级SD大鼠6只,采用全骨髓贴壁培养法分离成年大鼠骨髓间充质干细胞,取传至第3代的MSCs进行细胞形态和免疫组化鉴定;应用含地塞米松、β-甘油磷酸钠和维生素C的诱导分化培养液诱导传代细胞向成骨细胞分化,检测碱性磷酸酶(ALP)的活性和细胞矿化作用进行成骨细胞鉴定。
【结果】全骨髓贴壁培养法能有效分离纯化大鼠骨髓MSCs,MSCs在含体积分数为10% 胎牛血清的低糖DMEM(L-DMEM)培养液中生长性状相对稳定,增殖速度快;诱导条件下,细胞ALP活性明显增高,并出现了矿化结节。
【结论】建立了一种体外分离纯化、培养扩增大鼠骨髓MSCs的方法,成骨能力肯定,为中药蛋白质组学研究提供材料基础。
【关键词】骨髓间充质干细胞/病理学;细胞培养,体外的;组织工程骨髓间充质干细胞(MSCs)在体内外诱导因子的作用下,可向成骨细胞、成软骨细胞、肌腱细胞、脂肪细胞、神经细胞和星形胶质细胞转化,具有很大的可塑性[1],这使其在组织工程、细胞治疗等方面成为研究的热点[2]。
为更好地将MSCs应用于骨质疏松症、骨坏死、骨缺损,本实验通过体外细胞培养的方法将MSCs从骨髓中分离纯化,观察MSCs在体外的扩增、鉴定,并诱导其定向成骨分化。
现报道如下。
1 材料与方法1.1 动物 SD大鼠6只,SPF级,体质量140~160 g,由广州中医药大学实验动物中心提供,合格证号为:0025033。
1.2 主要试剂与仪器低糖DMEM (L-DMEM,美国Gibco 公司,GNM31600);兔抗大鼠CD34(BA0532)、CD44(BA0321)、CD54(BA0541)(武汉博士德公司);高糖DMEM(Hyclone,SH30022.01B);胎牛血清(Hyclone,SV30087.01);胰蛋白酶(Hyclone,SV30042.01);β-甘油磷酸钠(美国Simga公司);地塞米松(美国Sigma公司);D-hanks (美国Simga公司);维生素C(美国Sigma公司);生物素化抗生蛋白链菌素复合物(streptavidin biotin complex,SABC)(SA1022)试剂盒(武汉博士德公司);二氨基联苯胺(diaminobenzidine,DAB)(AR1022)(武汉博士德公司);其他试剂均为国产分析纯。
大鼠骨髓间充质干细胞的分离、鉴定与冻存及对细胞活性的影响谢晶晶;李博;姚兵;宋烜;张平超;陆骅【期刊名称】《解放军医药杂志》【年(卷),期】2018(030)005【摘要】目的分离培养大鼠骨髓间充质干细胞(MSCs),观察冻存对细胞活性的影响,为其临床应用奠定基础。
方法取3周龄SD雄性大鼠,断颈处死,取股骨和胫骨,提取骨髓MSCs进行体外培养,流式细胞仪鉴定细胞表面的阳性标记物和阴性标记物。
所得骨髓MSCs-70℃冻存,分别于冻存前、冻存后1周、1个月、6个月取细胞,采用MTT法绘制骨髓MSCs增殖曲线,采用诱导实验检测骨髓MSCs的成骨细胞与脂肪细胞分化的能力。
结果分离大鼠骨髓MSCs表面标志物CD29阳性表达率为97.9%,CD90阳性表达率为97.4%。
冻存后1周、1个月和6个月,大鼠骨髓MSCs复苏率差异无统计学意义(P〉0.05)。
冻存、冻存时间延长对细胞增殖活力及多分化能力,经条件诱导后成钙结节数目和油滴数目组间差异无统计学意义(P〉0.05)。
结论本实验成功提取了大鼠骨髓MSCs,配置的冻存体系也可较长时间保持MSCs活性,为其后继研究打下了基础。
【总页数】4页(P1-4)【作者】谢晶晶;李博;姚兵;宋烜;张平超;陆骅【作者单位】上海交通大学医学院附属新华医院崇明分院骨科,上海202150;上海交通大学医学院附属新华医院崇明分院骨科,上海202150;上海交通大学医学院附属新华医院崇明分院骨科,上海202150;上海交通大学医学院附属新华医院崇明分院骨科,上海202150;上海交通大学医学院附属新华医院崇明分院骨科,上海202150;上海交通大学医学院附属新华医院崇明分院骨科,上海202150【正文语种】中文【中图分类】R329.24【相关文献】1.微波复温对玻璃化冻存大鼠胚脑细胞活性的影响 [J], 胡军祥;应华波;周国英;赵玉勤2.大鼠骨髓间充质干细胞的分离、鉴定与冻存及对细胞活性的影响 [J], 谢晶晶;李博;姚兵;宋烜;张平超;陆骅3.大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养纯化及冻存 [J], 杨亚冬;张文元;房国坚;贺晨;陈勇4.分离培养方法及冻存技术对犬骨髓间充质干细胞生长和增殖的影响 [J], 童培建;何帮剑;金红婷;赵红昌;肖鲁伟5.大鼠骨髓间充质干细胞的分离冻存及向成骨细胞和软骨细胞诱导分化 [J], 张文元;杨亚冬;房国坚;陈勇因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
大鼠骨髓间充质干细胞的分离、培养和鉴定王翠艳;魏芳晶;阴淑莹;李云霞;张晓云;乔晓娟;石秀换【期刊名称】《中国老年学杂志》【年(卷),期】2013(033)005【摘要】目的探讨体外分离和培养大鼠骨髓间充质干细胞(MSCs)的生物学特性,对其表型和生长曲线进行初步鉴定.方法采用全骨髓培养法提取培养MSCs,绘制原代及三代细胞生长曲线,利用免疫组化法检测表面标志物CD34、CD44;流式细胞分析法检测表面标志物CD90.结果成功培养出MSCs,免疫组化CD44阳性表达,CD34阴性表达;流式细胞术CD90阳性表达.结论该实验分离培养的细胞群与MSCs的生物学特性相吻合,说明MSCs易于体外分离、培养和扩增.%Objective To evaluate the isolation and cultivate bone mesenchymal stem cells (BMSCs) , and analyze the biological characterization such as cell phenotype and growth curve. Methods BMSCs were extracted by whole culture of bone marrow, the primary and the third generations of cell growth curve were drawn. Immunohistochemieal was used to detect the signs on the surface CD34 and CD44 and flow-testing was used to detect CD90. Results BMSCs were successfully to cultivate and CD44, CD90 positive, CD34 negative were expressed. Conclusions Isolations and cultures of cell groups consistent with the biological characteristics of the BMSCs. And BMCs in vitro are easy to separated, cultured and expanded.【总页数】3页(P1086-1088)【作者】王翠艳;魏芳晶;阴淑莹;李云霞;张晓云;乔晓娟;石秀换【作者单位】内蒙古医科大学附属医院保健中心一病区,内蒙古呼和浩特010050【正文语种】中文【中图分类】R393【相关文献】1.大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养和分化能力鉴定 [J], 周年;刘波;徐彭2.大鼠骨髓间充质干细胞分离、培养及鉴定 [J], 王海峰;陈文;刘艳艳;吴王泽3.大鼠骨髓间充质干细胞分离培养及鉴定 [J], 韩玮;苏力担卡扎·仇曼;何铁英;程坤;郝晓文;王松;陈启龙4.大鼠骨髓间充质干细胞的体外分离培养与鉴定 [J], 李兰兰;陈玲肖;马炬明5.全骨髓培养法对大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养与鉴定 [J], 李大伟;高广周;李欣;孙涛因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
兔的骨髓间充质干细胞提取1.1 兔骨髓MSC的分离 用3%戊巴比妥钠按1 mg/kg的剂量施以全身麻醉,另用1%利多卡因于手术部位施以局麻;无菌操作下于右胫骨上端内侧部用锐性穿刺锥于骨皮质上开出一直径约2~3 mm的孔,使通达髓腔;用18号硬膜外穿刺针接5 ml 注射器,内含3000 U/ml的肝素0.1 ml,沿骨皮质上的孔穿入髓腔,抽出骨髓血约2 ml;抽出的骨髓血用平衡液洗涤两次后,离心1800R 5 min;弃去上清液,沉淀用Ham f12-10%FBS培养液重新打匀;用灭菌的0.17 mol/L饱和NH4Cl溶液按1∶5的体积比加入已重新打匀的悬液中,4℃下保留10 min,取出再离心180×g,5 min;弃去上清后,以几滴平衡液再悬浮后,用细胞计数板作细胞计数,确认有核骨髓细胞量达106~107后,即可进行原代培养接种用。
1.2 兔骨髓MSC的原代培养 将经上述培养分离所得的有核骨髓细胞按每孔3×104个细胞的密度接种于6孔培养板内,加入Ham f-12培养液,于37℃,10% CO2条件下培养;于接种5 d后进行第1次换液,以后隔日换液。
每天随机抽取3只实验动物的MSC作细胞生长动力学分析,各取此三者的1个培养孔用0.25%胰酶-1 mmol/L EDTA液将贴壁细胞消化分离(37℃、3~5 min),并作贴壁细胞计数,直至贴壁细胞铺满整个培养孔的底部。
将此3个实验动物MSC每天的细胞计数取平均值,作原代细胞培养的生长曲线分析。
1.3 兔骨髓MSC的传代培养 原代培养一旦铺满整个培养孔的表面,即可用0.25%胰酶-1 mmol/L EDTA液将贴壁细胞消化分离(37℃、3~5 min),然后按1∶3的比例进行传代接种培养,并记为P1;传代培养过程中隔日换液,直至贴壁细胞彼此融合,铺满整个培养孔的底面。
再重复以上操作,用0.25%胰酶-1mmol/L EDTA液将贴壁细胞消化分离(37℃、3~5 min),并按1∶3的比例进行下一代传代接种培养,并记为P2,余类推。
SD大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养方法的研究刘树辉;曹中伟;秦书俭;马云胜;郑德宇【期刊名称】《辽宁医学院学报》【年(卷),期】2006(027)002【摘要】目的探讨大鼠骨髓间充质干细胞(MSCs)分离培养的适宜条件.方法取1、2、4个月大鼠各6只,分离MSCs,以0.5×105/ml、1×105/ml、2×105/ml密度接种,通过倒置显微镜观察MSCs增殖情况,绘制生长曲线.流式细胞仪观察细胞周期并绘制细胞周期图.结果利用贴壁法成功培养出MSCs并能使之分裂增殖,但随着传代次数的增加,增殖能力有所下降.在培养过程中大鼠年龄要控制在2月以内,接种密度以1×105/ml适宜.结论贴壁培养法是一种简便易行的培养MSCs方法,操作简单,成功率高,可以作为培养SD大鼠MSCs常规方法.【总页数】3页(P35-37)【作者】刘树辉;曹中伟;秦书俭;马云胜;郑德宇【作者单位】锦州医学院解剖教研室,辽宁,锦州,121000;锦州医学院解剖教研室,辽宁,锦州,121000;锦州医学院解剖教研室,辽宁,锦州,121000;锦州医学院解剖教研室,辽宁,锦州,121000;锦州医学院解剖教研室,辽宁,锦州,121000【正文语种】中文【中图分类】R3【相关文献】1.大鼠骨髓间充质干细胞分离和培养方法的研究 [J], 谭琦;黄政德;王立凤2.SD大鼠骨髓间充质干细胞体外分离培养的实验研究 [J], 李静;苏一鸣;蔡鹏;朱绍兴3.人骨髓间充质干细胞体外分离培养方法的比较研究 [J], 丁伟荣;吴晓牧;饶燕飞;杨志刚;柳喆;张水生4.大鼠骨髓间充质干细胞分离培养方法的实验研究 [J], 张本斯;陈红;王松;邓世山;王凡5.采用1.068g/ml分离液对犬骨髓间充质干细胞的分离纯化与体外培养方法的探讨 [J], 牛国栋;任晓庆;王方正;浦介麟;杨国胜;孟亮;张澍因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
大鼠真皮间充质干细胞的分离培养皮肤是脊椎动物身体上最大的器官,它具有许多功能,包括体温调节,传导触觉,保护身体免受外界的侵袭和伤害。
皮肤主要有两层,表皮和真皮。
表皮是由角化细胞组成的多层鳞状上皮,真皮由乳突层和网状层两层[1] 。
真皮不能再生,缺损后由纤维组织来修复,这就会失去皮肤的许多功能,影响个体生活质量。
皮肤组织工程的研究为此类患者的治疗提供了希望。
皮肤组织工程有 3 个重要的因素:种子细胞,支架材料,以及两者的结合。
国内外已经有不少学者对皮肤组织工程的种子细胞进行了研究。
研究较多的主要为表皮干细胞和骨髓间充质干细胞。
自2000 年,加拿大研究者Toma等[2]从幼年及成年大鼠皮肤中分离出真皮干细胞,这种细胞分裂增殖能力强,具有多分化潜能,是一种新发现的来源于真皮的多能干细胞,就掀起了对DMSC的研究热潮。
近来,国内外学者对DMSC分离、纯化、体外扩增和冻存的研究进行了不断的探索。
本研究应用酶消化法,从大鼠真皮中分离出DMSC并进行纯化增殖,以及观察真皮间充质干细胞(DMSC)的生长情况,并对DMSC勺冻存条件进行研究,为进一步的实验研究打下基础。
1 材料与方法1.1主要试剂及仪器:SD大鼠购自浙江省实验动物中心,L-DMEM为Gibco产品,胎牛血清(杭州四季青生物工程XX公司),胰蛋白酶为Sigma产品,二甲基亚砜(DMSO由江苏鸿声化工厂生产的分析纯,24孔塑料培养板为Falcon 产品,25 cm2、75 cm2 塑料培养瓶为Orange 产品。
1.2大鼠DMSC提取:(1)取出生1天内的SD大鼠幼鼠1 只,引颈处死后,浸入事先配好的75%酒精中消毒 3 分钟;(2)将幼鼠从酒精中取出,放入大平皿中,用眼科剪和镊子将幼鼠背部皮肤小心剪下,用PBS漂洗,易脍脂肪组织后,将整块皮片面朝下放入预先加了适量0.25%胰蛋白酶的小平皿中,浸没为宜,放37 C培养箱,消化4 h。
(3)4h后取出平皿,将皮片取出放入干的平皿中,小心将表皮与真皮剥离。
大鼠的骨髓间充质干细胞提取
第一步,SD大鼠麻醉处死,75%乙醇皮肤消毒,无菌条件下迅速剪开两侧后肢皮肤及肌肉,取股骨及胫骨,浸泡在PBS中。
心得体会:①鼠龄4周,重量在160-200g之间的雄性SD大鼠。
老鼠太老了,骨髓都分化的太厉害,没有年幼老鼠的骨髓这么有活力。
雌的也行,但是雌的比较厉害,咬人。
Wistar 大鼠行不行,也行,但是就品种而言,SD的生存力更强大。
②我个人认为引颈处死不人道。
麻醉药品为氯胺酮、安定、阿托品各一支混到一起,腹腔麻醉,保证30秒老鼠躺倒,安乐死。
如果你水平够高,可以直接用注射器抽取心脏内的血液,可以减少手术中老鼠出血较多而影响术野不清的问题。
③老鼠的两支前肢取下来也行,但老鼠太小,前肢更小,如果你的确需要大量的细胞取下来也无妨。
浸泡的15ml的一次性离心管中(也可以用培养皿),管中提前加好含有青链霉素的PBS 10ml就行了,青链霉素的浓度为500U/ml,这样是区别于生长液中青链霉素浓度,组织抑菌是200-500U/ml,生长液抑菌是20-100U/ml。
就当初步的消毒吧!
④整个手术过程要快,一般控制在20分钟之内,时间长了,骨髓会凝,不利于后期的冲洗。
老鼠浑身都是宝,可以叫上研究脂肪的,嗅鞘的,心肌的其他人员一起来,把剩下不要的老鼠尸体给别人,做实验要巧花钱。
一般老鼠一条腿的一根股骨就够种在一个60mm的皿里了,具体根据个人经验而言。
第二步,⑴将装有骨头的离心管置于紫外线下消毒30分钟后移至超净台,倒掉PBS后,再用含青链霉素的PBS清洗骨头三遍。
⑵去掉骨头两侧的骨骺端,暴露出骨髓腔,用5ml的一次性注射器吸取5.2ml的细胞生长液,用针头插到骨头的一端冲洗,然后换另一端接着冲。
将骨髓冲出的细胞生长液至60mm 培养皿中(皿最好倾斜45度),冲洗数次直至将绝大部分骨髓冲出。
⑶换1ml注射器的针头,反复在培养皿中吹吸细胞悬液2-3次后再全部吸到无菌容器中,大约此时的细胞悬液为5ml。
心得体会:
①离心管中得骨头要用无菌的镊子夹取,放到一次性培养皿的皿盖上,皿是用来承装细胞悬液的,这样可以节省一个皿。
②5.2ml的细胞生长液经过冲骨髓后或多或少都会有一些残留在骨髓中,所以到最后可能就剩下5ml细胞悬液了,甚至更少,如果不够5ml,可以加至5ml,这样是方便你计数用的。
冲洗的过程中以骨腔颜色变白为标准,基本3-4次就差不多。
培养皿倾斜45度是为了在冲洗和吹打过程让较大的杂质停留,方便去除的,相对保持细胞悬液的清晰度。
③换用1ml的针头是为了能更好的打散细胞,当然这个过程要轻柔,避免用力破坏细胞。
无菌容器最好是光滑的,因为在转移细胞悬液的时候会存在细胞的丢失,临床上经常使用的抗生素瓶子就非常好用,但是要经过严格的清洗和消毒。
④以上的细胞生长液5ml具体配制为
DMEM(90%)+胎牛血清(10%)+L-VC(忽略不计)+青链霉素(忽略不计)
低糖DMEM液(含有glutamine的,Gibco公司的,500ml一瓶,大约60元)浓度90%,5ml细胞生长液中大约需要4.5ml
胎牛血清(HYCLONE公司的,500ml一瓶,大约3600元)浓度为10%,5ml细胞生长液中大约需要0.5ml
L-VC(自己配) 浓度为50ug/ml,5ml细胞生长液中大约需要 25ul
青链霉素(HYCLONE公司的,100ml一瓶,大约190元) 浓度为10万U/ml,5ml细胞生长液中大约需要5ul
至于NaHCO3,一般是加的,浓度为7.5%,使细胞生长液的PH在7.0-7.2之间,但是我不加,因为在细胞生长中会大量产生含N的分泌物,最好先拿试纸测一下。
再者在5ml细胞生长液中L-VC和青链霉素太少,可以忽略不计,但只是在配小剂量的范围内,大剂量的话就要酌情改变。
第三步:细胞计数。
①从装有5ml细胞悬液的无菌容器中吸取20ul细胞悬液滴到一个培养皿。
②用0.2ml的枪头吸取170ul的生理盐水,滴到20ul细胞悬液上③抽取10ul的4%台盼蓝液滴到盐水和细胞悬液的混合液体中,用枪头在这三者的混合液中抽吸几次,充分搅匀。
④抽取混合液中17ul点到放有载玻片的一个计数池中,刚好填满。
开始计数并算出细胞数数量及浓度。
并按浓度分装到培养皿中。
心得体会:①计数的这个培养皿可以是污染的,只要看的干净就行。
②混合的液体为20+170+10=200ul。
其中细胞悬液的浓度为10%,也就是说细胞悬液被稀释了10倍(也可以稀释至20倍,稀释的越多,更容易数清楚,但误差也随之增大)。
③计数公式 : 细胞数×104/ml=(四个大方格细胞数÷4)×稀释倍数×104/ml 比如,你数了四个大方格中有拒染细胞400个,那么根据公式算出
(400÷4)×10×104/ml = 1×107/ml,现在有5ml的细胞悬液,也就是有1×107/ml×5= 5×107 个细胞。
当然这么多细胞,不全是我们需要的骨髓间充质干细胞,还有很多其他像红细胞之类的,所以这就要设计到以后的换液纯化了。
④按6-8×l06/ml的浓度接种,故 5×107 ÷ 6-8×l06/ml = 8.3 – 6.25 ml 。
因为一般60mm的培养皿承载最多5ml的液体,故将5ml的细胞悬液再加入3ml的细胞生长液稀释成
8ml的细胞悬液,各取4ml分装至两个60mm的培养皿。
此刻每个培养皿的细胞浓度为:(5×107)÷8 =6.25×l06/ml,正好在要求的接种密度6-8×l06/ml范围内。
⑤将培养皿放置在37℃、5%CO2培养箱中常规培养。
第四步,48h后半量更换细胞生长液。
以后每3 d全量更换新鲜培养液,待细胞铺满培养皿约80%时可进行传代,大约周期为7天。