EMS诱变步骤
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创制植物突变体库的方法一、传统诱变方法1.1化学诱变化学诱变是创制植物突变体库的一种常用方法。
咱们都知道,化学物质就像一把双刃剑。
像甲基磺酸乙酯(EMS)这种化学诱变剂,它可以悄悄潜入植物的细胞,对植物的DNA分子搞点“小动作”。
它会和DNA碱基发生反应,使得碱基发生改变,就像给DNA的密码本上乱涂乱画了几笔。
这样一来,植物的基因就发生突变了。
这就好比一个精密的机器,里面的一个小零件被悄悄换了或者改造了,整个机器的运行就可能出现新的情况。
但是呢,使用化学诱变剂得小心翼翼,就像走钢丝一样,剂量控制不好就可能把植物弄得“病恹恹”的,甚至直接一命呜呼了。
1.2物理诱变物理诱变也是很有一套的。
比如说辐射诱变,γ射线就像一群无形的小炮弹,向植物细胞发起攻击。
它能量高,能够直接把植物的DNA链打断。
这就好比把一根绳子给切断了,植物细胞就得赶紧想办法把这断开的“绳子”重新连接起来。
在这个过程中,就很容易出现连接错误,这就产生了突变。
还有紫外线诱变,紫外线就像一个调皮的小精灵,它的能量虽然没有γ射线那么高,但也足以让DNA分子中的碱基之间的化学键发生变化,导致碱基配对出现错乱,这就像火车轨道接错了一样,火车就没法正常行驶了,植物的基因表达也就乱了套,从而产生突变体。
二、现代生物技术诱变2.1基因编辑技术现在的基因编辑技术那可是相当厉害。
就拿CRISPR Cas9系统来说,这简直就是基因编辑领域的“神器”。
它就像一把精准的手术刀,能够在植物基因组的特定位置进行切割。
这个系统里的Cas9蛋白就像一个聪明的小工匠,它能在向导RNA的引导下,准确地找到目标DNA序列,然后“咔嚓”一下把DNA链切断。
植物细胞为了修复这个断裂,就可能引入一些错误,这样就实现了基因的突变。
这就好比一个雕刻师,本来想在一块木头上雕刻出一个精美的图案,结果一不小心多削了一块或者少削了一块,就创造出了一个和原来不一样的造型。
2.2插入突变插入突变也是一种办法。
达乌里胡枝子愈伤组织及种子EMS诱变研究朱泯珏;陈橙;史文甯;李景冲;殷俐娜;王仕稳;邓西平【期刊名称】《种子》【年(卷),期】2024(43)3【摘要】为优化达乌里胡枝子愈伤诱导培养基的激素含量及比例,明确甲基磺酸乙酯(EMS)诱变愈伤组织及种子的最佳条件,本研究以达乌里胡枝子种子为外植体,探究了不同激素配比对愈伤诱导的影响,并针对愈伤组织和种子处理分别设置了两时间两浓度(2 h和6 h,0.3%和0.9%)及三时间两浓度(6 h、8 h、10 h,0.4%、0.8%)的EMS处理时间和浓度的组合,研究各处理对愈伤分化系数和后期植株成活率以及种子发芽率、发芽势和幼苗表型变异的影响。
结果表明,达乌里胡枝子种子愈伤的最佳激素配比为0.25 mg/L NAA+0.5 mg/L 6-BA+0.5 mg/L 2,4-D,此时达乌里胡枝子愈伤诱导率为94.9%。
EMS诱变达乌里胡枝子愈伤组织的适宜浓度为0.3%,处理时间为6 h,分化系数和植株相对成活率分别为46.31%和47.78%,接近半致死范围,且生根数、根长和平均株高等指标与高浓度EMS处理相比受到的负面影响较小。
EMS诱变达乌里胡枝子种子的适宜浓度为0.8%,处理时间10 h,发芽率、出苗率、成苗率分别为53.61%、51.06%和53.28%,均接近半致死量,同时发现多株幼苗叶片出现了明显的形态变异。
本试验在达乌里胡枝子原有种质资源基础上,丰富了达乌里胡枝子突变体库,也为后续开展达乌里胡枝子诱变育种研究提供理论依据。
【总页数】10页(P1-10)【作者】朱泯珏;陈橙;史文甯;李景冲;殷俐娜;王仕稳;邓西平【作者单位】西北农林科技大学生命科学学院;西北农林科技大学水土保持科学与工程学院;中国科学院水利部水土保持研究所;西北农林科技大学水土保持研究所【正文语种】中文【中图分类】S541.5【相关文献】1.达乌里胡枝子种子发芽吸水规律及吸水模型研究2.尖叶胡枝子和达乌里胡枝子牧草生产力研究3.达乌里胡枝子开花结实及种子特性4.二色胡枝子和达乌里胡枝子若干生物学特性和营养成分的分析5.尖叶胡枝子和达乌里胡枝子种子形成特性及其生产性能研究因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
大豆EMS化学诱变处理条件分析杜园园;刘永忠;李万星;曹晋军;靳鲲鹏;赵文媛;王红兰【摘要】[目的]为使EMS(甲基磺酸乙酯)诱变效果最佳,获得高质量的诱变材料,其诱变时间和诱变浓度等基本条件分析是诱变处理的前提.[方法]采用化学诱变剂EMS处理大豆品种长豆18和黑豆品种长豆006,分析获得不同大豆品种的适宜诱变条件.试验设置2个品种、3个EMS浓度(0.2%、0.5%、0.8%)和3个诱导时间(4、8和12 h)共18个处理,以致死量达到50%为标准.[结果]大豆品种长豆18的适宜诱变条件以浸种4h,处理浓度0.5% EMS,诱导时间8h和浸种4h,处理浓度0.5% EMS,诱导时间12 h处理最优;黑豆品种长豆006的适宜诱变条件为浸种4h,处理浓度0.5% EMS,诱导时间8h.[结论]大豆EMS化学诱变可适当提高致死剂量浓度作为大田处理浓度.%[Objective]In order to obtain high quality EMS mutagenesis material, the mutation time and mutagenic concentration of the basic conditions for analysis was the premise of chemical mutagenic. [Method] Chemical mutagen processing soybean varieties with long beans 18 and black soybean varieties long beans 006 were used-to obtain the suitable mutagenic conditions of different soybean varieties. In this study, two varieties, 3 EMS concentration (0.2% , 0.5% , 0.8% ) and 3 times (4,8 and 12 h) ,a total of 18 treatments were set. The standard was 50% lethal dose. [Result] 8 or 12 h treatment with 0.5% EMS after soaking seed in phosphate buffer solution 4 h were the proper protocol of long bean 18. The mutagenic conditions of black soybean varieties 006 was 8 hour treatment with 0.5% EMS after soaking seed in phosphate buffer solution 4h. [Conclusion] Soybean EMS chemical mutagenesis might be appropriate to increase the lethal dose concentration as a field of concentration.【期刊名称】《安徽农业科学》【年(卷),期】2012(040)035【总页数】2页(P16995-16996)【关键词】化学诱变;大豆;EMS【作者】杜园园;刘永忠;李万星;曹晋军;靳鲲鹏;赵文媛;王红兰【作者单位】山西省农业科学院谷子研究所,山西长治046011;山西省农业科学院谷子研究所,山西长治046011;山西省农业科学院谷子研究所,山西长治046011;山西省农业科学院谷子研究所,山西长治046011;山西省农业科学院谷子研究所,山西长治046011;山西省农业科学院谷子研究所,山西长治046011;山西省农业科学院谷子研究所,山西长治046011【正文语种】中文【中图分类】S565.1化学诱变育种是指利用化学诱变剂,人为诱发作物发生突变,再通过选择而培育新品种的方法[1]。
EMS诱变西瓜突变体库的构建及表型分析开题报告1. 研究背景西瓜是世界上重要的果蔬作物之一,也是中国主要的经济作物之一。
然而,自然界中的西瓜种类受限,而现代农业对某些性状的追求需要更多具有新型性状的品种。
因此,育种技术成为了改良西瓜品种的重要途径。
现在,育种技术主要通过种间杂交获得新的性状,但这种方法存在限制,需要花费大量的时间和经费。
EMS(乙醛化合物)诱变是一种常用的物理/化学诱变技术,它可以诱导基因突变,从而产生新的性状。
EMS诱变技术在植物遗传变异的研究和育种应用方面,已经发挥了重要作用。
在西瓜育种方面,EMS诱变也可以被用来产生新的性状,如改善外观、增加抗逆性、提高产量等。
2. 研究目的本研究旨在构建一种EMS诱变的西瓜突变体库,并探讨其在育种方面的应用价值。
同时,本研究还将对突变体库中的突变体进行系统的表型分析,以期获得有关这些变异性状的重要信息。
3. 研究内容和方法3.1 突变体库的构建将EMS处理的幼苗培养到成熟期,并从中选出形态上表现出突变的株系。
随后,采用分子标记和测序技术对这些株系进行DNA序列分析,以确保它们是真正的突变体。
最终,将这些突变体保存在库中,以便进行后续的表型分析和育种应用。
3.2 突变体的表型分析对突变体进行多项表型分析,包括生长发育、形态特征、果实品质、抗病性、耐盐碱性等等。
这些数据将被用于评价每个突变体的重要性状,并与野生型进行对比分析。
在这个过程中,我们将使用图像分析技术和统计学方法,以获得更准确的表型数据。
4. 预期成果及实际应用成功构建EMS诱变的西瓜突变体库,并对其中突变体进行了系统的表型分析。
结果将为育种研究和新品种的开发提供有用的信息,从而提高西瓜的品质、增加抗逆性和产量。
同时,该研究可以为EMS诱变技术在植物遗传变异研究中的应用提供有价值的借鉴。
EMS诱变技术在小麦上的应用曹亚萍∗ꎬ武银玉ꎬ范绍强ꎬ张凤琴ꎬ连㊀晋ꎬ高㊀炜(山西省农业科学院小麦研究所ꎬ临汾041000)摘㊀要:小麦遗传基础日趋狭窄成为小麦遗传改良的瓶颈ꎮ甲基磺酸乙酯(EMS)是一种高效稳定的烷化类诱变剂ꎬ能诱发产生高密度系列等位基因点突变ꎬ可在创造作物新品种㊁新种质㊁遗传材料以及解决育种工作中某些特殊问题等方面取得突破ꎮ本文从EMS诱变的原理和特点着手ꎬ简述了小麦EMS诱变及突变体鉴选方法ꎬ绘制了EMS诱变研究备选方案图ꎬ为小麦科研工作者提供研究思路和参考依据ꎮ同时对EMS诱变技术在抗病基因克隆㊁品质性状改良㊁叶片持绿机制研究㊁农艺性状解析㊁突变体库构建等方面的研究进展进行了前沿报道ꎬ分析了EMS诱变在小麦研究中存在的问题及应对方法ꎬ并在此基础上对EMS诱变技术在小麦上的发展前景进行展望ꎮ这对于丰富小麦遗传资源㊁加快育种进程和开展基因功能研究具有重要意义ꎮ关键词:小麦ꎻ甲基磺酸乙酯ꎻ化学诱变ꎻ突变体中图分类号:S512ꎻQ813.5文献标志码:ADOI:10.3969/j.issn.1007 ̄7146.2019.05.002ApplicationofInductionTechnologywithEMSonWheatCAOYaping∗ꎬWUYinyuꎬFANShaoqiangꎬZHANGFengqinꎬLIANJinꎬGAOWei(InstituteofWheatResearchꎬShanxiAcademyofAgriculturalScienceꎬLinfen041000ꎬChina)Abstract:Oneofthebottlenecksforwheatimprovementisthenarrowingofwheatgeneticbasis.Ethylmethylsulfonate(EMS)isanefficientandstablealkylationmutagensꎬwhichcaninduceaseriesofallelemutationswithhighdensityꎬandmakebreakthroughsincreatingofnewvarietiesꎬnewgermplasmꎬgeneticmaterialsandsolvingsomespecialprob ̄lemsinbreeding.BasedontheprinciplesandcharacteristicsofEMSmutagenesisꎬthispaperbrieflydescribesthemeth ̄odofEMSinductionandmutagenesisselectionforwheatꎬanddrawsanalternativeschemeofEMSmutagenesisre ̄searchꎬwhichprovidesresearchideasandreferenceforwheatresearchers.AtthesametimeꎬtheresearchprogressofEMSmutagenesistechnologyindiseaseresistancegenecloningꎬqualitytraitimprovementꎬleafgreeningmechanismre ̄searchꎬagronomictraitanalysisꎬandmutantlibraryconstructionwasreported.TheproblemsandcountermeasuresofEMSmutagenesisinwheatresearchwereanalyzed.ThedevelopmentprospectofEMSmutagenesistechnologyinwheatwasprospected.Thisisofgreatsignificanceforenrichingwheatgeneticresourcesꎬacceleratingbreedingprocessesandstudyinggenefunction.Keywords:wheatꎻethylmethylsulfonateꎻchemicalmutagenesisꎻmutant第28卷第5期2019年10月激㊀光㊀生㊀物㊀学㊀报ACTA㊀LASER㊀BIOLOGY㊀SINICAVol.28No.5Oct.2019收稿日期:2019 ̄04 ̄24ꎻ修回日期:2019 ̄05 ̄28ꎮ基金项目:山西省农业科学院农业科技创新研究课题项目(YCX2018412)ꎻ山西省重点研发计划项目(201703D211007 ̄4)ꎮ∗通讯作者:曹亚萍ꎬ研究员ꎬ主要从事小麦种质创新与遗传育种研究ꎮE ̄mail:cyping180@163.comꎮ㊀㊀小麦在长期演变过程中ꎬ由于人工选择和自然进化ꎬ导致遗传基础日趋狭窄ꎬ遗传脆弱性逐渐增加ꎮ绿色革命期间ꎬ半矮秆表型的选择减少了小麦遗传多样性[1]ꎻ近年来ꎬ随着小麦集约化生产和商品性经营ꎬ小麦育种以市场需求为导向ꎬ比较集中地利用少数遗传资源ꎬ许多抗逆㊁抗病虫㊁优质等优异基因逐渐丢失ꎬ育成品种的遗传基础更加狭窄ꎬ对于生物和环境胁迫愈加脆弱ꎬ致使育种进程缓慢ꎬ难以适应农业生产快速发展的需要ꎬ成为小麦遗传改良的瓶颈ꎮ丰富的遗传性状和基因资源是达到品种选育目标的重要基础ꎬ由于小麦属内遗传基因有限ꎬ而常规杂交育种所依据的主要遗传学原理是基因自由组合ꎬ只能利用已有基因进行重组ꎬ不能产生新的基因ꎬ难以解决小麦基因资源狭窄问题ꎮ刘志勇等[2]分析小麦育种现状ꎬ提出未来需大力加强种质资源的原始创新ꎮ长期实践证明ꎬ改变这种现状最基本㊁快速㊁有效的途径之一是诱变育种方法ꎬ诱发突变技术是创造作物新种质㊁丰富遗传多样性和培育优良新品种的一种重要技术手段ꎮ小麦诱变技术是人为利用物理诱变因素(如紫外线㊁X射线㊁γ射线㊁β射线㊁快中子㊁激光㊁离子束等)和化学诱变剂(如烷化剂㊁叠氮化物㊁碱基类似物㊁亚硝基化合物㊁抗生素等)诱发小麦基因组产生变异ꎬ从而创制出自然界原来没有的或一般常规方法难以获得的新类型㊁新性状㊁新基因ꎮ物理诱变因高能射线引起ꎬ染色体畸变率高㊁结构变异广泛ꎬ染色体组紊乱ꎬ后代不育率高ꎬ分离类型广ꎬ纯合世代长ꎻ化学诱变是化学药剂与遗传物质发生生化反应ꎬ结果多是基因的点突变ꎬ纯合世代较短ꎮ甲基磺酸乙酯(ethylmethanesulfonateꎬEMS)是一种高效稳定的烷化类化学诱变剂ꎬ能诱发产生高密度系列等位基因点突变ꎬ获得丰富的遗传材料ꎬ解决小麦育种中种质资源匮乏的问题ꎬ也为相关基因的精细定位㊁克隆及功能分析等提供了研究平台ꎬ在作物诱变技术中应用最广泛㊁效果最好ꎮ1㊀EMS诱变原理及特点EMS属于烷化剂ꎬ线性分子式为CH3SO2OC2H5ꎬ分子量为124.16ꎬ能与醇混溶ꎬ微溶于水ꎮEMS诱发的突变主要通过两个步骤来完成ꎬ首先鸟嘌呤(G)的N ̄7位置被烷基化ꎬ成为一个带正电荷的季铵基团ꎬ从而发生两种遗传效应:一是转换型突变ꎬ烷化的鸟嘌呤(G)不再与胞嘧啶(C)配对ꎬ从而造成GʉC碱基对变成T=A碱基对ꎻ二是颠换型突变ꎬ鸟嘌呤的N ̄7位置烷基化后ꎬ糖苷键断裂ꎬ造成脱嘌呤ꎬ该位置缺失ꎬ在随后的DNA分子复制过程中ꎬ4种碱基都有可能进入到其互补位置ꎬ发生置换现象ꎮ如碱基置换发生于编码多肽区域ꎬ则因可影响密码子而使转录㊁翻译遗传信息发生变化ꎬ以一种氨基酸取代原有的另一种氨基酸ꎻ也可能出现终止密码使多肽链合成中断ꎬ不能形成原有蛋白质而完全失去某种生物学活性ꎮ此外ꎬ诱变剂也可与核苷结构的磷酸反应ꎬ形成酯类而将核苷酸从磷酸与糖分子之间切断ꎬ产生染色体缺失ꎮSidhu等[3]采用生物信息学分析方法ꎬ在小麦品种IndianEMS诱变群体中ꎬ共检测到14130个点突变ꎬ突变频率为每5kb一个ꎬ其中70%转换㊁30%颠换ꎬ并发现存在于染色体远端区域的基因与近端区域中存在的基因相比更容易发生突变ꎮ这些DNA结构上的变化一方面可能改变遗传信息ꎬ引起基因功能丧失ꎬ如抗锈病基因成为敏感型基因ꎻ另一方面可能促使不表达的基因或区段被激活ꎬ而表现出被掩盖的性状ꎮEMS作为化学诱变剂能够引起单一碱基对改变而形成点突变ꎬ染色体畸变相对较少ꎬ不需要进行遗传转化ꎬ可以在短时间内获得大量功能基因的点突变ꎬ引起不同基因的等位变异ꎮ与其它诱变剂相比ꎬEMS诱变后产生的突变频率高ꎬ且多为显性突变体ꎬ易于突变体的筛选ꎻ与常规杂交育种相比ꎬEMS诱变具有随机性ꎬ诱变后可获得丰富的种质遗传材料ꎬ具有种质创新频率高㊁遗传变异谱宽㊁基因纯合周期短等特性ꎬ可解决小麦遗传基础狭窄问题ꎬ有效弥补小麦常规育种方法短时间难以获得新性状和新基因的不足ꎮ2㊀小麦EMS诱变研究现状近年来ꎬEMS诱变技术在国内外得到大规模研究与应用ꎬ在水稻[4ꎬ5]㊁玉米[6]㊁大豆[7ꎬ8]㊁高梁[9]㊁烟草[10]㊁苜蓿[11]㊁蓖麻[12]㊁谷类[13ꎬ14]㊁油料作物[15 ̄17]㊁果蔬[18 ̄23]㊁木本植物[24 ̄26]㊁小麦近缘物种[27ꎬ28]等植物上均取得显著成就ꎮ由于普通小麦是异源六倍体ꎬ基因组庞大ꎬ高达17Gb[29]ꎬ应用EMS进行诱变育种的研究远远落后于模式植物拟南芥[30 ̄32]和水稻[33ꎬ34]等ꎬ但也在诸多方面取得一定进展ꎮ2.1㊀在抗病基因研究方面利用EMS诱变获得抗病基因突变体在研究抗病593第5期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀曹亚萍等:EMS诱变技术在小麦上的应用㊀㊀㊀基因结构㊁功能等方面具有独特优势ꎬ寻找抗病基因区段序列发生变异的突变体是阐释基因功能最直接最有效的方法ꎮ锈病是小麦生产上危害较重也是研究较多的病害之一ꎬ张维宏等[35]用EMS处理小麦抗叶锈病近等基因系TcLr19的种子ꎬ于诱变3代(M3)获得6个感病突变材料ꎬ遗传稳定率达70%以上ꎻHussain等[36]用EMS诱导中抗叶锈小麦品种NN ̄Gandum ̄1ꎬ得到9个高抗和2个高感突变体ꎬSNP分析将抗性突变体变异位点定位于1B染色体短臂(1BS)ꎬ该位点的谷氨酸被丙氨酸取代ꎬ导致蛋白质结构改变ꎻMago等[37]报道ꎬ利用EMS诱导获得抗锈病基因敏感型突变体ꎬ已有几个抗锈病基因从小麦中克隆ꎮ此外ꎬ李韬等[38]用EMS诱变抗赤霉病小麦地方品种黄方柱和海盐种ꎬ得到病小穗率均显著高于相应野生型的6个突变系ꎬ是研究赤霉病扩展抗性的理想材料ꎮ陈洋等[39]用EMS处理抗黄矮病小麦-中间偃麦草易位系YW642的种子ꎬ筛选出18个黄矮病抗性丧失程度不等的突变体ꎬ分子标记检测结果表明这些突变体分别在1~4个分子标记位点上发生变异ꎬ说明这些突变体中抗黄矮病基因Bdv2及其附近区域有不同碱基位点发生突变ꎬ为小麦抗黄矮病基因克隆和功能基因组学研究奠定了坚实的材料基础ꎮ耿皆飞[40]以EMS诱变花培品系H261ꎬ获得小麦类病斑突变体LF2010ꎬ并将其突变基因lm3定位到小麦6BL染色体上6B03和6B40之间2.36M物理距离之中ꎬ同时找到58个候选基因ꎮ2.2㊀在品质性状改良方面随着人民生活水平的提高ꎬ小麦多样化食材成为适应市场经济的必然ꎬ因而对小麦籽粒最终用途要求也不尽相同ꎬ小麦品质改良成为科研工作者关注的焦点ꎮ研究较多的是糯性小麦ꎬSlade等[41]创建了普通小麦和硬粒小麦突变体库ꎬ将EMS化学诱变技术与定向诱导基因组局部突变技术(targetingin ̄ducedlocallesionsINgenomesꎬTILLING)相结合ꎬ筛选到246个等位变异位点ꎬ获得丰富的遗传信息和糯性小麦突变体ꎬ并育成糯性较好的小麦新品种ꎻ李晓等[42]用EMS诱变京411ꎬ以Wx ̄A1为候选基因ꎬ用TILLING技术检测所创建的突变群体ꎬ获得Wx ̄A1基因的7个点突变ꎬ突变密度为1/67kbꎬ其中有功能变异的4个错义突变系均可稳定遗传至下一代ꎬ其直链淀粉含量降低2.8%~7.4%ꎮ张纪元等[43]利用EMS诱变创制软质小麦宁麦9号高分子量谷蛋白亚基突变体ꎬ获得Ax1㊁Dx2㊁Bx7㊁By8㊁Dy12㊁Ax1+By8缺失突变系ꎬ其谷蛋白大聚体和谷蛋白/醇溶蛋白比值均有不同程度降低ꎬ为小麦品质研究奠定了良好的材料基础ꎮ淀粉占小麦籽粒胚乳的70%左右ꎬ是决定小麦磨粉㊁加工品质的重要因素ꎬ高直链淀粉被认为是抗性淀粉(resistantstarchꎬ简称RS)ꎬ又称抗酶解淀粉和难消化淀粉ꎬ其性质类似溶解性纤维ꎬ对于维持肠道健康具有良好作用ꎬ同时具有一定的瘦身效果和保健意义ꎮ薛芳等[44]用EMS处理新春11小麦种子ꎬ筛选出7个抗性淀粉含量高且综合性状优良的M2突变家系ꎮ张贞彩等[45]用EMS处理济麦20和济麦22ꎬ分别得到糊化粘度变异程度不同的突变体ꎬ可形成不同品质㊁不同功能的淀粉材料ꎮMishra等[46]鉴定了一组包含101个EMS诱导的突变系(M4)群体ꎬ分别在约89%和38%的突变体系中观察到直链淀粉和抗性淀粉含量明显区别于野生型ꎬ群体中直链淀粉含量变化范围为3%~76%ꎬ抗性淀粉含量的变化范围为1%~41%ꎻ并用两种不同的直链淀粉含量突变体系研究了20种淀粉代谢途径基因的定量表达模式ꎬ鉴定出直链淀粉生物合成候选基因ꎮ2.3㊀在叶片持绿机制研究方面EMS诱变技术为小麦植株及叶片功能期研究提供了便利ꎮDerkx等[47]采用EMS诱变方法得到小麦扬花期相同而后期冠层快速和慢速衰老突变体ꎬ通过研究突变体对产量和氮分配的影响ꎬ发现延迟衰老仅在较高氮供应时才显现ꎬ低氮供应增加了所有品系的衰老速率ꎬ并用田间试验证实了两种衰老模式ꎮ此外ꎬ通过对小麦叶片早熟突变体m68研究发现ꎬ叶片衰老表型受单个隐性核基因控制ꎬ转录因子和蛋白质转运基因在叶片衰老开始时起作用ꎬ尤其是WRKY家族和锌指转录因子ꎬ叶绿素和碳代谢相关的基因在后期发挥作用[48]ꎮ2.4㊀在农艺性状解析方面株高和分蘖是影响小麦产量的两个主要农艺性状ꎬXu等[49]用EMS处理普通小麦望水白ꎬ获得一个高分蘖矮秆突变体NAUH167ꎬ随后用NAUH167/Su ̄mai3的RIL2:6群体构建了基于分子标记的遗传图谱ꎬ并将控制两种性状的主效QTL(QHt.nau ̄2D)定位于2DSꎬ其侧翼标记为Xcfd11和Xgpw361ꎬ最后用2011I ̄78/NAUH167群体对QHt.nau ̄2D进行了物理定位ꎮ赵天祥等[50]采用EMS突变技术构建了小麦693㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀激㊀光㊀生㊀物㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第28卷品种偃展4110的突变体库ꎬ并且对其进行形态学分析和鉴定ꎬ得到株高在10~15cm左右的特矮变异类型ꎮW98是用EMS处理小麦品种偃展1号获得的突变体ꎬ其矮秆与圆粒性状呈显著相关ꎬ用W98与高秆长粒的墨西哥品种10th12配制杂交组合ꎬ对F2ʒ3分离群体进行遗传分析发现ꎬ圆粒性状由1对不完全显性基因控制ꎻ激素敏感性试验表明ꎬ该突变体与野生型都对赤霉素处理不敏感ꎬ但野生型对油菜素内酯不敏感而突变体W98则表现敏感[51]ꎮMo等[52]利用外显子捕捉技术ꎬ结合一个EMS分离群体ꎬ对小麦4BS染色体上的一个矮秆基因区域进行了鉴定ꎬ发现在高秆突变体后代中大约存在一个1.9Mb的缺失ꎬ该缺失区间包含9个基因ꎬ其中之一为Rht ̄B1基因ꎮ为了研究分蘖的潜在遗传变异ꎬKuraparthy等[53]用EMS诱变二倍体小麦ꎬ得到分蘖能力受到损害的突变体ꎬ将分蘖抑制基因tin3定位在染色体3AL远端10%位置ꎬ并开发出一个与tin3共分离的RFLP标记Xpsr1205ꎬ促进了小麦有效分蘖的改良ꎮ抽穗期作为普通小麦重要农艺性状之一ꎬ对适应不同生态环境条件具有至关重要的作用ꎬ通过调节小麦抽穗期ꎬ使其与光㊁温等环境因子变化密切协调ꎬ从而提高小麦适应性和稳产性ꎮ刘国祥[54]对偃展4110EMS突变体库60份抽穗期突变体研究发现ꎬ光周期对突变体抽穗期的影响极为显著ꎬ通过对光周期基因Ppd ̄Dl的克隆测序与比对ꎬ发现突变体有单碱基突变㊁C缺失㊁C/T转换㊁G插入和T插入多种类型ꎬ这些点突变造成启动子区碱基转换㊁氨基酸改变以及内含子调控序列变化ꎬ从而导致抽穗期发生变异ꎮZhang等[55]用EMS处理YZ4110ꎬ获得晚抽穗期突变体m605ꎬ这种晚期抽穗性状由一个名为TaHdm605的隐性基因控制ꎬ采用遗传作图方法将TaHdm605基因定位在3DL分子标记cfd152和barc42之间ꎬ而后进一步将该基因座定位到包含26个预测基因的1.86Mb物理基因组区域ꎬ为TaHdm605克隆以及改变小麦抽穗期奠定了遗传基础ꎬ并且该突变体可在秋季播种时至少延迟7天ꎮWu等[56]从EMS处理普通小麦品种望水白的突变体文库中获得突变体Meh0239ꎬ通过对其进行形态学㊁生理学㊁解剖学和遗传学的研究ꎬ鉴定出一个与产量性状相关的多效性基因Yt1ꎬ该突变体为小麦染色体7DS上Xwmc506远端约3.1cM处单个隐性突变ꎮ2.5㊀在突变体库构建方面据Krasileva等[57]报道ꎬ用EMS处理四倍体小麦Kronos和六倍体小麦Cadenz种子ꎬ提取M2植株DNA进行外显子捕捉测序ꎬ在1535份Kronos和1200份Cadenza的EMS群体中ꎬ在基因水平上鉴定出超过一千万个突变位点ꎬ平均每个单株存在2705(四倍体)和5351(六倍体)个位点ꎬ突变频率大约在35~40个SNP/kbꎮ对于单个基因来说ꎬ大约有23~24个突变位点造成了错义或提前终止ꎮ由于单个突变单株在整个基因组水平上均含有大量突变位点ꎬ将突变体与野生型材料进行杂交并连续回交ꎬ可以纯化遗传背景以消除其它突变位点对目标性状造成的影响ꎮ该突变体库包含四倍体小麦Kronos和六倍体小麦Cadenzꎬ可以用作改善小麦营养品质㊁籽粒大小㊁鉴定等位基因等方面的研究ꎬ也是小麦功能基因组学研究的宝贵遗传资源ꎬ同时也为解析在人工或自然选择中被忽略掉的隐性突变提供帮助ꎮ在鉴定突变位点的基础上ꎬ作者又对突变位点进行了注释ꎬ相关突变信息可以通过www.dubcovskylab.uc ̄davis.edu/wheat ̄tilling网站进行查询ꎬ山东农业大学付道林组有四倍体Kronos的突变体库ꎬ国内感兴趣的研究人员可以向他们申请(信息来源于小麦研究联盟)ꎮ3㊀小麦EMS诱变突变体选择3.1㊀小麦EMS诱变及突变体表型选择诱变材料需选用待处理品种(系)的纯系ꎮ育种研究需要根据育种目标选用具有较好综合性状㊁只需进行少数性状改进的当地推广品种或高代品系ꎻ遗传研究需要选择目标性状突出的亲本材料ꎮ小麦EMS诱变处理宜采用种子处理方式ꎬ具体操作如下:首先ꎬ将待处理种子在室温下用蒸馏水浸种10h左右ꎬ使种子充分膨胀或萌动ꎬ随后放在吸水纸上晾干ꎬ将种子含水量控制在20%以下ꎻ其次ꎬ以磷酸缓冲液(pH=7)为溶剂ꎬ配制0.5%~0.8%的EMS化学诱变剂ꎬ将晾干的种子在室温下浸种8~10hꎻ最后ꎬ将诱变后的种子装入小网袋中ꎬ在自来水下反复冲洗1hꎬ除去种子胚上残留的EMSꎬ风干备用ꎬ5天内播种ꎮ值得注意的是ꎬ不同基因型材料对EMS敏感程度不同ꎬ不同处理时间㊁不同EMS浓度及不同浓度与时间组合对突变频率影响也具有较大差异ꎮ首次应用时需谨慎对待ꎬ最好设不同剂量EMS浓度来处理种子ꎬ以达到理想效果ꎻ另外ꎬEMS具有强烈的致癌性和挥发性ꎬ常用5%硫代硫酸钠作为解毒剂ꎬ因此在操作过程中要注意安全防护ꎬ严格遵守试验793第5期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀曹亚萍等:EMS诱变技术在小麦上的应用㊀㊀㊀规则ꎮ诱变M1表型不分离ꎬ一般按单株或单穗(每株1穗)收获ꎻM2是变异最大的世代ꎬ也是选择的关键时期ꎬ可根据育种目标及性状遗传特点选择各种表型突变体(图1)ꎬ如株高㊁株型㊁穗型㊁叶色㊁分蘖㊁生育期㊁育性等性状ꎻM3代及以后ꎬ随着世代的增加ꎬ性状分离减少ꎬ有些性状一经获得即可迅速稳定ꎮ图2和图3为笔者采用EMS诱变得到的表型稳定突变体ꎬ目前已用于突变基因遗传和功能研究ꎮ图1㊀EMS诱变M2代表型突变体Fig.1㊀PhenotypicmutantsofEMSinductioninM2generation(a)良星99色泽突变ꎻ(b)济麦22分蘖力突变ꎻ(c)晋麦47号生育期突变ꎻ(d)冀麦325株型突变(a)MutationofcolorofLiangxing99ꎻ(b)MutationoftilleringabilityofJimai22ꎻ(c)MutationofgrowthstageofJinmai47ꎻ(d)MutationofplanttypeofJimai325图2㊀晋麦47号(a)及其抗白粉病突变体(b)Fig.2㊀Jinmai47(a)anditspowderymildewresistantmutant(b)3.2㊀利用TILLING技术定向筛选突变体尽管EMS在表型选择方面依旧被广泛利用ꎬ但存在EMS诱发产生的点突变难以鉴定的问题ꎮTILLING是由美国FredHutchinson癌症研究中心StevenHenikoff领导的研究小组发展建立的一种反向遗传学研究方法ꎬ它将诱发产生高频率点突变的化学诱变方法与PCR筛选技术和高通量检测方法有效结合ꎬ以发现分析目标区域点突变ꎬ是一种全新的高通量㊁低成本的反向遗传学研究方法ꎮTILLING作为一种定向点突变筛选技术ꎬ对目标突变体的筛选不受遗传背景㊁基因互作㊁表型特征㊁生长环境等因素影响ꎬ鉴定准确性高ꎬ能够实现高通量㊁大群体㊁多基因㊁多性状的快速高效鉴定ꎬ提高突变体鉴选效率ꎮTILLING提供了从分子水平上定向规模化筛选突变体的技术平台ꎬ尤其对品质和营养成分等无法从植株表型上加以选择的性状筛选尤为有利ꎮ其技术原理是将传统的酶切技术与PCR技术相结合后采用红外双色荧光系统进行结果鉴定ꎬ从而筛选出相应的突变体ꎮ首先ꎬ提取具有性状分离的M2植株的基因组DNAꎬ将多个不同样品的DNA进行等量混合ꎬ构建DNA池ꎻ其次ꎬ以此DNA池为模板进行PCR扩增ꎬ并将扩增片段进行退火形成DNA片段的异源双链分子ꎬ采用CELI进行酶切后ꎬ利用红外双色荧893㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀激㊀光㊀生㊀物㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第28卷图3㊀长6878及其黄叶突变体Fig.3㊀Chang6878anditsyellowleafmutant(a)苗期ꎻ(b)抽穗期ꎻ(c)灌浆期ꎻ(d)子粒(a)Germinationstageꎻ(b)Headingstageꎻ(c)Fillingstageꎻ(d)Grain注:每张图片左或上为野生型(长6878)ꎬ右或下为突变体Note:Theleftorupperpartofeachpictureiswildtype(Chang6878)ꎬwhiletherightorlowerpartismutant光电泳分析技术进行电泳ꎻ再次ꎬ对检测到突变的DNA池中每个单株的DNA样品进行筛选ꎬ找出相应的突变体ꎻ最后ꎬ从对应的突变体植株中筛选出有变化的表型ꎮ详细操作方法见参考文献[58]和[59]ꎮ值得注意的是ꎬ按目标基因序列设计引物ꎬ是TILL ̄ING技术的一个重要步骤ꎬ设计的好坏直接影响TILLING的筛选效果ꎮ3.3㊀突变体真实性检测虽然普通小麦为自花授粉植物ꎬ但也存在1%~4%的天然异交率ꎬ如果诱变后代不能严格套袋自交ꎬ必须确认突变体的变异来源ꎬ才能对诱变后代进行遗传变异评价和基因功能研究ꎮ利用表型鉴定通常难以鉴定诱变后代突变体的真实性ꎬ而利用分子标记分析可以有效排除诱发突变体中的假突变体ꎮ耿皆飞等[60]在小麦EMS突变体真实性检测方面进行了首次报道:LF2010㊁LF2099和LF2100是小麦品系H261经EMS诱变后遗传稳定的突变体ꎬ用分别位于小麦21条染色体上特异性和稳定性均好的21对SSR引物对突变体及其亲本进行检测ꎬH261与LF2010和LF2099的差异SSR标记为0个ꎬ但与LF2100的差异SSR标记为10个ꎻSNP芯片分析结果表明ꎬH261与LF2010和LF2099之间的差异位点分别为66和12个ꎬ与LF2100之间的差异位点为2846个ꎮ证明LF2010和LF2099突变体与亲本H261的遗传背景高度一致ꎬ是H261经过EMS诱变的后代ꎬ而LF2100是天然异交或机械混杂产生的假突变体ꎮSSR标记和SNP芯片2种方法均可有效鉴定EMS突变体的真实性ꎬ由于SNP芯片可以进行高通量和全基因组水平分析ꎬ在小麦突变体真实性鉴定方面具有更大应用潜力ꎮ4㊀EMS诱变存在问题及解决方案EMS诱变原理是进行DNA碱基配对的干扰ꎬ使其发生碱基置换从而形成点突变ꎮ这种方法以诱发基因突变为目的ꎬ实质上主要依赖于物种在诱变条件下所发生的基因随机突变ꎬ其突变机理是在诱变条件下DNA复制过程中所产生的一个或几个碱基的变化ꎬ这一过程是随机突变的过程ꎬ具有突变位点不确定性㊁突变方向偶然性的特点ꎮ由于碱基变化是随机的ꎬ整个变异过程无目的性ꎬ即使是用EMS处理相同品种并且重复同样诱变条件ꎬ也无法预知必然可以出现某一特殊性状尤其是目标性状改良的突变ꎮ由表1可知ꎬ不同材料EMS诱变结果具有较大差异ꎬ同一部位突变率差异较大且具随机性ꎬ多项报道也进一步证实了这一点ꎮDhaliwal等[1]报道了一个用EMS处理春小麦品种Indian生成的突变体群体ꎬ在M4代观察到的表型稳定群体中ꎬ植物高度的变化最常见ꎬ其次是叶形态ꎮ许云峰等[61]用EMS对小麦品种烟农15进行诱变处理ꎬ在M3代得到11个农艺性状发生明显变异的突变系ꎬ以籽粒大小和株高2个性状的变异幅度最大ꎬ并且均有复合性状突变出现ꎮGuo等[62]采用0.5%㊁1.0%和1.5%三种EMS浓度处理京411种子ꎬ表型鉴定结果表明ꎬ除生育期外ꎬ其余性状的突变频率均随着EMS浓度的增加而增加ꎮ993第5期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀曹亚萍等:EMS诱变技术在小麦上的应用㊀㊀㊀表1㊀小麦EMS诱变群体中不同性状类型突变率(%)Tab.1㊀MutationratesofdifferenttraittypesinwheatEMSinducedpopulation(%)WildtypeEMSConcentration+TimeMutationtypeSpikeLeafStemFertilityMaturityOthersTotalmutationrateReferencesShengnong10.4%+16h0.710.890.490.220.041.513.86[63]Yunong2010.8%+12h0.602.203.495.1511.44[64]Yanzhan41101.2%0.260.631.063.341.591.228.10[50]Yanzhan41100.7%0.200.930.802.221.120.435.70[50]Xinong991.0%+10h5.122.093.960.082.140.2013.59[65]Xinong9791.0%+8h1.600.644.000.000.160.006.40[65]Xinong9771.0%+12h3.241.393.700.000.690.239.25[65]Xiaoyan221.0%+12h3.601.275.080.001.690.2111.86[65]㊀㊀应用小麦EMS诱变技术ꎬ除构建突变体库外ꎬ还需要针对性地创制新基因和新材料ꎬ尤其是应用于育种研究时需要对少数不利性状进行改良ꎬ实现定向诱变ꎮ为了解决EMS诱变的随机性和研究目标的定向性这一矛盾ꎬ需要在诱变群体中有效添加选择压ꎬ以提高目标突变体选择准确性和利用效率ꎬ进而实现对小麦某一特殊性状进行遗传改良ꎮ如对诱变群体M2进行干旱㊁低温㊁高温㊁盐碱等环境胁迫ꎬ可以鉴定出各种抗逆性强的突变体ꎻ对M2进行病㊁虫㊁菌接种鉴定或土壤带菌操作等试验ꎬ可鉴定出抗各种病害突变体ꎻ对M2籽粒进行蛋白电泳分析ꎬ可检测品质性状相关基因突变体ꎻ提取M2植株基因组DNAꎬ按目标基因序列设计引物ꎬ用TILLING技术定向筛选ꎬ可鉴定更多相关基因突变ꎮ图4给出了小麦EMS诱变研究备选方案ꎬ旨在为科研工作者提供一种研究方法和策略ꎬ以便根据研究目标选择性借鉴ꎮ5㊀小麦EMS诱变技术发展前景5.1㊀培育小麦新品种近年来ꎬ我国小麦生产上大面积种植品种的产量㊁品质㊁抗性大多取得了明显改进ꎬ但由于生态环境等因素影响ꎬ对于各地育种家来说ꎬ如能改进某个品种的某1~2个性状ꎬ即可产生良好的社会和经济效益ꎮ小麦EMS诱变育种的主要特点是对少数不利性状进行改良ꎬ在小麦育种实践中发挥不可替代的作用ꎮ基于TILLING的诱变技术ꎬ将是一种高效定向性育种技术ꎬ它不但继承了诱变育种稳定快㊁只改变原亲本单个目标性状的传统优点ꎬ而且无须耗时的转基因和连续的杂交㊁回交过程ꎮ由TILLING分析所鉴定的大量目标突变体分别含有不同的或新的等位变异ꎬ通过与常规育种技术有效结合ꎬ能够实现目标性状优良等位变异的基因聚合ꎬ从而创制综合性状优良的育种新材料ꎬ促进小麦耐逆㊁高产㊁优质新品种的培育ꎮEMS诱变创造出有利性状的变异ꎬ可以作为优良育种亲本或自交纯合作为品种推广应用ꎬ也可从育种材料转为基因组学研究的重要基础材料ꎮ5.2㊀诱生小麦新基因在当前小麦种质资源库新基因极度缺乏㊁遗传资源日益枯竭的状况下ꎬEMS高效诱导点突变和不易造成染色体畸变的优势ꎬ被广泛应用于小麦研究中ꎬ能够在短时间获得新性状和新基因ꎬ极大程度丰富了小麦种质资源ꎮ这些资源源于人工诱变ꎬ控制这些性状的基因或等位基因与来自自然变异的基因或等位基因通常是不相同的ꎬ是一种新的基因资源ꎮ这些表型性状变异是由人工诱变获得的新型等位基因变异ꎬ可以与传统品种进行杂交ꎬ增加小麦育种的创新性ꎬ丰富自然界种质资源ꎻ部分优异资源将成为分子设计育种的理想材料ꎮ5.3㊀图位克隆基因选择具特定变异的稳定突变株ꎬ与其野生型或同种性状中表型差别较大的品种配制杂交组合ꎬ培育大分离群体ꎬ可以对控制该性状的基因进行精细定位㊁图位克隆ꎬ并为了解变异产生的分子遗传机制提供基础材料ꎮEMS诱变丰富了图位克隆的数量与资源ꎬ随着分子生物学研究的深入和技术的更新ꎬ这种方法思路在小麦功能基因的发掘与利用方面会越来越深入ꎮ004㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀激㊀光㊀生㊀物㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第28卷。
山西农业科学 2023,51(8):867-872Journal of Shanxi Agricultural Sciences137Cs-γ射线辐射和EMS 处理对海岛棉的诱变效应分析张磊磊,马志华,洪梅,陈晋瑞,范阿棋,吐尔逊·吐尔洪(新疆巴音郭楞蒙古自治州农业科学研究院/国家农业农村部新疆早中熟及早熟陆地棉、长绒棉科学观测实验站,新疆 库尔勒 841000)摘要:为了打破现有海岛棉品种的基因连锁限制,进一步丰富海岛棉遗传背景,诱发海岛棉获得更多有价值的突变,加快海岛棉育种研究进程,通过应用137Cs -γ射线辐射和甲基磺酸乙酯(EMS )处理对优异海岛棉品种新海45号、新海57号、新海58号、新海59号、H39012、H163进行诱变处理,分析物理诱变处理和化学诱变处理对海岛棉的诱变效应。
结果表明,137Cs -γ射线辐射处理和甲基磺酸乙酯处理较常规对照分别显著降低出苗率29.40、27.03百分点,显著降低成苗率43.36、35.08百分点;在产量性状上,137Cs -γ射线辐射处理与甲基磺酸乙酯处理相比,籽棉质量、皮棉质量、单铃质量和衣分分别显著降低3.66、4.37、0.27 g 和1.83百分点,表现出更强的抑制作用;在纤维品质性状上,137Cs -γ射线辐射处理和甲基磺酸乙酯处理上半部平均长度、整齐度指数、断裂比强度、纺纱均匀性指数等纤维品质指标值较常规对照略有提高但整体变化不大,反射率较常规对照分别降低1.43、0.77百分点,黄度较常规对照分别提高0.48、0.53。
综上所述,与常规对照相比,137Cs -γ射线辐射处理和甲基磺酸乙酯处理对6个海岛棉品种整体表现为抑制作用,且137Cs -γ射线辐射处理的抑制作用大于甲基磺酸乙酯处理,在产量上的差异更为显著。
关键词:海岛棉;γ射线;甲基磺酸乙酯(EMS );诱变效应中图分类号:S562 文献标识码:A 文章编号:1002‒2481(2023)08‒0867‒06Analysis of Mutagenic Effects of 137Cs-γ Ray Radiation andEMS Treatments on Island CottonZHANG Leilei ,MA Zhihua ,HONG Mei ,CHEN Jinrui ,FAN Aqi ,TU ′ERXUN Tu ′erhong (Academy of Agricultural Sciences in Xinjiang Bayinguoleng Mongolia Autonomous Prefecture/Xinjiang ScientificObservation and Experimental Station of Medium and Early Maturing Upland Cotton and Longfiber Cotton ,Ministry of Agriculture ,Korla 841000,China )Abstract :In order to break the genetic linkage of current island cotton varieties, enrich the genetic background of island cotton, and induce more valuable mutations in island cotton,and accelerate the research process of island cotton breeding, in this experiment, 137Cs -γ ray radiation and ethyl methane sulfonate(EMS) treatment were applied to mutagenize the excellent island cotton varieties Xinhai 45, Xinhai 57, Xinhai 58, Xinhai 59, H39012, and H163,and the mutagenic effects of physical and chemical mutagenic methods on island cotton were analyzed. The results showed that 137Cs -γ ray radiation treatment and ethyl methane sulfonate treatment significantly reduced the emergence rate by 29.40 and 27.03 percentage points, respectively, and significantly reduced the seedling rate by 43.36 and 35.08 percentage points, respectively, compared with the conventional control. In terms of yield traits, compared with ethyl methane sulfonate treatment, 137Cs -γray radiation treatment significantly reduced seed cotton weight, lint cotton weight, single boll weight, and lint percentage by 3.66,4.37,0.27 g and 1.83 percentage points, respectively, showing a stronger inhibitory effect. In terms of fiber quality traits, the upper half average length, uniformity index, breaking strength and spinning uniformity index of the 137Cs -γ ray radiation treatment and the ethyl methane sulfonate treatment were slightly higher than those of the conventional control, but the overall change was not significant. The reflectivity was 1.43 percentage points and 0.77 percentage points lower than that of the conventional control, and the yellowness was 0.48 and 0.53 higher than that of the conventional control.In summary,137Cs -γ ray radiation treatment and ethylmethanesulfonate treatment showed an overall inhibitory effect on the six island cotton varieties compared with the conventional control, and the inhibitory effect of 137Cs -γ ray radiation treatment was greater than that of ethyl methanesulfonate treatment, the difference was more significant in yield especially.doidoi:10.3969/j.issn.1002-2481.2023.08.05收稿日期:2022-12-14基金项目:新疆维吾尔自治区自然科学基金项目(2021D01F29)作者简介:张磊磊(1991-),男,河南平舆人,助理研究员,硕士,主要从事海岛棉遗传育种与种质创新研究工作。
EMS诱变步骤:
原生质体诱变时,buffer里要加15%的蔗糖、平板为R6;
孢子诱变时,需要在TSB预萌发
材
料
1
原生质体原液:109个/ml OK
2
稀释缓冲液:pH7.2 0.1M 磷酸缓冲液+15%蔗糖 (过滤灭菌) OK
3
终止液:5%硫代硫酸钠+15%蔗糖溶液(过滤灭菌) OK
4
平板:R6 OK
5
消毒液:20%硫代硫酸钠溶液 OK
6
EMS 原液: OK
步
骤
1
取1ml原生质体原液,加9ml稀释缓冲液。得到108个/ml原生质体悬液
2
将上述悬液分装每份0.5ml。
3
取5ul EMS原液(10M/L MES),加入0.5ml原生质体悬液(工作浓度0.1M/L),于
30℃静置培养对照组不加EMS。
4
加入时间(min) 0 40 60 70 不加
诱变时间(min) 80 40 20 10 0 (CK)
5
诱变和CK的处理:样品取出后加入0.5ml终止液,离心,除去上清。再加入稀释
缓冲液洗涤2次。最后一次除去上清后加稀释缓冲液0.5ml。(约108个/ml)。用
稀释缓冲液按10-2、10-3、10-4稀释,涂板2次重复
诱 变 指 标 1
致死率: 不同诱变条件下的致死率,从平板计数可直接得出
2 突变率: (1)表型多样性:再生后直接观察计数
(2)产量分布:需将各致死率下的克隆发酵,统计产量分布
甲基磺酸乙酯 Ethyl methylsulfonate
分子式: C3H8O3S; 分子量: 124.16, 沸点: 85-86℃
性质描述: 无色透明油状液体
相对密度1.1452 (10M/L)
溶于乙醚、乙醇、氯仿,微溶于水
终止液: 1M NaOH, 20% w/v Na2S2O3