抗体,胶乳基本偶联步骤
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几种常见的抗体标记方法-酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记抗体标记主要有酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记等,还有一些其他的标记方法例如金标记,本文主要讲述了这些抗体标记的基本原理、操作步骤。
一、酶标记1、辣根过氧化物酶(HRP)标记辣根过氧化物酶(HRP)标记单抗和多克隆抗体的常用方法是过碘酸钠法。
其原理是HRP的糖基用过碘酸钠氧化成醛基,加入抗体IgG 后该醛基与IgG氨基结合,形成Schiff氏碱。
为了防止HRP 中糖的醛基与其自身蛋白氨基发生偶合,在用过碘酸钠氧化前先用二硝基氟苯阻断氨基。
氧化反应末了,用硼氢化钠稳定Schiff氏碱。
这里介绍两种程序。
程序一:(1)将5mg HRP溶于0.5ml 0.1mol/L NaHCO3溶液中;加0.5ml 10mmol/LNaIO4溶液,混匀,盖紧瓶塞,室温避光作用2小时。
(2)加0.75ml 0.1mol/L Na2CO3混匀。
(3)加入0.75ml小鼠已处理的腹水,或纯化单抗等(15mg/ml),混匀。
(4)称取SephadexG25干粉0.3g,加入一支下口垫玻璃棉的5ml注射器外筒内;随后将上述交联物移入注射器外套;盖紧,室温作用(避光)3小时或4℃过夜。
(5)用少许PBS将交联物全部洗出,收集洗出液,加1/20V体积新鲜配制的5mg/mlNaBH4溶液,混匀,室温作用30分钟;再加入3/20V NaBH4溶液,混匀,室温作用1小时(或4℃过夜)。
(6)将交联物过Sephadex g200或Sepharose6B(2.6×50cm)层析纯化,分管收集第一峰。
(7)酶结合物质量鉴定:克分子比值测定酶量(mg/ml)=OD403×0.4IgG量(mg/ml)=(OD280-OD403×0.3)×0.62克分子比值(E/P)=酶量×4/IgG量,一般在1-2之间。
酶结合率=酶量×体积/抗体,标记率一般为0.3-0.6,即1-2个HRP分子结合在一个抗体分子上,标记率可大于0.6,0.8,0.9;OD403/OD280等于0.4时,E/P约为1。
胶乳免疫比浊法和免疫学法
首先,让我们来谈谈胶乳免疫比浊法。
胶乳免疫比浊法是一种常用的免疫学检测方法,它利用胶乳颗粒作为载体,将抗原或抗体与胶乳颗粒偶联,形成胶乳免疫复合物。
当抗原与抗体结合时,会形成较大的颗粒团簇,从而导致溶液的浊度增加。
通过测量溶液的浊度变化,可以间接地定量检测抗原或抗体的存在量。
这种方法操作简便,灵敏度高,被广泛用于临床诊断和科研实验中。
其次,让我们来谈谈免疫学法。
免疫学法是一种通过检测免疫反应来识别和测定抗原或抗体的方法。
免疫学法包括很多种技术,比如ELISA(酶联免疫吸附实验)、免疫印迹、免疫荧光等。
这些方法都是基于免疫反应原理,通过抗原与抗体的特异性结合来进行检测。
免疫学法可以用于检测感染性疾病、自身免疫性疾病、肿瘤标志物等,具有高度的特异性和灵敏度。
总的来说,胶乳免疫比浊法和免疫学法都是用于检测抗原和抗体的实验方法,它们在原理和应用上有所不同,但都在医学诊断和科研领域发挥着重要作用。
希望这些信息能够帮助你更好地理解这两种方法。
双粒径胶乳免疫比浊法在测定D-二聚体中的应用方清【摘要】目的改进胶乳免疫试剂的分析灵敏度和线性范围,并验证在用胶乳免疫比浊法测定D-二聚体(DD)的方法中,采用双粒径胶乳致敏DD单克隆抗体比用单一粒径胶乳具有更好的灵敏度和线性范围.方法制备2种平均粒径不同的羧基化胶乳微粒(49和150 nm),并采用化学交联法偶联抗DD单克隆抗体,将2种粒径的致敏胶乳按不同比例混合,测定其分析灵敏度和线性范围,并与市售进口试剂进行比对.结果当49和150 nm致敏胶乳按4:1的比例混合时,其测定的校准曲线线性最好,线性范围达到61.88 μg/mL,分析灵敏度达到0.03,与进口试剂检测结果具有良好的相关性.结论双粒径致敏胶乳制备的DD免疫比浊法试剂比市售的传统DD胶乳诊断试剂的性能有了一定的提高,该试剂具有良好的临床应用前景.【期刊名称】《检验医学》【年(卷),期】2016(031)009【总页数】6页(P801-806)【关键词】D-二聚体;免疫比浊法;双粒径胶乳;灵敏度;线性范围;全自动血凝仪【作者】方清【作者单位】上海市医疗器械检测所,上海201318【正文语种】中文【中图分类】R446.1D-二聚体(D-dimer,DD)是交联纤维蛋白特异的降解产物,它的生成或增高反映了凝血或纤溶系统的激活,可作为体内高凝状态和纤溶亢进的分子标志物之一,广泛应用于血栓性疾病有关的临床诊断中[1]。
近年来,随着方法学的不断进步,DD检测的方法也越来越多,但利用的核心原理均是免疫检测,如酶联免疫吸附试验(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)[2]、胶乳凝集法[3]、胶乳免疫比浊法[4]、胶体金免疫渗透法[5],其中胶乳免疫比浊法是近年逐渐在全自动血凝仪上开始使用的方法,因其使用方便、操作简单、定量准确、检测快速等优点逐渐在各大中型医院中推广使用。
目前市售的检测DD的胶乳免疫试剂,主要是用单一粒径胶乳和抗体偶联,这往往存在着分析灵敏度低和线性范围窄的缺点。
磁珠偶联抗原方法磁珠偶联抗原活化移取0.5mL (10mg) 的BioMagPlus 羧基磁珠至15mL 尖头离心管内,并放置在磁分离架上直到上清液变完全透彻后,用吸管小心移弃上清。
加5mL of MES 缓冲液充分混匀洗涤. 将离心管放在磁分离架上直到上清液变清后.用吸管小心移弃上清。
重复Step 2, 三次. 最后一次洗涤后, 重悬磁珠于5mL 的MES 缓冲液中。
活化试剂(),剧烈振荡摇匀。
室温下,将离心管置于旋转混匀仪上活化反应30 分钟。
反应过程中,注意不让磁珠沉淀聚积在一起。
将离心管放在磁分离架上直到上清液变清后.用吸管小心移弃上清。
重复Step 2, 四次。
蛋白偶联计算需要偶联的蛋白,抗体量. 一般地,每mg活化的羧基磁珠可以偶联20-500ug的蛋白(抗体)。
可适量添加一些载体蛋白,如BSA Fraction V,增加反应体系中的总蛋白量,从而可以起到一定的封闭作用。
保证抗体偶联的正确方向。
将蛋白加至5mL MES 缓冲液中。
(吸取50μL 蛋白液于950μL的MES缓冲中. 配成1:20的稀释液. 标记为偶联反应前蛋白液.置于一旁用于后面的偶联率计算。
)将剩下的蛋白液加到装有活化磁珠的离心管内,剧烈振荡混匀,室温下,将离心管置于旋转混匀仪上偶联反应16-24小时。
(将离心管放在磁分离架上直到上清液变清后.用吸管小心收集上清. 标记为偶联后蛋白液,用于计算偶联率。
)重悬磁珠于5mL MES 缓冲液中,振荡摇匀。
将离心管放在磁分离架上直到上清液变清后.用吸管小心移弃上清。
重复Step 6, 一次加5mL 的淬灭液,振荡摇匀,室温下,将离心管置于旋转混匀仪上30 分钟。
将离心管放在磁分离架上直到上清液变清后.用吸管小心移弃上清。
洗涤和贮存偶联后的磁珠加5mL 洗涤缓冲液并剧烈振荡摇匀。
将离心管放在磁分离架上直到上清液变清后.用吸管小心移弃上清。
重复Step 1, 三次。
最后一次洗涤后, 重悬磁珠于2mL 洗涤缓冲液内,此时磁珠的浓度约为5 mg/mL. 置于2-8摄氏度保存。
偶联剂的种类和特点及应用偶联剂是一种重要的、应用领域日渐广泛的处理剂,主要用作高分子复合材料的助剂。
偶联剂分子结构的最大特点是分子中含有化学性质不同的两个基团,一个是亲无机物的基团,易与无机物表面起化学反应;另一个是亲有机物的基团,能与合成树脂或其它聚合物发生化学反应或生成氢键溶于其中。
因此偶联剂被称作¡分子桥¡,用以改善无机物与有机物之间的界面作用,从而大大提高复合材料的性能,如物理性能、电性能、热性能、光性能等。
偶联剂用于橡胶工业中,可提高轮胎、胶板、胶管、胶鞋等产品的耐磨性和耐老化性能,并且能减小NR用量,从而降低成本。
偶联剂的种类繁多,主要有硅烷偶联剂、钛酸酯偶联剂、铝酸酯偶联剂、双金属偶联剂、磷酸酯偶联剂、硼酸酯偶联剂、铬络合物及其它高级脂肪酸、醇、酯的偶联剂等,目前应用范围最广的是硅烷偶联剂和钛酸酯偶联剂。
1 硅烷偶联剂硅烷偶联剂是人们研究最早、应用最早的偶联剂。
由于其独特的性能及新产品的不断问世,使其应用领域逐渐扩大,已成为有机硅工业的重要分支。
它是近年来发展较快的一类有机硅产品,其品种繁多,结构新颖,仅已知结构的产品就有百余种。
1945年前后由美国联碳(UC)和道康宁(DowCorning)等公司开发和公布了一系列具有典型结构的硅烷偶联剂;1955年又由UC公司首次提出了含氨基的硅烷偶联剂;从1959年开始陆续出现了一系列改性氨基硅烷偶联剂;20世纪60年代初期出现的含过氧基硅烷偶联剂和60年代末期出现的具有重氮和叠氮结构的硅烷偶联剂,又大大丰富了硅烷偶联剂的品种。
近几十年来,随着玻璃纤维增强塑料的发展,促进了各种偶联剂的研究与开发。
改性氨基硅烷偶联剂、过氧基硅烷偶联剂和叠氮基硅烷偶联剂的合成与应用就是这一时期的主要成果。
我国于20世纪60年代中期开始研制硅烷偶联剂。
首先由中国科学院化学研究所开始研制γ官能团硅烷偶联剂,南京大学也同时开始研制α官能团硅烷偶联剂[1]。
免疫胶乳偶联试验方案一
试剂准备:
MES缓冲液 500mM,pH5-6,4℃储存;
EDAC 配置浓度为52μmol/mL(称取10mg EDAC,加入1mL去离
子水);
NHS 配制浓度为50mg/mL水溶液;
蛋白质溶液 缓冲液稀释至浓度为1-10mg/mL。
二步偶联法:
1. 将配好的溶液按以下顺序滴加入离心管
① 100μL 500mM MES 缓冲液;
② 加水稀释至1mL;
③ 200μL 5%微球;
④ 230uL NHS 溶液
⑤ EDAC 水溶液(计算量)
2. 放置在恒温摇床上,37℃,120rpm,30min;
3. 13000rpm离心30min,沉降后,弃上清,收集离心沉淀;用1mL
50mM MES 缓冲液洗涤2次;离心沉降后,弃上清。
4. 将配好的溶液按以下顺序加入离心管中,混匀
① 100ul 500mM MES 缓冲液;
② 加水稀释至1mL;
③ 蛋白质溶液。
5. 放置在恒温摇床上,37℃,120rpm,2h;
6. 13000rpm离心20min沉降后,弃上清,收集离心沉淀;用1mL 50mM
MES 缓冲液(或者调节pH至8.0左右),同时加入BSA溶液至其终
浓度为1%,洗涤3 次;离心沉降后,弃上清。
7. 加入0.97mL MES 缓冲液(或者调节pH至8.0左右),将微球浓
度调为1%,并重新悬浮,然后搅拌,接着温和的超声分散;
8. 重新悬浮后加入一定量的BSA溶液(比如终浓度为1%) ,保存。
9.福林酚法测定偶联蛋白质含量(可选)。(如要测蛋白质含量,则
前面的方法中不可加入 BSA。)
免疫胶乳偶联试验方法二
1. 每ml反应混合物加入以下成分:
加入DIW,定容最终体积为1ml;
0.1ml 10X的MES buffer,ph6.0~6.5(10X的buffer通常用0.5M);
0.1ml 10%的微球(终浓度为1%);
0.23ml NHS水溶液(50mg/mL); 11.5mg
一定体积的19.2mg/ml(100mM)的EDAC水溶液;
2. 室温下搅拌反应15~30min;(Note7)
3. 清洗:MES buffer或DIW清洗 两次;(Note3);
4. 用MES buffe或者DIW悬浮微球到浓度为1%;
5. 同时,用MES buffer溶解稀释抗体。buffer一般为ph7~9,
50mM~100mM。最终的蛋白浓度1mg/mL;
6. 清洗完微球后,立即加入一定体积的抗体溶液。(Note 2)。(注意:
此处给出的例子,微球浓度和蛋白浓度和buffer分别为0.5%(w/v),
0.5mg/mL,25~50mM);
7. 室温下搅拌孵育2hr;
8. 每ml反应液中加入2.5ml 乙醇胺,室温搅拌孵育10~30min;
9. 清洗:MES buffer清洗两次离心去除上清,重新悬浮微球,然后
搅拌,接着温和的超声分散(加入一定量的BSA)。(Note 3/4)
免疫胶乳偶联试验方法三
1、 取0.1ml胶乳微球,加入0.9ml,0.1mol/L,PH6.0的MES混合。
2、 向上述混合液中加入EDC和NHS各5mg活化,室温下温和搅
拌15min,10000r/min离心15min,用0.1mol/LPBS重复洗涤3次,
去上清,沉淀后经0.1mol/LPBS重悬、振荡、超声处理后得到
活化的胶乳微球。
3、 取40ul待偶联抗体(10mg/ml)加入到1ml经过活化的胶乳微球
溶液中,室温下温和搅拌4h,10000r/min离心15min,沉淀用
含0.05%Tween20的PBS重复清洗3次,然后用0.1mol/LPBS
复溶,即得到胶乳-抗体蛋白复合物溶液。