活血祛瘀法对真性红细胞增多症细胞凋亡及相关基因表达的影响

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活血祛瘀法对真性红细胞增多症细胞凋亡及相关基因表达的影响

杨洪涌-,孙金芳z,陈志雄,,赵珍品一,古学奎t,刘安平‘(1.广州中医药大学第一附属医院,广州510405;2.广

州中医药大学,广州510405;3.广州市中医医院,广州510130)

摘要:目的探讨活血祛瘀法治疗真性红细胞增多症的作用机理。方法选取真性红细胞增多症初治或未缓解的住

院及门诊患者10例,以活血祛瘀药治疗12周,并设立正常对照组。在治疗前,治疗1周、4周、8周、12周采用

TUNEL法检测患者骨髓单个核细胞的凋亡率,以免疫组化法检测治疗前后Bcl一2、p53基因,用原位杂交法检测上述基因mRNA表达。结果治疗后1周、4周、8周,患者骨髓单个核细胞凋亡率较前一个观察时点逐步增高(P

值均小于0.05);但治疗后12周与治疗后8周比较,无显著性差异(P>0.05)。治疗前患者Bcl一2基因及其mR.NA、p53基因及其mRNA水平均高于正常对照组(P<0.05);治疗后4周Bel一2mRNA、治疗后8周Bcl一2基因及其mRNA、治疗后4周和8周p53基因及其mRNA表达均低于治疗前(P<0.05)。结论活血祛瘀法治疗真性红细胞增多症的起效时间可能在治疗后第8周达到高峰,此后若继续用药,其疗效可能趋于平稳。其机理之一可能是通过调节Bcl一2、P53基因及其mRNA水平表达,从而诱导真性红细胞增多症骨髓单个核细胞凋亡。

关键词:活血祛瘀;药物诱导;Bel一2;p53基因;真性红细胞增多症;骨髓单个核细胞;细胞凋亡;基因调控

中图分类号:R555.1;R285.6文献标识码:A文章编号:1003—9783(2004)03—0208—04

InfluenceofBlood-—activatingandBlood—·stasis-·removingTherapyonCellApoptosisandExpressionofAsso-

ciatedGeneinPolycythemiaVeraYANGHongyong,SUNJinfang,CHENZhixiong,ZHAOZhenping,GUXuekui,LIUanping(1.TheFirstAmli—

atedHospital,GuangzhouUniversityofTCM,Guangzhou510405;2.GuangzhouUniversityofTCM,Guangzhou

510405;3.GuangzhouMunicipalHospitalofTCM,Guangzhou510130)Abstract:ObjectiveToexplorethetherapeuticmechanismofblood—activatingandblood—stasis—removing(BABAR)

therapyforpolyeythemiavera(PV).MethodsTenfirst—visitortin—relievedoutpatientsandinpatientsweretreated

withBABARtherapyfor12weeks.Healthyvolunteersservedasthenormalcontr01.Beforetreatmentand1,4,8and12

weeksaftertreatment,theapoptoticratesofbonemallrowmononuclearcells(BMMC)wasanalyzedwiththeTUNELmethod.Theexpressionofbcl一2andp53wasobservedbythemethodofimmunohistochemistryandtheirmRNAexpres—sionbythemethodofhybridizationinsite.ResultsOne,fourandeightweeksaftertreatment,theapoptoticratesof

BMMCwasincreasedascomparedwiththosebeforetreatment(P<0.05);theapoptoticrate12weeksaftertreatmentdid

notdifferfromthat8weeksaftertreatment(P>0.05).ThegeneexpressionlevelofBel一2andp53andtheirRNAex.pressionlevelinthepatientsbeforetreatmentwerehigherthanthoseinthenormalcontrol(P<0.05).Expressionlevelof

p53geneandmRNAlevelofbcl一2andp534weeksaftertreatmentwerelowerthanthosebeforetreatment(P<0.05).

Sodidtheexpressionlevelofbcl一2geneandp53geneandtheirmRNAlevels8weeksaftertreatment.ConclusionTheeffectofBABARintreatingPVarrivedthepeak8weeksaftertreatmentandthentheeffectwillbemild.ItstherapeuticmechanismmayberelatedtotheregulationofexpressionofBcl一2andp53andtheirmRNAexpression,whichcanin—ducetheapoptosisofBMMCinPVpatients.Keywords:Blood—activatingandblood—stasis—removingtherapy;Druginduce;Bcl一2;p53;Polycythemiavera;Cellapoptosis;Geneticregulation

真性红细胞增多症(常简称真红)是一种造血于

细胞获得性恶性克隆性增生所致的疾病,以血细胞增

多导致全血容量增多,血液粘稠度增高症候群为临床特征,属骨髓增生性疾患之一。西医治疗本病主要采

用化疗或结合放血疗法,疗效尚可,但毒副作用明显。目前,中医治疗真性红细胞增多症主要采用活血

收稿日期:2004一Ol一15作者简介:杨洪涌(1962一),男,副教授,主要从事中医和中西医结合治疗血液病的研究。

基金项目:国家中医药管理局科研基金资助项目(编号00一j—P一69)。

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祛瘀法为基础,结合辨证加用养阴、清热、益气等

法,取得明显效果,其疗效已得到国内血液学界公认¨,1;但活血祛瘀法对该病的疗效机理则鲜见报道。

本研究试图从细胞凋亡及其相关基因角度探讨这一机

理。现将初步观察结果报告如下。·209·

1临床资料

1.1一般资料本组病人10例,其中男6例,女4

例;年龄35—75岁,平均61.38岁。

1.2诊断标准参照张之南主编《血液病诊断与疗效标准》中真性红细胞增多症的诊断标准【4】。

1.3纳人标准符合诊断标准;未曾接受化疗,或已停用化疗1个月以上,能配合服用中药治疗及复查者。

1.4排除标准不符合纳入标准者;不能配合治疗、

复查者;继发性或相对性红细胞增多症;孕妇或合并有严重心肝肾功能损害者。

1.5疗效标准参照张之南主编《血液病诊断与疗效

标准》中真性红细胞增多症的国内疗效标准¨1:完全缓解,临床症状消失,皮肤、粘膜从红紫恢复到正

常,原肿大的肝脾显著回缩,血红蛋白恢复正常,白

细胞和血小板计数降至正常。若红细胞容量也恢复正

常,则称完全缓解。临床缓解,I临床及血象恢复如

上,但未测红细胞容量或测红细胞容量尚未恢复正

常。好转,临床症状明显改善,皮肤、粘膜红紫有所

减轻,原肿大的肝脾有所回缩,血红蛋白下降309/L以上。无效,临床症状、体征以及血象无变化或改善不明显。

2材料与方法

2.1仪器与试剂流式细胞仪(型号EPICSAL.TRA),美国Coulter公司产;Bcl一2或p53免疫组化

染色超敏试剂盒[含过氧化物酶阻断溶液(HydrogenPeroxidaseBlockingSolution),UltroVblock,即用型生物素标记的羊抗鼠抗体(BiotinylatedGoatanti—Mouse),链亲和素一过氧化物酶溶液(Strptavidin

Peroxidase),一抗(PrimaryAntibody)即鼠抗人Bcl一2或p53、人Bcl一2mRNA、p53mRNA及Fas

mRNA原位杂交检测试剂盒、二氨基联苯氨(DAB)显

色试剂盒、原位杂交专用盖玻片、焦碳酸二乙酯

(DEPC)均购自武汉博士德生物工程有限公司;多

聚左旋赖氨酸,Sigma公司出品;淋巴细胞分层液购自福建迈新生物工程公司;多聚甲醛、柠檬酸、丙

酮、磷酸二氢钠、氯化钠、精蛋白胰岛素一核糖核酸

酶A溶液等试剂购自广州化学试剂公司。2.2分组及给药2.2.1治疗组给予活血祛瘀中药汤剂(桃仁159,

红花15g,赤芍15g,地龙15g,川牛膝20g,莪

术15g等),每日1剂,加水800mL,煎成300

mL,分两次温服;并予本院制剂消瘀灵丸(由《金

匮》大黄廑虫丸改制而成,具有活血祛瘀之功),

每次4~6g,每日3次。服药期间不用任何有效西药。

2.2.2正常对照组为本校健康在校研究生志愿者,

不给予任何药物干预。

2.3TUNEL法检测骨髓单个核细胞(PMNc)凋亡2.3.1单个核细胞分离取淋巴细胞分层液4mL置

人干燥离心管中,用吸管吸取抗凝骨髓液2mL,在

距离分层液上1cm处徐徐沿管壁加入,使淋巴细胞

分层液叠于骨髓液上。3000r/min离心,20~25

min,离心后绝大多数PMNC悬浮于血浆与淋巴细胞

分层液之间,用吸管吸出PMNC,移人另一干燥离心

管中,加入5倍以上体积PBS,1000r/min离心,

5~10min×3次,在显微镜下计数,制成1×106/L的单个核细胞悬液。

2.3.2细胞固定PMNC悬液加入1%多聚甲醛冰

浴15min,以3000r/min×5min离心,弃上清,用

PBS洗两次,制成0.5mL的PBS细胞悬液,试管中

加入5mL冷70%乙醇,再加入0.5mL的细胞悬

液,冰浴放24h,再进行细胞凋亡的检测。

2.3.3细胞凋亡检测取1×106/LPMNC悬液,置

1500r/min×8min离心,弃乙醇。加1mLWash缓

冲液,洗两次。加DNA标记液50斗L,混匀,正常对照组省去该步骤。37℃温浴60min,每15rain摇

匀1次。各管加1mLRinse缓冲液,1500r/min×5min离心,弃上清,洗两次。加入0.5mLPI/Rnase

ASolution(精蛋白胰岛素/核糖核酸酶A溶液)。室温避光反应30min,3h内上机检测。

2.4Bcl一2、p53免疫组化检测2.4.1细胞涂片的制作将分离到的PMNC用PBS

稀释,调整细胞浓度为106/mL,均匀涂片,室温晾

干,4℃丙酮固定10min,置4℃冰箱保存。

2.4.2免疫组织化学染色检测Bcl一2,p53涂片用