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黄姜花组培快繁技术潘学峰;张夏莲【摘要】以黄姜花的笋芽为外植体,研究了外植体的消毒、丛生芽的增殖及生根培养等关键步骤的配方.结果表明:1)利用ρ=1 g·L-1的升汞对外植体进行消毒的最佳时间为12 min;2)黄姜花丛生芽增殖的较优配方为:3/4 MS +6-BA 3.5 mg·L-1+水解酪蛋白1 000 mg· L-1+蔗糖30g· L-1,继代周期25 d,增殖倍数为5.83;3)1/2 MS +NAA 0.5 mg·L-1的生根培养基效果最好,平均生根数达9.17条,平均根长2.73 cm,植株健壮;4)将试管苗移裁在V河砂∶V表土=1∶1的基质中,25 d后成活率可达91.67％,植株生长良好.【期刊名称】《热带生物学报》【年(卷),期】2013(004)002【总页数】5页(P189-193)【关键词】黄姜花;块茎;组培快繁【作者】潘学峰;张夏莲【作者单位】海南大学农学院,海南海口,570228;海口市秀英区东山镇人民政府,海南海口571154【正文语种】中文【中图分类】Q944.6黄姜花(Hedychium flavum Roxb.)是姜科(Zingiberaceae)姜花属(Hedychium)植物，分布于广西、贵州、云南、四川、西藏等地，性喜高温、高湿、半隐蔽的环境［1］。
黄姜花质地晶莹，白底黄斑，花形美丽，有令人愉悦的芳香［2］。
花的挥发油可作香料，具有芳香健胃的功能［3］。
其观赏价值高，是一种很好的园林观赏植物，切下后瓶插可持续开放5～6 d，是极有育种前途的芳香型切花［2］。
黄姜花传统上主要靠播种和分株繁殖［4］，分蘖系数非常低，繁殖速度缓慢，远远不能满足商品化生产的需求，因此，开展组培快繁很有必要。
我国具有丰富的姜科植物资源，其观赏价值引起了国内专家学者的关注与重视［5－7］。
许多国内学者对姜科植物的组培快繁进行过研究［8－11］，但目前尚未见有黄姜花组培快繁的研究报道。
胡萝卜悬浮细胞系及高效再生系统的建立
周玲艳;秦华明
【期刊名称】《安徽农业科学》
【年(卷),期】2006(034)016
【摘要】以胡萝卜块根为材料诱导愈伤组织,并建立悬浮细胞系,然后将悬浮细胞和愈伤组织分别转入分化培养基进行分化培养.结果表明,胡萝卜块根形成层愈伤组织诱导率为100%,最佳激素种类和用量为2,4-D 0.1 mg/L;根据外观可将愈伤组织大致分为4种类型,Ⅰ型是直接建立悬浮细胞系的良好来源,Ⅲ型经继代培养后可用于悬浮细胞系的建立;静止法是胡萝卜悬浮细胞系简单而有效的继代方法;胡萝卜愈伤组织分化的最佳培养基是MS或B5基本培养基,MS培养基上的再生苗可直接生根,而B5培养基上的再生苗在原培养基上很难生根,需要转移到MS培养基上才能生根.
【总页数】3页(P3929-3931)
【作者】周玲艳;秦华明
【作者单位】仲恺农业技术学院生命科学学院,广东,广州,510225;暨南大学理工学院,广东,广州,510632
【正文语种】中文
【中图分类】Q943.1
【相关文献】
1.鸡骨草悬浮细胞系建立与植株再生研究 [J], 邓旭;张慧;黄艳宁
2.郑麦9023胚性悬浮细胞系的建立和植株再生 [J], 李冬兵;吕桂珍;牛洪斌;尹钧
3.生姜离体叶片愈伤组织悬浮细胞系建立与植株再生 [J], 王磊;曹逼力;徐坤
4.疣粒野生稻胚性悬浮细胞系的建立及其原生质体的培养和植株再生 [J], 蔺忠龙;白现广;吕广磊;李维薇;殷富有;黄兴奇;程在全
5.‘哲引3号’ב北京杨’杂交子代悬浮细胞系的建立和植株再生 [J], 黄振;李赟;李媛;王沛琦;康向阳
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黄精的组织培养与植株再生李莺;罗明志;罗雯;郭春林;刘艳妮【期刊名称】《西北农业学报》【年(卷),期】2011(020)008【摘要】研究离体条件下黄精不同外植体的愈伤组织诱导及其植株再生.结果表明,黄精的根茎、嫩茎及幼嫩的组培叶片在MS+6-BA 2.0 mg·L-1 +2,4-D 1.0mg· L-1和MS+6-BA 2.0 mg·L-1 +NAA 1.0mg·L-1的培养基中均诱导产生愈伤组织,并在MS+6-BA 2.0 mg·L-1 +2,4-D2.0mg· L-1和MS+6-BA2.0 mg·L-1+ NAA 2.0 mg·L-1的培养基上继代增殖良好.黄精愈伤组织在MS+6-BA 3.0 mg· L-1+IAA1.0mg· L-1的培养基上可诱导出不定芽,出芽率达66.33％,平均每块愈伤组织可分化出5.2个芽.试管苗在MS附加IAA 0.5 mg· L-1培养基上诱导生根,生根率达86.67％.【总页数】4页(P159-162)【作者】李莺;罗明志;罗雯;郭春林;刘艳妮【作者单位】西安文理学院生命科学系,西安 710065;西安文理学院生命科学系,西安 710065;西安文理学院生命科学系,西安 710065;西安文理学院生命科学系,西安710065;陕西师范大学生命科学学院,西安 710065【正文语种】中文【中图分类】Q813.1+2【相关文献】1.多花黄精不定芽诱导及植株再生 [J], 程强强;罗嗣义;刘相凤;肖复明;2.多花黄精不定芽诱导及植株再生 [J], 程强强;罗嗣义;刘相凤;肖复明3.多花黄精植株再生及繁殖研究 [J], 吴宇函; 俞涵曦; 韩晓文; 吴佩珂; 漆红兵; 何碧珠4.红豆草组织培养及植株再生体系的优化 [J], 康红霞;朱永红;赵萌;贾姝;伍国强5.大豆体细胞组织培养再生植株的研究——Ⅰ 培养基、基因型、植物激素对诱导大豆再生植株的影响 [J], 隋德志;王连铮;尹光初;雷勃君因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
罗勒大型变种——千层塔植株再生体系的建立陈娜;周庆;陶兴魁【摘要】探索罗勒组培快速繁殖技术,筛选植株再生体系的最佳培养条件,建立罗勒的高效植株再生体系.方法以罗勒种子为研究对象,采用不同的培养基开展丛生芽的诱导、继代增殖和生根培养.结果采用酒精和升汞对罗勒种子进行消毒,可获得无菌的试管苗.种子萌发的适宜培养基为MS培养基,试管苗增殖的适宜培养基为MS+6-BA(0.5 mg/L)+NAA(0.05 mg/L).在此过程中,试管苗极易玻璃化,应严格控制激素浓度,增大培养基的硬度.生根的最佳培养基为1/2MS+6-BA(0.5mg/L)+NAA(0.05 mg/L)+IBA(0.05mg/L).结论建立了罗勒的植株再生体系,筛选出罗勒种子消毒、萌发、试管苗增殖和生根的最佳培养基.【期刊名称】《铜仁学院学报》【年(卷),期】2017(019)006【总页数】4页(P15-18)【关键词】罗勒;组织培养;培养基;萌发;增殖;再生体系【作者】陈娜;周庆;陶兴魁【作者单位】亳州职业技术学院,安徽亳州 236800;安徽中医药大学,安徽合肥236800;宿州学院,安徽宿州 234000【正文语种】中文【中图分类】S511罗勒(Ocimum basilicum L.)为唇形科罗勒属一年生草本植物，全株具有独特的香味[1]。
罗勒味辛、性温，以其全草和种子入药。
《中药大辞典》谓其有疏风解表、化湿和中、强心安神、行气活血、解毒消肿、散瘀止痛等功效，主治感冒头痛、咳嗽发热、中暑、食积不化、月经不调、跌打损伤等。
近年来，用于治疗血栓、肿瘤、白内障及不孕症方面，效果显著[2]。
目前，国内外学者开展了关于罗勒精油提取方法和药理学[3-4]、临床应用等方面的研究。
本课题组成员刘超祥[5]的研究表明：罗勒的干燥叶片中含有的大量酚类和黄酮类化合物，具有良好的抗氧化作用。
在食品加工领域中，中国只有潮州和汕头地区当作香料使用，而在欧美国家中的应用较多，如制成罗勒酱，软饮料，米酒等[6]。
植物组织(细胞)培养在中药有效成分合成中的应用
傅经国;吴鸣建;赵天增;张海艳;陈涛
【期刊名称】《世界核心医学期刊文摘：眼科学分册》
【年(卷),期】2004(000)002
【摘要】<正> 0 引言中药是我国的瑰宝,据中药普查结果,我国仅药用高等植物就有约10000余种,传统中药材中80％以上为野生资源。
然而,由于无计划的盲目挖掘开采,不仅使野生自然资源日益减少,甚至导致物种灭绝,而且严重破坏了生态环境。
因此,这个问题已经引起人们的高度重视,寻找能够彻底改变这种局面的有效途径是十分必要的。
近年来利用植物组织(细胞)培养生产次生代谢产物的研究得到极大的发展,并且显示出巨大的发展
【总页数】7页(P1056-1061,1076)
【作者】傅经国;吴鸣建;赵天增;张海艳;陈涛
【作者单位】河南省科学院化学所;郑州大学;陕西省脂质体工程技术研究中心河南郑州 450002 陕西省脂质体工程技术研究中心陕西西安 710075;河南郑州450003;河南郑州 450002;陕西西安 710075
【正文语种】中文
【中图分类】R284
【相关文献】
1.浅谈植物组织培养和动物细胞培养中的碳源 [J], 周会俊
2.人工合成除草剂2,4-D在植物组织培养中的应用进展 [J], 刘振林;潘玉霞;杨盼盼;
杨俊明
3.植物组织培养技术的应用和我省的植物组织培养工作 [J], 符书贤
4.高活性细胞激动素TDZ在植物组织培养中的应用 [J], 王关林;方宏筠;那杰
5.从印度植物组织培养的应用谈我国植物组织培养的产业化 [J], 徐礼根;夏军;徐程;陈云龙
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黄姜(Dioscorea zingiberensis)，又名盾状叶薯蓣，俗名火头根，薯蓣科薯蓣属的野生植物，其根状茎内有高含量的薯蓣皂素，是迄今为止所发现的皂素含量最高的植物药源种之一。
皂素是合成甾体类激素药物的重要原料，具有消炎、避孕、镇痛、麻醉、杀虫等功效，在医药上应用十分广泛，其需要量极大。
因为他是雌雄异株，有性繁殖会导致后代性状发生变异，其无性繁殖可以保持后代性状的稳定，但年繁殖率仅为3～6倍，且生产中发现了种性退化、皂素含量不稳定、季节性强及用种量大等情况，不能快速推广黄姜的优良单株或品种。
组织培养技术是快速繁殖黄姜优良单株的有效方法，对优良品种能提纯复壮和快速育苗。
1材料的选取与接种从盆栽于室内的(室外的污染极高，须经催芽后选取)生长旺盛的植株上剪下新发出的顶芽或嫩茎段，用中性洗涤剂浸泡，并不断摇动，然后用自来水冲洗数遍，再用蒸馏水洗2遍后，以0.01％高锰酸钾灭菌10min，无菌水冲洗1遍；然后在超净工作台上用0.1％HgCl2灭菌4min，无菌水洗4遍，以无菌滤纸吸干水后，用剪刀剪成0.5cm的茎段(每段都带一个芽或顶芽)接种在诱导培养基：MS+6-BA 2.0mg/L+IAA 0.2mg/L上。
培养温度26—28ºC，光照10h/d，光照度2000LX。
2诱导与增值接种在诱导培养基上的外植体，20d以后从原来的腋芽处开始长出1—2个小芽，底部长出褐色愈伤组织。
约20d后，新长出的芽长至2-3个叶芽的小苗，底部的愈伤组织长成小球形，成为底部带愈伤组织的小苗，即可转入壮苗培养基：MS+NAA 5.0mg/L+6-BA0.5mg/L上培养。
也可以把小苗的顶芽剪下继续接种在诱导培养基上，让其再诱导芽和愈伤组织。
可以将愈伤组织接于MS+KT0.2mg/L+24-D 4.0mg/L培养基上，经过40d后长出2-3个芽。
半个月以后便长出2-3棵小苗，然后将小苗剪成单株，接在壮苗培养基上培养。
专利名称：一种姜黄组织培养快速繁殖方法
专利类型：发明专利
发明人：王晓峰,李刚,韦坤华,梁莹,肖冬,王一诺,李林轩,李翠,缪剑华
申请号：CN201510918231.5
申请日：20151211
公开号：CN105557513A
公开日：
20160511
专利内容由知识产权出版社提供
摘要：一种姜黄组织培养快速繁殖方法，包括以下步骤：取姜黄地下块茎作为外植体，清洗、消毒、再清洗，并吸去块茎表面水，将外植体置于MS发芽培养基中诱导发芽，得到无菌试管苗；将所述试管苗置于MS丛芽培养基中繁殖培养，获得丛生芽；将所述丛生芽置于MS壮苗培养基中培养，获得健壮植株；将所述健壮植株移到1/2MS生根培养基中生根培养，得到完整带根苗；将完整带根苗炼苗6-10d后，先移植于沙床生长27-33d，再移栽到大田。
采用本发明所述的培养方法得到丛生芽的增殖系数为10～15倍，获得组培苗生根率100％，移栽苗床成活率95％以上，有效解决了姜黄工厂化育苗的问题。
申请人：广西壮族自治区药用植物园
地址：530023 广西壮族自治区南宁市兴宁区长堽路189号
国籍：CN
代理机构：广西南宁公平专利事务所有限责任公司
代理人：黄永校
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姜科植物染色体制片方法的优化
涂红艳;张爱玲;肖望;陈丹;曾海敏
【期刊名称】《热带作物学报》
【年(卷),期】2016(037)005
【摘要】以白姜花根尖为材料,通过预处理、固定、解离和染色等步骤,对染色体制片技术进行改良,得到了一种简单高效的可用于植物染色体数目分析的制片技术,主要步骤包括“取材-酸解离-低渗-染色-压片”.采用改良技术得到的制片细胞膨大、染色体分散、形态清晰、分色良好.用该方法对白姜花、金姜花、所罗门姜黄和红艳郁金等的体细胞染色体数目进行检测,结果分别如下:白姜花2n=34,金姜花
2n=34,所罗门姜黄2n=63,红艳郁金2n=49.
【总页数】5页(P1017-1021)
【作者】涂红艳;张爱玲;肖望;陈丹;曾海敏
【作者单位】广东第二师范学院生物与食品工程学院,广东广州 510303;广东第二师范学院生物与食品工程学院,广东广州 510303;广东第二师范学院生物与食品工程学院,广东广州 510303;广东第二师范学院生物与食品工程学院,广东广州510303;广东第二师范学院生物与食品工程学院,广东广州 510303
【正文语种】中文
【中图分类】Q949.718.33
【相关文献】
1.十种姜科植物的染色体数目研究 [J], 李维秀;陈进
2.翅果油树组织培养染色体制片方法的探讨及其染色体稳定性研究 [J], 杜贞;武银玉;李秀华;闫桂琴
3.棉花组织培养染色体制片方法的探讨及其染色体稳定性研究 [J], 张宝红;丰嵘
4.木薯根尖染色体制片方法的优化 [J], 王超;王婧菲;庄南生;王英
5.橡胶树叶片染色体制片方法的优化 [J], 高和琼;王英;金鸽;邱海燕;庄南生
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利用辣木茎段建立植株再生体系的研究王洪峰;韦强【摘要】选择印度改良辣木的幼苗茎段,经外植体消毒后,进行了不定芽初代诱导、继代培养、生根诱导和生根苗移植试验,结果表明:最适不定芽初代诱导培养基为MS+6BA1mg/L+卡拉胶5g/L,+糖30g/L,继代培养基为MS+6BA0.4mg/L+NAA0.2mg/L+卡拉胶5g/L+糖30g/L,生根培养基为1/2MS+IBA0.4mg/L+NAA0.2mg/L+卡拉胶7g/L+糖20g/L,最适的生根瓶苗移栽基质为黄心土40%+泥炭60%,并对微繁体系建立过程中继代苗的玻璃化、生根苗黄化及愈伤头过大、移栽过程中的管理等问题进行了讨论.【期刊名称】《浙江林业科技》【年(卷),期】2008(028)005【总页数】4页(P40-43)【关键词】辣木;植株再生;组织培养;再生体系【作者】王洪峰;韦强【作者单位】广东省林业科学研究院,广东,广州,510520;中国科学院华南植物园,广东,广州,510520【正文语种】中文【中图分类】S722.3+7辣木（Moringa oleifera）为辣木科（Moringaceae）辣木属（Moringa）树种，又称鼓槌树，多年生热带乔木，原产印度北部。
辣木因其叶、果的优良食用和药用价值，果实提取的植物油具独特的工业用途，被世界誉为“奇迹树”。
辣木人工种植较早在我国台湾，自20世纪90年代开始在我国海南、福建和广东等地引种种植。
辣木种子目前尚比较昂贵，通过组织培养建立植株再生体系，是解决辣木种苗供应的有效途径[1]。
本研究选择印度改良辣木（PKM1）幼苗茎段，通过无菌芽诱导，探索不定芽继代和生根的适宜培养条件，开展苗木移栽试验，建立了辣木的植株再生体系，可用于苗木大量的繁育。
1.1 试验材料和处理将印度改良辣木种子（50粒）播于经1‰KMnO4消毒的河砂中进行育苗，播种12 d后，幼苗茎段高5 cm时，剪取茎段中部作为外植体，长度2 cm；先用清水浸泡12 h，再用2％次氯酸钠浸泡消毒5 min，无菌水漂洗后放入无菌操作台；在无菌操作台上，先用75％酒精震荡漂洗1 min，酒精灭菌后的外植体用无菌水冲洗3次后，将0.1％升汞倒入装有外植体的瓶中，以浸泡的方式静置3 min，用无菌水冲洗2次；再倒入0.1％升汞，以振荡的方式进行灭菌处理2 min，最后用无菌水冲洗5次[2,3]。
