双元表达载体系统
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Petduet1和pacycduet是两种常用的双元表达系统,用于原核和真核表达重组蛋白。
它们都包含了两个不同的多克隆位点,可以用于插入感兴趣的基因并进行表达。
Petduet1使用了T7和lacUV5启动子,pacycduet则使用了T7和CMV启动子。
以下是关于这两种系统的详细介绍:Petduet1和pacycduet系统的结构Petduet1和pacycduet系统的DNA载体结构大体相似,都包括了多个重要元件:双选择标记位点(Ampicillin和Chloramphenicol)、启动子(T7和lacUV5/CMV)、His标签、HA标签、TEV位点、定向载体和复制起点等。
Petduet1由5429bp长的质粒构成,其中含有lacIq基因的启动子和T7启动子,并通过MCS1和MCS2多克隆位点构建了重组基因组成,方便插入两个不同的重组蛋白基因。
Petduet1还包含了His标签和HA标签,对于蛋白的纯化和检测非常有帮助。
Pacycduet的质粒长度为5726bp,包含了Ampicillin和Chloramphenicol的双选择标记位点,T7和CMV的启动子,His标签和HA标签。
与Petduet1类似,pacycduet也有MCS1和MCS2多克隆位点,方便插入两个感兴趣的基因。
pacycduet还包含了TEV位点,方便进行蛋白纯化和切割。
Petduet1和pacycduet系统的应用这两种双元表达系统可以广泛应用于原核和真核系统中,用于表达多种蛋白。
研究表明,它们不仅可以同时表达两个重组蛋白,而且还可以在同一细胞中进行蛋白融合。
在原核表达系统中,Petduet1和pacycduet系统可以在大肠杆菌中高效表达重组蛋白,提供了一种简单、快速的蛋白制备方法。
而在真核表达系统中,它们同样可以在哺乳动物细胞中表达重组蛋白,为疾病治疗和生物医药领域提供了重要的工具。
总结Petduet1和pacycduet是两种常用的双元表达系统,具有结构简单、应用广泛的特点。
双元载体的运行原理【知识文章】双元载体的运行原理1. 引言双元载体是一种重要的科学概念,它在许多领域中有着广泛的应用。
它的运行原理是我们理解双元载体的关键。
本文将深入探讨双元载体的运行原理,以帮助读者更好地理解该概念。
2. 双元载体的定义和基本概念在讨论双元载体的运行原理之前,首先需要了解其基本定义和概念。
双元载体是指具有两种截然不同特性的物质,可以在其内部同时存在并进行相互作用。
其中一种特性通常用来传递信息或能量,而另一种特性则起到支持和稳定的作用。
3. 双元载体的运行原理之深度和广度评估深度评估是对双元载体运行原理的内部机制进行全面而深入的研究。
广度评估则是对双元载体在不同领域和应用中的广泛性进行考察。
通过深度和广度评估,我们可以获得对双元载体运行原理的更全面而深刻的理解。
4. 双元载体的内部机制双元载体的运行原理可以通过其内部机制来解释。
一种常见的双元载体是半导体,其中一种特性是传导电子的能力,而另一种特性是创建一个禁带,以控制电流的流动。
传输信息的载体是电子,在半导体材料中通过禁带来实现对电子的控制和传输。
这种内部机制是双元载体运行的基础。
5. 双元载体的应用双元载体在许多领域中都有广泛的应用。
在电子技术领域,双元载体是构建集成电路的重要组成部分,通过控制电子的传导和禁带来实现信息的传输和处理。
在光电子学领域,双元载体则用于光电转换和传感器技术。
双元载体还在材料科学、生物医学、能源等领域中得到广泛应用。
6. 双元载体的优势和挑战虽然双元载体具有广泛的应用前景,但也面临着一些挑战。
双元载体的制备过程和性能控制是一个复杂的问题,需要满足高度纯净度和精确的结构要求。
双元载体的性能受到外界环境的影响,如温度、湿度等。
对双元载体的优化和稳定性改进是未来的研究重点。
7. 总结和展望双元载体作为一种重要的科学概念,在许多领域中都起到了重要的作用。
对其运行原理的深入理解可以帮助我们更好地应用和开发双元载体的潜力。
双元载体的工作原理
双元载体是一种智能材料,它具有双重功能,能够在不同环境条件下实现不同的工作原理。
这种材料通常由两种或更多种不同的组分组成,每一种组分都对应一种工作模式。
双元载体的工作原理基于其组分之间的相互作用。
一种常见的双元载体是由磁性材料和热敏材料组成。
在低温下,磁性材料的磁性强,可以用于磁性存储等领域;而在高温下,磁性材料的磁性会减弱,此时热敏材料的性能会被激活,可以用于温度传感器等应用。
双元载体的工作原理还可以通过电场、光照、压力等外部条件来实现切换。
例如,一种由铁电材料和光敏材料组成的双元载体,可以通过外加电场来实现铁电材料的极化,从而改变其电学性质;同时,当受到光照时,光敏材料会被激活,其光电性能会发生变化。
双元载体的工作原理基于材料之间的相互作用和相变。
通过调控外部条件或刺激,可以使其中一种材料起主导作用,从而实现不同的功能和性能。
这种智能材料的应用潜力巨大,可以在各种领域中发挥作用,如传感器、储能器件、智能显示器等。
总之,双元载体的工作原理是基于不同材料之间的相互作用和相变,
通过调控外部条件实现不同功能和性能。
这些智能材料的应用前景广阔,有望为各个领域带来革命性的发展。
双元表达载体系统双元表达载体系统主要包括两个部分:一部分为卸甲Ti质粒,这类Ti质粒由于缺失了T-DNA 区域,完全丧失了致瘤作用,主要是提供Vir基因编码表达Vir蛋白的功能,VIR基因编码的virD2蛋白相当于反式作用元件,能够识别农杆菌转运DNA(T-DNA)两端24bp序列,进而将T-DNA以单链的形式切割下来,同时,VIR基因编码的virE2能够与单链T-DNA结合,形成T-复合物,在核定位序列的作用下,经过宿主细胞T4SS转运体系进入宿主细胞质。
之后便是宿主细胞的转运过程,激活处于反式位置上的T-DNA的转移。
另一部份是微型Ti质粒(Mini-Ti plasmid),它在T-DNA左右边界序列之间提供植株选择标记如NPTII基因以及Lac Z基因等。
双元载体系统的构建的原理是Ti质粒上的Vir基因可以反式激活T-DNA 的转移。
与共整合载体所不同的是,它不依赖两个质粒之间的同源序列,不需要共整合过程就能在农杆菌内独立复制。
原理1.一般植物表达载体是成套使用的,一套中有两个,一个是带有可以供插入外源表达基因的MCS和筛选标签的融合蛋白(通常是GFP或Gus)的普通载体。
另一个载体就是双元载体(binary-vector)了。
通常我们是先将外源基因插入带有筛选标记的载体,然后将此载体上的35S promoter-expression gene-gfp这段全部切下,然后构建亚克隆,其过程就是将上述的片断插入双元载体的LB和RB之间,其插入方向是可以任意的。
然后将带有35S promoter-expression gene-gfp的双元载体转化农杆菌,在通过农杆菌转染植物,最后可以通过农杆菌特有的ti-DNA转染机制,将双元载体的LB和RB之间的片段融合进宿主的基因组上。
我以前用的是pCAMBIA3101+pUC-35S-GFP以及pZPZ211和pAA等2.双元表达载体系统主要包括两个部分3.一部分为辅助Ti质粒,这类Ti质粒由于缺失了T-DNA 区域,完全丧失了致瘤作用,主要是提供ir基因功能,激活处于反式位置上的T-DNA的转移。
双元表达载体系统主要包括两个部分:
一部分为卸甲Ti质粒,这类Ti质粒由于缺失了T-DNA 区域,完全丧失了致瘤作用,主要是提供Vir基因编码表达Vir蛋白的功能,VIR基因编码的virD2蛋白相当于反式作用元件,能够识别农杆菌转运DNA(T-DNA)两端24bp 序列,进而将T-DNA以单链的形式切割下来,同时,VIR基因编码的virE2能够与单链T-DNA结合,形成T-复合物,在核定位序列的作用下,经过宿主细胞T4SS转运体系进入宿主细胞质。
之后便是宿主细胞的转运过程,激活处于反式位置上的T-DNA的转移。
另一部分则是含有T-DNA的微型质粒,它带有目的基因和大肠杆菌及农杆菌复制的起始位点,实际上是一种分子质量较小的大肠杆菌和农杆菌的穿梭载体。
双元载体系统的构建的原理是Ti质粒上的Vir基因可以反式激活T-DNA 的转移。
MSTN RNAi双元表达载体构建及效果试验
胡兰;隋世慧;吴丹
【期刊名称】《中国兽医杂志》
【年(卷),期】2013(049)007
【摘要】为了建立有效抑制MSTN基因表达的方法,本试验利用基因克隆技术构建MSTN RNAi双元表达载体,并利用脂质体介导转染成肌细胞、用SDS-PAGE和Western blottingf法检测蛋白质的表达.试验结果表明,以TA载体为克隆载
体,pHANNIBAL为中间载体,可成功构建pEGFP-N1-M1-M2双元表达载体,将其转染成肌细胞48h后,该双元表达载体可明显抑制成肌细胞MSTN基因的表达.【总页数】4页(P11-13,17)
【作者】胡兰;隋世慧;吴丹
【作者单位】沈阳农业大学畜牧兽医学院,辽宁沈阳110866;沈阳农业大学畜牧兽医学院,辽宁沈阳110866;沈阳农业大学畜牧兽医学院,辽宁沈阳110866
【正文语种】中文
【中图分类】D852.2
【相关文献】
1.MSTN RNAi双元表达载体对成肌细胞增殖及分化的影响 [J], 吴丹;胡兰
2.草莓乙烯受体Etr1基因RNAi植物表达载体构建 [J], 唐霞;张帅;汪丽;马俊莲
3.Prohibitin特异性 MiR RNAi表达载体构建及其干扰效果测定 [J], 郭东升;王新兴;刘晓华;战锐;袁聚祥;钱令嘉
4.siRNA真核表达载体构建及对细胞MSTN基因抑制的研究 [J], 马晓林;刘晨曦;
牛志刚;唐森;罗淑萍;刘磊;刘明军
5.油桐DGAT2基因克隆及其RNAi双元表达载体构建 [J], 徐玲娜;汪阳东;陈益存;张姗姗
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克隆载体
基因间隔区(intergenic region, IG 区)基因II与基因IV之间存在一段507bp的基因间隔区,内含有复制起始位点,是实施改造、构建人工载体的重点区域。
② IG区内只有一个Bsu I 切点。
(2)加入酶切位点,在IG区内加入单一内切酶位点。
M13mp1 在IG区内插入一个大肠杆菌的LacZ’(-肽序列)。
使克隆的DNA片段以特定单链的形式输出受体细胞外,M13重组分子筛选简便,被M13噬菌体感染的受体细胞生长缓慢,形成混浊斑,易于辨认挑选。
而且重组分子越大,混浊斑的混浊度亦越大但M13-DNA载体的最大缺陷是装载量小,只有 kb
考斯质粒是一类人工构建的含有λ-DNA cos序列和质粒复制子的的特殊类型载体。
能像
-DNA那样进行体外包装,并高效转染受体细胞;能像质粒那样在受体细胞中自主复制具有较高容量的克隆能力:45kb;具有与同源性序列的质粒进行重组的能力粘粒(cosmid)是带有 cos 序列的质粒。
cos序列是噬菌体 DNA 中将DNA 包装到噬菌体颗粒中所需的 DNA 序列。
黏粒的组成包括质粒复制起点(colE1),抗性标记(amp r),cos 位点,因而能象质粒一样转化和增殖。
克隆的最大 DNA 片段可达 45kb 。
有的粘粒载体含有两个cos 位点,在某种程度上可提高使用效率。
质粒载体总结
λ噬菌体载体
表达载体。
双元表达载体系统双元表达载体系统主要包括两个部分:一部分为卸甲Ti质粒,这类Ti质粒由于缺失了T-DNA 区域,完全丧失了致瘤作用,主要是提供Vir基因编码表达Vir蛋白的功能,VIR基因编码的virD2蛋白相当于反式作用元件,能够识别农杆菌转运DNA(T-DNA)两端24bp序列,进而将T-DNA以单链的形式切割下来,同时,VIR基因编码的virE2能够与单链T-DNA结合,形成T-复合物,在核定位序列的作用下,经过宿主细胞T4SS转运体系进入宿主细胞质。
之后便是宿主细胞的转运过程,激活处于反式位置上的T-DNA的转移。
另一部份是微型Ti质粒(Mini-Ti plasmid),它在T-DNA左右边界序列之间提供植株选择标记如NPTII基因以及Lac Z基因等。
双元载体系统的构建的原理是Ti质粒上的Vir基因可以反式激活T-DNA 的转移。
与共整合载体所不同的是,它不依赖两个质粒之间的同源序列,不需要共整合过程就能在农杆菌内独立复制。
原理1.一般植物表达载体是成套使用的,一套中有两个,一个是带有可以供插入外源表达基因的MCS和筛选标签的融合蛋白(通常是GFP或Gus)的普通载体。
另一个载体就是双元载体(binary-vector)了。
通常我们是先将外源基因插入带有筛选标记的载体,然后将此载体上的35S promoter-expression gene-gfp这段全部切下,然后构建亚克隆,其过程就是将上述的片断插入双元载体的LB和RB之间,其插入方向是可以任意的。
然后将带有35S promoter-expression gene-gfp的双元载体转化农杆菌,在通过农杆菌转染植物,最后可以通过农杆菌特有的ti-DNA转染机制,将双元载体的LB和RB之间的片段融合进宿主的基因组上。
我以前用的是pCAMBIA3101+pUC-35S-GFP以及pZPZ211和pAA等2.双元表达载体系统主要包括两个部分3.一部分为辅助Ti质粒,这类Ti质粒由于缺失了T-DNA 区域,完全丧失了致瘤作用,主要是提供ir基因功能,激活处于反式位置上的T-DNA的转移。
双元植物表达载体pCAMBIA2300-HaBADH-HaCMO的构建及转化石磊;周晓燕;甘晓燕;马洪爱;宋玉霞【摘要】【目的】构建双元植物表达载体,通过遗传转化提高植物的抗逆能力。
【方法】将从超旱生、耐盐植物梭梭(Haloxylon ammodendron)中克隆得到的HaBADH基因,定向导入植物表达载体pCAMBIA2300-35S-OCS中,以HaCMO替换pCAMBIA2300-HaBADH中的抗性基因NPTⅡ,构建双元植物表达载体pCAMBIA2300-HaBADH-HaCMO,并通过农杆菌介导法将其转入粳稻品种"优引三号",对所获得的转基因植株进行PCR检验。
【结果】成功构建了双元植物表达载体pCAMBIA2300-HaBADH-HaCMO,并获得了携带有pCAMBIA2300-HaBADH-HaCMO的水稻阳性植株5株,经PCR检测,转入成功。
【结论】将梭梭抗逆基因HaBADH和HaCMO构建到一个表达载体中,并成功转化水稻,为转入基因后水稻植株内甜菜碱合成和积累过程的深入分析提供了条件。
%【Objective】The study was done to construct a binary expression vector to improve stress-tolerance of target plants by genetic transformation.【Method】 We introduced HaBADH directly into plant expression vector pCAMBIA2300-35S-OCS,and replaced NPTⅡ with HaCMO,and constructed a binary expression vector.HaBADH and HaCMO were both cloned by our laboratory and pCAMBIA2300-HaBADH-HaCMO was transformed into rice Youyin-3 by Agrobacterium-mediated transformation and transgenatic plants were detected with PCR.【Result】 We constructed the plant binary expression vector pCAMBIA2300-HaBADH-HaCMO successfully,and obtained 5 transgenic rice plants which contained the vector by PCRanalysis.【Conclusion】 This study introduces HaBADH and HaCMO to pCAMBIA2300-35S-OCS,and constructs a binary expression vector pCAMBIA2300-HaBADH-HaCMO,and transforms it to rice,which prepares for study synthesis and accumulation of glycine betaine in transgenetic rice.【期刊名称】《西北农林科技大学学报(自然科学版)》【年(卷),期】2012(040)006【总页数】8页(P210-216,223)【关键词】梭梭;甜菜碱醛脱氢酶;胆碱单加氧酶【作者】石磊;周晓燕;甘晓燕;马洪爱;宋玉霞【作者单位】宁夏农业生物重点实验室,宁夏银川750002;宁夏农业生物重点实验室,宁夏银川750002 宁夏大学生命科学学院,宁夏银川750021;宁夏农业生物重点实验室,宁夏银川750002;宁夏农业生物重点实验室,宁夏银川750002;宁夏农业生物重点实验室,宁夏银川750002【正文语种】中文【中图分类】Q782在盐渍、干旱等渗透胁迫情况下,许多高等植物会在细胞内大量合成并积累一些有机渗透调节物质,如山梨醇、甘露醇、脯氨酸、甜菜碱等,以提高自身抵抗盐渍、干旱等胁迫的能力。
双元表达载体系统双元表达载体系统主要包括两个部分:一部分为卸甲Ti质粒,这类Ti质粒由于缺失了T—DNA区域,完全丧失了致瘤作用,主要是提供Vir基因编码表达Vir蛋白的功能,VIR基因编码的virD2蛋白相当于反式作用元件,能够识别农杆菌转运DNA (T-DNA)两端24bp序列,进而将T-DNA以单链的形式切割下来,同时,VIR基因编码的virE2能够与单链T-DNA结合,形成T-复合物,在核定位序列的作用下,经过宿主细胞T4SS转运体系进入宿主细胞质。
之后便是宿主细胞的转运过程,激活处于反式位置上的T—DNA的转移。
另一部份是微型Ti质粒(Mini-Ti plasmid),它在T—DNA左右边界序列之间提供植株选择标记女口NPTII基因以及Lac Z基因等。
双元载体系统的构建的原理是Ti质粒上的Vir基因可以反式激活T—DNA的转移。
与共整合载体所不同的是,它不依赖两个质粒之间的同源序列,不需要共整合过程就能在农杆菌内独立复制。
|原理1•一般植物表达载体是成套使用的,一套中有两个,一个是带有可以供插入外源表达基因的MCS 和筛选标签的融合蛋白(通常是GFP或Gus)的普通载体。
另一个载体就是双元载体(binary-vector )了。
通常我们是先将外源基因插入带有筛选标记的载体,然后将此载体上的35S promoter-expression gene-gfp这段全部切下,然后构建亚克隆,其过程就是将上述的片断插入双元载体的LB和RB之间,其插入方向是可以任意的。
然后将带有35S promoter-expression gene-gfp的双元载体转化农杆菌,在通过农杆菌转染植物,最后可以通过农杆菌特有的ti-DNA转染机制,将双元载体的LB和RB之间的片段融合进宿主的基因组上。
我以前用的是pCAMBIA3101+pUC-35S-GFP以及pZPZ211和pAA等2•双元表达载体系统主要包括两个部分3•一部分为辅助Ti质粒,这类Ti质粒由于缺失了T—DNA区域,完全丧失了致瘤作用,主要是提供ir基因功能,激活处于反式位置上的T—DNA的转移。
4•另一部份是微型Ti质粒(Mini-Ti plasmid),它在T—DNA左右边界序列之间提供植株选择标记如NPTII基因以及Lac Z基因等。
5•双元载体系统的构建的原理是Ti质粒上的ir基因可以反式激活T—DNA的转移。
与共整合载体所不同的是,它不依赖两个质粒之间的同源序列,不需要共整合过程就能在农杆菌内独立复制。
6•外源DNA克隆到微型Ti质粒T—DNA左右边界序列之间双元载体标签:植物双元表达载体根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)是一种革兰氏阴性土壤细菌,能够通过感染植物的伤口,将其Ti质粒上一段含有植物激素和冠瘿碱合成酶基因的DNA转移并整合至植物受体的基因组中。
Ti质粒中的2个独立的区域决定DNA转移及整合:T-DNA区(transferredDNA) 和vir区(virlenee region)。
基于Ti质粒这个结构特点,1983年Hoekema等提出双元载体策略:将去除致瘤基因的T-DNA区从Ti质粒中分离,放置在一个能在农杆菌和大肠杆菌中复制的穿梭质粒中。
这个穿梭载体称为双元Ti载体。
vir区则存在于一个已经除去T-DNA的Ti 质粒中,在农杆菌中作为辅助质粒,通过反式激活使T-DNA转移到植物细胞基因组中。
由于双元Ti载体的体积小而非常便于基因克隆操作,所以逐渐取代了其它形式的Ti载体,已成为植物基因工程中最重要的植物转化载体。
(1))病毒载体系统:植物病毒作为植物遗传转化的载体系统是由植物病毒的侵染特性所决定的。
以病毒作载体的表达系统为瞬时表达系统,其一般不能把外源荃因整合到植物细胞基因组中。
植物病毒的感染率很高,在较短时间内可获得较大的表达量。
但因以病毒为载体的表达系统每个宿主材料都要接种病毒载体,故瞬时表达系统不易起始。
作为病毒载体的病毒最好是双链DNA植物病毒。
目前己有十几种植物病毒被改造成不同类型的外源蛋白表达载体中:包括椰菜叶病毒(CaMV)、烟草花叶病毒(TMV)、更豆花叶病毒(CPMV)和马铃薯X病毒(PVX等。
其中在TMV载体中成功表达的外源病毒至少有150种以上。
(2)农杆菌质粒载体系统:质粒载体系统中最常用的质粒有:Ti质粒和Ri质粒。
r质粒存在于根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens )中,Ri质粒存在于发根农杆菌(Agxobac[erium tlhixogenis)中。
r质粒和Ri质粒在结构和功能上有许多相似之处,具有荃本一致的特性。
但实际工作中,绝大部分采用五质粒。
农杆菌质粒是一种能实现DNA转移和整合的天然系统。
r质粒有两个区域:T -DNA区〔是质粒上能够转移整合入植物受体墓因组并能在植物细胞中表达从而导致冠瘦瘤的发生,且可通过减数分裂传递给子代的区域)和Vir区(编码能够实现TDNA转移的蛋白)。
TDNA长度为12 一24kb之间,两端各有一个含25hp 重复序列的边界序列,在整合过程中左右边界序列之间的TDNA可以转移并整合到宿主细胞基因组中,研究发现只有边界序列对DNA的转移是必需的,而边界序列之间的TDNA并不参与转化过程,因而可以用外源基因将其替换。
Vir区位于TDNA以外的一个35kb内,其产物对TDNA的转移及整合必不可少。
农杆菌侵染植物首先是吸附于植物表面伤口,受伤植物分泌的酚类小分子化合物可以诱导Vir基因的表达。
Vir产物能诱导Ti质粒产生一条新的TDNA单链分子。
此单链分子从五质粒上脱离后,可以与场r产物VIRD2蛋白共价结合,并在V [RD4和V IRE等蛋白的帮助下从农杆菌进入植物细胞的染色体中。
由于野生型Ti质粒过于庞大,约200 一SOOkb,为了便于重组DNA操作,研究人员对Ti质粒进行了改造从而构建一系列合适的Ti衍生载体。
首先除掉了野生型Ti质粒TDNA区的一段DNA片段。
例如:参与植物生长素和细胞分裂素的基因(这些基因过度表达植物激素,从而破坏受体细胞和激素产量)。
此外需在T质粒上加上E. Coli复制起始位点,使得插入外源基因的r质粒在为一个穿梭载体,不但可在农杆菌中复制,而且便于在 E. Coli中重组操作与保存。
3甲植物转化载体系统(包括一元载体系统和双元载体系统)。
人们在研究中发现在T -DNA转移过程中,明r基因并不一定与T -DNA位于同一个质粒上,于是通过构建中间载体解决了T质粒不能直接导入目的基因的困难。
大肠杆菌具有能与农杆菌高度接合转移的特性,因此研究者可以将T -DNA片段克隆到大肠杆菌的质粒中,并插入外源基因,最后通过接合转移把上源基因引入到农杆菌的Ti质粒上。
这是一种把预先进行亚克隆、切除、插入或置换的T -DNA引入Ti质粒的有效方法。
带有重组TDNA的大肠杆菌质粒的衍生载体称为中间载体”(intermediate 4wtor),而接受中间费休的Ti质粒则森为等休T质粒(aevenfor T nlasmid ). 一船早知甲费体或称缴械"载体。
在这种omc-载体中已经缺失的T DNA部分被大肠杆菌的一种常用质粒pBR322取代。
这样任何适合于克隆在pBR322质粒的外源DNA片段都可以与pBR322质粒DNA同源重组,而被其整合到one 一Ti质粒载体上。
中间载体通常是多拷贝的 B. coli小质粒,这一点对下通过体外操作导入外源基因是非常必要的。
从结构特点看可分为两类中间载体:即共整合系统中间载体和双元系统中间载体。
根据两类中间载体,目前己开发出两类转化体系:一类是一元载体系统(整合载体系统),这一类载体系统由一个共整合系统中问表达载体与改造后的受体卫质粒组成。
在农杆菌内,通过同源重组将外源基因整合到修饰过的TDNA上,形成可穿梭的共整合载体,在Vir基因产物的作用下完成目的基因向植物细胞的转移和整合。
但这类方法构建困难,整合体形成率低,一般不常用。
另一类转化体系是双元载体系统,它由两个分别含有TDNA和Vir区的相容性突变Ti质粒即:微型r质粒(mini —plasmid)和辅助Ti质粒(helper Ti plastnid)构成,TDNA和Vir基因在两个独立的质粒上,通过反式激活TDNA转移到植物细胞基因组内。
微型Ti质粒就是含有TDNA边界缺失Vir 基因的r质粒,为一个广谱质粒。
它含有一个广泛寄主范围质粒的复制起始位点(oriv),同时具有选择性标记基因。
辅助质粒为含有Vir区段但TDNA缺失的突变型质粒,完全丧失了致瘤的功能。
因此相当于共整合载体系统中的卸甲质粒。
其作用是提供Vr基因功能。
激活处于反式位置上的TDNA转移。
将微型质位转入到含有辅助性Ti质粒农杆菌的途径有两条:一条是直接用纯化的微型Ti质粒转化速冻的根癌农杆菌感受态细胞;另一条途径是采用三亲交配方法,三亲交配由含微型Ti质粒的E. Coli含有助动质粒pRK2013的和含有辅助Ti质粒的农杆菌组成。
三细菌混合后产生菌问的接合转导。
pRK2013可移入农杆菌,但由于不能自主复制而被丢失,其进入含有微型Ti质粒的E. Coli后,可促进微型Ti质粒一起或分别转移入农杆菌中。
但由于PRK2013的自杀”特性,最终在农杆菌中剩下微型Ti质粒和Ti质粒双元载体,此农杆菌可直接用于植物细胞转化。
双元载体不需经过两个载体的共整合过程。
因此构建的操作过程比较简单:由于微型Ti质粒较小,并无共整合过程,因此质粒转移到农杆菌比较容易,且构建的频率较高。
另外,双元载体在外源摹因的植物转化中效率高于一元载体。