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进行血液培养是一种常见的微生物学实验操作，用于检测血液中是否存在细菌或真菌等病原微生物。
以下是一般的血液培养操作方法：
1.准备培养基和试剂：选择适用于血液培养的富营养培养基，如琼脂平板或液体培养
基。
确保培养基未受污染并符合要求。
另外，准备好其他必要的试剂和器具。
2.采集样本：从患者的静脉血液中采集样本。
严格遵守无菌操作规范，避免外界细菌
的污染。
3.接种：将采集的血液样本分别接种在含有富营养物质的琼脂平板上，或直接加入到
含有培养基的试管中。
4.培养：将接种后的琼脂平板或试管放入培养箱中，控制适当的温度和湿度，通常在
37°C 下培养24-48 小时。
5.观察：观察培养基上是否有细菌或真菌形成的典型菌落。
根据菌落的形态、颜色等
特征初步判断细菌或真菌的种类。
6.进一步鉴定：对初步检测出的菌落进行进一步的鉴定，可以进行革兰氏染色、生化
测试或分子生物学技术等。
7.结果分析：根据鉴定结果判断样本中是否存在病原微生物，并进行相应的治疗或进
一步检查。
注意：血液培养操作需要严格遵守无菌操作规范，避免交叉污染和误判结果。
在实验过程中，确保实验室环境的清洁和消毒，以减少外部细菌的干扰。
血培养，是一种将新鲜离体的血液标本接种于营养培养基上，在一定温度、湿度等条件下，使对营养要求较高的细菌生长繁殖并对其进行鉴别，从而确定病原菌的一种人工培养法。
我国卫生部在2017年9月发布了新版《临床微生物实验室血培养操作规范》，其主要内容如下：一、采血指征：可疑感染患者出现以下任一指征时,可考虑采集血培养。
1. 体温>38℃或<36℃.2. 寒战.3. 外固血白细胞计数增多(计数>10.0×10/L,特别有“核左移”时)或减少(计数<4.0×10°/L).4. 呼吸频率>20次/min或动脉血二氧化碳分压(PaCO2)<32mmHg.5. 心率>90次/min6. 皮肤黏膜出血.7. 昏迷.8. 多器官功能障碍.9. 血压降低.10. 炎症反应参数如C反应蛋白、降钙素原(PCT)、1,3-3-D葡聚糖(G试验)升高等二、采血时间寒战或发热初起时采集。
抗菌药物应用之前采集最佳。
三、采集套数成人每次应采集2套-3套,每套从不同穿刺点进行采集,2d-5d内无需重复采集。
如怀疑感染性心内膜炎,应重复采集多套。
儿童通常仅采集需氧瓶。
有以下高危因素时应考虑厌氧瓶培养：其母产褥期患腹膜炎,或慢性口腔炎或鼻窦炎、蜂窝组织炎、有腹腔感染的症状和体症、咬伤、接受类固醇治疗的粒细胞缺乏患儿。
考虑肺炎链球菌菌血症时,宜同时做脑脊液培养。
四、采血量成人每瓶采血量8mL-10mL，或按照说明书采集，婴幼儿及儿童采血量不应超过患者总血量的1%,具体采血量参考说明书。
若采血量充足,注射器采集的血液先注入厌氧瓶,后注入需氧瓶，碟形针采集的血液反之。
若采血量不足,优先注入需氧瓶。
五、采集方法1. 采集静脉血：仅在评估导管相关性血流感染时采集导管血。
血培养宜单独采血,与其他检测项目同时采血,应先接种血培养瓶,以避免污染。
2. 采集前做好手卫生,静脉穿刺点选定后,去除血培养瓶的塑料瓶帽,切勿打开金属封口环和胶塞,使用75%乙醇或70%异丙醇消毒,自然干燥60s。
血培养临床操作规范（2017版）血培养，是一种将新鲜离体的血液标本接种于营养培养基上，在一定温度、湿度等条件下，使对营养要求较高的细菌生长繁殖并对其进行鉴别，从而确定病原菌的一种人工培养法。
我国卫生部在2017年9月发布了新版《临床微生物实验室血培养操作规范》，其主要内容如下：一、采血指征：可疑感染患者出现以下任一指征时,可考虑采集血培养。
1. 体温>38℃或<36℃.2. 寒战.3. 外固血白细胞计数增多(计数>10.0×10/L,特别有“核左移”时)或减少(计数<4.0×10°/L).4. 呼吸频率>20次/min或动脉血二氧化碳分压(PaCO2)<32mmHg.5. 心率>90次/min6. 皮肤黏膜出血.7. 昏迷.8. 多器官功能障碍.9. 血压降低.10. 炎症反应参数如C反应蛋白、降钙素原(PCT)、1,3-3-D葡聚糖(G试验)升高等二、采血时间寒战或发热初起时采集。
抗菌药物应用之前采集最佳。
三、采集套数成人每次应采集2套-3套,每套从不同穿刺点进行采集,2d-5d内无需重复采集。
如怀疑感染性心内膜炎,应重复采集多套。
儿童通常仅采集需氧瓶。
有以下高危因素时应考虑厌氧瓶培养：其母产褥期患腹膜炎,或慢性口腔炎或鼻窦炎、蜂窝组织炎、有腹腔感染的症状和体症、咬伤、接受类固醇治疗的粒细胞缺乏患儿。
考虑肺炎链球菌菌血症时,宜同时做脑脊液培养。
四、采血量成人每瓶采血量8mL-10mL，或按照说明书采集，婴幼儿及儿童采血量不应超过患者总血量的1%,具体采血量参考说明书。
若采血量充足,注射器采集的血液先注入厌氧瓶,后注入需氧瓶，碟形针采集的血液反之。
若采血量不足,优先注入需氧瓶。
五、采集方法1. 采集静脉血：仅在评估导管相关性血流感染时采集导管血。
血培养宜单独采血,与其他检测项目同时采血,应先接种血培养瓶,以避免污染。
2. 采集前做好手卫生,静脉穿刺点选定后,去除血培养瓶的塑料瓶帽,切勿打开金属封口环和胶塞,使用75%乙醇或70%异丙醇消毒,自然干燥60s。
微生物血培养操作流程
第一篇
嗨，亲爱的小伙伴们！今天来跟大家唠唠微生物血培养的操作流程哟！
咱们得先准备好要用的东西，就像战士上战场得带好武器一样。
各种无菌的采血针、培养瓶，还有消毒用品，一个都不能少。
采血的时候，可一定要严格消毒。
先用酒精，再用碘酒，消毒范围要够大，就像给这块皮肤做个豪华清洁套餐。
然后，拿着采血针，轻轻一扎，让血液慢慢流出来。
可别太用力，不然会把血管扎破的哟！
把采出来的血，按照要求分别注入需氧瓶和厌氧瓶里。
记住，动作要稳，不能洒出来，这可是宝贵的血液呢！
把培养瓶好好标记，写上患者的信息和采血时间，就像给它们贴上专属的小标签。
好了，这就是微生物血培养的大致操作流程啦，是不是还挺简单的？
第二篇
嘿，朋友们！今天来给大家讲讲微生物血培养是怎么操作的。
一开始呀，咱们得把场地收拾干净，保证是无菌的环境，这样才不会有“小捣乱鬼”来干扰。
然后呢，把要用的家伙事儿都摆好，采血针、培养瓶啥的都排排站，准备“上岗”。
接着就是找患者啦，让他们放松心情，别紧张。
开始采血啦，消毒可不能马虎，要仔仔细细的，把细菌都赶跑。
采血的时候，就像在小心翼翼地采集宝贝，速度和力度都要把握好。
把血放进培养瓶里，就像给小种子找个温暖的家，让它们在里面好好生长。
还有哦，标记可重要啦，千万不能弄错患者的信息和时间，不然就会“迷路”的。
这一套操作下来，微生物血培养就顺利开始啦！怎么样，是不是挺有趣的？。
血培养检测规范化操作（世上最全基本操作流程）2016-08-22来源:南方检验医学网阅读: 1291次【字号：大中小】导读：一、血培养检测采血指征：对入院的危重患者未进行系统性抗生素治疗前，应及时进行血液培养，患者出现以下体征时可作为采集血培养的重要指征： 1．发热（38℃）或低温（36℃）。
2．寒战。
3．白细胞增多（1010 9/L，特别有核左移未成熟的或带状的白细胞一、血培养检测采血指征：对入院的危重患者未进行系统性抗生素治疗前，应及时进行血液培养，患者出现以下体征时可作为采集血培养的重要指征：1．发热（≥38℃）或低温（≤36℃）。
2．寒战。
3．白细胞增多（>10×10 9/L，特别有“核左移”未成熟的或带状的白细胞增多。
4．粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×10 9/L）。
5．血小板减少。
6．皮肤粘膜出血。
7．昏迷。
8．多器官衰竭。
或同时具备上述几种体征时应采血培养。
在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低烧外，很少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。
肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿（特别是2岁以下的幼儿）一般多见于门诊，常伴有明显发热（≥38.5℃）和白细胞增多（≥20×109/L）。
老年菌血症患者，可能不发热或不低热，如伴有身体不适，肌痛或中风可能是感染性心内膜炎的重要指征。
血培养检测皮肤消毒程序：血培养为防止皮肤寄生菌污染，可使用消毒剂（碘酊或碘伏）对皮肤进行严格仔细的消毒处理，最大限度地减低皮肤污染。
感染性心内膜炎，特别是心脏瓣膜修复术的感染，可能由皮肤寄生的微生物引起（例如：表皮葡萄球菌或棒杆菌属）。
因此，在采集过程中血培养的污染一定要减小至最低程度。
用做培养的血液均不应该在静脉或动脉的导管中抽取，除非静脉穿刺无法得到血液或用来评价与导管感染相关性指标。
如果抽取了导管血，也应同时在其他部位穿刺获取非导管内静脉血液进行血培养。
皮肤消毒严格按以下步骤进行：1．首先用70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30秒钟以上。
血培养操作规范及临床意义血液培养是一种常用的临床检验方法，用于检测细菌或其他微生物在血液中的存在。
准确的血液培养操作和分析，对于临床医学的诊断和治疗具有非常重要的意义。
本文将探讨血培养操作规范及其在临床中的意义。
一、血培养操作规范1. 采样前准备医护人员应洗手并佩戴手套，对采样部位皮肤进行消毒，并用消毒棉球擦拭干净，等待皮肤干燥。
同时，应选择合适的采样部位，如肘窝静脉、桡动脉、股静脉等。
2. 采样采样时应使用无菌针和无菌管采集血液标本，一般采集量为每个采样部位2-3个管，每个管至少采集1-3ml的血液。
在采集时，应注意避免大量气泡和红细胞进入采样管中，以免影响结果。
3. 处理采集后将采样管送至实验室，并及时进行处理。
应将血液标本均匀地涂布在培养基上，可以选择使用静置法、旋转法或转移法进行操作。
静置法和旋转法适用于不同类型的培养瓶，需要在显微镜下观察细菌生长的情况。
转移法则适用于无菌环境下的操作，需要将血液标本转移至培养基上，然后进行均匀涂布和培养。
4. 结果分析血培养的结果应在一定时间内进行分析，并根据培养基的类型和细菌的特征来确定细菌的种类。
一般情况下，血培养的阳性结果表明血液内存在病原菌，阴性结果则表明血液中不存在病原菌。
在分析结果时，需要参考患者的临床症状、体征和其他检查结果来作出准确的临床诊断。
二、血培养在临床中的意义血培养是诊断血液系统感染的重要方法之一，对于临床医学的诊断和治疗具有非常重要的意义。
以下是血培养在临床中的应用：1. 诊断感染血液系统感染是一种常见的病理生理现象，可以引起严重的后果，如败血症和感染性心内膜炎等。
通过血培养可以检测细菌或其他微生物在血液中的存在，确定感染的种类并作出准确的诊断。
2. 监测治疗效果在治疗感染过程中，血培养可以用于监测治疗效果。
如治疗后血液中的细菌数量明显减少或消失，表明治疗有效。
3. 判断细菌耐药性通过血培养可以检测出细菌的耐药性，进而指导临床医生选择最佳的治疗方案。
血培养的规范化操作流程血培养是临床实验室常见的一种微生物学检查方法，用于检测人体内是否存在细菌、真菌或其他微生物的感染。
在进行血培养时，需要遵循一系列规范化的操作步骤，以确保结果的准确性和可靠性。
以下是血培养的规范化操作流程。
1.检测前准备：-检测人员应佩戴个人防护装备，如实验服、手套、口罩等，以防止交叉感染。
-准备好所需的试剂和设备，包括培养基、血培养瓶、离心机、恒温箱等。
-检查培养基是否过期、封装是否完好，并进行质量检验。
2.标本采集：-根据临床需要，在合适的部位采集血液标本，并确保采集时的无菌操作。
-选择适当的采样器官，如使用灌注式血培养瓶，可选择适合的瓶颈部位。
-采集标本后应立即将其送至实验室进行处理。
3.标本处理：-将血液标本倒入血培养瓶中，通常一组采用两瓶血培养瓶，以增加检测的灵敏度。
-标本处理前应在标本瓶上标记样本信息，如患者姓名、标本号码、采样时间等。
-轻轻摇晃血培养瓶，以混匀血液和培养基，避免凝块的形成。
4.培养条件：-将血培养瓶放入恒温箱中，设置适当的温度和湿度条件（通常为35-37摄氏度和5-10%CO2）。
-检测周期根据临床需要而定，通常为24小时和48小时，有时可能需要更长的时间。
-定期检查恒温箱中血培养瓶的状态，确保温度和湿度的稳定。
5.细菌培养和观察：-在设定的培养周期后，检查血培养瓶中是否有细菌的生长。
-若瓶内产生了混浊或沉淀，则可能存在细菌生长，应进行下一步鉴定和分离。
-借助显微镜观察瓶内的液体或沉淀物，观察细菌形态、染色性质、运动性等特征。
6.细菌鉴定和药敏试验：-对生长的细菌进行鉴定，可以通过生物化学试验、分子生物学方法和免疫学方法等。
-鉴定完成后，可进行药敏试验，以确定对不同抗生素的敏感性和耐药性。
-鉴定和药敏试验的结果应记录在实验记录表中，并向临床医生提供及时的检测报告。
7.结果解读和报告：-根据细菌鉴定和药敏试验的结果，对病原体是否存在感染、感染的种类以及抗生素的选择等进行解读。
临床微生物学血培养操作规范中华医学会检验医学分会编者按：根据卫生部指示，中华医学会检验医学分会成立了《临床检验操作规范》编写组。
《临床微生物学检验操作规范》是该规范的一部分。
该规范在撰写过程中始终坚持先进性、科学性、实用性和可行性的指导原则，在查阅文献和总结经验的基础上，完成了编写任务。
其间曾举行多次审稿会，对讨论稿进行了充分地研讨和修改。
为了使检验界临床微生物学同行尽快参照执行《临床微生物学检验操作规范》，本刊将陆续刊登该规范1～10专题，每期1个专题，以飨读者。
希望广大检验医学人员在学习、执行该规范的同时提出意见，以便再版时修改。
当微生物侵入血液迅速繁殖超出免疫系统清除这些微生物的能力时形成菌血症或真菌菌血症。
一过性菌血症常发生于对感染灶的外料处理、黏膜的创伤操作和易污染的外科手术，亦可发生于全身或局部感染的早期；间歇性菌血症常发生于腹腔等部位未能及时引流的脓肿；持续性菌血症常见于感染性心内膜炎等血管内膜感染，亦常发生于伤寒和波浪热的最初几周。
血培养常见菌：革兰阴性菌主要包括大肠埃希菌、肺炎克雷柏菌、肠杆菌，伤寒沙门菌、绿脓假单胞菌、不动杆菌属等；革兰阳性菌主要包括金黄色葡萄球菌、凝固酶阴性葡萄球菌、念珠菌属等。
菌血症是临床医学急症，尽快采集血液进行培养。
一、血标本采集和运送1.采血指征：一般患者出现以下一种体征时可作为采血的重要指证：发热（≥38℃）或低温（≥36℃），寒战，白细胞增多（计数大于10.0×109/L,特别有“核左移”时），皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭，血压降低，C反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，或同时具备上述几种体征时而临床可疑菌血症应采集血液培养。
新生儿可疑菌血症，应该同时做尿液和脑脊液培养。
对入院危重感染患者应在未进行抗菌药物治疗之前，及时做血培养。
2.皮肤消毒程序：严格执行以下三步法：（1）70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。
（2）1%～2%碘酊作用30s或10%碘伏60s，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上。
（3）70%酒精脱碘：对碘过敏的患者，用70%酒精消毒60s，待酒精挥发干燥后采血。
3.培养瓶消毒程序：（1）70%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用60s。
（2）用无菌纱布或无菌棉签清除像皮塞子表面残余酒精。
4.静脉穿刺和培养瓶接种程序：（1）在穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动，可戴乳胶手段固定静脉，不可接触穿刺点。
（2）用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头（如果行第二次穿刺，应换针头）直接注入血培养瓶，或严格按厂商推荐的方法采血。
（3）血标本接种到培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血液凝固。
立即送检，切勿冷藏。
5.采血量：成人采量是8～10ml，儿童1～5ml。
血液和肉汤之比为1∶5～1∶10。
6.血培养次数和采血时间：采血培养应该尽量在使用抗菌药之前进行，在24h内采集2～3次做血培养（一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养）。
入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3d，每天采集2份。
可选用能中和或吸附抗菌药物的培养基。
对间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h采集血液，或于寒战或发烧后1h 进行。
特殊的全身性和局部感染者采血培养的建议：（1）可疑急性原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎，应在不同部位采集2 ～3份血标本。
（2）不明原因发热，如隐性脓肿，伤寒热和波浪热，先采集2～3份血标本，24～36h后估计体温升高之前（通常在下午）再采集2份以上。
（3）可疑菌血症或真菌菌血症，但血培养持续阴性，应改变血培养方法，以获得罕见的或苛养的微生物。
（4）可疑细菌性心内膜炎，在1～2h 内采集3份血标本，如果24h后阴性，再采集3份以上的血标本。
7.标本运送：采血后应该立即送检，如不能立即送检，需室温保存或置35℃～37℃孵箱中，切勿冷藏。
自动化连续监测系统虽有允许延迟上机监测微生物生长的原理，还是应该尽量减少延迟上机时间。
二、标本验收1.血培养瓶验收：（1）检查培养瓶是否有渗漏、破裂或明显污染。
（2）检查瓶子上的标签与申请单是否相符。
（3）检查血液标本是否适量，并在申请单上注明采血量。
（4）对于延迟送检的血培养瓶注意肉眼观察微生物生长可视信号：培养瓶内是否有絮状物、混浊、溶血、凝块、薄膜、产气、白色颗粒等。
如发现可视信号提示有微生物生长，应该立即直接涂片镜检和划线转种。
2.不合格血培养标本的处理：（1）拒收培养瓶：血培养瓶标识与化验申请单不符，培养瓶破裂或明显污染。
处理方法：立即与临床医师联系，报告拒收的具体理由。
（2）补做培养瓶：血标本采集后放置12h以上（手工法除外），用不适当类型的培养瓶收集标本，用过期的培养瓶收集标本，采血量不足等。
处理方法：立即与临床医师联系，报告标本不合格的具体理由，建议补做血培养。
三、实验室检查1.血培养操作过程中应注意生物安全防护。
2.血培养瓶处理：传统手工法血培养每天至少检查一次，注意微生物生长可视信号，对48～72 h未生长的培养瓶应转种，行需氧培养。
发现细菌生长信号，应无菌缺抽取培养物，涂片行革兰染色，发现细菌，尽快报告染色结果；根据染色特征，选择合适的培养基转种，见表1表1 根据革兰染色特征选择转种培养基类型的建议注；a:所有培养至少孵育45h；EMB：伊红美蓝琼脂；PEA；苯乙基醇琼脂；CAN；多黏菌素-蔡啶酸琼脂；b：增加真菌培养基（如：沙保弱葡萄糖琼脂）和30℃孵育；X：选择的培养基革兰染色未找到细菌的血培养瓶，补充吖啶橙染色检查弯曲菌和布鲁菌，发现阳性者进行分离鉴定，未发现阳性则应转种厌氧和需氧血平板，然后继续培养监测至最终报告的时间，注意其他不常见细菌见附录。
革兰染色为形态均一的细菌，根据革兰染色结果选择抗菌药物进行直接抗菌药物敏感试验，同时转种培养，发现菌落，立即做细菌鉴定和标准抗菌药物敏感试验。
使用双相培养基进行血培养时，如有菌落生长可直接进行细菌鉴定和标准抗菌药物敏感试验。
四、结果报告1.阳性结果报告：（1）初级报告：阳性血培养结果非常重要，应该立即口头报告给医生，包括革兰染色特性和形态，血培养阳性的瓶数和其他的鉴定信息（如革兰阳性球菌疑似为葡萄球菌等）。
报告之前，应该回顾一下患者近期标本中微生物培养情况，这些结果有助于解释感染微生物的来源。
同时记录报告的日期，时间，内容以及接受报告人的姓名。
（2）中级报告：报告直接抗菌药物敏感试验结果和细菌种属的初步鉴定结果。
（3）最终报告：报告细菌种属名和标准抗菌药物敏感试验结果。
2.阴性报告：普通血培养5d无细菌生长可报告为：“5 d培养未见细菌生长“，但培养瓶要继续培养至7d，如果发现有菌生长，可发补充报告。
某些特殊致病菌培养时间需延长。
附录血培养特殊致病菌的处理1.分枝杆菌：从血液中分离培养分枝杆菌需特殊培养基。
裂解—离心、BACTEC 12B或13A。
Bact/Alert MP培养基均可用于分离培养分枝杆菌。
将裂解-离心管中的沉淀物接种至7H11培养基中，如果记录了采集的血标本量，裂解-离心法可进行菌落计数定量分析。
BACTEC 12B 培养基会抑制某些鸟分杆杆菌复合体的生长，BACTEC 13A培养基专门用于分离血液中的分枝杆菌，接种的血量为5 ml，它避免了处理裂解-离心血培养物时所遇到的潜在危险性。
2.细菌L型：血液中很少分离出细胞壁缺陷的细菌。
含10%蔗糖或甘露醇渗透压恒定的培养基，适合培养细胞壁缺陷的细菌。
该培养基也适合某些细胞壁完整的细菌生长，因此在这类培养基中分离出某种细菌，并不意味着血液中一定有细菌L型。
3.布鲁菌属：通常将血液接种至含有双相培养基的卡斯塔涅达培养瓶（Castaneda bottles）中进行培养。
固相培养基采用胰酶消化大豆琼脂，胰蛋白胨琼脂或布鲁菌琼脂，琼脂的终浓度为2.5%。
液相培养基采用不含琼脂的相同培养基基础，当培养瓶内琼脂凝固后，再以无菌手续将液相培养基基础倾入瓶内即可。
卡斯塔涅达培养瓶内CO2浓度应为5%～10%，35～37℃孵育，每48h观察有无细菌生长。
无菌生长，将培养瓶倾斜，使肉汤流过琼脂表面。
阴性血培养瓶应延长培养至30d后丢弃。
4.营养变异链球菌：该种细菌的生长需要补充巯醇复合物和维生素B6。
人血培养基中含有足够的营养成分使营养变异链球菌生长。
然而传代培养时，培养基中需要补充盐酸-磷酸吡哆醛（0.001%）或L半胱氨酸（0.05%至0.1%）或二者皆有，否则营养变异链球菌不能生长。
也可将血培养基传种至血琼脂平板上，然后交叉划线接种金黄色葡萄球菌，在金黄色葡萄球菌菌落周围有营养变异链球菌卫星样菌落。
5.真菌：多种方法可提高血液中真菌的检出率，包括使用需氧血培养瓶、双相培养基、裂解-离心技术和特殊营养的肉汤培养基（如脑心浸液肉汤等）。
裂解-离心技术是一种分离真菌的有效方法，特别是对于营养要求苛刻的双相真菌。
实际上，大多数需氧血培养瓶，孵育5～7d，可提供充足的营养使白念珠菌生长良好，然而对于非白念珠菌、光滑球拟酵母菌、新型隐球菌、荚膜组织胞浆菌和其他双相真菌，使用裂解-离心技术可获得最高的检出率，通常采用霉菌抑制琼脂（Inhibitory mold agar），脑心浸液琼脂和巧克力琼脂与Isolator管结合使用。
阴性的臭菌血培养应于22～30℃孵育4周后发终报告。
6.心内膜炎特殊致病菌：如果常规血培养48 h阴性而临床症状仍提示感染性心内膜炎，临床医生和微生物学家应考虑使用特殊的培养技术。
对于分离一些生长缓慢，营养要求柯刻的革兰阴性杆菌（如嗜沫嗜血杆菌、人心杆菌、伴放线杆菌、啮蚀艾肯菌、金氏金氏菌、军团菌属、Quintana巴尔通体和布鲁菌属等），应延长培养2～4周，然后传种特殊的培养基。
如果怀疑真菌性心内膜炎，应进行裂解-离心血培养。
伯氏柯克斯体或衣原体引起的心内膜炎通常进行血清学诊断。
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