疟原虫血涂片制作作业指导书
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疟原虫镜检技术操作规范疟原虫镜检是诊断疟疾、确定虫种及发现传染源的重要手段和方法,具有严格的操作程序和技术要求,为了统一方法、规范程序、提高血检质量,特制定本操作规范。
一、血片制作(一)所需器材载玻片玻片3张(1张作载玻片,1张作推片,1张作采血后滴于玻片备血用)采血针采用一次性采血针。
玻片盒存放50或100片玻片的木质或塑料盒。
皮肤消毒液、棉签或酒精棉球75%的酒精、安尔碘、碘伏等皮肤表面消毒剂。
记号笔用于玻片上书写血检病人基本信息。
(二)操作步骤1、载玻片基本信息登记取1张载玻片,首先用目测法将载玻片从右(磨砂处为右)到左等分成6格,接着用记号笔在第1、2格即(磨砂处)写下血检病人基本信息:编号、姓名、制片日期结果(镜检结束后补写)。
载玻片上信息应与血检登记表中的项目对应。
如图12、采血采血部位为手指末端或耳垂,婴儿可从拇趾或足跟取血。
用消毒剂消毒取血部位皮肤后,以一次性采血针迅速刺入取血部位1~2mm 深,约挤出1-2滴血,滴于玻片上(以备涂制厚薄血膜用)。
3、涂制血膜用推片的左下角刮取玻片上的血液4~5μl,涂于载玻片的第三格(靠近磨砂侧),由里向外一个方向旋转2~4圈,涂成直径为0.8~1.2cm的圆形厚血膜;再用该角沾取血液1~1.5μl血置于载玻片的中心点即(第四格前缘中点);接着用干棉球或卫生纸擦净推片角上的血渍;最后用推片的下缘置载玻片的中心点(1~1.5μl血液处),当血液在载玻片与推片之间向两侧扩展至约2cm宽时,使两玻片保持25°~35°角,从右向左迅速推成舌状薄血膜,即(薄血膜涂在第4格前缘至第6格中部)。
如(图1)、(图2)疟原虫镜检涂制血膜方法示意图2薄血膜厚度应以红细胞之间互相接触而不相互重叠为佳,(直观透过玻片能清晰看到报纸上的字);厚血膜的厚度以一个油镜视野内可见到5~10个白细胞为宜。
二、固定(一)所需器材1、甲醇2、器具玻璃棒、吸管(二)操作步骤薄血膜固定薄血膜晾干后,用玻璃棒沾取或用吸管吸取少量甲醇平铺于薄血膜上,起固定薄血膜作用,(注意不能固定厚血膜)。
疟原虫血片的制作工需要材料1 .采血器材:75%酒精棉球、一次性采血针、玻片、推片、铅笔、干净的绸布或化纤布。
2 .染色材料:①姬氏原液②.蒸储水或纯净水:①稀释姬氏原液②染色时冲洗染液③固定剂:①用甲醇或无水乙醇(乙醇含量达99.9%),固定薄血膜②用无水乙醇擦洗油镜头。
④脱油剂:无水乙醍或二甲苯:镜检后的血片脱镜油。
油镜头脱油可用无水乙醍:无水乙醇的7:3混合液擦拭。
⑤擦镜纸。
二、采血前准备:1.玻片准备⑴我们现在用的玻片都是除去油渍的脱脂玻片,使用前可用绸布擦去玻片上纤维和浮灰,即可使用。
⑵新的尚未脱油脂的玻片:用洗衣粉水洗净后,一一浸泡于95%的酒精中约一周时间,然后一一取由,用软而洁净并没有棉花纤维的细布擦干,擦亮,收藏好。
⑶已用过的旧玻片:先消毒后用洗涤剂清洗,去除污渍,再一一浸泡于95%的酒精中约一周时间,然后一一取由,用软而洁净并没有棉花纤维的细布擦干,擦亮,收藏好2.玻片编号:在玻片的磨砂端用铅笔进行编号。
玻片编号、检验报告单号和登记号应一致,并具有唯一性。
3.采血时间:⑴间日疟、三日疟原虫患者可在发作的任何时间进行采血,但由于患者刚发冷发热以后,大部分是在环状体期,故这一时期区别疟原虫种类是不容易的。
所以在发作后的6〜8小时内采血为最佳,这时环状体以滋养发育成晚期滋养体,较易识别。
⑵。
恶性疟原虫;从理论上讲,因为恶性疟原虫的裂体生殖是在内脏的毛细血管内进行的,所以在发作之前,患者的末梢血液中不易查到,但实际情况不尽如此,一般在受感染者的末梢血液中,随时能见到少量的恶性疟原虫的环状滋养体;虽然如此,较理想的采血时间,是在发作后的20小时左右,因为这个时候,环状体虽已发育至最高峰,但尚未回到内脏毛细血管中去进行裂体生殖。
环状体的数量和构造。
有助于疟原虫种类的鉴别,恶性疟原虫的配子体很容易识别,但在初发时,一般需要在发作7〜10日后才能在末梢血液在由现,应当注意。
4.采血的部位和方法;部位:以耳垂采血为主。
检查疟原虫的血涂片制作与染色基本原理:疟原虫寄生在红细胞内,经染色后可对疟原虫形态做出鉴定。
材料准备:75%酒精、采血针、推片、载玻片、吉氏染液、甲醇、滴管、刻度管.(1)清洁载玻片的方法:将载玻片用清水清洗干净后晾干,再在稀释清洁液中浸泡1~2天,取出后用水冲洗干净,最后用蒸馏水冲洗,烘干,经95%酒精浸泡后,擦干。
清洗过的玻片用干净无油的纸包好备用。
(2)吉氏染液配制:○1原液配制,吉氏染剂粉1g,甲醇50ml,中性甘油50ml。
将吉氏染粉置乳钵中,加少量甘油充分研磨(30min以上),继续边加甘油边研磨,至加完为止。
然后转入烧瓶内,置55~60恒温水浴中,充分震摇使溶解(约2h),冷却后加入甲醇,储于棕色瓶中,塞紧瓶塞,充分摇匀,1~3周后过滤,即为原液,配制时要研磨充分,不可混入水,配好后要密封,放置越久染色性能越好;○2工作液临时配制:将吉氏原液用pH 6.8~7.2的PBS作1:15~1:20稀释混匀即可。
操作方法:采用疟原虫感染小鼠做血涂片并染色.(但以下采血以人为例)(1)采血:1时间据各种疟原虫在人外周血中出现的规律,间日虐和三日疟患者可在发作后任何时间取血,但以发作后10h 以内最佳,恶性疟原应在发作开始后不久做血检,患者刚开始发作时原虫密度较低可能检测不到,所以应在第二次发作时再做一次以免漏诊:2部位成人可在耳垂或指尖,婴儿宜在脚跟或者大拇指:3方法先用75%酒精给皮肤消毒,右手持一次性无菌采血针迅速刺入皮肤2mm,轻轻挤压周围皮肤,弃去第一滴血,再取1滴作薄血膜,2滴作厚血膜。
薄血膜取血量少,涂面大,原虫分散,但形态清晰,易作虫种鉴别:厚血膜血量多,RBC集中,在原虫数量较少时便于发现,但因制作时细胞相互挤压堆积,原虫形态难认。
(2)涂片:1薄血膜制作取1滴置于洁净载玻片上,用1张磨口边缘作推片。
推片时用力要均匀,一次推成,保证血膜应呈舌形,RBC分布均匀。
2厚血膜制作用推片一角取血2滴,治愈薄血膜片右方用推片角由里向外顺一个方向旋转,使血滴形成直径约1cm的圆形血膜。
疟原虫镜检血片制作与染色操作流程
1.填写登记表在“疟疾发热病人血检登记本”上为患者编号并登记其相关信息。
2.清洁玻片
3.玻片编号用目测法将玻片分成六等分,左侧第一和等二等份用于编号。
同一患者玻片上号码应与登记本上一致。
4.采血
5.涂制厚厚片
(1)血量: 4~5微升
(2)位置:玻片第三等份中央的位置
(3)血膜大小:0.8~1.0厘米
6.涂制薄血膜
(1)血量: 1~1.5微升
(2)位置:玻片第四至第六等份的位置。
涂制薄血膜的血应滴在玻片中央稍偏右的位置
(3)血膜大小:2.0厘米(宽)×2.5厘米(长)
7.吉氏染色液配制
(1)2%的吉氏染色液配制方法98毫升蒸馏水加入2毫升吉氏原液,混匀后即为2%的吉氏染色液。
也可用1支试管,按1毫升蒸馏水加入1滴吉氏原液的比例稀释染液,混匀后用于染色。
(2)注意事项2%的吉氏染色液必须现配现用。
8.吉氏染色方法
(1)待厚血膜干燥
(2)甲醇固定薄血膜
(3)待甲醇挥发干净
(4)滴2%的吉氏染液覆盖厚薄血膜,染色30分钟。
(5)取出染好的血片,连同染液在清水中轻轻漂洗一遍,洗去表面吸附的杂质。
(6)放置干燥处晾干。
血膜面朝上,注意不要放反了。
疟原虫血涂片制作作业指导书1.目的指导实验室人员制作血涂片,完成疟原虫检测工作2.适用范围适用于实验室检测人员3.职责疟原虫血涂片制作人员负责涂片编号及保存,4.作业指导4.1样本采集及要求4.1.1采用抗凝管采血:或在采血管里加入抗凝剂,将采集血样加入并摇匀,备用4.1.2指尖血、静脉全血(抗凝血)样本均可适用4.2血涂片的制作:4.2.1血膜种类和位置薄血膜:占玻片的近1/2。
将血液涂呈薄膜状,血细胞平辅在玻片上面厚血膜:占玻片的1/6。
血液涂成圆形,血量多4.2.2厚血膜的制作用推片的一角,刮取约4 ~ 5ul(火柴头大小),使血滴与平置的载玻片接触,再由里向外旋转,转4~ 8圈直径0.8 ~ 1cm圆形厚血膜,血膜厚薄均匀,过厚易于脱落,过薄达不到检出率的要求。
厚血膜厚度以油镜视野可见5 ~ 10个白细胞为宜。
厚血膜血量:4~5ul微升,外形:圆形,直径0.8~1.0cm4.2.3薄血膜制作取洁净的载玻片2张,1张以左手拇指,食指夹持载玻片两端,用另一张边缘平滑的载玻片做推片,用推片一端边缘的中点取血约1~1.5ul的血量(小米粒大小),使血滴与平置的载玻片接触,并形成25~30度夹角,待血液向两侧扩展宽约2cm时,均匀而迅速地轻轻向左推出(约2.5cm长)薄血膜血量:1~1.5ul位置:玻片1/2外形:薄度均匀、无痕、长度:2.0~2.5cm4.2.4血膜编号:血膜编号:血膜制成后,以防差错,待薄血膜干后用B2铅笔,在薄血膜的右上角或血膜底部,写上受检者的个人编号。
4.3血涂片固定及染色4.3.1甲醇固定薄血膜载玻片略向下倾斜,从一侧挤出甲醇,试管平推下划即可。
甲醇不能触碰到厚血膜4.3.2单张染色法在量筒内加2ml缓冲液或ph7.0~7.2净水,滴加吉氏原液4滴(每ml2滴),混匀,然后滴在已充分干躁的厚薄血膜上,染色30min。
1张玻片需2ml水,2滴/ml染液,染色25-30min4.3.3染色效果血膜蓝中带紫色,如果血膜颜色偏红色, 说明染色偏酸性;血膜偏蓝色, 则为偏碱性。
一、实验目的1. 掌握疟原虫涂片制作的方法。
2. 熟悉疟原虫形态学特征,学会识别疟原虫种类。
3. 了解疟疾的实验室诊断方法。
二、实验原理疟疾是由疟原虫引起的一种严重传染病,主要通过按蚊叮咬传播。
疟原虫在人体内寄生,经过多个发育阶段,最终在红细胞内繁殖。
血涂片检查是诊断疟疾的重要方法之一,通过显微镜观察血涂片中的疟原虫形态,可以确定疟原虫的种类,为临床诊断和治疗提供依据。
三、实验材料1. 试剂:抗凝剂EDTA-Na2/K2、吉姆萨染液、蒸馏水。
2. 仪器:显微镜、载玻片、盖玻片、移液器、酒精灯、吸管等。
3. 样本:疑似疟疾患者的血液样本。
四、实验步骤1. 采集血液样本:使用EDTA-Na2/K2抗凝管采集患者外周静脉血2-5mL。
2. 制作血涂片:a. 将血液样本滴在载玻片中央,形成直径约1cm的圆形。
b. 用另一张载玻片边缘轻刮血液,制成薄而均匀的血膜。
c. 待血膜干燥后,用盖玻片覆盖。
3. 染色:a. 将载玻片放入吉姆萨染液中,浸泡5-10分钟。
b. 用蒸馏水冲洗载玻片,去除多余染液。
c. 待载玻片干燥后,用显微镜观察。
4. 观察与鉴定:a. 使用低倍镜观察血涂片,寻找疟原虫。
b. 使用高倍镜观察疟原虫的形态学特征,如细胞核、滋养体、裂殖体等。
c. 根据疟原虫的形态学特征,确定疟原虫的种类。
五、实验结果1. 在血涂片中观察到疟原虫,经鉴定为恶性疟原虫。
2. 疟原虫的形态学特征如下:a. 细胞核呈红色,圆形或椭圆形。
b. 滋养体呈圆形或椭圆形,大小约为10-15μm。
c. 裂殖体呈椭圆形,大小约为20-30μm。
六、实验讨论1. 本实验成功制作了疟原虫血涂片,并成功鉴定出恶性疟原虫,验证了实验原理和步骤的正确性。
2. 在实验过程中,需要注意以下几点:a. 采血时,应选择患者发作期进行,此时疟原虫数量较多,易于观察。
b. 制作血涂片时,应确保血膜薄而均匀,避免过厚或过薄。
c. 染色时,应控制好染色时间,避免染色过深或过浅。
疟疾血膜制作及染色技术一、血片的制作1.材料准备载玻片:新玻片浸入有液态洗涤剂的清水中10-20分钟,干净棉巾逐个擦拭,再用清水冲洗干净,晾干备用。
1. 2. 采血针:一次性 . 玻片盒:防止污染和昆虫吸食血膜 1. 4. 75%酒精棉球:采血前后消毒 . 记号笔:玻片上书写号码2.血片的制作(厚、薄血膜)用于检查疟原虫的血涂片有两种:一种是将血液涂成薄膜状,称薄血膜;一种是血液涂成圆盘状,称厚血膜。
最好一张玻片上同时制作厚、薄两种血膜。
薄血膜涂片薄血膜取洁净的载玻片1张,左手持载玻片平置,右手持推片,推片一端边缘的中点刮取血液~微升(相当于1/4火柴头大小),使血滴与平置的载玻片中线接触,待血液向两侧扩展约2cm宽时,以25°~35°夹角均匀而迅速地向左推成舌状薄血膜(约长)。
厚度以薄血膜上的红细胞之间互相接触而不相互重叠为佳。
厚血膜涂片用推片的一角刮取4~5微升血量(相当于火柴头大小),使血滴涂于载玻片的中央偏右处,由里向外一个方向旋转2圈,涂成直径~的圆形厚血膜,血膜厚薄均匀,过厚易于脱落,过薄达不到检出率的要求(厚度以1个油镜视野内可见5~10个白细胞为宜)。
血膜位置通常将厚、薄血膜涂在一张载玻片上。
方法是将载片分为6等分,第1、2格备贴标签及编用;厚血膜涂在第3格中央;薄血膜涂在第4格前缘至第6格中部。
血片的制作编号血膜制成后,立即在玻片面上写上受检者的号码(姓名)、单位(地址)、制片日期、以防差错;待血膜干后依次按顺序插入标本盒内。
血膜制作注意事项1. 清洗玻片,且勿碰撞、磨损2. 刚涂制的血膜要平放在标本盒内3. 血膜应自然干燥,要充分干燥。
二、血片染色:(吉氏染液的染色方法)1. 血膜染色前的处理固定薄血膜血片干燥后,用吸有甲醇的吸管在薄血膜表面轻轻涂抹,自然干燥。
注意固定时甲醇不要接触厚血膜,否则会影响厚血膜的溶血。
溶解厚血膜血片干燥后,用滴管滴水于厚血膜上,待血膜呈灰白色时,将水倒去,晾干。
疟原虫血涂片制作作业指导书
1.目得
指导实验室人员制作血涂片,完成疟原虫检测工作
2.适用范围
适用于实验室检测人员
3.职责
疟原虫血涂片制作人员负责涂片编号及保存,
4、作业指导
4、1样本采集及要求
4、1、1采用抗凝管采血:或在采血管里加入抗凝剂,将采集血样加入并摇匀,备用
4、1、2指尖血、静脉全血(抗凝血)样本均可适用
4、2血涂片得制作:
4、2、1血膜种类与位置
薄血膜:占玻片得近1/2.将血液涂呈薄膜状,血细胞平辅在玻片上面
厚血膜:占玻片得1/6。
血液涂成圆形,血量多
得载玻片接触,再由里向外旋转,转4~ 8圈直径0、8 ~ 1cm圆形厚血膜,血膜厚薄均匀,过厚易于脱落,过薄达不到检出率得要求.厚血膜厚度以油镜视野可见5 ~10个白细胞为宜。
厚血膜血量:4~5ul微升,外形:圆形,直径0、8~1、0cm 4、2、3薄血膜制作
取洁净得载玻片2张,1张以左手拇指,食指夹持载玻片两端,用另一张边缘平滑得载玻片做推片,用推片一端边缘得中点取血约1~1、5ul得血量(小米粒大小),使血滴与平置得载玻片接触,并形成25~30度夹角,待血液向两侧扩展宽约2cm时,均匀而迅速地轻轻向左推出(约2、5cm长)薄血膜血量:1~1、5ul位置:玻片1/2外形:薄度均匀、无痕、长度:2、0~2、5cm
4、2、4血膜编号:血膜编号:血膜制成后,以防差错,待薄血膜干后用B2铅笔,在薄血膜得右上角或血膜底部,写上受检者得个人编号。
4、3血涂片固定及染色
4、3、1甲醇固定薄血膜
载玻片略向下倾斜,从一侧挤出甲醇,试管平推下划即可.甲醇不能触碰到厚血膜
4、3、2单张染色法
在量筒内加2ml缓冲液或ph7、0~7、2净水, 滴加吉氏原液4滴(每ml2滴),混匀,然后滴在已充分干躁得厚薄血膜上,染色30min。
1张玻片需2ml水,2滴/ml染液,染色25—30min
4、3、3染色效果
血膜蓝中带紫色,如果血膜颜色偏红色, 说明染色偏酸性;血膜偏蓝色, 则为偏碱性。
4、4注意事项与其它因素
4、4、1载玻片必须清洁无油污,拿玻片时拿侧楞,固定薄血膜时,甲醇不要触碰到厚血膜,放置3天以上得血片,在染色之前先用清水滴加在厚血膜上进行溶血,再进行染色,厚血膜干燥时不要高温加热,充分干燥后方可染色已稀释得吉氏染液,须在30分钟内用完,冲染液时,要漂洗以免冲掉厚血膜,将血膜标本(血膜面朝下)插于凉干板上晾干。
4、4、2薄血膜过厚原因:使用血滴过大、玻片与推片之间夹角过大、展开血膜得动作太快
4、4、3血膜脱落原因、载玻片不干净、血量多血膜厚、血膜没干透、冲洗方法不当
4、4、4、染料溶剂得质量
染液(母液)在使用时避免水对其污染,用专用无水得滴管取染液.染液得新旧:
新配制得染液因色素尚未充分溶解,染色力较弱且常呈现偏碱性。
染液存放时间越久,染色力越强.通常在染液配制1~2周后才使用,盛装染液得瓶子应加塞盖密,以防吸潮而影响染液质量。
染液稀释后使用时间:吉氏染液得主要成份就是美蓝、伊红与由美蓝氧化产生得天青,三者能在酒精溶液中溶解,但在水溶液中伊红遇到美蓝与天青即产生沉淀.因此,必须在稀释染液当时使用,一般在半小时内染色力最强.染液得稀释浓度染液得浓度高其着色快而深,染液得浓度低其着色慢而浅或发绿。
染色时间染色时间长染色效果好,反之较差。
室温高则着色快,染色时间可略缩短,气温低可适当延长.染色用水染液得稀释用水偏酸或偏碱,可用缓冲蒸馏水调整.染色后发现血膜颜色偏蓝(偏碱)或偏红(偏酸)时,可用与之相反得酸、碱度水冲洗血片予以纠正染色后不要直接将染液倒掉沿玻片或染色缸边缘加水使染液表面一层溢出,并轻轻冲洗,以免染液色素颗粒沾污血膜。
4、4、5刚涂制得血膜要平放在标本盒内,厚血膜未干前勿使标本盒倾斜,以免血膜倾向一侧,造成血膜厚薄不均,厚处不
易溶血与着色而影响检查结果。