老鼠染色实验报告

小白鼠肝细胞线粒体的超活染色及观察-实验报告姓名班级 13级生命基地班学号同组者：科目细胞生物学实验实验题目小白鼠肝细胞线粒体的超活染色及观察【实验题目】小白鼠肝细胞线粒体的超活染色及观察【实验目的】1、掌握线粒体的超活染色原理及方法。

2、观察动物肝细胞内线粒体的形态、数量与分布。

【实验材料与用品】1. 试剂：0.02%的詹纳绿B染液、Ringer试剂2. 器具：解剖盘、镊子、剪刀、双凹片、小烧杯、载玻片、盖玻片、胶头滴管、显微镜等3. 材料：小鼠【实验原理】I.线粒体线粒体是一种存在于大多数细胞中的由两层膜包裹的细胞器，直径在0.5-10微米左右；线粒体是细胞内氧化磷酸化和合成三磷酸腺苷的主要场所，为细胞的活动提供了能量，有“细胞动力工厂”之称。

线粒体在代谢活动旺盛的细胞，如肌肉细胞，肝细胞，神经细胞等中大量存在；线粒体的数量差异巨大，如在肝脏细胞中有1000-2000个线粒体，而有些细胞只有一个线粒体，如酵母菌细胞的大型分支线粒体，大多数哺乳动物成熟红细胞不具有线粒体。

线粒体分布方向与微管一致，通常分布在细胞功能旺盛的区域：如在肾脏细胞中靠近微血管，呈平行或栅状排列；在肠表皮细胞中呈两极分布，集中在顶端和基端，在精子中分布在鞭毛中区。

姓名班级 13级生命基地班学号同组者：科目细胞生物学实验实验题目小白鼠肝细胞线粒体的超活染色及观察II.超活染色实验原理超活染色也称活体染色，是指对生命有机体的细胞或组织能着色但又无毒害的一种染色方法；超活染色的目的是显示生活细胞内的某些结构，而不影响细胞的生命活动和产生任何物理、化学变化以致引起细胞死亡。

应用活体染色技术可用来研究生活状态下的细胞形态结构和生理病理状态。

活体染色根据染色剂的性质和染色方法不同分为：体内活染（注入、固定、堆积）、体外活染（分离、浸染、固定）1）体内活染：是以胶体状的染料溶液注入动植物体内，染料的胶粒固定、堆积在细胞内某些特殊结构里，达到易于识别的作用。

小鼠染色体实验报告实验目的：本实验旨在通过染色体观察和分析小鼠基因组的结构和功能，以进一步了解小鼠的遗传特征。

实验材料：1. 小鼠样本（小鼠尸体或小鼠细胞）2. 血细胞裂解液3. 显微镜4. 醋酸酒精定影液实验步骤：1. 取得小鼠样本并进行准备。

尸体样本直接取用，细胞样本需要分离提取。

2. 将小鼠样本悬浮于血细胞裂解液中，进行细胞裂解。

3. 用匀浆棒轻轻研磨，使细胞完全裂解。

4. 将细胞溶液滴于清洁平凹玻片上，并用平玻片将其铺平。

5. 将玻片加热至70℃，使细胞DNA捕获在玻片上。

6. 用醋酸酒精定影液浸泡玻片，使细胞核卷曲收缩。

7. 用显微镜观察染色体的形态和数量。

8. 根据染色体的形态、长度和着色特点进行鉴定和分析。

实验结果与讨论：通过对小鼠样本的染色体观察，我们发现小鼠染色体具有一定的结构和着色特征。

根据染色体的长度和形状，我们可以初步判断出小鼠的染色体是否正常。

特定的染色体畸变或缺失可能表明小鼠有某些遗传疾病或突变。

在本实验中，我们可以观察到小鼠的染色体数量一般为40个。

这与小鼠常见的染色体数目相符，进一步证实了样本的正常性。

我们还可以观察到染色体的长度不一致，这是由于染色体上的基因片段的数量和排列不同所致。

通过进一步的染色体分析，我们可以了解小鼠的遗传特征，如基因突变、遗传疾病等。

这对于进一步研究小鼠的遗传学、发育生物学以及相关疾病模型的建立具有重要意义。

结论：通过对小鼠染色体的观察和分析，我们可以初步了解小鼠的遗传特征。

染色体的形态和数量可以为我们提供重要的基因信息，有助于后续的研究和分析。

本实验为进一步研究小鼠的遗传学提供了基础数据。

小白鼠染色体标本的制作染色与观察染色体是生物体内的遗传物质DNA和蛋白质的组合体，通过对染色体的观察可以了解生物种群的遗传信息和进化变化。

染色体观察在遗传学、病理学等领域具有重要的应用价值。

本文将介绍小白鼠染色体标本的制作方法以及染色和观察的步骤。

1.小白鼠染色体标本的制作方法制作小白鼠染色体标本的过程主要包括取材、处理和固定等步骤。

（1）取材选择健康的小白鼠，尤其是发育期的小白鼠，取得其骨髓或肝脏等组织。

取材时要注意卫生和无菌操作，以保证样品的质量。

（2）处理将取得的骨髓或肝脏等组织放入离心管中，加入等体积的生理盐水悬浮液，并在其中加入适量的KCl溶液进行渗透，使细胞膜变得脆弱，易于裂解释放染色体。

（3）固定将处理后的细胞悬浮液滴到已经消毒的玻璃片上，然后迅速将玻璃片倾斜，让细胞悬浮液自然扩散开来。

待其固定后，用甲醛进行固定处理，固定时间一般为5-10分钟。

2.小白鼠染色体染色的步骤（1）裂解将固定的标本玻璃片在室温下迅速加热至约60℃的热板上，使染色体细胞裂解释放出染色体。

裂解时间一般为5-10分钟。

（2）染色将裂解后的细胞标本浸泡在浓度适当的染色液中，常用的染色液有乔治染色液、甲酸-吡啶染色液和乙酸酒精染色液等。

对于小白鼠染色体标本的染色，乔治染色液是较为常用的选择。

（3）洗涤染色后的标本需要进行洗涤步骤以去除多余的染色液和固定剂。

使用生理盐水或磷酸缓冲液进行反复洗涤，直到洗涤液清澈。

3.小白鼠染色体观察的步骤在染色体标本制作和染色之后，我们可以通过显微镜进行小白鼠染色体的观察，并对染色体进行测量和特征描述。

（1）显微镜观察将染色后的标本玻璃片固定在显微镜载玻片上，使用显微镜进行观察。

观察过程中可以选择不同倍数的镜头以获得更详细的图像。

（2）测量和特征描述通过观察染色体在显微镜下的形态和结构，我们可以测量染色体的长度、形状等参数，并对染色体的特征进行描述，如染色体数量、着丝点的位置等。

总结：小白鼠染色体标本的制作染色与观察是一项重要的生物实验技术，可以帮助我们了解生物的遗传特征和疾病的发生机制。

小白鼠肝细胞线粒体的超活染色及观察
实验目的：1、掌握线粒体活体染色技术
2、观察和了解活细胞内线粒体的形态、结构与分布特点
实验材料：小鼠、解剖盘、镊子、眼科剪、小烧杯、双凹片、载玻片、盖玻片、胶头滴管、詹纳斯绿B溶液、Ringer溶液
实验原理：詹纳斯绿B是毒性较小的碱性染料，可专一性地对线粒体进行超活染色。

这是由于线粒体内的细胞色素氧化酶系的作用，使染料始终保
持氧化状态（即有色状态——蓝绿色）；而线粒体周围的细胞质中，
这些染料被还原为无色的色基（即无色状态）
实验步骤：1、断头法处死小白鼠，置于解剖盘中，剪开腹腔，取小白鼠肝组织。

选取边缘较薄的肝组织0.5cm³，放入小烧杯中，用Ringer溶液冲洗
去血污
2、在干净的凹面载玻片的凹穴中，滴加1/5000詹纳斯绿B溶液，再
将肝组织块移入染液中，注意不可将组织块完全淹没，要使组织块上
面部分半露在染液外，这样细胞内的线粒体酶系可充分得到氧化，易
被染色。

当组织块边缘被染成蓝绿色即成（一般需染20~30min）
3、吸去染液，用眼科剪将组织块着色部分剪下重置小烧杯中，滴加
Ringer溶液0.5ml，用剪刀充分剪碎制悬液。

4、去上述细胞悬液滴片加盖玻片，高倍镜下观察
实验结果：肝细胞中的线粒体被染成蓝绿色
分析与讨论：视野中除肝细胞外还有很多红细胞，红细胞比肝细胞小，且没被染上蓝绿色。

题目：小鼠细胞染色体染色观察一．O bjectives:1.Learn the method of preparation of mouse chromosome frommarrow.学习制备从骨髓中制备小鼠染色体的方法。

2.Understand the morphology and amount of mouse mitotic.了解小鼠有丝分裂期细胞染色体的形态和数量。

二．实验原理1.秋水仙碱，一种生物碱，因最初从百合科植物秋水仙中提取出来，故名，也称秋水仙素。

纯秋水仙碱呈黄色针状结晶，熔点157℃。

易溶于水、乙醇和氯仿。

味苦，有毒。

秋水仙碱能抑制有丝分裂，破坏纺锤体，使染色体停滞在分裂中期。

这种由秋水仙碱引起的不正常分裂，称为秋水仙碱有丝分裂。

在这样的有丝分裂中，染色体虽然纵裂，但细胞不分裂，不能形成两个子细胞，因而使染色体加倍。

2.现今微丝标记方法分为在细胞中标记微丝和活体细胞中标记微丝。

固定细胞中的微丝主要是用带荧光探针的抗体或鬼笔环肽标记，需要对样品进行化学固定和膜的通透。

活体标记常采用荧光类似物标记的方法和GFP标记方法。

三．实验材料及设备1.实验材料：a)秋水仙素稀释液b)小鼠一只c)75mM KCl低渗溶液d)固定液e)Giemas染液2.实验设备：a)普通光学显微镜b)载玻片若干，注射器。

c)酒精灯d)离心管若干、吸水纸、滴管、剪刀、白瓷板等四．实验方法及步骤1.提前3-4h向小鼠腹腔中注射秋水仙素，然后用引颈法处死小鼠。

2.完整取出小鼠股骨（胫骨），取出骨骼表面肌肉和其他结缔组织。

3.将胫骨两端剪开，用注射器吸取适量75mM KCI将骨髓冲洗到离心管中。

4.低渗处理：用约6ml的75mM KCI在37℃下低渗骨髓细胞20min。

5.预固定：加入1-2ml新配制的固定液，用吸管混合均匀，1000r/min离心8分钟6.固定：吸去上清液，沿离心管壁缓缓加入6ml固定液，立即用吸管吹打成细胞悬液，在室温下静置固定15min。

第1篇一、实验目的1. 观察小鼠血涂片，了解小鼠血液细胞的基本结构；2. 学习血涂片制备方法，提高实验操作技能；3. 分析小鼠血液细胞形态，探讨其生理功能和病理变化。

二、实验材料1. 实验动物：小鼠；2. 实验器材：显微镜、载玻片、盖玻片、生理盐水、滴管、吸管、酒精灯、剪刀、镊子等；3. 实验试剂：姬姆萨染液、蒸馏水、甲醇等。

三、实验方法1. 取小鼠尾部，用酒精消毒；2. 用剪刀剪下尾部，用镊子取出少量血液；3. 将血液滴于载玻片上，用另一载玻片刮成薄膜；4. 将制备好的血涂片放入姬姆萨染液中染色，约5分钟；5. 用蒸馏水冲洗，去除多余的染液；6. 将染色后的血涂片放在显微镜下观察。

四、实验结果1. 红细胞：呈双凹圆盘状，大小不一，无细胞核，染色较深；2. 白细胞：分为两种，一种为小淋巴细胞，呈圆形，有细胞核，染色较浅；另一种为大淋巴细胞，呈椭圆形，有细胞核，染色较深；3. 血小板：呈不规则形状，无细胞核，染色较浅。

五、结果分析1. 红细胞：红细胞是血液中主要的携带氧气和二氧化碳的细胞，其形态和数量的变化可以反映小鼠的生理状态和病理变化。

在本实验中，红细胞形态基本正常，大小不一，说明小鼠生理状态良好；2. 白细胞：白细胞具有吞噬、消化、防御等功能，是机体抵抗感染的重要细胞。

在本实验中，白细胞分为小淋巴细胞和大淋巴细胞，形态基本正常，数量适中，说明小鼠免疫系统功能正常；3. 血小板：血小板具有凝血和止血作用，其形态和数量的变化可以反映小鼠的凝血功能。

在本实验中，血小板形态不规则，数量适中，说明小鼠凝血功能正常。

六、结论通过本次实验，我们成功制备了小鼠血涂片，并观察了其血液细胞的基本结构。

实验结果显示，小鼠红细胞、白细胞和血小板形态基本正常，数量适中，说明小鼠生理状态良好，免疫系统功能正常，凝血功能正常。

七、注意事项1. 实验操作过程中，应保持载玻片和盖玻片的清洁，避免污染；2. 染色时间不宜过长，以免影响细胞形态；3. 观察时应注意观察不同细胞的特点，以便准确判断。

第1篇一、实验目的1. 熟悉小鼠组织石蜡切片的制作方法。

2. 掌握石蜡切片的染色、封片等操作技巧。

3. 了解石蜡切片在病理学、生物学研究中的应用。

二、实验原理石蜡切片是一种常用的组织切片技术，通过将组织固定、脱水、透明、浸蜡、包埋、切片、染色等步骤，制作出可以观察的组织切片。

石蜡切片具有切片厚薄均匀、保存时间长、染色效果好等优点，广泛应用于病理学、生物学等领域。

三、实验材料1. 实验动物：健康小鼠2. 试剂：中性甲醛固定液、酒精、二甲苯、石蜡、蜂蜡、苏木精染液、伊红酒精溶液、盐酸酒精溶液、甘油蛋白粘片剂、中性树胶、卡诺固定液等3. 仪器：切片机、恒温箱、蜡杯、酒精灯、解剖剪、培养皿、镊子、单面刀片、包埋盒、染色缸、盖玻片、载玻片、玻片盘、显微镜、温度计、水浴锅等四、实验步骤1. 取材：取健康小鼠组织，用中性甲醛固定液固定24小时以上。

2. 脱水：将固定好的组织从固定液中取出，依次放入70%、75%、80%、85%、90%、95%、100%乙醇中，各浸泡1小时，然后放入无水乙醇I、无水乙醇II中，各浸泡30分钟，最后放入醇苯中浸泡5-10分钟。

3. 透明：将脱水后的组织放入二甲苯中浸泡5-10分钟，重复2次。

4. 浸蜡：将透明后的组织放入石蜡中浸泡4小时，然后放入蜡I、蜡II、蜡III 中，各浸泡1小时。

5. 包埋：将浸蜡后的组织取出，放入融化的石蜡中，迅速包埋，待石蜡凝固后取出蜡块。

6. 切片：将包埋好的蜡块置于切片机上，切片厚度为4微米。

7. 水化：将切片放入水中，用镊子将切片取出，放入载玻片上。

8. 染色：将切片放入苏木精染液中染色5分钟，然后用盐酸酒精溶液分化，再放入伊红酒精溶液中复染2分钟。

9. 封片：将染好的切片用中性树胶封片，待封片干燥后即可观察。

五、实验结果通过以上步骤，成功制作出小鼠组织石蜡切片，切片厚度均匀，染色效果良好，可以观察到组织细胞的形态和结构。

六、实验讨论1. 实验过程中，脱水、透明、浸蜡等步骤是制作石蜡切片的关键环节，需要严格控制时间和温度，以保证切片质量。

第1篇一、实验目的1. 掌握小鼠墨汁染色的原理和方法。

2. 观察小鼠皮肤细胞的形态和结构。

3. 学习使用显微镜进行细胞观察。

二、实验原理墨汁染色是一种简单的细胞染色方法，适用于观察皮肤细胞的形态和结构。

墨汁中含有天然色素，能够与细胞中的蛋白质结合，使细胞结构在显微镜下更加清晰可见。

三、实验材料1. 小鼠（成年小鼠，性别不限）2. 墨汁（市售墨汁，确保不含化学添加剂）3. 生理盐水4. 75%酒精5. 镜检设备（包括显微镜、载玻片、盖玻片等）6. 实验记录本四、实验步骤1. 准备小鼠：选择一只健康的小鼠，将其固定在实验台上。

2. 取皮肤：用消毒的手术刀在小鼠腹部皮肤上轻轻划一小口，使皮肤部分暴露。

3. 染色：用棉签蘸取少量墨汁，均匀涂抹在暴露的皮肤上，确保墨汁覆盖整个皮肤表面。

4. 等待：等待约10分钟，让墨汁充分渗透皮肤细胞。

5. 清洗：用生理盐水轻轻冲洗皮肤，去除多余的墨汁。

6. 制片：用无菌载玻片刮取皮肤组织，滴加生理盐水，制作成细胞涂片。

7. 干燥：将涂片放在室温下自然干燥。

8. 封片：将干燥后的涂片用盖玻片封好。

9. 显微镜观察：将涂片置于显微镜下，使用油镜观察皮肤细胞的形态和结构。

五、实验结果在显微镜下观察，可以看到小鼠皮肤细胞呈现出以下特征：1. 细胞核：染色质结构清晰，可见明显的核仁。

2. 细胞质：细胞质内含有丰富的细胞器，如线粒体、内质网等。

3. 细胞膜：细胞膜完整，可见明显的界限。

六、实验讨论1. 墨汁染色是一种简单易行、成本低廉的细胞染色方法，适用于观察皮肤细胞的形态和结构。

2. 通过本实验，我们掌握了小鼠墨汁染色的原理和方法，为后续实验奠定了基础。

3. 实验过程中，需要注意以下几点：- 选择健康的实验动物，以保证实验结果的准确性。

- 染色时间不宜过长，以免细胞结构受到破坏。

- 清洗时要确保去除多余的墨汁，以免影响观察效果。

七、实验总结本次实验成功地观察了小鼠皮肤细胞的形态和结构，掌握了小鼠墨汁染色的原理和方法。

细胞生物学实验报告小鼠睾丸细胞染色体的制备和观察刘欣怡 2011001400572011级生物基地班同组者：刘艺2013年5月23和30号周四下午一、实验目的1、了解小白鼠睾丸细胞染色体的形态及数目。

2、初步掌握小白鼠睾丸细胞染色体的玻片标本制作方法。

3、观察动物细胞染色体的数目和形态。

4、了解快速制备动物染色体的方法和原理二、实验器材1、材料：小白鼠。

2、试剂：秋水仙素、 0.3% KCl低渗液、固定液（甲醇：冰醋酸=3：1）、 Giemsa 染液、 0.9%生理盐水、柠檬酸钠溶液3、仪器以及用具注射器（1ml,5ml）、 5号针头、解剖盘、解剖剪、镊子、玻璃吸管、 10ml 刻度的离心管、离心机、载玻片、盖玻片、显微镜、滤纸、擦镜纸、棉花、量筒、天平、恒温水浴锅等。

三、实验原理1、染色体染色体是基因的载体。

真核细胞染色体的数目和结构是重要的遗传指标之一。

制备染色体标本无疑是细胞学最基本的技术之一，优良的染色体制片是进行染色体显带、组型分析、原位杂交等的先决条件。

染色体的制备在原则上可以从所有发生有丝分裂的组织和细胞悬浮液中得到。

最常用的途径是从骨髓细胞、血淋巴细胞和组织培养的细胞中制备染色体。

小型动物的染色体制片最好最有效的材料就是骨髓组织。

骨髓细胞中，有丝分裂指数相当高，因此可以直接得到中期细胞而不必象淋巴细胞或其它组织那样要经过体外培养；对大型动物通常采用对骨骼、脊或胸骨穿刺术吸取红骨髓，小型动物多采用剥离术取股骨以获得骨髓细胞。

本实验采用的方法是从小鼠的睾丸细胞中获取。

染色体的形态结构在细胞增殖周期中是不断地运动变化的，一般在有丝分裂中期，染色体的形态最典型、最易辨认和区分。

因此，制备染色体标本获取的是中期细胞。

图1染色体形态类型染色体特征：(1)数目（2n=？）;(2)长度（绝对长度、相对长度）;(3)着丝粒位置（M\SM\ST\T）;(4)随体与次溢痕的数目、大小和位置;(6)带型分析。