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微生物标本采集及保存要求引言微生物标本的采集和保存是微生物学研究和诊断的基础。
正确的采集和保存方法能够确保标本的质量和完整性，并提供可靠的结果。
本文将介绍微生物标本采集和保存的要求，旨在帮助人们正确进行微生物标本的处理。
1. 标本采集前的准备在进行微生物标本采集之前，准备工作是至关重要的。
以下是一些需要注意的事项：•准备采集工具和材料: 预先准备好所需的采集工具和材料，如无菌容器、无菌拭子等。
•确保个人卫生: 采集标本前，采集人员应洗手，佩戴适当的个人防护设备，例如手套和口罩，以防止交叉感染。
•了解采集部位和要求: 在采集标本前，了解所要采集的部位和采集要求，以便采集人员能够正确操作。
2. 标本采集步骤下面是一些常见微生物标本的采集步骤：2.1 血液标本血液标本是常见的微生物病原体检测标本之一。
以下是血液标本的采集步骤：1.选择合适的采集部位: 常用的采集部位有静脉内和指尖采血。
根据需要选择合适的采集部位。
2.消毒采集部位: 使用适当的消毒剂对采集部位进行消毒，以减少细菌的污染。
3.利用无菌注射器或放血针采集血液: 选择合适的采血设备，按照正确的技术和步骤采集适量的血液。
4.将血液转移到无菌容器中: 将采集到的血液转移到适当的无菌容器中，如血培养瓶或离心管。
2.2 呼吸道标本呼吸道标本用于检测呼吸道感染。
以下是常见的呼吸道标本采集步骤：1.依照需要选择合适的采集方法: 常见的呼吸道标本采集方法包括咽拭子、鼻拭子、喉拭子等，根据需要选择合适的采集方法。
2.使用无菌拭子采集标本: 使用无菌拭子轻轻刮取相应部位的分泌物，注意避免刮伤黏膜。
3.将拭子转移到无菌容器中: 将采集到的标本拭子放入无菌容器中，并确保容器密封。
2.3 尿液标本尿液标本常用于病原体的检测和诊断。
以下是尿液标本的采集步骤：1.准备容器和适当的采集方法: 准备无菌容器和适当的采集方法，如尿杯或导尿管。
2.进行尿液采集: 采集尿液时应注意保持个人卫生，避免污染。
微⽣物标本采集⽅法及注意事项 微⽣物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有⼗分密切的关系。
医⽣、护⼠、检验⼈员均应重视微⽣物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进⾏正确采集标本的宣传和指导。
下⾯是yjbys店铺为⼤家带来的微⽣物标本采集⽅法及注意事项，欢迎阅读。
⼀、粪便标本采集和处理 (1)采集⽅法 1.⾃然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓⾎、或絮状物等有意义成分，2～3g或 1～2 m1，盛⽆菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋⽩胨⽔中(PH8.6)。
2. 直肠拭⼦法：难以获得粪便或排便困难患者及幼⼉可采⽤此法，将拭⼦前端⽤⽆菌⽢油或⽣理盐⽔湿润,然后插⼊肛门约 4～5cm(幼⼉ 2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。
擦取直肠表⾯粘液后取出，盛于⽆菌试管中或保存液中送检。
(2) 注意事项 1.尽可能在抗⽣素使⽤之前采集标本。
2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆)，粪便样本中不应混⼊尿液及其他异物，采集过程应尽量⽆菌操作。
3.不应⽤厕纸收集粪便。
4.对同⼀病⼈在同⼀天不宜重复送检。
5.宜在感染急性期(通常是5d-7d内)采集标本。
6.下列腹泻患者应连续3d送检标本 --社区获得性腹泻(⼊院前或72h内出现症状) --医院腹泻(⼊院72h后出现症状)，且⾄少有下列情况之⼀：⼤于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞<0.5)及疑似院内暴发。
--怀疑肠道感染的⾮腹泻性表现。
7.肠炎和发热病⼈建议做⾎培养。
8.伤寒沙门菌感染时⾻髓培养⾼出⾎培养。
9新鲜粪便标本应在采集后尽快送检，不应超过2h。
(3)标本拒收 ⼲燥的拭⼦、含钡粪便、黄软成形便、⼲便、明显污染的粪便、⼀⽇内重复送检的标本，应设法与临床医师联系，可要求重新留取标本，并做好记录，在没有与医师沟通之前标本不应丢弃，仍按实验室标本保存原则存放。
⼆、尿液标本采集和处理 (1)采集⽅法 1. 中段尿采集法：清晨起床后⽤肥皂⽔清洗尿道⼝和外阴部，再⽤清⽔冲洗尿道⼝周围，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿 5～10ml盛于带盖的⽆菌容器内⽴即送检，采集后于0.5h内进⾏接种。
临床微生物检验标本采集程序1 标本采集的基本原则：1.1 严格的无菌操作，避免污染，避免来自寄生菌的污染，应当保证每份样本代表感染过程｡1.2 选择正确的解剖部位、合适时间、合乎规程技术，采集样本。
1.3 选择合适的部位采集用于厌氧菌培养的样本。
1.4 要收集足够量的样本，量少可能导致假阴性结果。
1.5 应尽可能在病人使用抗菌药物前采集样本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
1.6 血培养样本在病人寒颤和发热初起时为最佳时机。
1.7 导尿留取样本时，不可从尿袋中采集样本。
引流液样本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。
1.8 各类微生物样本不宜加防腐剂1.9 盛标本的容器须先经灭菌（煮沸、高热、或高压灭菌），但不得用消毒剂或酸类处理。
1.10 有些临床标本还要注意采集的时机和部位，如伤寒沙门菌的阳性检出率，发病的第1～2 周采集血液，第3～4 周采集大便和尿液，阳性率较高。
1.11 样本的运送处理和储存规定1.11.1 样本2h之内送到实验室。
1.11.2 血培养瓶如果不能及时送检，应置室温保存（但不得超过24 小时）。
禁止将不能及时送检的血培养瓶放置冰箱保存。
1.11.3 淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌培养时，样本不能放4℃条件保存，应在30min内送检，并注意保温。
1.11.4 痰培养疑为嗜血杆菌、肺炎链球菌感染时，应立即送检，因为这些细菌在自然环境中极易死亡。
1.11.5 导管样本如不能在规定时间内送检，应在盛装导管的容器中加少量无菌生理盐水，以免导管干燥，病原微生物死亡。
1.11.6 活检组织样本和眼分泌物样本应在30min内送检，如样本较小或不能在规定时间内送检，应在盛装组织的容器中加少量无菌生理盐水，以免样本干燥，病原微生物死亡。
不可用纱布包裹组织样本。
2 常见临床微生物标本的采集方法。
2.1 血液及骨髓样本2.1.1 检验项目：血液及骨髓培养。
2.1.2 适应症病人出现以下临床表现：发热（38℃）或低温（36℃）、寒战、白细胞增多（白细胞数>10×109/L，特别有“核左移”时）、皮肤粘膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、C反应蛋白升高及呼吸加快、血液病患者出现粒细胞减少、血小板减少等临床可疑血流感染时应采集血液样本进行血培养及骨髓培养。
临床微生物学标本采取和处理的规范化要求正确的采取、处理与运送用于细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键.标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不当将严重影响检验结果,给临床以误导，延误对患者的正确治疗。
为此，我们提出初步的参考意见，并希望在实践中不断完善。
一、血液细菌培养标本的采集和处理临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。
1．采集方法:静脉采血，以无菌操作方法抽取血液后,直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固.如果同时作需氧和厌氧培养，应先将标本接种到厌氧瓶中,再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。
2。
采血时间以及血培养份数:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前，用药前24小时内采集2～3次血液标本,可使细菌检出率高达99％.对间歇性寒战或发热的患者,应在寒战或体温高峰到来之前0。
5～1小时采血，亦可在寒战或发热后1小时采集血液标本。
特殊感染患者采血培养时应遵循以下原则：（1）可疑急性发热性菌血症、败血症患者：应在使用抗菌药物之前，在24小时内从不同部位采集2~3份血液标本培养.(2)可疑细菌性心内膜炎患者、感染性心内膜炎患者：在1～2小时内采集3份血标本培养,如果24小时后阴性,再采集两份血标本培养。
(3）不明原因发热患者：先采集2～3份血标本，抽血间隔60 min，24~36小时后体温升高之前，再采集2份血标本进行培养。
因为1次血培养不足以说明问题,可能会遗漏阳性结果。
（4）可疑菌血症但血培养持续阴性时;应改变血培养方法,以获得罕见或苛养的微生物。
（5）在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本.3。
采血部位:采血部位通常为肘静脉。
疑为亚急性心内膜炎的患者，以肘动脉或股动脉采血为宜。
疑为细菌性骨髓炎或伤寒患者，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓。
微生物标本操作流程一、采集标本1.根据需要使用的微生物种类，选择采集适当的标本类型，如血液、尿液、呼吸道分泌物、伤口分泌物等。
2.采集前洗手，戴好手套，保证操作无菌。
3.根据标本类型选择适当的采集方法，如穿刺、切开、吸引等。
4.采集标本时避免污染和损伤，采集的标本量要充足，确保后续实验的需要。
5.采集后立即将标本放入合适的容器中，并用合适的保存液固定标本。
二、保存标本1.封闭保存a.无菌标本应尽快处理。
b.根据需要，选择适当的保存方式：常温、4℃、-20℃，-80℃等。
c.使用密封标本袋、离心管等避免样本污染。
d.根据需求添加保存液，如生理盐水、甘油、琼脂糖等。
2.运输保存a.标本运输前应按照需要将标本进行适当保存。
c.标本运输时需要严格遵守相关的运输规定和防护措施，避免标本在运输过程中受到污染或损坏。
三、处理标本1.无菌条件下进行标本处理。
2.打开封闭的标本容器时，应尽量减小环境污染。
3.首先进行外部检查，检查标本是否完整，有无明显破损或渗漏。
4.根据需要，将标本分为不同的试管或培养皿中，避免不同菌种相互干扰。
5.针对具体需求，对标本进行不同的处理，如离心、稀释、加酶处理等。
四、传递标本1.打开封闭的标本容器时，应尽量减小环境污染。
3.准备适当的传递容器和传递材料，避免标本在传递过程中受到损坏或污染。
4.标本传递时应尽快送至指定的实验室，避免标本在传递过程中受到温度变化、时间延误等因素的影响。
五、清洗操作区域和工具1.实验完成后，需要对操作区域进行清洁2.清洗操作区域可以使用含有消毒剂的清洁剂，如含有氯己定的漂白粉或消毒液。
3.清洗使用过的工具，如采集器具和传递容器等，使用适当的清洁剂和消毒液进行清洗和消毒，保证无菌状态。
微生物标本操作流程的重点是保持标本的无菌状态，避免标本的污染和损伤。
在每一步操作中，都要严格遵守操作规程和消毒措施，以确保标本的质量和准确性。
此外，还需要根据具体实验需求，选择适当的保存液、保存条件和传递方法。
微生物检验标本的正确采集及注意事项
正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。
可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。
下面是yjbys小编为大家带来的微生物检验标本的正确采集及注意事项的知识，欢迎阅读。
一、血液标本的采集
1、采集方法
（1）75%酒精清洁局部皮肤。
（2）待皮肤干后，再用2%—2。
5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5—10ml，婴幼儿1—5ml。
（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。
2、注意事项
（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38。
5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。
（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。
切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
（3）培养基与血液之比以10：1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20：1或大于这个比例。
微生物实验室标本采集及运送程序
1.目的
规范标本采集程序，保证实验室检测前标本质量。
2.范围
微生物标本。
3.职责
3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。
3.2 标本运输人员负责收取标本和运输标本至微生物室。
4.程序
4.1病原微生物的培养必须到微生物实验室领取无菌器皿、血培养增菌液瓶等留取标本。
4.2病原微生物的培养标本必须在2小时内由输送中心送检并立即按种。
特殊标本（如脑脊液、前列腺液、白带等）应立即送检并接种。
4.3实验室标本姓名、编号或者标本采集不符合要求时要退回重留标本。
微生物标本采集操作规程
美国临床实验室标准化委员会（NCCLS）
1 概述
临床通常将正常人喉以上部位称之为上呼吸道，上呼吸道定植有大量的正常菌群，而气管以下包括气管、支气管和肺泡称下呼吸道，通常无菌。
下呼吸道分泌物经过上呼吸道排出时常受该处的正常菌群的污染。
下呼吸道感染包括急性气管-支气管炎、慢性支气管炎急性发作、支气管扩张继发感染及肺实质感染（肺炎、肺脓肿）等。
病原体有细菌、病毒、衣原体、支原体、真菌、立克次体和原虫等。
上呼吸道感染临床诊断一般不难。
细菌学检验能明确感染病原及药敏结果，有助于疾病治疗、流行病学调查和医院感染的监测。
2 物品准备与申请
2.1 领取清洁痰盒，推荐到采购办领取专门痰盒。
请拿检验申请单到病房二楼细菌室登记领取。
细菌室周一到周六上午正常上班。
其他时间如中午、夜班、节假日请到生化室联系。
2.2 填写检验申请单。
用钢笔填写，字迹清楚，填写完整。
填写内容包括：患者姓名、性别、年龄、科别、病区、床号、住院号、临床诊断、送检目的、申请医生及送检时间。
3采集指征
痰液标本是临床微生物学检验最常见的的标本，但不是下呼吸道感染的最佳标本。
有下列体征之一，应进行痰培养：
（1）咳嗽咳嗽咳痰是下呼吸道感染最常见的症状。
（2）咯血包括泡沫血痰、鲜血和痰中带血等。
（3）呼吸困难呼吸急促或哮喘，常伴有胸痛。
（4）发热伴白细胞增高尤其是中性粒细胞或CRP明显增高。
（5）胸部影像学检查提示有感染可能。
4采集方法
4.1 自然咳痰法以晨痰为佳，采集标本前应用清水、冷开水漱口或用牙刷（不用牙膏）清洁口腔和牙齿，有假牙者应取下假牙。
尽可能在用抗菌药物之前采集标本。
用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入痰盒中，标本量应≥1ml。
咳痰困难者可用雾化吸入加温至45°C的10% NaCl水溶液，使痰液易于排出。
对难于自然咳痰患者可用无菌吸痰管抽取气管深部分泌物。
4.2 支气管镜采集法、防污染毛刷采集法、环甲膜穿刺经气管吸引法、经胸壁针穿刺吸引法和支气管肺泡灌洗法，均由临床医生按相应操作规程采集，但必须注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群的污染。
其中气管穿刺法仅用于昏迷患者。
4.3 小儿取痰法用弯压舌板向后压舌，将拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳痰时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上送检。
幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。
5标本运送和验收
5.1 标本应尽快送检，不能及时送检的标本，室温保存≤2h，4℃冰箱保存≤24h。
规定每日1次。
5.2 下呼吸道细菌学检验标本验收与拒收见下：（1）呼吸道有大量的正常菌群存在，咽拭子、咳痰、吸出的分泌物厌氧菌培养无意义。
（2）申请单填写应完整无误。
标本标识必须唯一，并与申请单相符，未标采集时间、部位或检验要求等拒收。
（3）痰标本呈水样或唾液样，有明显食物残渣、灰尘纸屑者拒收。
（4）涂片白细胞和鳞状上皮细胞计数：白细胞＜10／低倍镜或鳞状上皮细胞＞25／低倍镜，表示该标本已污染正常菌群，建议重送标本。
（5）送检时间超过2h拒收。
（6）同时同部位或同一天两份相同检测的标本，应与申请医生协商处理。
脓液标本采集操作采集方法
4.1 开放脓肿用无菌盐水或70％酒精擦去表面渗出物，用拭子深入溃疡基底部或边缘部，采集两个拭子，分别做培养和革兰染色，也可对渗出物做需氧培养。
开放病灶不能做厌氧培养。
4.2 闭锁脓肿不能用拭子，要消毒脓肿表面皮肤后用无菌注射器抽取，刺入无菌橡皮塞中送检。
4.3 烧伤伤口清创，出现渗出物后用拭子用力采集，仅做需
氧培养。
也可送组织标本。
4.4 脓疱或水疱酒精消毒，干燥，用针头（小儿用23号针头）挑破脓疱，用拭子采集脓疱液和基底部标本。
4.5 注意事项：对大多数开放伤口，采集前应先清创，去除表面菌群。
除非有渗出物，干燥、结痂伤口一般不做培养。
闭合脓肿应取穿刺物和脓肿壁标本。
开放脓肿处理同开放伤口。
不要仅仅送检脓液，应在病灶活动区域或基底部采集标本，最好是组织标本
生殖道标本采集操作
采集方法
应由临床医师采集，收集于无菌试管内送检。
淋球菌检查时，不论男女尿道及子宫颈均需用拭子插入尿道及子宫颈3cm深取样送检，要避免受阴道分泌物污染。
4.1 男性标本: (1) 如疑为急性淋病奈瑟菌或其他化脓性细菌感染应在清洗龟头部后,以碘伏或其他非粘膜刺激性消毒剂消毒后,挤出分泌物立即以无菌棉拭子采取,立即送检,或以专用的细拭子插入尿道口1～2 cm ,旋转采取。
(2) 如疑为前列腺炎、精囊炎或慢性淋病奈瑟菌感染应由医师按摩前列腺,以无菌手续自尿道口采取前列腺液送检。
4.2 女性标本: (1) 成年妇女自宫颈采取标本,应在扩阴器的支持下,选取有炎症或分泌物部位,先以无菌棉拭子拭去表浅层分泌物,再用另一拭子取宫颈分泌物送检。
如做厌氧
或真菌培养应另外采取标本。
如怀疑淋球菌感染，应同时另外采集一份肛门拭子标本。
(2) 如未成年幼女疑患性传播疾病时,不应使用扩阴器,应以无菌拭子在阴道口处采取分泌
物送检。
眼、耳、鼻、喉标本采集操作
4 采集方法
4.1 眼结膜标本预先沾湿拭子，在结膜上滚动采集标本。
标本在15min内送达实验室。
4.2 眼角膜标本在麻醉下，用刮勺在溃疡或创伤边缘刮取碎屑，立即送检。
眼部感染所获得的标本量很少，建议医师取样后直接接种在培养基平板上培养。
4.3 口咽部标本先用一个拭子揩去溃疡或创面表浅分泌物，第二个拭子采集溃疡边缘或底部，常规培养≤2h送检。
4.4 患有外耳炎者，需要深部拭子，因为浅表拭子可能遗漏链球菌引起的蜂窝织炎。
4.5 鼻标本用一根无菌棉拭子伸进一侧鼻孔约2.5cm，与鼻黏膜接触，轻轻旋转拭子，蘸取黏膜上分泌物，缓慢取出，直接送检。
4.6 注意事项:（1）眼、耳、鼻、喉标本采集后应立即送检，防止干燥，禁止冷藏。
（2）应注明标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜还是角膜等，并注明左眼还是右眼。
结膜标本最好取双眼、双份，每
眼取一份用于培养，一份做革兰染色。
（3）不建议用鼻咽拭子标本做常规细菌培养。
（4）眼、耳、鼻、喉拭子标本一般不能做厌氧培养。
