微生物标本采集规范(1)

临床微生物样本采集规范临床微生物样本采集规范1. 范围和目的本规范适用于临床微生物样本的采集、处理和管理，旨在保证样本采集的质量和规范性，确保临床微生物诊断结果的准确性和可靠性。

2. 术语和定义（1）微生物：指包括细菌、真菌、病毒、支原体、立克次体、螺旋体等在内的微小生物体。

（2）临床样本：指从患者体内采集的各种生物标本，如血液、口腔、鼻咽部、骨髓、尿液、痰液、脑脊液等。

（3）采集容器：指用于采集临床样本的容器，如血液采集管、尿样瓶、培养皿等。

（4）采集套装：指一次完整的样本采集过程中所需的所有采集工具和材料。

3. 采集前准备（1）确定采集部位、时间和采集方式，注意患者的生命体征和病情变化。

（2）准备好所需的采集套装和采集容器，在样本采集前做好标签，并核对患者信息。

（3）认真阅读所有相关规范和实验室要求，确保样本采集符合要求。

4. 采集操作步骤（1）根据采集部位和样本类型选择合适的采集套装。

（2）采集前应让患者了解采集的目的和过程，并获得其同意。

（3）采集前要检查采集部位，患者的身体状态和生命体征，确保采集过程安全和无痛苦。

（4）采血时应注意采血量、采血速率、采血部位、采血方式等。

（5）尿样采集时应注意尿样的采集量、采集时间、采集方式、保护好样本的完整性和纯度。

（6）痰液采集时应注意痰液的颜色、黏度、量和纯度，选择合适的采集器具和采集方式。

（7）脑脊液采集时应注意采集部位、采集方式、采集量、采血顺序和样本处理标准等。

（8）其他临床样本采集时，应根据具体要求和操作规范，选择合适的采集方法和器具。

5. 样本运输和储存（1）在采集后，立即将样本放入相应的采集容器中，尽快送至实验室进行处理。

（2）若无法立即处理样本，应按要求在采集容器中注明采集时间和采集者信息，并存储在规定温度下，以便后续处理。

（3）运输过程中应遵循规范，确保样本不泄漏、不污染，并尽快送至目的地。

（4）储存过程中应保持样本的纯度和完整性，控制储存温度，在保质期内使用。

微生物标本采集原则血液标本：采血时间：应在抗生素治疗前、发热初期或高峰时为好。

方法：以无菌方法从患者静脉采血，血液抽出后，立即以无菌操作注入双相培养瓶中，充分混匀后送检。

采血量：成人3-5ml；小孩1-3ml。

脑积液标本：方法：由临床医生以无菌操作作腰椎穿刺，取收集于第一支无菌试管中的脑脊液（2-3ml）立即送检。

穿刺液标本（胸水、腹水、心包积液及关节液等）：方法：用无菌方法用注射器抽取体内可疑感染部位的液体（胸水、腹水、心包积液及关节液等），立即以无菌操作注入双相培养基瓶中，充分混匀后送检。

痰标本：采集时间：一般以晨痰为好。

方法：在流取痰标本前用清水反复漱口（务必刷牙），以减少常居菌污染，后尽量咳出气管深部痰标本，吐入无菌容器内立即送检。

咽拭标本：用无菌棉拭纸搽拭患者鼻烟部黏膜，置无菌试管内送检。

尿液标本：方法：留取标本前先清洗外阴或尿道口，弃去前段尿，留取中段尿于无菌容器内送检。

标本量：5-7ml。

生殖道标本：女性：用无菌棉拭采集阴道或宫颈分泌物盖回试管内送检。

男性：务必将尿道口清洗干净，用无菌男性棉拭采集尿道分泌物。

采集前列腺液时将按摩流出的前列腺液滴于无菌男性棉拭送检。

浓液及创伤感染分泌物标本：封闭性脓肿标本：消毒局部皮肤或黏膜表面后，用注射器抽取，将注射器针头盖回立即送检。

开放性伤口分泌物：先用无菌生理盐水冲洗伤口表面，用无菌棉拭尽量取伤口深处分泌物送检。

表面皮肤刮片标本（真菌培养）：在病灶皮肤表面用玻片轻轻刮取，将皮肤表皮刮起，将无菌棉拭用无菌生理盐水弄湿涂取刮起的皮削送检。

粪便标本：自然排便后，用无菌棉拭挑取其浓血、粘液部分送检。

注：1、所有标本采集容器都应是一次性、经过灭菌及带盖的无菌容器。

2、请各位医生及护士严格按照无菌操作原则采集标本，否则将会误导临床诊断和治疗等后果。

3、标本采集时如有疑问请致电检验科质询。

伤口微生物标本采集法（一）——表面伤口微生物标本的采集
慢创中心吴帅
在压疮的整个治疗中，创面分泌物的培养是其中不可或缺的一个环节，下面具体介绍分泌物培养的留取方法及注意事项。

采集方法：
（1）用无菌生理盐水充分冲洗，以去除表面的渗出物、坏死组织和残留的敷料纤维，确保伤口是干净的。

（2）用无菌棉拭子擦涂创面的边缘和基底，应用10点取材法沿数字走“之”字形涂抹，拭子要不停转动，并以一定压力擦拭创面，确保拭子吸收足够的伤口渗液。

（3）拭子放在运送培养基中立即送检。

注意事项：
（1）采样时为了减少定植菌的混入，建议先轻轻擦去创面处皮肤表面的脓液，擦拭时如使用棉球容易使棉絮遗留在伤口内，因此建议使用完整的无菌方纱。

（2）为了不混入消毒液影响细菌生长，应该采用无菌生理盐水充分冲洗，避免使用消毒液擦拭伤口表面。

（3）焦痂不应用于细菌培养，要去除坏死和失活的组织，再做培养，因为细菌最多在坏死和正常组织之间。

（4）采集压疮边缘的脓性分泌物，不要采集创口周围的渗液。

（5）如果渗液较多，能抽出液体来，就尽量使用穿刺的方法采集标本，棉拭子对细菌有一定的抑菌作用。

微生物检验标本采集规范
正确采集、运送、保存及处理微生物检验标本，对于保证微生物检验质量至关要，为了准确检出病原菌，避免漏检及误诊，临床医护人员及实验室工作人员应掌握微生物检验标本采集、运送、保存及处理原则。

下面是yjbys 小编为大家带来的关于微生物检验标本采集规范的知识，欢迎阅读。

标本采集的一般原则：
1、早期采集：采集时间最好是病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物(俗称消炎药)之前采集，确保病原菌的检出;
2、无菌操作：采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或黏膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本，采集的标本盛于无菌容器内送检。

盛装标本的容器不能使用消毒剂处理，标本中也不得添加防腐剂，以免降低病原菌的分离率;
3、适量标本：标本量过少可能导致假阴性结果。

各种标本采集注意事项：
一、呼吸道标本采集
(1) 送检指征：凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性，黏稠或血性，并伴有胸痛，气急，外周血白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，应采集痰液或下呼吸道标本。

(2) 标本采集时间：a、以晨痰为好，患者清晨用凉开水反复漱口后用力自气管咳出第一口痰，将痰采集于无菌容器中尽快送检。

b、在应用抗菌药物之前采集标本。

二、脓液及创伤感染分泌物标本采集
(1) 送检指征：红、肿、热、痛和功能障碍是化脓性感染的五个典型特征。

临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。

在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。

本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。

一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。

采集工具应一次性使用，避免交叉感染。

2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。

将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。

（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。

将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。

（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。

将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。

3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。

（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。

（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。

二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。

如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。

2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。

标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。

3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。

如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。

4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。

在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。

微生物标本采集及保存要求一、总则：用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。

二、临床标本的采集（一）下呼吸道分泌物（痰液）令患者早上起床后用清水濑口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。

（二）、尿液（中段尿）护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中，及时送检。

（三）、粪便：取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中，如为稀水便，可直接收集于玻璃管中，及时送检。

（四）、眼、耳、鼻、喉拭子：将棉拭子沾取少许无菌生理盐水（如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份），然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌试管内,及时送检。

（五）、脓液：用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌试管中，及时送检。

（六）、：1、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。

当然在病人发热或寒颤时采集也可。

2、成人每次采血5—10ml，小儿采血2—3ml；3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀，4、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。

（七）、穿刺液：胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液：严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的，或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。

（八）、胆汁：由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。

（九）、脑脊液：以无菌方法取脑脊液3-5ml，置无菌试管内，常温保存送检，如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内，及时送检。

（十）、生殖器官标本：阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌试管内送检。

如疑为淋病奈瑟菌感染，做培养检查时，采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。

微生物标本采集方法及注意事项一、粪便标本采集和处理(1)采集方法1.自然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2～3g 或 1～2 m1，盛无菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中(PH8.6)。

2. 直肠拭子法：难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采用此法，将拭子前端用无菌甘油或生理盐水湿润,然后插入肛门约 4～5cm(幼儿 2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。

擦取直肠表面粘液后取出，盛于无菌试管中或保存液中送检。

(2) 注意事项1.尽可能在抗生素使用之前采集标本。

2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆)，粪便样本中不应混入尿液及其他异物，采集过程应尽量无菌操作。

3.不应用厕纸收集粪便。

4.对同一病人在同一天不宜重复送检。

5.宜在感染急性期(通常是5d-7d内)采集标本。

6.下列腹泻患者应连续3d送检标本--社区获得性腹泻(入院前或72h内出现症状)--医院腹泻(入院72h后出现症状)，且至少有下列情况之一：大于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞--怀疑肠道感染的`非腹泻性表现。

7.肠炎和发热病人建议做血培养。

8.伤寒沙门菌感染时骨髓培养高出血培养。

9新鲜粪便标本应在采集后尽快送检，不应超过2h。

(3)标本拒收干燥的拭子、含钡粪便、黄软成形便、干便、明显污染的粪便、一日内重复送检的标本，应设法与临床医师联系，可要求重新留取标本，并做好记录，在没有与医师沟通之前标本不应丢弃，仍按实验室标本保存原则存放。

二、尿液标本采集和处理(1)采集方法1. 中段尿采集法：清晨起床后用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用清水冲洗尿道口周围，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿 5～10ml盛于带盖的无菌容器内立即送检，采集后于0.5h内进行接种。

2. 耻骨上膀胱穿刺法：评估膀胱内细菌感染的“金标准”。

培养结果与临床病情矛盾时可采用此法，一般较少应用。

3. 导尿法：采用无菌技术用注射器经导尿管抽取尿液，导取 10～15ml 尿液，置无菌容器中送检，尿液标本不能通过收集袋引流管口流出的方式采集。