微生物标本的正确采集运送及注意事项

临床微生物标本采集和运送基本原则摘要：一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.采集方法3.采集容器4.无菌操作三、微生物标本运送的基本原则1.快速送检2.妥善保存3.避免污染四、标本采集和运送的注意事项正文：临床微生物标本采集和运送基本原则是确保微生物检验结果准确、可靠的关键环节。

正确的采集和运送方法可以有效地捕捉与感染相关的病原菌，并保持其活性，同时减少其他与感染无关细菌的干扰。

一、微生物标本采集和运送的重要性微生物标本采集和运送在临床微生物学检验中具有重要意义。

它直接影响到病原菌的检出率和检验结果的准确性，为临床治疗提供重要依据。

二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机：为避免漏检，确保病原体的检出，应尽量在抗菌药剂使用前采集标本。

2.采集方法：采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。

3.采集容器：标本采集时应使用专用的无菌容器，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂等添加剂。

4.无菌操作：采集过程中应严格执行无菌操作，避免微生物污染。

三、微生物标本运送的基本原则1.快速送检：标本采集后应尽快送检，避免细菌在室温下长时间保存导致活性降低。

2.妥善保存：标本在运输过程中应妥善保存，避免高温、湿度、振动等影响标本的质量。

3.避免污染：运输过程中应防止标本受到污染，避免与其他物品混放。

四、标本采集和运送的注意事项1.标本的唯一性：送检申请单必须惟一标识，以便实验室能针对该标本选用相应培养基和适宜培养环境。

2.信息完整：送检申请单应注明样品名称、型号、年月、性状、标本来源、采集时间、检验目的及添加物使用情况等。

3.特殊标本的处理：对于特殊类型的标本，如血液、脑脊液等，应严格按照相关操作规程进行采集和运送。

总之，临床微生物标本采集和运送基本原则对于确保微生物检验结果的准确性和可靠性至关重要。

微⽣物标本采集⽅法及注意事项 微⽣物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有⼗分密切的关系。

医⽣、护⼠、检验⼈员均应重视微⽣物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进⾏正确采集标本的宣传和指导。

下⾯是yjbys店铺为⼤家带来的微⽣物标本采集⽅法及注意事项，欢迎阅读。

⼀、粪便标本采集和处理 (1)采集⽅法 1.⾃然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓⾎、或絮状物等有意义成分，2～3g或 1～2 m1，盛⽆菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋⽩胨⽔中(PH8.6)。

2. 直肠拭⼦法：难以获得粪便或排便困难患者及幼⼉可采⽤此法，将拭⼦前端⽤⽆菌⽢油或⽣理盐⽔湿润,然后插⼊肛门约 4～5cm(幼⼉ 2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。

擦取直肠表⾯粘液后取出，盛于⽆菌试管中或保存液中送检。

(2) 注意事项 1.尽可能在抗⽣素使⽤之前采集标本。

2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆)，粪便样本中不应混⼊尿液及其他异物，采集过程应尽量⽆菌操作。

3.不应⽤厕纸收集粪便。

4.对同⼀病⼈在同⼀天不宜重复送检。

5.宜在感染急性期(通常是5d-7d内)采集标本。

6.下列腹泻患者应连续3d送检标本 --社区获得性腹泻(⼊院前或72h内出现症状) --医院腹泻(⼊院72h后出现症状)，且⾄少有下列情况之⼀：⼤于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞<0.5)及疑似院内暴发。

--怀疑肠道感染的⾮腹泻性表现。

7.肠炎和发热病⼈建议做⾎培养。

8.伤寒沙门菌感染时⾻髓培养⾼出⾎培养。

9新鲜粪便标本应在采集后尽快送检，不应超过2h。

(3)标本拒收 ⼲燥的拭⼦、含钡粪便、黄软成形便、⼲便、明显污染的粪便、⼀⽇内重复送检的标本，应设法与临床医师联系，可要求重新留取标本，并做好记录，在没有与医师沟通之前标本不应丢弃，仍按实验室标本保存原则存放。

⼆、尿液标本采集和处理 (1)采集⽅法 1. 中段尿采集法：清晨起床后⽤肥皂⽔清洗尿道⼝和外阴部，再⽤清⽔冲洗尿道⼝周围，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿 5～10ml盛于带盖的⽆菌容器内⽴即送检，采集后于0.5h内进⾏接种。

临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。

采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。

采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。

2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。

采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。

消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。

3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。

（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。

（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。

（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。

（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。

二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。

容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。

2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。

运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。

3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。

（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。

（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。

三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。

2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。

对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。

3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。

微生物检验标本的正确采集及注意事项
正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。

可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。

下面是yjbys小编为大家带来的微生物检验标本的正确采集及注意事项的知识，欢迎阅读。

一、血液标本的采集
1、采集方法
（1）75%酒精清洁局部皮肤。

（2）待皮肤干后，再用2%—2。

5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。

（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5—10ml，婴幼儿1—5ml。

（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。

2、注意事项
（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38。

5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。

（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。

切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。

（3）培养基与血液之比以10：1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20：1或大于这个比例。

微生物标本采集、送检及处理原则一、标本采集的一般原则：1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。

2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。

3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。

4、注意在不同病程采集不同部位标本。

5、采集标本时要防止传播和自身感染。

二、标本的处理：1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。

脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。

对环境敏感的细菌应保温并立即送检。

2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。

切勿污染环境。

对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。

3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。

Ⅰ血液及骨髓标本：血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。

如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。

常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。

1、采血时间及次数2、抽血部位及抽血量3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。

查见细菌报告菌名和药敏结果。

4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）；2）发病星期后血中抗体滴度上升。

Ⅱ脑脊液标本：脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。

正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。

常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。

1、涂片检查：(1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。

(2)结核分枝杆菌涂片检查(3)新生隐球菌涂片检查2、分离培养3、报告方式：培养48小时，仍无菌生长者报告“培养2天无细菌生长”。

微生物检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有十分密切的关系，医生、护士、检验人员均应重视微生物标本的正确采集的有关问题，并有责任向患者及家属进行正确采集标本的宣传和指导。

（一）微生物检验标本采集、运送、验收
1、标本的采集
不同的标本在采集时会在技术、方法和量方面的内容有所不同，但是最基本需要遵循的是以下几项：
（1）申请单必须标记清楚姓名、性别、年龄、病原号、标本来源（具体写明）、检查项目（目的要明确）等，以便试验室能够合理选择培养环境和培养基。

（2）尽量在抗生素应用前采集标本、以提**性检出率和避免漏检。

（3）标本采集应严格执行无菌操作。

（4）采集标本的容器必须经灭菌处理，不可用消毒剂。

2、标本运送
（1）标本采集后应尽快运送到细菌室。

（2）标本采集后在室温下超过2小时未送到细菌室的，可视为不合格标本。

3、标本验收
（1）实验室只接受和处理合格标本。

（2）实验室对不合格标本退回必须说明原因、并及时与临床联系。

4、注意事项
（1）微生物检验样本必须要求采集转运，否则将影响检查结果，并给评价其意义带来麻烦甚至误导。

（2）微生物样本极易被污染，污染的样本杂菌大量繁殖抑制病原菌生长，条件致病菌也是致病菌，如污染条件致病菌将误导临床，造成对患者的损害以及经济和时间的浪费。

（3）某些标本离体极易死亡，应在床边采取和接种或立即保温送至实验室检验。

室温放置或延迟送检，可使检出的阳性率降低；不能使用冷藏的样本检验。

（4）厌氧菌样本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。

微生物检验标本的正确采集及注意事项微生物检验标本的采集直接影响微生物培养与鉴定结果，准确的结果可为临床诊疗提供指导，有助于科学用药、控制感染，进而延缓细菌耐药、监测医院感染、减少抗菌药物滥用，而正确采集微生物检验标本是最为关键、重要的一步。

为此，本文总结了微生物检验标本的正确采集方法和注意事项，下面让我们一起来了解一下。

一、采集血液标本应用75%酒精清洁局部皮肤，待皮肤干燥后应用1%--2%碘酊或者1%碘伏消毒穿刺点及周围皮肤，消毒范围至少需要3厘米，再次使用75%酒精脱碘后采集血液；对于碘过敏的患者，则采用75%酒精消毒30秒，自然干燥后再用75%酒精消毒60秒的消毒策略。

消毒后不可用手直接触摸穿刺部位，穿刺抽吸8--10毫升成人血液（婴幼儿及儿童患者采血量则不能超过总血量的1%），注入血培养瓶中并立刻颠倒混匀，以防血液凝固，但不可剧烈震动，以防标本溶血。

值得注意的是，血液标本作培养时需格外小心，皮肤表面含有较多微生物，消毒不规范则会污染血液，故应在采血前由内至外认真消毒；血液注入培养基之前不可更换针头，以防感染；采血前应用抗菌药物且无法停药者应在下次用药前采血，注意，不可在静脉穿刺处采集血液标本，除怀疑导管相关感染外亦不可经由静脉导管或动脉插管内抽血；采血量并不是越多越好，采血量太多，则会稀释培养液，营养成分不够；怀疑为菌血症的患者应尽早采血，避免延误最佳时机；怀疑为布鲁式病以及细菌性心内膜炎患者应选择肘动脉、股动脉穿刺采集血液，除发热期以外，均应多次采血，建议24小时内采集3--4次，且要增加采血量，以10毫升左右为宜。

二、采集痰液标本于清晨起床后使用凉白开多次漱口，去除口腔内的杂菌，并用力咳嗽，以咳出肺部深处的脓痰，吐入清洁、干燥的容器中送检。

如果患者痰液量比较少，可以应用25毫升45摄氏度3%--10%氯化钠溶液行雾化吸入，如果是患儿，则需要轻轻按压其胸骨上方的气管，在其咳痰后使用无菌棉棒采集痰液标本。