大肠菌群_菌落总数检验报告原始记录

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大肠菌群_菌落总数检验报告原始记录

微生物实验原始记录
粤珍小厨餐饮管理有限公司
编号：
放入时培养
℃样品名称样品编号
箱温度
取出时培养
设备名称电热恒温培养箱(±1℃)设备编号DHP-9082
℃
箱温度
检验依据GB/T4789.2-2010 GB/T4789.3-2010样品状态
一、菌落总数（cfu/g）
以无菌操作将检样25g于225ml灭菌生理盐水中，均质后充分振摇做成1：10的均匀稀释
液。

取1ml灭菌吸管吸取上述稀释液1ml，加入9ml灭菌生理盐水中，混合均匀，做成1：100
的稀释液，按上述方法操作，做10倍递增稀释。

每个稀释度吸取1ml于灭菌培养皿内，注入凉至46℃的营养琼脂15ml，混匀。

待营养琼
脂凝固后，翻转平板于36℃培养48h。

同时做空白对照。

样品匀液
10-110-210-3（10-i）
观察结果（C）
计算结果N
报告结果
CFU/g
主检：审核：检验日期：年月日
邹平县产品质量监督检验所检验原始记录
共页第页
主检：校核：检验日期：年月日
邹平县产品质量监督检验所检验原始记录
共页第页
主检：校核：检验日期：年月日
如有侵权请联系告知删除，感谢你们的配合！。

大肠菌群测定原始记录

大肠菌群测定原始记录
时间：检验地点：本厂化验室
检测样品名称：来源：
生理盐水的配制：8.5g氯化钠加1000ml蒸馏水溶解待用。
1.取225ml生理盐水于标签为1:10的300ml锥形瓶中，
取9ml生理盐水于标签为1:100的50ml锥形瓶中。
2.LST溶液的配制：取LST7.1g加水100ml（双料），溶解至透明，
取1:100的稀释样1ml于标有0.01g的3只试Байду номын сангаас中，
5．培养：放入36℃的培养箱中培养48h。时间起始：
24h产气管数：
48h产气管数：
6．BGLB溶液复发酵试验：配制BGLB溶液，称取BGLB4g溶液100ml水中，均分倒入对应产气标号的标有标示并放有聚气管的试管中，放入灭菌锅灭菌15min。用接种针粘一环产气管液于标有对应的以灭菌的BGLB溶液的试管中，于36℃的培养箱中培养48h。
倒入10ml于3只标有1g的并放有聚气管的试管中;剩余溶液加一倍水配成单料倒入标有0.01g，0.001ml的6只试管中，每只10ml,并放有聚气管(试管要求180×18mm)。
放入灭菌锅灭菌15min.
以上1；2；同时一起灭菌，灭菌起始时间(喷气开始计时)：
压力表指针回零后打开放气阀，开盖取出，冷至常温。
培养起始时间：
48h产气管数：
7.检索MPN表结论：
备注：
3.样品稀释：于225ml灭菌的生理盐水中加入样品25g，混匀，配成1:10的稀释样；
从1:10的稀释样中取1ml到入标有1:100的9ml灭菌的生理盐水中混匀，配成1:100稀释样;
4.初发酵试验：取1:10的稀释样10ml于标有1g的3只试管中，
取1:10的稀释样1ml于标有0.1g的3只试管中，

大肠菌群原始记录

检验员：审核员：
样品编号
LST肉汤初发酵试验培养温度℃，培养开始时间年月日点分，培养结束时间年月日点分。
用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，接种于煌绿乳糖胆盐肉汤（BGLB）管中，培养观察。
样
品
编
号
BGLB肉汤复发酵试验
培养温度℃，培养开始时间年月日点分，培养结束时间年月日点分。
结果报告
MPN/mL
备注：+：阳性-：阴性
绥芬河出入境检验检疫局综合技术中心密山实验室
ZJ-03-107大肠菌群检验原始记录
样品名称：样品号：
检验日期：验讫日期：标准物质Biblioteka 号检验依据设备编号
大肠菌群计数
第一法大肠菌群MPN计数法：取检样25g(ml)+225ml，用均质器均质1min，制成1:10的样品匀液。按10倍递增稀释，选取6个适宜的稀释倍数，接种LST肉汤管，每个稀释度接种三管，培养观察。

微生物检测原始记录

创作编号：BG7531400019813488897SX
创作者：别如克*
XXXX检测有限公司
菌落总数与大肠菌群检验原始记录
共页第
主检：年月日校核：年月日
XXXX检测有限公司
菌落总数和大肠菌群检测原始记录
共页第
主检：年月日校核：年月日
XXXX检测有限公司
水质微生物检验原始记录
共页第
主检：年月日校核：年
月日
XXXX 检测有限公司乳酸菌与大肠菌群检测记录
共页第
主检：年月日校核：
年月日
XXXX 检测有限公司致病菌检验原始记录
共页第
主检：年月日校核：年月日
XXXX检测有限公司
霉菌和酵母菌检验原始记录
共页第
培养温度：28±1℃培养时间：年月日时--- 年月日时：
菌落计数：
培养温度：28±1℃培养时间：年月日时--- 年月
主检：年月日校核：年月日
XXXX检测有限公司
商业无菌检验原始记录
共页第页
主检：日期：校核：日期：
创作编号：BG7531400019813488897SX
创作者：别如克*。

水质细总大肠菌群原始记录

水质细总大肠菌群原始记录1. 目的为确定本公司水质中菌落总数、大肠菌群测定使用方法，明确菌落总数、大肠菌群检测相关细则，指导人员正确作业，确保检测工作正常开展，根据《生活饮用水标准检验方法》GB5750.12-2006制订本方法作业指导书。

2. 适用范围适用于水质中菌落总数、大肠菌群的测定。

3. 职责检测人员严格按照本指导书要求开展检测工作。

4. 检测依据标准及检测方法《生活饮用水卫生标准》GB 5749-2006《生活饮用水标准检验方法》GB5750.12-20065. 标准值表1 二次供水菌落总数、大肠菌群6. 检验仪器及设备高压蒸汽灭菌器、恒温培养箱、冰箱、显微镜、PH试纸。

7. 试剂和材料营养琼脂培养基，三倍浓缩乳糖蛋白胨培养液，伊红美兰琼脂，革兰氏染色液。

8. 检测程序8.1 菌落总数：取采集的样品1mL于灭菌平皿内，倾入已融化冷却至45℃的营养琼脂15mL，同时做一个平行样和一个空白对照平皿，并立即摇匀。

冷却后，翻转平板，置于35℃～37℃恒温箱中，培养48h。

计数每个平板上的菌落数。

8.2 大肠菌群：在5支装有10mL双料乳糖蛋白胨培养液的试管各加水样10mL；在5支装有10mL单料乳糖蛋白胨的试管各加水样1mL，在5支装有10mL单料乳糖蛋白胨的试管各加稀释后的水样（1:10）1mL。

轻摇试管，是液体充分混匀，置35℃～37℃培养箱中24h。

观察是否产酸产气，若有，需进一步做证实试验。

8.3 取一环阳性管中的溶液接种到伊红美兰琼脂平板上，置35℃～37℃培养箱中18h～24h，观察菌落形态，典型的大肠菌群菌落为黑紫色或红紫色，具有金属光泽。

8.4 挑取可疑大肠菌群菌落1或2个进行革兰氏染色，同时接种乳糖发酵管，于36℃±1℃培养箱中，培养24h。

8.5 凡乳糖发酵管最终产酸、产气，革兰氏染色为阴性的无芽孢杆菌，为大肠菌群阳性。

记下证实试验的阳性管数，查总大肠菌群（MPN）检索表得出100mL水样中总大肠菌群的MPN值。

大肠菌群检验原始记录-平板计数法

选择适宜的 2~3 个连续稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液），吸取 1mL 于无菌平皿内，每个稀释度接种两个平皿。同时分别吸取 1 mL 稀释液加入两个无菌平皿内作为空白对照。及时用 15~20mL 不超过 46℃的 VRBA 倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀，待琼脂凝固后，再加 3~4mL VRBA 覆盖平板表层。同时再以只加 VRBA 的平皿，作为 VRBA 的空白对照。将平板翻转，培养。 3.培养
-
阴性
报告人
报告日期
复核人
复核日期
将以上 VRBA 平板倒置于 36.0±1℃，培养 18h~24h（2022/xx/xx xx 时~2022/xx/xx xx 时）并分别计数可疑和典型菌落。 4.证实试验(接种 BGLB)
选取菌落数在 15~150CFU 之间的平板，从 VRBA 平板上挑取 10 个不同类型的典型和可疑菌落，少于 10 个菌落的挑取全部典型和可疑菌落，分别移种于 BGLB 肉汤管内，36℃±1℃培养 24h~48h，观察产气情况。 5.结果与报告 5.1 按“四舍五入”原则修约，保留 2 位有效数字，无菌落生长以＜1 乘以最低稀释倍数报告。 5.2 称重取样以 CFU/g 为单位报告,体积取样以 CFU/mL 为单位报告。
实验过程： 1.样品处理和稀释： 1.1 如需要，使用 0.1mol/L 氢氧化钠或 0.1mol/L 盐酸将样品调整 pH 在 6.5~7.5 之间。 1.2 制备样品稀释液
根据样品状态，无菌操作，称取/吸管吸取 25g（mL）样品，加入到 225mL 无菌磷酸盐缓冲液中均质（混匀），制成 1:10 样品匀液。根据对样品污染情况的估计，按上述操作将样品稀释至所需浓度。 2.接种 VRBA
稀释度
10-1 稀释度

大肠菌群检验原始记录

四、根据证实为大肠菌群的阳性管数，查MPN检索表，报告大肠菌群的最可能数。
初发酵（月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤，）支）
产气管数（支）
复发酵(煌绿乳糖胆盐
肉汤，
37℃，,48h)
产气管数（支）
10-1
10-2
10-3
检验结果
（MPN/100g）
检验人：复核人：
大肠菌群检验检验原始记录
样品名称
明胶
样品编号
样品状态
生产日期
检验依据
GB4789.3-2010
检验日期
大肠菌群检验过程：
1、称取样品25g样品放入盛有225ml灭菌的生理盐水中，制成1：10的样品匀液，用1ml无菌吸管吸取1：10的样品匀液1ml，沿管壁缓缓注入盛有9ml生理盐水的无菌试管中，制成1：100的样品均液，用1ml无菌吸管吸取1：100的样品匀液1ml，沿管壁缓缓注入盛有9ml生理盐水的无菌试管中，制成1：1000的样品均液。
2、初发酵试验：大肠菌群每个样品，选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液，每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤（大肠菌群测定：如果超过1ml，则用双料LST肉汤），36℃±1℃培养24h±2h，观察倒管内产气情况。如未产气，培养至48h±2h，如产气着进行复发酵试验。
三、复发酵试验：（大肠菌群的测定）用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于煌绿糖胆盐肉汤（BGLB）管中，36℃±1℃培养48h±2h，，观察产气情况。

大肠菌群检验原始记录-MPN法

大肠菌群检验原始记录（MPN法，2016版）
检验单位
xxxx公司检验室
检验员
张xx
检验日期
2022-xx-xx至2022-xx-xx
环境条件
温度xx℃，相对湿度（RH）xx%
检验依据
GB4789.2-2016 《食品安全国家标准食品微生物学检验大肠菌群计数》第一法
检验编号
20220606xxx
样品名称
xxxx
样品批次
2022xxxx
仪器设备及耗材：
天平：(xxxx)洁净工作台: (xxxx)培养箱:ຫໍສະໝຸດ (xxxx)培养基及试剂：
月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤（LST）：xxxx配制日期2022/xx/xx
煌绿乳糖胆盐肉汤（BGLB）：xxxx配制日期2022/xx/xx
磷酸盐缓冲液：xxxx配制日期2022/xx/xx
-
阴性
报告人
报告日期
复核人
复核日期
将以上 LST置于 36.0 ±1℃，培养24h±2h（2022/xx/xxxx时~2022/xx/xxxx时），观察导气管内是否有气泡产生。如产气，进行证实实验，如未产气继续培养至48h±2h（2022/xx/xxxx时~2022/xx/xxxx时），产气，进行复发酵实验，不产气报告结果为阴性。
4.证实试验（接种BGLB）
实验过程：
1.样品处理和稀释：
1.1如需要，使用0.1mol/L氢氧化钠或0.1mol/L盐酸将样品调整pH在6.5~7.5之间。
1.2 制备样品稀释液
无菌操作，称取/吸取 25g（mL）样品，加入到 225mL 无菌磷酸盐缓冲液中均质（混匀），制成 1:10 样品匀液。吸取1:10样品匀液1mL，沿试管壁注入盛有9mL无菌磷酸盐缓冲液的试管中，涡旋混匀，制成1:100的样品匀液。根据对样品污染情况的估计，按上述操作将样品稀释至所需浓度。

微生物检验原始记录(大肠菌群)

微生物检验原始记录(大肠菌群)检验原始记录编号：报告类别：微生物共页项目：大肠菌群coliforms 检验地点：样品名称：样品编号：样品状态：符合检验要求；其他境条件：实验依据及步骤GB4789.3-2016样品稀释固体和半固体样品：称取25g样品置盛有225ml生理盐水或磷酸盐缓冲液的无菌均质容器内均质，或放入盛有225ml稀释液的无菌均质袋中拍击式均质器拍打，制成为1:10样品匀液。

依次进行10倍递增稀释。

液体样品：以无菌吸管吸取25ml样品置盛有225ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中混匀，为1:10样品匀液。

样品匀液的ph应在6.5-7.5之间，必要时分别用1mol/lNaOH或1mol/lHcL调节。

取1mL1∶10稀释匀液沿管壁缓缓注入9ml磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用一支无菌吸管反复吹打，使其混合均匀，制成1:100样品匀液。

按上述操作顺序做10倍递增稀释液，每稀释一次，换用一支1mL灭菌吸量管。

从样品匀液制备到样品接种完毕，全过程不得超过15min。

初发酵试验（9管法）每个样品，选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液（液体样品可以选择原液），每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤（大肠菌群测定：如果超过1ml，则用双料LST肉汤）36℃±1℃培养24h±2h，观察倒管内是否有气泡产生。

产气者进行复发酵试验，未产气则继续培养至48±2h，产期进行复发酵试验。

未产气者为大肠菌群阴性。

复发酵试验（证实试验）用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于煌绿糖胆盐肉汤（BGLB）管中，36℃±1℃培养48h±2h，，观察产气情况。

数据分析与结果一、菌落计数根据证实为大肠菌群的阳性管数，查MPN检索表，报告大肠菌群的最可能数。

菌落总数、大肠菌群检验原始记录

菌落总数、大肠菌群检验原始记录
产品名称：规格型号：检验报告编号：
检验依据:GB/T4789.2 GB/T4789.3 检测项目：菌落总数、大肠菌群生产批量：
所使用主要仪器：电热恒温培养箱、手提式压力灭菌锅、电热恒温干燥箱、显微镜。

一、菌落总数
取 5 份样品，分别取25g做为测试样品，加入225 mL无菌生理盐水，均质，制成1:10样品均液，用1ml 灭菌吸管吸取1:10的稀释液1ml加入9ml灭菌生理盐水的试管内，振荡摇匀做成1:100稀释液，以此法制备10倍系列递增稀释液，依据样品污染状况的估计，选取2个适宜稀释度的样品稀释液，每个稀释度各吸取1ml稀释液放入无菌平皿内，每个稀释度做两个平皿。

同时吸取1ml稀释液放入两个无菌平皿中做空白对照。

将凉至46℃的营养琼脂培养基注入培养皿内15～20ml混匀，待琼脂凝固后，翻转平板置36℃±1℃
二、大肠菌群
依据标准要求，选择稀释好的2个稀释度检测，培养基为结晶紫中性红胆盐琼脂（VRBA），置于36°C±1°C培养18-24h。

证实实验：挑选10个不同类型典型和可疑菌落，接种煌绿乳糖胆盐（BGLB）肉汤管，36°C±1°C培养24-48h。

观察产气情况，凡BGLB肉汤管产气，即可报告大肠菌群阳性。

检验：复核：审核：检验日期：。

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设备编号
取出时培养箱温度
C
检验依据
GB/T4789.2-2010GB/T4789.3-2010
样品状态
一、菌落总数（cfu/g）
以无菌操作将检样25g于225ml火菌生理盐水中，均质后充分振摇做成1：10的均匀稀释液。取1ml灭菌吸管吸取上述稀释液1ml，加入9ml灭菌生理盐水中，混合均匀，做成1:100的稀释液，按上述方法操作，做10倍递增稀释。
每个稀释度吸取1ml于火困培养皿内，注入凉至46C的营养琼脂15ml，混匀。待营养琼脂凝固后，翻转平板于36C培养48h。同时做空白对照。
样品匀液
（10-i）
10-1
10-2
10-3
观察结果（C）
计算结果N
报告结果
CFU/g
二、大肠菌群（MPN/100g）
以无菌操作将检样25g于225ml火菌生理盐水中，均质后充分振摇做成1:10的均匀稀释液。取1ml火菌吸管吸取上述稀释液1ml，加入9ml火菌生理盐水中，混合均匀，做成1:100的稀释液，按上述方法操作，做10倍递增稀释。
每个稀释度吸取1ml于火困培养皿内，注入凉至46C的营养琼脂15ml，混匀。待营养琼脂凝固后，翻转平板于36C培养48h。同时做空白对照。
稀释倍数
10
10
10
平行一
平行二
平均值
二、大肠菌群（MPN/100ml）
平行一
平行二
检验结果
备注
共页第页
主检:
校核:
检验日期:
年月日
邹平县产品质量监督检验所检验原始记录
每个稀释梯度取1ml注入9mlLST接种试管，36C培养48h。
样品匀液
（10-i）
10-1
10-2
10-3
观察结果
检测结果
报告结果
MPN/100g
备注
粤珍小厨餐饮管理有限公司编号:主Fra bibliotek:审核:
检验日期:
年月日
邹平县产品质量监督检验所检验原始记录
样品名称
样品编号
放入时培养箱温度
C
设备名称
电热恒温培养箱（土1C）
每个稀释度吸取1ml于火困培养皿内，注入凉至46C的营养琼脂15ml，混匀。待营养琼脂凝固后，翻转平板于36C培养48h。同时做空白对照。
稀释倍数
10
10
10
平行一
平行二
平均值
备注
共页第页
主检:
校核:
检验日期:
年月日
样品名称
样品编号
放入时培养箱温度
C
设备名称
电热恒温培养箱（土1C）
设备编号
取出时培养箱温度
C
检验依据
GB/T4789.2-2010GB/T4789.3-2010
样品状态
一、菌落总数（cfu/g）
以无菌操作将检样25g于225ml火菌生理盐水中，均质后充分振摇做成1：10的均匀稀释液。取1ml灭菌吸管吸取上述稀释液1ml，加入9ml灭菌生理盐水中，混合均匀，做成1:100的稀释液，按上述方法操作，做10倍递增稀释。
O
样品名称
样品编号
放入时培养箱温度
C
设备名称
电热恒温培养箱（土1C）
设备编号
DHP-9082
取出时培养箱温度
C
检验依据
GB/T4789.2-2010GB/T4789.3-2010
样品状态
一、菌落总数（cfu/g）
以无菌操作将检样25g于225ml火菌生理盐水中，均质后充分振摇做成1：10的均匀稀释液。取1ml灭菌吸管吸取上述稀释液1ml，加入9ml灭菌生理盐水中，混合均匀，做成1:100的稀释液，按上述方法操作，做10倍递增稀释。

大肠菌群_菌落总数检验报告原始记录

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