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杂交瘤技术流程
杂交瘤技术是一种通过融合两种不同细胞类型创建一个具有双亲特性的细胞的方法。
下面是一般的杂交瘤技术流程：
1. 收集要进行杂交的两种细胞，称为亲本细胞。
2. 准备培养基，供细胞生长和融合使用。
3. 在培养皿中培养亲本细胞，并使其达到适当的密度。
4. 收集亲本细胞，将其洗涤以去除培养基中的杂质。
5. 将两种亲本细胞混合在一起，使其发生融合。
常用的融合方法包括利用化学物质（如聚乙二醇）或电融合。
6. 将融合的细胞分散到含有致瘤因子的选择性培养基中，以消灭没有融合的亲本细胞。
7. 将培养皿放置在恒温孵育箱中，让融合细胞进行增殖。
8. 通过观察和筛选，找到具有所需性状的杂交瘤细胞。
9. 将杂交瘤细胞进行分离、传代并保存，以便进一步研究和应用。
值得注意的是，杂交瘤技术可能需要根据具体的实验目的和要求进行一些修改和优化。
杂交瘤技术的基本原理
杂交瘤技术是一种常用的遗传学实验方法，用于研究基因的功能和调控。
其基本原理是将两个不同品系或物种的细胞或组织相互融合，生成杂交细胞或杂交瘤。
这些杂交细胞或瘤细胞会融合两个品系或物种的基因信息，同时保留着两个母细胞的细胞器和细胞质基因。
杂交瘤技术的基本步骤如下：
1.选择母细胞：选择具有所需特性的两个不同来源的细胞或组织作为杂交的母细胞。
一般选择一个无能力生长但含有所需基因的细胞（称为donor细胞）和一个能够快速增殖但缺乏所需基因的细胞（称为host细胞）。
2.处理细胞：将两个细胞进行特定处理，使其融合在一起。
一种常用的方法是使用化学物质（如聚乙二醇）或电脉冲来增加细胞融合的效率。
3.筛选和培养：将融合后的细胞进行筛选，通常是通过添加相应抗生素或培养基来筛选并培养合适的杂交细胞或杂交瘤。
4.分离纯化：通过稀释法或细胞克隆等方法，将杂交瘤细胞分离并纯化，以获得纯的杂交细胞系或杂交瘤。
杂交瘤技术的应用非常广泛，主要用于以下方面：
1.产生单克隆抗体：通过杂交瘤技术，可以融合具有所需抗体的B细胞与快速增殖的癌细胞，得到能够大规模产生特定抗体的杂交瘤细胞系。
2.研究基因功能：将疾病相关的基因或调控元件与高增殖性的癌细胞融合，可以研究相关基因的功能及其在疾病中的作用机制。
3.生产重组蛋白：将所需基因与杂交瘤细胞融合，可以实现大规模生产特定蛋白质，并用于医药和生物工程领域。
总之，杂交瘤技术是一种有效的遗传学实验方法，通过细胞融合的方式结合两种细胞的特性，用于研究基因功能、产生单克隆抗体和生产重组蛋白等多个领域。
利用杂交瘤技术制备单克隆抗体的基本原理一、引言单克隆抗体（Monoclonal Antibody，mAb）是由单一B细胞克隆产生的抗体，具有高度特异性和亲和力。
其制备方法主要有杂交瘤技术、酶联免疫吸附试验法（ELISA）、荧光激发技术等。
其中，杂交瘤技术是制备单克隆抗体最重要的方法之一。
二、杂交瘤技术基本原理1. B细胞与肿瘤细胞的融合杂交瘤技术的基本原理是将体内产生的特异性抗体B细胞与无限增殖能力的肿瘤细胞进行融合，形成可分泌大量同种特异性抗体的杂交瘤细胞。
在此过程中，B细胞提供了高度特异性的抗体基因组，而肿瘤细胞提供了无限增殖能力。
2. 杂交瘤细胞筛选和分离将获得的杂交瘤细胞进行筛选和分离，以获取单一同种特异性抗体产生的杂交瘤细胞株。
这里需要注意的是，筛选和分离的条件需要严格控制，以确保所得到的单克隆抗体具有高度特异性和亲和力。
3. 单克隆抗体的大规模制备通过对单克隆抗体杂交瘤细胞株进行培养和扩增，可以大规模制备单克隆抗体。
此过程中需要注意对培养条件、生长因子、营养物质等进行优化，以提高单克隆抗体的产量和质量。
三、杂交瘤技术的优点1. 高度特异性和亲和力通过杂交瘤技术制备的单克隆抗体具有高度特异性和亲和力，可以用于检测、诊断、治疗等领域。
2. 无限复制能力杂交瘤细胞具有无限复制能力，可以大规模制备同种特异性抗体。
3. 可重复性好由于单一B细胞产生的同种特异性抗体都是完全相同的，因此通过杂交瘤技术制备出来的单克隆抗体具有良好的可重复性。
四、杂交瘤技术存在的问题及解决方法1. 杂交瘤细胞的稳定性杂交瘤细胞的稳定性对于单克隆抗体的制备至关重要。
为了提高杂交瘤细胞的稳定性，可以采用多种方法，如对培养条件进行优化、添加生长因子等。
2. 克隆选择在杂交瘤技术中，克隆选择是一个非常重要的环节。
为了确保所得到的单克隆抗体具有高度特异性和亲和力，需要对杂交瘤细胞进行筛选和分离。
这里需要注意的是，筛选和分离的条件需要严格控制。
什么是杂交瘤技术？杂交瘤技术的原理及步骤杂交瘤技术（hybridoma technique）即淋巴细胞杂交瘤技术，又称单克隆抗体技术。
它是在体细胞融合技术基础上发展起来的。
克勒（Kohler）和米尔斯坦（Milstein）（1975）证明，骨髓瘤细胞与免疫的动物脾细胞融合，形成能分泌针对该抗原的均质的高特异性的抗体——单克隆抗体，这种技术通称为杂交瘤技术。
这一技术的基础是细胞融合技术。
骨髓瘤细胞在体外可以连续传代，而脾细胞是终末细胞，不能在体外繁殖。
如将小鼠的骨髓瘤细胞与分泌某种抗体或因子的淋巴细胞融合，则融合细胞既具有肿瘤细胞无限繁殖的特性，又具有淋巴细胞能分泌特异性抗体或因子的能力，同时也克服了免疫淋巴细胞不能在体外繁殖的缺点，融合的细胞称为淋巴细胞杂交瘤。
杂交瘤技术原理及步骤：杂交瘤技术的基本原理是通过融合两种细胞而同时保持两者的主要特征。
这两种细胞分别是经抗原免疫的小鼠脾细胞和小鼠骨髓瘤细胞。
被特异性抗原免疫的小鼠脾细胞（B淋巴细胞）的主要特征是它的抗体分泌功能，但不能在体外连续培养，小鼠骨髓瘤细胞则可在培养条件下无限分裂、增殖，即具有所谓永生性。
在选择培养基的作用下，只有B细胞与骨髓瘤细胞融合的杂交细胞才能具有持续培养的能力，形成同时具备抗体分泌功能和保持细胞永生性两种特征的细胞克隆。
其原理从下列3个主要步骤阐明。
(一)细胞的选择与融合建立杂交瘤技术的目的是制备对抗原特异的单克隆抗体，所以融合细胞一方必须选择经过抗原免疫的B细胞，通常来源于免疫动物的脾细胞。
脾是B细胞聚集的重要场所，无论以何种免疫方式刺激，脾内皆会出现明显的抗体应答反应。
融合细胞的另一方则是为了保持细胞融合后细胞的不断增殖，只有肿瘤细胞才具备这种特性。
·选择同一体系的细胞可增加融合的成功率。
多发性骨髓瘤是B细胞系恶性肿瘤，所以是理想的脾细胞融合伴侣。
使用细胞融合剂造成细胞膜一定程度的损伤，使细胞易于相互粘连而融合在一起。
杂交瘤技术与单克隆抗体概要（东北农业大学生命科学学院，哈尔滨 150030）摘要：用绵羊红细胞免疫B A L B / C 小鼠, 取其脾淋巴细胞与同品系小鼠的骨髓瘤细胞融合, 形成的杂交细胞能分泌脾淋巴细胞的单一型抗体分子, 又具有骨髓瘤细胞无限增殖的特性。
这种杂交细胞叫做杂交瘤。
杂交瘤能在离体培养条件下分泌抗体,如果移植在同品系或F 1小鼠体内, 在其血清或腹水中可以获得较高浓度的抗体。
这种抗体是由单一增殖的纯系细胞分泌的单克隆抗体。
由于其纯度高、特异性强、可以复制[1],这种技术自问世以来已广泛应用于疾病的免疫诊断、免疫治疗和免疫预防等各个领域[2]。
本文对杂交瘤技术的基本原理、程序、工作中注意问题、优点及应用等进行了综述。
关键词：杂交瘤技术基本原理程序注意问题优点应用自从1975年Kohler和Milstein建立杂交瘤技术以来[3]，淋巴细胞杂交瘤技术在许多研究实验室成为产生特异性抗体的重要工具，日益引起基础科学和临床工作者以及工业家的注意[4]。
许多科技工作者开展了这项新的生物技术的研究和应用,该技术不仅促进了现代医学、微生物学、肿瘤学、免疫学、寄生虫学和药学等学科的发展，并且正在从生物医学领域向工业、农业和牧业等新领域渗透，取得了一定的成果。
[5] 对其今后的发展和应用，N.A.5taines[6]和A.W.Edwards[7]都有较详细的叙述。
1979年我国引入了这项技术，并分别在北京、上海举办多次培训班，推广该项技术,[8]开展了杂交瘤技术的研究[9-10],并且取得显著成绩，但是由于国内的设备和物资条件的影响，杂交瘤技术开展比较慢，仍需迎头赶上。
1 单克隆抗体的概念单克隆抗体是由一个淋巴细胞增殖分化形成一个基因相同的细胞群称为克隆，或无性繁殖细胞系（简称细胞系），由单一克隆产生的抗体称为单克隆抗体。
众所周知，我们人体或动物体受天然抗原刺激后产生的抗体是多种抗体组成的混合抗体，即所谓的多克隆抗体。
杂交瘤技术的基本原理和单克隆抗体的主要
制备步骤
一、杂交瘤技术的基本原理
杂交瘤技术也称免疫杂交或抗体杂交，是用生物学和化学原理创造出人造抗体，也可以称之为“免疫抗体杂交”。
它通过将特定基因段无细胞化学合成抗体与正常正常抗体不同种型的B细胞经免疫球蛋白结合物外溶胶连接起来，从而锁定它们在杂交抗体分子内部而形成杂交细胞，它们同时具有正常抗体结构的灵活性，并将合成的抗体的特异性的目的物结合到杂交抗体分子上，诱导杂交细胞生长，从而获得特异性的抗体。
二、单克隆抗体的主要制备步骤
(1)筛选实验：将目标蛋白质与抗原结合，合成抗原——抗体复合物，获得具有抗原识别能力的抗体解析表型细胞。
(2)定向克隆：在筛选步骤的B细胞中采用定向克隆技术，将抗原识别能力特异的B细胞从其他不特异的B细胞中挑选出来，使它们成为抗体库中的杂交瘤。
(3)表达克隆抗体：将各自的表达株根据特定蛋白质的表达量分类，并从抗体库中培养出单克隆表达株。
(4)纯化抗体：从单个杂交瘤表达抗体株中分离，纯化抗体，获得纯净的单克隆抗体。
b淋巴细胞杂交瘤技术的基本原理
淋巴细胞杂交瘤技术（又称克隆淋巴细胞杂交瘤技术）是一种
用于生产单克隆抗体的方法。
其基本原理是将小鼠淋巴细胞与骨髓
瘤细胞（如NS-1细胞）融合，形成杂交瘤细胞，这些细胞称为淋巴
细胞杂交瘤细胞或克隆细胞。
这些细胞具有淋巴细胞的抗原识别能
力和骨髓瘤细胞的无限增殖能力，从而能够持续产生具有特定抗原
识别能力的单克隆抗体。
具体步骤包括：
1. 选择合适的小鼠作为抗原免疫动物，注射目标抗原以激发其
免疫系统产生抗体。
2. 从小鼠体内获得淋巴细胞，这些细胞含有已经产生的抗体基因。
3. 从骨髓瘤细胞中获得无限增殖能力的细胞系，如NS-1细胞。
4. 将淋巴细胞和骨髓瘤细胞以特定比例混合，通过化学或电脉
冲的方法使它们融合成杂交瘤细胞。
5. 将融合后的细胞在含有特定筛选标记的培养基中培养，以去除未融合的淋巴细胞和骨髓瘤细胞。
6. 对杂交瘤细胞进行单克隆分离和培养，使其形成单克隆细胞系。
7. 测定单克隆细胞系产生的抗体，筛选出特异性抗原的单克隆抗体细胞系。
淋巴细胞杂交瘤技术的基本原理是利用细胞融合的方法将抗原识别能力和无限增殖能力相结合，从而获得能够持续产生特定单克隆抗体的细胞系。
这一技术在生物医学研究和生物制药领域具有重要应用，可以生产大量高质量的单克隆抗体，用于治疗、诊断和研究等方面。
杂交瘤法制备单克隆抗体的过程杂交瘤法是一种常用的制备单克隆抗体的方法，其基本过程包括四个步骤：免疫原制备、小鼠免疫、脾细胞与肿瘤细胞的融合、单克隆抗体筛选与鉴定。
首先，免疫原制备是制备单克隆抗体的关键步骤之一、免疫原即所要制备单克隆抗体的目标抗原。
免疫原的选择应根据研究目的和要求进行，如对特定蛋白质、细胞表面分子等的免疫。
免疫原制备一般包括两个步骤：蛋白纯化和蛋白改性。
对于蛋白纯化而言，可以通过胶体电泳技术或柱层析技术等方法获得纯化的蛋白质。
对于蛋白改性而言，可以通过蛋白质偶联剂的使用，将蛋白质与载体相结合。
其次，小鼠免疫是为了获得特异性抗体。
将制备好的免疫原注射到小鼠体内，激发其免疫系统产生抗原特异性抗体。
为了增强免疫效果，一般需要多次免疫，同时还可以使用辅助剂和佐剂来提高免疫效果。
然后，脾细胞与肿瘤细胞的融合是为了制备杂交瘤。
在免疫小鼠体内产生特异性抗体后，需要收集小鼠的脾脏，分离脾细胞。
肿瘤细胞一般采用无髓腔瘤细胞系，如SP2/0或NS1等。
通过使用聚乙二醇等融合剂，将脾细胞和肿瘤细胞融合，从而获得杂交瘤细胞。
杂交瘤细胞中的每个细胞包含有来自小鼠脾细胞的抗体产生能力和来自肿瘤细胞的无限生长能力。
最后，单克隆抗体的筛选与鉴定是为了获得特异性的单克隆抗体。
杂交瘤细胞在发育培养基中进行培养，筛选出产生特异性抗体的杂交瘤细胞克隆，并进行克隆扩增。
筛选方法一般包括ELISA、免疫荧光细胞分选等。
通过克隆扩增后，可以进行进一步的鉴定与验证，如免疫沉淀、西方印迹等方法。
总结起来，杂交瘤法制备单克隆抗体的过程包括免疫原制备、小鼠免疫、脾细胞与肿瘤细胞的融合、单克隆抗体筛选与鉴定。
通过这些步骤，可以获得高特异性的单克隆抗体，为科研和临床应用提供有力的工具。
2.杨霞,赵蕊.杂交瘤制备单克隆抗体技术[J].生物技术通报,2024(3):170-173.。
杂交瘤细胞培养方法杂交瘤细胞培养是指将哺乳动物体内的B细胞与合成瘤细胞进行细胞融合，产生一种能分泌出单一抗体的细胞系。
这种细胞系称为杂交瘤细胞，也称混合瘤细胞。
杂交瘤细胞不仅具有母细胞的一般生存特性和原有的基因表达，而且能大量分泌相同的单克隆抗体，是生物医学研究、药物研发和临床治疗领域的重要工具。
本文将详细介绍杂交瘤细胞培养的方法。
1.材料准备制备细胞培养基：DMEM/F12培养基（10%胎牛血清）加入生长因子（如IL-6、IL-21）；细胞培养器具：细胞培养箱、培养瓶、移液器、离心机、细胞计数器等；试剂：1X PBS、0.25%胰酶-EDTA、细胞培养级聚乙二醇、多克隆抗体、血清和其他生长因子。
2.细胞分离和融合将B细胞和合成瘤细胞按照比例混合，然后使用聚乙二醇催化剂将两种细胞融合。
融合后的细胞称为杂交瘤细胞。
需要注意的是，不同的瘤细胞和B细胞的比例会影响融合后杂交瘤细胞的数量，因此需根据实验的需要控制比例。
3.细胞培养将融合后的细胞培养在含有生长因子和10%胎牛血清的DMEM/F12培养基中，并将其放置在细胞培养箱中，培养温度为37°C。
3-4天后，将细胞连续传代至新的培养瓶中，以支持细胞的生长和增殖。
连续传代可提高细胞的生产力和稳定性。
4.单克隆抗体筛选将多克隆抗体加入培养基中，将其暴露于培养基中数天，收集上清液，然后通过ELISA或Western Blot等技术来鉴定上清液中抗体的特异性和亚型。
在经过多次分离和筛选后，最终选出单一克隆抗体的杂交瘤细胞。
5.维护细胞在进行杂交瘤细胞的维护过程中，需注意以下几点：（1）定期更换培养基和加入新的生长因子、抗生素和胎牛血清。
（2）避免细胞密度过高和过低，应保持适当的细胞密度。
（3）定期检测细胞的生活力和纯度。
（4）不同的杂交瘤细胞需要不同的培养条件和处理方法，应针对不同的杂交瘤细胞选择适当的培养方法。
综上所述，杂交瘤细胞培养是一种基于细胞融合技术制备单克隆抗体的有效方法。
杂交瘤技术的原理和应用1. 原理杂交瘤技术（Hybridoma Technology）是一种利用小鼠骨髓细胞与肿瘤细胞融合的方法，成功制备出可以长时间稳定产生单克隆抗体的细胞系。
其原理主要包括以下几个步骤：1.免疫反应：首先，将目标抗原注射到小鼠体内，刺激小鼠产生特定抗体。
2.提取骨髓细胞：将小鼠的骨髓细胞提取出来，骨髓细胞中含有大量产生抗体的浆细胞。
3.融合：将提取的骨髓细胞与骨髓瘤细胞（如懒汉肉瘤细胞）进行融合，得到杂交细胞。
4.筛选：将杂交细胞进行筛选，通过培养基和细胞培养条件的优化，筛选出可以长期产生抗体的稳定细胞系。
2. 应用杂交瘤技术在生物医药领域具有广泛的应用价值，主要集中在以下几个方面：2.1 产生单克隆抗体杂交瘤技术可以制备出可以长期稳定产生单克隆抗体的细胞系，这对于研究和应用单克隆抗体具有重要意义。
单克隆抗体在临床诊断、治疗和疾病标记等方面有着广泛的应用，例如，可用于检测特定疾病标志物、治疗癌症等。
2.2 研究蛋白质结构与功能由杂交瘤技术获得的单克隆抗体可以应用于免疫印迹、免疫组化等实验方法，用于研究蛋白质的表达、定位、结构和功能。
通过分析抗体与靶蛋白的相互作用，可以揭示蛋白质在生物体内的生理功能和生物学机制。
2.3 生物学药物和诊断试剂的生产杂交瘤技术可以用于生物学药物的生产，例如单克隆抗体药物、重组蛋白药物等。
杂交瘤技术还可以制备用于临床诊断和检测的试剂盒，用于检测特定疾病的标志物、病原体等。
2.4 分子免疫学研究杂交瘤技术在分子免疫学研究中具有重要地位。
通过制备获得的单克隆抗体，可以对特定的抗原进行精确定位，研究免疫应答的机制、免疫调控等。
杂交瘤技术也被广泛应用于抗体工程、抗体片段构建等技术的开发与应用。
2.5 其他应用领域此外，杂交瘤技术还在农业、环境保护、食品安全等领域有所应用。
例如，可以应用于农业植物抗性基因的研究与育种、环境中有毒物质的检测与分析等。
结论杂交瘤技术作为一种重要的细胞融合技术，在生物医药领域具有广泛的应用前景。
杂交瘤技术（hybridoma technique）基本程序与方法 5（3）间接血凝试验间接血凝试验又称被动血凝试验（PHA），是目前应用较广的检测方法之一。
本试验是以包被可溶性抗原的红细胞作为指示系统，当被检抗体与包被在红细胞上的抗原产生特异性反应时，导致红细胞呈凝集现象。
可见，该法具有灵敏、快速、容易操作和无需昂贵仪器等优点，而且经改用醛化红细胞以后，克服原来重复性差的缺点。
①器材和试剂a、绵羊抗凝血，或人“O”型抗凝血。
b、缓冲液：PBS（PH7.2）；醋酸缓冲液。
c、甲醛，丙酮醛，NaN3，抗凝剂等。
d、血凝板，振荡器等。
②多糖抗原的间接血凝试验a、甲醛化绵羊红细胞的制备：无菌采集绵羊颈静脉血50ml，用枸橼酸钠作抗凝剂；用5倍于红细胞压积的PH7.2 PBS（Na2HPO4•12H2O 3.58g，KH2PO4 0.41g，NaCl 8.01g，蒸馏水1000ml）充分洗涤5次，每次1500r/min 5-10分钟，直至上清测定无蛋白质（用饱和硫酸铵滴定上清，观察有无白色沉淀），再以相同缓冲液配成25%红细胞悬液；将25%红细胞悬液与20%甲醛以2.5：1的比例混匀，37℃水浴作用2小时，每15分钟振荡一次，红细胞颜色逐渐由鲜红色转变为棕色；以PH7.2 PBS洗涤4次，每次2000r/min 10分钟，再以同样的PBS制成25%红细胞悬液；其后，重复醛化一次，方法同前；最后配成20%醛化绵羊红细胞悬液，加甲醛至0.3%防腐，4℃保存备用。
b、脂多糖抗原致敏甲醛化绵羊红细胞的制备：取脂多糖（LPS），以0. 2mol/L PH8.0 PB液，调整多糖浓度至120ug/ml，然后100℃水浴处理1小时；将冷却至37℃的热处理LPS与6%醛化红细胞等量混合，37℃搅拌作用45分钟；取出离心2000r/min 10分钟，以0.01mol/L PH7.2 PBS洗涤4次；配制成4%致敏血球，分装，保存于4℃备用，或冻干保存。
杂交瘤技术基本程序与方法一、杂交瘤技术的诞生淋巴细胞杂交瘤技术的诞生是几十年来免疫学在理论和技术两方面发展的必然结果，抗体生成的克隆选择学说、抗体基因的研究、抗体结构与生物合成以及其多样性产生机制的揭示等，为杂交瘤技术提供了必要理论基础，同时，骨髓瘤细胞的体外培养、细胞融合与杂交细胞的筛选等提供了技术贮备。
1975年8月7日，Kohler和Milstein在英国《自然》杂志上发表了题为“分泌具有预定特异性抗体的融合细胞的持续培养”（Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity）的著名论文。
他们大胆地把以前不同骨髓瘤细胞之间的融合延伸为将丧失合成次黄嘌呤-鸟嘌呤磷酸核糖转移酶（hypoxanthine guanosine phosphoribosyl transferase，HGPRT）的骨髓瘤细胞与经绵羊红细胞免疫的小鼠脾细胞进行融合。
融合由仙台病毒介导，杂交细胞通过在含有次黄嘌呤（hypoxanthine，H）、氨基喋呤（aminopterin，A）和胸腺嘧啶核苷（thymidine，T）的培养基（HAT）中生长进行选择。
在融合后的细胞群体里，尽管未融合的正常脾细胞和相互融合的脾细胞是HGPRT+，但不能连续培养，只能在培养基中存活几天，而未融合的HGPRT-骨髓瘤细胞和相互融合的HGPRT-骨髓瘤细胞不能在HA T培养基中存活，只有骨髓瘤细胞与脾细胞形成的杂交瘤细胞因得到分别来自亲本脾细胞的HGPRT和亲本骨髓瘤细胞的连续继代特性，而在HAT培养基中存活下来。
实验的结果完全像起始设计的那样，最终得到了很多分泌抗绵羊红细胞抗体的克隆化杂交瘤细胞系。
用这些细胞系注射小鼠后能形成肿瘤，即所谓杂交瘤。
生长杂交瘤的小鼠血清和腹水中含有大量同质的抗体，即单克隆抗体。
这一技术建立后不久，在融合剂和所用的骨髓瘤细胞系等方面即得到改进。
最早仙台病毒被用做融合剂，后来发现聚乙二醇（PEG）的融合效果更好，且避免了病毒的污染问题，从而得到广泛的应用。
随后建立的骨髓瘤细胞系如SP2/0-Ag14，X63-Ag8.653和NSO/1都是既不合成轻链又不合成重链的变种，所以由它们产生的杂交瘤细胞系，只分泌一种针对预定的抗原的抗体分子，克服了骨髓瘤细胞MOPC-21等的不足。
再后来又建立了大鼠、人和鸡等用于细胞融合的骨髓瘤细胞系，但其基本原理和方法是一样的。
二、基本程序和方法杂交瘤技术在具体操作上，各实验室使用的程序不尽一致。
本节中介绍的方法是作者所在实验室采用的、实践证明成熟的程序，该程序适合国内大多数实验室。
在开展杂交瘤技术制备单抗之前，培养骨髓瘤和杂交瘤细胞必须具备下列主要仪器设备：超净工作台、CO2恒温培养箱、超低温冰箱（-70℃）、倒置显微镜、精密天平或电子天平、液氮罐、离心机（水平转子，4000r/min）、37℃水浴箱、纯水装置、滤器、真空泵等。
其需要的主要器械包括：100ml、50ml、25ml细胞培养瓶，10ml、1ml刻度吸管，试管，滴管（弯头、直头），平皿，烧杯，500ml、250ml、100ml盐水瓶，青霉素小瓶，10ml、5ml、1ml 注射器等，96孔、24孔细胞培养板，融合管（50ml圆底带盖玻璃或塑料离心管），眼科剪刀，眼科镊，血细胞计数板，可调微量加样器（~50ul，~200ul，~1000ul），弯头针头，200目筛网，小鼠固定装置等。
此外，杂交瘤细胞的筛选与检测的仪器设备，依据检测单抗的方法不同而各异，请参阅本节有关部分。
淋巴细胞杂交瘤技术的主要步骤包括：动物免疫、细胞融合、杂交瘤细胞的筛选与单抗检测、杂交瘤细胞的克隆化、冻存、单抗的鉴定等，图6-1概括了淋巴细胞杂交瘤技术研制单抗的主要过程。
1、动物免疫（1）抗原制备制备单克隆抗体的免疫抗原，从纯度上说虽不要求很高，但高纯度的抗原使得到所需单抗的机会增加，同时可以减轻筛选的工作量。
因此，免疫抗原是越纯越好，应根据所研究的抗原和实验室的条件来决定。
一般来说，抗原的来源有限，或性质不稳定，提纯时易变性，或其免疫原性很强，或所需单抗是用于抗原不同组分的纯化或分析等，免疫用的抗原只需初步提纯甚至不提纯，但抗原中混杂物很多，特别是如果这些混杂物的免疫原性较强时，则必须对抗原进行纯化。
检测用抗原可以是与免疫抗原纯度相同，也可是不同的纯度，这主要决定于所用筛检方法的种类及其特异性和敏感性。
（2）免疫动物的选择根据所用的骨髓瘤细胞可选用小鼠和大鼠作为免疫动物。
因为，所有的供杂交瘤技术用的小鼠骨髓瘤细胞系均来源于BALB/c小鼠，所有的大鼠骨髓瘤细胞都来源于LOU/c大鼠，所以一般的杂交瘤生产都是用这两种纯系动物作为免疫动物。
但是，有时为了特殊目的而需进行种间杂交，则可免疫其他动物。
种间杂交瘤一般分泌抗体的能力不稳定，因为染色体容易丢失。
就小鼠而言，初次免疫时以8-12周龄为宜，雌性鼠较便于操作。
（3）免疫程序的确定免疫是单抗制备过程中的重要环节之一，其目的在于使B淋巴细胞在特异抗原刺激下分化、增殖，以利于细胞融合形成杂交细胞，并增加获得分泌特异性抗体的杂交瘤的机会。
因此在设计免疫程序时，应考虑到抗原的性质和纯度、抗原量、免疫途径、免疫次数与间隔时间、佐剂的应用及动物对该抗原的应答能力等。
没有一个免疫程序能适用于各种抗原。
现用的免疫程序中多数是参照制备常规多克隆抗体的方法。
表6-1列举了目前常用的免疫程序。
免疫途径常用体内免疫法包括皮下注射、腹腔或静脉注射，也采用足垫、皮内、滴鼻或点眼。
最后一次加强免疫多采用腹腔或静脉注射，目前尤其推崇后者，因为可使抗原对脾细胞作用更迅速而充分。
在最后一次加强免疫后第3天取脾融合为好，许多实验室的结果表明，初次免疫和再次免疫应答反应中，取脾细胞与骨髓瘤细胞融合，特异性杂交瘤的形成高峰分别为第4天和第22天，在初次免疫应答时获得的杂交瘤主要分泌IgM抗体，再次免疫应答时获得的杂交瘤主要分泌IgG抗体。
笔者体会阳性杂交瘤出现的高峰与小鼠血清抗体的滴度并无明显的平行关系，且多在血清抗体高峰之前。
因此，为达到最高的杂交瘤形成率需要有尽可能多的浆母细胞，这在最后一次加强免疫后第3天取脾进行融合较适宜。
已有人报道采用脾内免疫，可提高小鼠对抗原的免疫反应性，且节省时间，一般免疫3天后即可融合。
2、细胞融合（1）主要试剂的配制①细胞培养基杂交瘤技术中使用的细胞培养基主要有RPMI-1640或DMEM（Dulberco Modified Eagles Medium）两种基础培养基，具体配制方法按厂家规定的程序，配好后过滤除菌（0.22um），分装，4℃保存。
•不完全RPMI-1640培养基：RPMI-1640培养基原液96ml100×L.G.溶液1ml双抗溶液1ml7.5% NaHCO3溶液1-2mlHEPES溶液1ml•不完全DMEM培养基：DMEM 13.37g超纯水或四蒸水980mlNaHCO3 3.7g双抗溶液10ml100×L.G.溶液10ml用1N HCl调试PH至7.2-7.4，过滤除菌，分装4℃保存。
•完全RPMI-1640或DMEM培养基：不完全RPMI-1640或DMEM培养基80ml小牛血清15-20ml用于骨髓瘤细胞SP2/0和建株后的杂交瘤细胞培养。
•HT培养基：完全RPMI-1640或DMEM培养基99mlHT贮存液1ml•HAT培养基：完全RPMI-1640或DMEM培养基98mlHT贮存液1mlA贮存液1ml②氨基喋呤（A）贮存液（100×，4×10-5mol/L）称取1.76mg氨基喋呤（Aminopterin MW 440.4），溶于90ml超纯水或四蒸水中，滴加1mol/L NaOH 0.5ml中和，再补加超纯水或四蒸水至100ml。
过滤除菌，分装小瓶（2ml/瓶），-20℃保存。
③次黄嘌呤和胸腺嘧啶核苷（HT）贮存液（100×，H：10-2mol/L，T：1.6×10-3mol/L）称取136.1mg次黄嘌呤（Hypoxanthine，MW 136.1）和38.8mg胸腺嘧啶核苷（Thymidine，MW 242.2），加超纯水或四蒸水至100ml，置45-50℃水浴中使完全溶解，过滤除菌，分装小瓶（2ml/瓶），-20℃冻存。
用前可置37℃加温助溶。
④L-谷氨酰胺（L.G.）溶液（100×，0.2mol/L）称取2.92g L-谷氨酰胺（L-glutamine，MW 146.15），用100ml不完全培养液或超纯水（或四蒸水）溶解，过滤除菌，分装小瓶（4-5ml/瓶），-20℃冻存。
⑤青、链霉素（双抗）溶液（100×）取青霉素G（钠盐）100万单位和链霉素（硫酸盐）1g，溶于100ml灭菌超纯水或四蒸水中，分装小瓶（4-5ml/瓶），-20℃冻存。
⑥7.5% NaHCO3溶液称取分析纯NaHCO3 7.5g，溶于100ml超纯水或四蒸水中，过滤除菌，分装小瓶（4-5ml/瓶），盖紧瓶塞，4℃保存。
⑦HEPES溶液（1mol/L）称取23.83g HEPES（N-2-Hydroxyethylpiperazine-N，-2-ethanesulfonic acid，N-2-羟乙基哌嗪- N，-2-乙基磺酸，MW 238.3）溶于100ml超纯水或四蒸水中，过滤除菌，分装小瓶（4-5ml/瓶），4℃保存。
⑧8-氮鸟嘌呤贮存液（100×）称取200mg 8-氮鸟嘌呤（8-azaguanine，MW 152.1），加入4mol/L NaOH 1ml，待其溶解后，加入超纯水或四蒸水99ml，过滤除菌；分装小瓶，-20℃冻存。
使用时按1%浓度加入到培养液中（即终浓度为20ug/ml）。
⑨50% PEG称取PEG 1000 或4000 20-50g于三角瓶中，盖紧，60-80℃水浴融化，0.6ml分装于青霉素小瓶中，盖紧，8磅高压蒸汽15分钟，-20℃存放备用。
临用前加热融化，加等量不完全培养基，用少许7.5% NaHCO3调PH至8.0，或购买Sigma或Gibco公司现成产品。
（2）髓瘤细胞的准备融合前骨髓瘤细胞维持的方式，对成功地得到杂交瘤是最为重要的。
目标是使细胞处于对数生长的时间尽可能长，融合前肯定不能少于1周。
冻存的细胞在复苏后要2周时间才能处于适合于融合的状态，长过了的骨髓瘤细胞至少几天才可能恢复。
在实验室中处于对数生长的骨髓瘤细胞维持在含10%小牛血清的培养基中，方法是用6个装5ml培养基的培养瓶，接种10倍系列稀释的骨髓瘤细胞。
1周后到细胞相当密而又未长过的一瓶重新移植。
