流感病毒的分离培养
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篇一:鸡胚培养法鸡胚培养法(病毒分离培养)鸡胚是发育的机体,适合许多人类和动物病毒及立克次体的生长增值,常用于痘类病毒、粘液病毒、和疱疹病毒的分离、鉴定、抗原准备、疫苗生产以及病毒性质等方面的研究。
鸡胚培养病毒,常用的接种途径包括绒毛尿囊膜,尿囊腔、羊膜腔以及卵黄囊接种四种。
根据不同病毒,不同实验目的以及不同来源的标本,选择不同的途径接种鸡胚进行培养,即可达到分离培养病毒和传代病毒的目的。
本片主要介绍尿囊腔和羊膜腔两种接种途径在病毒分离培养和传代中的应用。
鸡胚的接种方法、孵育及收获一、仪器和器材spf鸡卵或鸡胚、二级生物安全柜、孵卵箱或恒温箱、检卵灯、照蛋灯、开卵钻、卵盘、1ml、1次注射器、医用胶布、液体石蜡、无菌镊子、巴氏吸管、15 ml无菌离心管、试管架、96孔微量反应板、加样槽、移液器、75%酒精、生理盐水等。
二、鸡胚的孵育应选择保存温度在100左右,时间不超过10天,卵壳薄而色浅的鸡卵,用于鸡胚的孵育。
特别脏的鸡卵需用清水清洗,用布擦干后孵育,干净的鸡卵不必做任何处理。
将鸡卵置于380c---390c孵卵箱,在孵卵箱底层盛水器中放入干净自来水,以保证鸡胚发育的湿度,病保持良好的通风,孵育至第四天,于检卵灯上检查鸡胚受精与否及发育情况。
受精鸡卵可见清晰地血管小团和发育的鸡胚迹象,似蜘蛛壮,未受精鸡卵仅能看见模糊的卵黄黑影,无鸡胚迹象。
在孵育过程中,应随时对鸡胚进行检查,淘汰濒死或已经死亡的鸡胚。
若在恒温箱里孵育鸡胚,则应在恒温箱底层放入装满水的广口容器,并从孵育的第3天起,每天180度转到鸡胚1—2次,是鸡胚发育匀称。
也可直接订购孵育9—11日龄的鸡胚。
如何判断鸡胚存活状态:1胎动:于检卵灯下可见活胎有明显的自然运动,但胎龄大于14天的胚胎,胎动不明显,甚至无胎动,死胎则无任何胎动,胎发红似出血样,有的呈现黑快。
2血管:活胚可见清晰地血管,卵壳较薄者还可见血管的搏动。
死胎血管模糊,成淤血带或淤血块。
1. 范围适用于实验室所有技术人员进行流感病毒的MDCK细胞分离和鉴定。
2. MDCK细胞培养程序2.1 生物安全要求MDCK细胞培养实验室生物安全级别:BSL-2 ,所有操作必须在BSL-2实验室的生物安全柜里进行。
2.2 材料2.2.1 生长成片的MDCK细胞2.2.2 无菌的T25细胞培养瓶2.2.3 D-MEM培养液(含有L-谷氨酰胺)2.2.4 青、链霉素母液(10000 U/mL青霉素G;10000µg/mL硫酸链霉素),分装后保存于-20℃2.2.5 HEPES缓冲液,1M母液2.2.6 胎牛血清2.2.7 EDTA-胰酶(0.05%胰酶,0.53mM EDTA-4Na),分装后保存于-20℃2.2.8 7.5%牛血清白蛋白组分V2.2.9 1mL、10mL无菌移液管2.2.10 70%~75%的酒精注意事项:经常检查试剂使用的有效期。
2.3 实验步骤这里以T75细胞瓶的单层细胞培养为例,叙述MDCK细胞的培养程序。
如果细胞瓶的规格有变,MDCK细胞悬液的量必须做相应的调整。
2.3.1 D-MEM培养液的准备500mL D-MEM液中加入:a)青、链霉素母液5mL(终浓度达:100U/mL青霉素;100µg/mL链霉素)。
b)7.5%牛血清白蛋白组分Ⅴ12.5mL(终浓度:0.2%)。
c)HEPES缓冲液12.5mL(终浓度:25mM)。
2.3.2 细胞生长液的准备胎牛血清10mL加到90mL的上述(1)的液体中,使胎牛血清的终浓度为10%。
2.3.3 首先将细胞培养瓶中的培养液弃去,加入5mL在37℃水浴中预热的EDTA-胰酶。
2.3.4 温和地摇动细胞瓶1min,使EDTA-胰酶均匀分布在整个细胞薄层。
然后用移液管吸去EDTA胰酶。
2.3.5 重新加入5mL在37℃水浴中预热的EDTA-胰酶重复上述步骤。
2.3.6 加入1mLEDTA-胰酶使其均匀分布在整个细胞薄层,37℃孵育细胞瓶直至细胞从塑料细胞瓶的表面分离(约5~10min)。
1. 范围适用于实验室所有技术人员进行流感病毒的MDCK细胞分离和鉴定。
2. MDCK细胞培养程序2.1 生物安全要求MDCK细胞培养实验室生物安全级别:BSL-2 ,所有操作必须在BSL-2实验室的生物安全柜里进行。
2.2 材料2.2.1 生长成片的MDCK细胞2.2.2 无菌的T25细胞培养瓶2.2.3 D-MEM培养液(含有L-谷氨酰胺)2.2.4 青、链霉素母液(10000 U/mL青霉素G;10000µg/mL硫酸链霉素),分装后保存于-20℃2.2.5 HEPES缓冲液,1M母液2.2.6 胎牛血清2.2.7 EDTA-胰酶(0.05%胰酶,0.53mM EDTA-4Na),分装后保存于-20℃2.2.8 7.5%牛血清白蛋白组分V2.2.9 1mL、10mL无菌移液管2.2.10 70%~75%的酒精注意事项:经常检查试剂使用的有效期。
2.3 实验步骤这里以T75细胞瓶的单层细胞培养为例,叙述MDCK细胞的培养程序。
如果细胞瓶的规格有变,MDCK细胞悬液的量必须做相应的调整。
2.3.1 D-MEM培养液的准备500mL D-MEM液中加入:a)青、链霉素母液5mL(终浓度达:100U/mL青霉素;100µg/mL链霉素)。
b)7.5%牛血清白蛋白组分Ⅴ12.5mL(终浓度:0.2%)。
c)HEPES缓冲液12.5mL(终浓度:25mM)。
2.3.2 细胞生长液的准备胎牛血清10mL加到90mL的上述(1)的液体中,使胎牛血清的终浓度为10%。
2.3.3 首先将细胞培养瓶中的培养液弃去,加入5mL在37℃水浴中预热的EDTA-胰酶。
2.3.4 温和地摇动细胞瓶1min,使EDTA-胰酶均匀分布在整个细胞薄层。
然后用移液管吸去EDTA胰酶。
2.3.5 重新加入5mL在37℃水浴中预热的EDTA-胰酶重复上述步骤。
2.3.6 加入1mLEDTA-胰酶使其均匀分布在整个细胞薄层,37℃孵育细胞瓶直至细胞从塑料细胞瓶的表面分离(约5~10min)。
流感诊断的金标准
流感即流行性感冒,诊断的金标准通常被认为是病毒分离培养。
这种方法可以直接从患者体内分离出流感病毒,是确诊流感的最可靠方法。
然而,由于病毒分离培养需要一定的时间和实验条件,因此在实际操作中,医生通常会结合患者的流行病学史、临床症状以及其他实验室检查结果进行综合判断。
流感诊断的金标准是通过实验室检测直接从患者体内分离并鉴定出流感病毒。
具体来说,包括以下几个步骤:
1. 病毒核酸检测:实时荧光定量PCR(RT-PCR)是目前临床最常用的流感病毒检测方法,它能直接检测到患者呼吸道分泌物(如鼻咽拭子、喉咙拭子或痰液样本)中流感病毒的核酸(RNA),从而确定是否感染了流感病毒。
2. 病毒分离培养:在特殊细胞上培养患者的呼吸道分泌物标本,并观察是否有病毒生长和特征性的细胞病变效应,然后进一步通过免疫学或分子生物学技术鉴定病毒种类。
3. 血清学检测:虽然不是即时诊断手段,但在疾病恢复期采集血清进行抗体检测,对比发病初期和恢复期双份血清中的抗流感病毒抗体滴度变化,若4倍以上升高则有助于回顾性诊断。
根据国家卫生健康委员会发布的流感诊断标准,结合病人的流行病学史(如近期接触史、疫区旅行史等)和临床表现(如突发高热、咳嗽、头痛、肌痛、乏力等症状),可以初步怀疑流感。
但最终确诊
通常依赖于上述实验室检查的结果。
特别是在流感流行季节或者发生流感样症状的群体中,实验室检测是必不可少的确诊环节。
总之,流感诊断的金标准是病毒分离培养,但在实际操作中,医生需要综合考虑患者的流行病学史、临床症状以及实验室检查结果进行综合判断。