1双抗体夹心法
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双抗夹心法ELISA(TAS-ELISA)步骤:1、准备可控温培养箱或摇床和样品。
样品用液氮或研钵研磨碎,再用组织:1×GEB 缓冲液=1:10(g:ml)浓度液提取。
2、用碳酸盐包被缓冲液稀释一抗,稀释倍数为200倍。
每孔加入稀释后的一抗100μl。
将加入一抗的酶标板用锡箔纸包裹,置于4℃下过夜或室温下放置4小时或37℃下放置2小时。
3、一抗包被结束时,在水池中倒出剩余液体,用1×PBST洗4-5次,每次将酶标板在吸水纸上用力拍一下以去除多余液体。
4、每孔加入100μl事先处理好的样品,每批实验均需加入阳性对照和样品提取液(GEB)。
将加入样品的酶标板用锡箔纸包裹,置于4℃下过夜或室温下放置4小时或37℃下放置2小时。
5、样品包被时间结束时,在水池中快速倒出剩余样品液体,用1×PBST洗7次,最后一次在吸水纸上用力拍一下以去除多余液体。
在室温中放置5min,或用枪头吸尽孔中液体。
6、用ECI抗体稀释液稀释酶标二抗,稀释倍数为200倍。
每孔加入稀释后的二抗100μl。
将加入二抗的酶标板用锡箔纸包裹,置于4℃下过夜或室温下放置4小时或37℃下放置2小时。
7、二抗包被结束时,在水池中快速倒出剩余抗体,用1×PBST洗8次,最后一次在吸水纸上用力拍一下以去除多余液体。
在室温中放置5min,或用枪头吸尽孔中液体和气泡。
8、在二抗包被结束前15min中准备底物显色液。
PNPP/1×PNP Buffer=1mg/ml的浓度配制,避光保存。
每孔加入底物100μl。
将加入底物的酶标板用锡箔纸包裹,置于37℃下孵育1小时。
9、显色30min时用肉眼观察显色结果,阳性孔应该显色,GEB孔应该无色。
直到显色1h时,阴性仍然无色就在酶标仪上测405nm处的OD值,求出阴性对照的OD值的值N,若样品OD值P≥2N,则视为阳性,否则为阴性。
试剂:。
双抗体夹心法原理双抗体夹心法(Bispecific T-cell Engager, BiTE)是一种新型的免疫治疗方法,它通过结合两种抗体,使T细胞与癌细胞之间建立联系,以增强抗肿瘤免疫反应。
本文将详细介绍双抗体夹心法的原理,并探讨其在肿瘤治疗中的应用前景。
一、双抗体夹心法的原理双抗体夹心法的原理主要依赖于两种单克隆抗体的结合。
第一种抗体(抗CD3抗体)结合在T细胞表面的CD3ε亚单位上,激活T细胞并诱导T细胞释放细胞毒素。
第二种抗体(抗肿瘤特异性抗原抗体)结合在肿瘤表面的抗原上,将T细胞与癌细胞相连接,形成一个免疫复合体,使T细胞能够直接杀伤癌细胞。
具体而言,双抗体夹心法的应用分为三个步骤:诱导,连接,杀伤。
1. 诱导:双抗体夹心法的第一步是将抗CD3抗体结合在T细胞表面的CD3ε亚单位上。
CD3ε是T细胞受体复合物的一部分,其结合后能够激活T细胞,并使其释放细胞毒素。
2. 连接:第二步是将抗肿瘤特异性抗原抗体结合在癌细胞表面的抗原上。
这些抗体能够选择性地识别并结合在癌细胞表面的抗原上,将T细胞与癌细胞连接在一起。
3. 杀伤:在连接完成后,通过T细胞释放的细胞毒素直接引起癌细胞的死亡。
这些细胞毒素能够穿透癌细胞的细胞膜,并激活细胞死亡信号通路,引发癌细胞的凋亡。
二、双抗体夹心法在肿瘤治疗中的应用前景双抗体夹心法作为一种新型的免疫治疗方法,具有许多优势,使其在肿瘤治疗中有着广阔的应用前景。
1. 高度特异性:双抗体夹心法通过选择性地结合在癌细胞表面的抗原上,避免了对正常组织的损伤,减少了治疗的毒副作用。
2. 改善免疫细胞活性:双抗体夹心法能够激活T细胞,并增强其杀伤癌细胞的能力。
相比传统的免疫治疗方法,其疗效更加显著。
3. 克服肿瘤免疫逃逸:由于双抗体夹心法能够直接将T细胞与癌细胞相连接,并诱导细胞毒素的释放,从而通过双重机制克服了肿瘤免疫逃逸现象。
4. 适应范围广泛:双抗体夹心法可以应用于各种类型的癌症,包括但不限于白血病、淋巴瘤、乳腺癌、结肠癌等,具有较强的普适性。
检测新冠抗原的双抗夹心法原理
新冠抗原的双抗夹心法(又称为双抗原夹心法)是一种常用的新冠病毒检测方法。
其原理如下:
1. 检测原理:
- 新冠抗原的双抗夹心法是基于免疫学原理进行的检测方法。
该方法利用单克隆抗体和标记物标记的检测抗体与新冠病毒抗原结合,形成夹心复合物。
- 检测时,将待检标本(如鼻腔或咽部拭子)加入检测试剂中,使病毒抗原与检测抗体结合。
如果标本中存在新冠病毒抗原,则夹心复合物会形成。
2. 结果解读:
- 当存在新冠病毒抗原时,夹心复合物将被形成,并可视为
阳性结果。
- 如果标本中没有新冠病毒抗原,则不会形成夹心复合物,
视为阴性结果。
- 结果的解读一般通过观察夹心复合物的形成与否来确定。
双抗原夹心法通常具有灵敏度高、快速、简便等优点,可用于新冠病毒的早期筛查和日常监测。
需要注意的是,该方法仅能检测当前感染的新冠病毒抗原,无法判断过去曾被感染或正在恢复中的个体。
因此,在诊断新冠病毒感染时,常需结合临床症状、流行病学史和其他检测方法来进行综合判断。
ELISA操作流程(一)、基本操作流程方法一双抗体夹心法(用于检测未知抗原的)1.包被:用包被液将抗体稀释至蛋白质含量为0.5~20μg/ml,按100ul/孔加入酶标板,4℃包被过夜。
2。
洗板:次日弃去孔内液体,在纸巾上轻轻扣打以吸去残留液体,加入洗涤液(约280-300ul/孔),漂洗2—3次,每次3—5min;3. 封闭:按200—250ul/孔加入封闭液,室温2—3小时或37℃1-2小时,也可4℃封闭过夜,然后弃去孔内封闭液;4. 样品处理:用洗涤液或样品稀释液将待检样品(含未知抗原)稀释至所需浓度;5。
标准液:用洗涤液或样品稀释液将标准液稀释至所需浓度(定性分析可省略本步骤);6.加样:按排列顺序依次加入50—100ul/孔稀释好的标准液、处理过的待检样品、阴性对照及阳性对照,室温或37℃孵育30-60min;7. 洗板:同步骤2;8.加酶标抗体:酶标抗体的稀释按产品说明书,按50—100ul/孔加入新鲜配制的酶标抗体,室温或37℃孵育1小时;9。
洗板:同步骤2;10。
加底物液显色:按100-150ul/孔加入新配制的TMB底物溶液,室温避光反应15~30分钟。
11. 终止反应:于各反应孔中加入50ul的终止液。
12。
结果判定:可于白色背景上,直接用裸眼观察结果,反应孔内颜色越深,阳性程度越强,阴性反应为无色或极浅,依据所呈颜色的深浅,以“+"、“—”号表示。
也可在酶标仪上于450nm(若以ABTS显色,则410nm)处测OD值。
检测时以空白对照孔调零后测各孔OD 值,若样品孔中的OD值大于阴性对照孔的2.1倍,即为阳性.方法二间接法(用于检测未知抗体)1。
包被:用包被缓冲液将已知抗原稀释至0.5~20μg/ml,按100ul/孔加入酶标板,4℃包被过夜,次日洗涤2-3次;2.洗板:次日弃去孔内液体,在纸巾上轻轻扣打以吸去残留液体,加入洗涤液(约280—300ul/孔),漂洗2—3次,每次3—5min;3. 封闭:按200-250ul/孔加入封闭液,室温2-3小时或37℃1—2小时,也可4℃封闭过夜,然后弃去孔内封闭液;4。
双抗体夹心法原理双抗体夹心法(Bispecific T cell Engager, BiTE)是一种重要的免疫疗法,通过结合两种不同的抗体来激活T细胞,从而识别和杀灭肿瘤细胞。
本文将详细介绍双抗体夹心法的原理及其在肿瘤治疗中的应用。
一、双抗体夹心法的原理双抗体夹心法的原理基于免疫细胞的活性调节和识别机制。
该技术使用两种单克隆抗体分子,一种与肿瘤细胞特异表面抗原(Tumor-associated Antigen, TAA)结合,另一种与T细胞表面的CD3结合。
这两种抗体通过产生连接两种细胞的跨膜结构域,使得肿瘤细胞与T细胞得以紧密结合。
双抗体夹心法的最重要的作用是调节T细胞的活性。
正常情况下,T细胞通过TCR(T细胞受体)与抗原递呈细胞上的MHC(类II主组织相容性复合物)结合,并受到CD28等共刺激分子的刺激,从而产生免疫应答。
然而,许多肿瘤细胞会通过降低MHC复合物的表达来逃避T细胞的识别和攻击。
而双抗体夹心法通过绕过MHC表达,直接连接T细胞与肿瘤细胞,弥补了MHC缺失的不足。
此外,在双抗体夹心法中,T细胞的激活也是通过与肿瘤细胞结合的抗体调控的。
特异性的抗体分子与肿瘤细胞表面的TAA结合后,可以同时与T细胞上的CD3结合,激活T细胞,从而引发细胞免疫应答,产生细胞毒性T细胞(Cytotoxic T lymphocytes, CTLs)。
二、双抗体夹心法在肿瘤治疗中的应用双抗体夹心法作为一种新型的肿瘤免疫疗法,具有较高的疗效和安全性,广泛应用于肿瘤治疗中。
1. 白血病的治疗双抗体夹心法被广泛应用于治疗B细胞急性淋巴细胞白血病(B-ALL)。
该疾病常见于儿童和年轻人,传统治疗方法的有效性较低。
而双抗体夹心法可以通过激活T细胞,识别并杀灭B-ALL细胞,显著提高治疗效果。
2. 非小细胞肺癌的治疗双抗体夹心法也被用于治疗非小细胞肺癌(NSCLC)。
NSCLC是一种常见的恶性肿瘤,传统的放化疗方法效果有限。
双抗体夹心法实验步骤1. 前言双抗体夹心法是一种非常常用的免疫检测方法,广泛应用于生物学、医学、环境科学等领域。
这种方法利用两个专一性强的抗体共同夹持待测物质,从而形成类似“夹心”的结构,可以大幅度提高检测的精准度和准确性。
本文将详细介绍双抗体夹心法的实验步骤。
2. 实验器材1. 96孔微孔板2. 吸头或移液器3. 洗板缓冲液4. 夹心板抗原或抗体5. 试剂盒中提供的初级抗体(通常是兔抗)6. 试剂盒中提供的生物素化二级抗体(通常是山羊抗)7. 过氧化物酶(HRP)结合酶标记荧光素底物8. 磷酸化蛋白酶抑制剂3. 实验步骤3.1. 板面涂覆1. 取出一张96孔微孔板;2. 加入200 μl 夹心板抗原或抗体(1-5 μg / ml 的浓度在PBS缓冲液中)。
在室温下静置2~12小时使其附着于微孔板上;3. 弃去液体,在孔内加入300 μl 1%牛血清蛋白(BSA)的PBS缓冲液,在常温下保存微孔板。
3.2. 洗涤1. 取出洗板缓冲液,并将96孔微孔板中的PBS液体涂覆洗净(如果您使用的是自己配制的洗板缓冲液,请按照所使用的方案操作);2. 重复1次。
3.3. 初次抗体夹心反应1. 取出您的实验物质,并将其加入到96孔微孔板中的每个孔中,通常情况下是50μl(如果您没有在预处理中加入样品,则当前步骤可以忽略)。
2. 在4℃条件下,静置2个小时;3. 弃去孔中的液体,在平板中添加330μl PBS缓冲液;4. 重复步骤 2 次。
3.4. 二次抗体夹心反应1. 在96孔微孔板中的每个孔中加入100μl色素化的抗原抗体,通常情况下是1000~5000倍的稀释度,在PBS缓冲液中(如果用于夹心的是抗体,则当前步骤可以忽略);2. 在4℃条件下,静置2个小时;3. 弃去孔中的液体,在平板中添加330μl PBS缓冲液;4. 重复步骤 2 次。
3.5. 酶标记亚细胞ALP反应1. 在96孔微孔板中的每个孔中加入100μl碱性磷酸酶[ALP]标记的生物素化羊抗体,通常情况下是5000倍稀释度(如果您使用的不是生物素化羊抗体,则当前步骤可以忽略);2. 在4℃条件下,静置2个小时;3. 弃去孔中的液体,在平板中添加330μl PBS缓冲液;4. 重复步骤 2 次。
双抗体夹心法原理随着生物技术的不断发展,研究人员不断努力寻找更有效的药物疗法来治疗各种疾病。
双抗体夹心法(或称抗体夹心法)作为一种新兴的治疗策略,正在受到越来越多的关注。
本文将介绍双抗体夹心法的原理和应用。
1. 基本概念双抗体夹心法是一种利用两种不同抗体与同一抗原结合的策略。
通常情况下,这两种抗体分别被称为抗原抗体和效应抗体。
抗原抗体与目标抗原结合,然后效应抗体与抗原抗体结合,形成一个“夹心”结构,从而实现对目标抗原的高度特异性识别和调控。
2. 原理解析双抗体夹心法的原理基于两种抗体结合抗原的能力和效应抗体的调控作用。
首先,抗原抗体具有高度特异性,可以选择性地识别和结合目标抗原。
其次,效应抗体具有特定的功能,例如抑制、促进或激活细胞免疫应答等。
当抗原抗体与目标抗原结合时,效应抗体可以通过结合抗原抗体来调控目标抗原的生物活性。
这可以通过以下几种方式实现:2.1. 抗体依赖性细胞毒性(ADCC)效应抗体可以结合至抗原抗体的Fc区域,激活免疫细胞,如自然杀伤细胞(NK细胞)以及单核细胞等,通过ADCC机制杀伤抗原阳性细胞。
这种机制在治疗癌症等疾病中已经被广泛应用。
2.2. 免疫调节效应抗体可以通过影响信号通路、改变细胞素产生及调节免疫细胞的功能,来调控免疫应答。
这种机制在治疗自身免疫性疾病、感染性疾病等方面具有良好的应用前景。
2.3. 抗体依赖性细胞捕获(ADCP)效应抗体不仅可以激活免疫细胞来杀伤抗原阳性细胞,同时还可以通过ADC机制让免疫细胞吞噬抗原阳性细胞。
这种机制在治疗炎症性疾病、感染性疾病等方面显示出潜力。
3. 应用前景双抗体夹心法作为一种新型的治疗策略,具有广泛的应用前景。
它可以用于治疗多种疾病,如肿瘤、自身免疫性疾病、炎症性疾病等。
临床试验已经显示,双抗体夹心法在治疗某些肿瘤中取得了显著的疗效。
此外,由于效应抗体具有多样化的功能,双抗体夹心法还具有潜力用于精准医学和个体化治疗。
尽管双抗体夹心法在治疗领域中有着广阔的应用前景,但仍然面临一些挑战。
双抗体夹心法原理双抗体夹心法(Bispecific T-cell Engagers, BiTEs)是一种新型的抗体工程技术,通过同时结合两个不同的抗原靶标,激活并增强人体免疫系统对肿瘤细胞的攻击能力。
该技术的原理基于特异性结合抗原的单克隆抗体,并通过连接肿瘤细胞和T细胞,促进肿瘤细胞的杀伤作用。
1. 双抗体夹心法的结构双抗体夹心法的结构可以分为四个部分:单链Fv抗体、连接剂、单链Fv抗体、连接剂。
其中,单链Fv抗体是双抗体夹心法的关键组成部分,它可以同时结合两种不同的抗原靶标,例如肿瘤细胞上的特定抗原和T细胞上的CD3ε。
连接剂则起到连接作用,将两个单链Fv抗体相互连接在一起,形成抗体结构。
2. 双抗体夹心法的原理双抗体夹心法的原理是通过两个单链Fv抗体同时结合肿瘤细胞和T细胞,将它们紧密地连接在一起。
当双抗体夹心法与肿瘤细胞结合时,它可以释放活化信号,激活附近的T细胞。
同时,双抗体夹心法也能够增强T细胞对肿瘤细胞的杀伤能力,并促使T细胞产生细胞毒性溶解素和细胞因子等效应分子,进一步增强其杀伤作用。
3. 双抗体夹心法的应用双抗体夹心法作为一种新型的免疫治疗技术,已经在临床试验中显示出良好的疗效,并在一些特定类型的恶性肿瘤治疗中取得了显著的进展。
例如,针对B细胞淋巴瘤的双抗体夹心法已经获得了FDA的批准,并成功实现了临床应用。
此外,双抗体夹心法还可以用于其他类型的恶性肿瘤治疗,如乳腺癌、肺癌等。
4. 双抗体夹心法的优势和挑战双抗体夹心法相比传统的单克隆抗体治疗具有一些明显的优势。
首先,双抗体夹心法可以同时结合两种不同的抗原靶标,通过激活T细胞的杀伤作用,增强肿瘤细胞的杀伤效果,并减少肿瘤细胞对治疗的耐药性。
其次,双抗体夹心法可以有效地激活免疫系统,提高肿瘤治疗的整体效果。
然而,双抗体夹心法在应用过程中也存在一些挑战,如制备成本高、体内稳定性等问题,需要进一步研究和改进。
总结:双抗体夹心法是一种基于抗体工程技术的新型免疫治疗方法,通过同时结合两个不同的抗原靶标,激活并增强人体免疫系统对肿瘤细胞的攻击能力。
1。
双抗体夹心法双抗体夹心法,属于非竞争结合测定、它就是检测抗原最常用得ELISA,适用于检测分子中具有至少两个抗原决定簇得多价抗原,而不能用于小分子半抗原得检测。
其基本工作原理就是:利用连接于固相载体上得抗体与酶标抗体分别与样品中被检测抗原分子上两个抗原决定簇结合,形成固相抗体—抗原-酶标抗体免疫复合物。
由于反应系统中固相抗体与酶标抗体得量相对于待测抗原就是过量得,因此复合物得形成量与待测抗原得含量成正比(在方法可检测范围内)、测定复合物中得酶作用于加入得底物后生成得有色物质量(OD值),即可确定待测抗原含量、若固相载体上得抗体与酶标抗体分别与样品中被检测抗原分子上两个不同得抗原决定簇结合,则属于双位点夹心法。
若采用固相载体上得抗原与酶标抗原分别与样品中被检测抗体分子结合,则就是双抗原夹心法、操作步骤:⑴将特异性抗体包被固相载体McAb。
孵育一定时间,使形成固相抗体,洗涤除去未结合得抗体与杂质。
⑵加待检标本,孵育,使标本中得抗原与固相载体上得抗体充分反应,形成固相抗原抗体复合物、洗涤除去其她未结合物质。
⑶加酶标抗体,孵育,使形成固相抗体-待测抗原-酶标抗体夹心复合物。
洗涤除去未结合酶标抗体。
⑷加底物显色。
固相上得酶催化底物产生有色产物,通过比色,测标本中抗原得量、现多采用针对单一抗原决定簇特异性得单克隆抗体做固相化与酶标抗体,则受检样品与酶标抗体可一次性加入,简化流程,缩短反应时间、若标本中待测抗原浓度过高,抗原可分别与酶标抗体与固相抗体结合而不形成上述夹心复合物(类似于免疫沉淀反应中抗原过剩时得后带现象),使最终结果低于实际含量(钩状效应),甚至出现假阴性现象。
因此对此类标本应适当稀释后再测定。
另外,当血清中存在类风湿因子(RF)时,类风湿因子(RF)可充当抗原,而形成固相抗体—类风湿因子-酶标抗体夹心复合物,从而出现假阳性结果、2。
间接法此法就是测定抗体最常用得方法,属非竞争结合试验、其原理就是将抗原连接到固相载体上,样品中待测抗体与之结合成固相抗原—受检抗体复合物,再用酶标二抗(针对受检抗体得抗体,如羊抗人IgG抗体)与固相免疫复合物中得抗体结合,形成固相抗原-受检抗体—酶标二抗复合物,测定加底物后得显色程度,确定待测抗体含量。
操作步骤⑴将已知抗原包被固相载体,形成固相抗原。
洗涤除去未结合得抗原及杂质。
⑵封闭:用高浓度无关蛋白封闭,阻止待检血清中非特异IgG吸附固相。
⑶加待检血清,孵育,使固相抗原与待检抗体充分结合,洗涤除去未结合得非特异抗体及其她血清成分。
⑷加酶标抗体或酶标SPA,孵育,形成固相抗原-待检抗体-酶标抗抗体(或酶标SPA)复合物。
⑸加底物显色、间接法由于采用得酶标二抗就是针对一类免疫球蛋白分子(如抗人IgG),因此该法只需要换固相抗原,即可用一种酶标二抗检测各种与抗原相应得抗体,具有更广泛得通用性。
3、竞争法竞争法ELISA可用于抗原与半抗原得定量测定,也可对抗体进行检测。
其方法与特点就是:①酶标记抗原(抗体)与样品或标准体中得非标记抗原或抗体具有相同得与固相抗体(抗原)结合得能力;②反应体系中,固相抗体(抗原)与酶标抗原(抗体)就是固定限量,且前者得结合位点少于酶标记与非标记抗原(抗体)得分子量与;③免疫反应后,结合于固相载体上复合物中被测定得酶标抗原(抗体)得量(酶活性)与样品或标准品中非标记抗原(抗体)得浓度成反比。
操作步骤⑴将已知抗体包被载体,形成固相抗体、洗涤除去未结合物。
⑵加入待检标本与酶标抗原,孵育,使两者与固相抗体竞争结合。
洗涤除去未结合到固相上得游离酶标抗原及其她未结合物。
⑶加底物显色。
颜色深浅与待测抗原量成反比。
同理,也可用固相抗原与酶标抗体作试剂,使固相抗原与标本中得待检抗原竞争结合酶标抗体。
待检抗原竞争抑制酶标抗体与固相抗原结合,即待检抗原越多,显色越浅。
以抗原测定为例,先将特异性抗体连接于固相载体,分别设置对照管与样品测定管;对照管中仅加酶标抗原,加样后,无非标记抗原竞争,酶标抗原即与固相抗体充分结合;而测定管抗原与后者得结合受到抑制而减少。
加酶底物显色后,对照管因固相抗体上结合得酶标抗原多,显色深,测定管则依被检抗原与酶标抗原竞争结合固相抗体程度不同而显色深浅有异:被检抗原多,酶标抗原与固相抗体结合少,底物显色反应弱,色浅;反之呈色深。
即结合于固相得酶标抗原量与样品中被检抗原浓度负相关、计算测定管与对照管颜色深度(OD值)之差,即可确定被检抗原量。
4。
捕获法捕获法(亦称反向间接法)ELISA,主要用于血清中某种抗体亚型成分(如IgM)得测定。
以目前最常用得IgM测定为例,因血清中针对某种抗原得特异性IgM与IgG同时存在,则后者可干扰IgM得测定、因此捕获法得工作原理设计为:先将针对IgM得第二抗体(如羊抗人IgMμ链抗体)连接于固相载体,用以结合(“捕获”)样品中所有IgM(特异或非特异),洗涤出去IgG等无关物质,然后加入特异抗原与待检IgM结合;再加入抗原特异得酶标抗体,最后形成固相二抗-IgM—抗原-酶标抗体复合物,加酶底物作用显色后,即可对样品中待检IgM就是否存在及其含量进行测定。
5。
其她ELSAELSA法由于测定灵敏、特异、操作简便、易于自动化,且无放射性污染等诸多优点,使其不仅成为目前应用最广而且发展最快得一种免疫测定技术。
而且在方法学上得改进与衍化,使其不断有各具特点得新测定法问世,如应用生物素-亲与素放大系统(biotin—axidin system,BAS)得ELISA;利用酶催化底物发荧光得酶联免疫荧光测定(enzymelinkedimmunofluorecence assay,ELFIA),斑点—ELISA(dot-ELISA)与酶联免疫电转移印迹法(enzyme linked immunoelectrotransferblot,EITB)以及酶联免疫化学发光测定(enzyme linkedimmunochemiluminescence assay,ELICLA)等、新方法不仅进一步提高了测定灵敏、特异性,而且使ELISA技术在提高自动化程度得同时,也便于单份样本测定与简化设备条件,尤其试用于急诊、社区诊所及家庭化验、膜载体得酶免疫测定固相膜免疫测定(solid phase membrane—based immuoassay)与固相酶免疫测定(ELISA)相类似,其特点就是以微孔膜作为固相。
标记物可用酶与各种有色微粒子,如彩色乳胶、胶体金、胶体硒等,以红色得胶体金最为常用。
固相膜得特点在于其多孔性,像滤纸一样。
固相膜可被液体穿过流出,液体也可以通过毛细管作用在膜上向前移行、利用这种性能建立了两种不同类型得快速检测方法、常用得固相膜为硝酸纤维素(nitrocellulose,NC)膜。
㈠斑点酶免疫吸附试验斑点-ELISA(dot-ELISA)实验原理与常规得ELISA相同,不同之处在于斑点-ELISA所用载体为蛋白质具有极强吸附力(近100%)得硝酸纤维素(NC)膜,此外酶作用底物后形成有色得沉淀物,使NC染色实验方法为:加少量(1~2μl)抗原于膜上,由于NC膜吸附能力强,故需在干燥后进行封闭;然后滴加样品血清,其中得待检抗体即与NC膜上抗原结合;洗涤后再滴加酶标二抗,最后滴加能形成不溶有色物得底物溶液(如HRP标记物,常用二氨基联苯胺);阳性者即可在膜上出现肉眼可见得染色斑点。
斑点-ELISA得优点为:NC膜吸附蛋白力强,微量抗原吸附完全,故检出灵敏度可较普通ELISA高6~8倍;试剂用量教ELISA节约约10倍;操作简单,实验及结果判断不需特殊设备条件;吸附抗原(抗体)或已有结果得NC膜可长期保存(—20℃可长达半年),不影响其活性。
㈡免疫渗滤实验免疫渗滤实验(IFA)得基本原理就是:一硝酸纤维素(NC)膜为载体,利用微孔滤膜得可滤过性,使抗原抗体反应与洗涤在一特殊得渗滤装置上以液体渗滤过膜得方式迅速完成。
免疫渗滤实验最初就是从斑点ELISA基础上发展建立起来得,应用得结合物就是酶标记得。
20世纪90年代初发展了以胶体金为标记物得金免疫渗滤实验(GIFA),省却了酶对底物得反应,更加简单、快速。
渗滤装置就是IFA中得主要试剂成分之一,由塑料小盒、吸水塑料与点加了抗原或抗体得硝酸纤维素膜片三部分著称、塑料小盒可以就是多种形状得,盒盖得中央有一直径约为0.4~0、8cm得小圆吸孔,盒内垫放吸水塑料,NC膜片安放在正对盒盖得圆孔下,紧密关闭盒盖,就是NC膜片贴紧水塑料。
如此即制备成一渗滤装置。
整个反应过程都在渗滤装置中进行,因此又常称位扁平长方形渗滤装置为反应板、以双抗体夹心HCG为例,于小孔内滴加标本1~2滴,待完全渗入。
此时标本中得HCG与NC膜上得抗βHCG相结合。
再于小孔内滴加结合物试剂1~2滴,待完全渗入,金标记得抗αHCG抗体与NC膜上得HCG形成双抗体夹心复合物、因胶体金为红色,在NC膜上出现红色斑点。
在膜中央有清晰得淡红色或红色斑点显示者判断为阳性反应;反之,则为阴性反应,斑点呈色得深浅相应地提示阳性强度。
有将包被斑点由圆点式改成短线条式得:质控斑点横向包被成横线条,如“-"‘反应斑点纵向包被成竖线条,如“│";两者相交成“+”。
这样,阳性反应结果在膜上显示红色得正号(+),阴性结果则为负号(-),目视判断直观、明了、㈢免疫层析实验免疫层析实验(ICA)就是继IFA之后反站起来得另一种膜固相免疫测定。
与IFA利用微孔膜得过滤性能不同,ICA中滴加在膜一端得样品溶液受膜得毛细管作用向另一端移动,犹如层析一般。
移动过程中被分析物与固定于膜上某一区域得抗原或抗体结合而被固相化,无关物质则越过该区域而被分离,然后通过标记物得显色来判定实验结果。
以胶体金为标记物得实验称为金免疫层析实验(GICA)。
ICA中所用得试剂全部为干试剂,它们被组合在一试剂条上。
试剂条得底版为一单面胶塑料片,A、B两端粘贴有吸水材料。
加样端A为样品垫,可用得材料有滤纸、多孔聚乙烯与玻璃纤维等,按分析物与试剂得不同选择合适得材料。
B端为吸水垫,材料则为吸水性强得滤纸为佳、G处为结合物垫,胶体金结合物干燥固定在玻璃纤维膜等材料上。
G、B之间粘贴吸附有抗原或抗体得硝酸纤维素膜,抗原或抗体往往以直线得形式包被在膜上、一双抗体夹心法测HCG为例。
试条中G处为金标记得抗αHCG,NC膜上T处包被抗βHCG,C处包被抗小鼠IgG抗体。
测试时在A端加尿液(或将A端浸入尿液中),通过层析做HCG-HCG复合物;移行至T区,形成金-抗α-HCG-HCG-抗βHCG复合物,在T区显示红色线条,为阳性反应、多余得金标记抗αHCG移行至C区时被抗小鼠IgG抗体捕获,而显示出红色对照线条。