动物组织讲义石蜡切片制作

石蜡切片的制作石蜡切片法即用石蜡作为支持剂进行切片的方法。

石蜡切片法是一般组织学、病理学等常规制片方法，它有很多优点，例如，比较省时间，容易操作，可切成极薄的切片，能制作连续切片，组织块可包埋在石蜡中永久保存等。

缺点是只能用于较小的组织块，较大的组织块不易切好容易破碎，组织在脱水透明过程中产生收缩并易变脆，制片时间太长。

一、石蜡切片的制作过程石蜡切片的制作过程主要是：取材→水洗→固定→水洗→脱水→透明→浸蜡→包埋→切片→贴片→染色。

（一）取材及水洗根据实验要求选取材料来源及部位，取要求部位的小块组织成为组织块，组织块的大小以不超过0.5立方厘米为宜。

切去组织块时动作要轻，切忌用力牵引或挟持，以免组织内部发生变化。

由动物身上切取的组织必须是新鲜的，材料越新鲜越好，一般不应超过死后24小时，因此一般情况下，将动物处死后立即取需要的材料。

组织块取下后，先用相应的生理盐水漂洗以洗去血液、污渍以及粘液等。

如果是管状组织则必须把管腔中污物洗净，可用注射器自一端向管腔中注射生理盐水数次，使其管腔冲洗干净，切忌不可用刀或其他器具刮之。

（二）固定材料由动物体取下后应当迅速固定，固定的目的是尽快使固定液渗入组织内部，将组织固定以保持其原有的结构。

不同的组织应选用适当的固定液。

固定液的用量与组织块体积之比一般在20:1，不应使组织块贴于容器壁上。

材料固定完毕后，保存于严密紧塞或加盖的容器里，同时在容器外上标签，应记录固定液的名称，材料的种类，动物品种及开始固定的时间。

固定的时间长短依据材料大小而定。

固定液有许多种，在固定的过程中应该根据需要选取合适的固定液，一般固定液都以新配为好，配好后应贮存在阴凉处，不宜放在日光下，以免引起化学变化而失去固定作用。

有些混合固定液的成份之间会发生氧化还原作用，一定要在使用前才混合，如果混合太早固定时就没有作用了。

（三）水洗固定后的组织块在进行脱水前必须用流水洗去固定液。

，主要目的是洗去固定液的颜色以便后续的染色。

石蜡切片的制作过程石蜡切片的制作过程主要包括：取材，固定，脱水，透明，透蜡，包埋，切片，贴片，染色，透明，封藏等步骤。

1．取材材料的好坏直接影响到切片的质量，无论取哪一种动植物材料，以下几点是必须注意的。

（1）植物材料选择时须尽可能不损伤植物体或所需要的部分；动物材料取用时常对动物施以麻醉，常用的麻醉剂有氯仿和乙醚，或将动物杀死后迅速取出所需要的组织。

（2）取材必须新鲜，这一点对于从事细胞生物学研究尤为重要，应该尽可能割取生活着的组织块，并随即投入固定液。

（3）切取材料时刀要锐利，避免因挤压细胞使其受到损伤。

（4）切取的材料应该小而薄，便于固定剂迅速渗入内部。

一般厚度不超过2mm，大小不超过5×5mm2。

2．固定组织和细胞离开机体后，在一定时间内仍然延续着生命活动，会引起病理变化直至归于死亡。

为了使标本能反映它生前的正常状态，必须尽早地用某些化学药品迅速地杀死组织和细胞，阻抑上述变化，并将结构成分转化为不溶性物质，防止某些结构的溶化和消失。

这种处理就是固定。

除了上述作用外，固定剂会使组织适当硬化以便于随后的处理，还会改变细胞内部的折射系数并使某些部分易于染色。

固定剂的作用对象主要是蛋白质，至于其他成分如脂肪和糖，在一般制作时不加考虑，如要观察这些物质，可用特殊的方法将其固定下来。

固定剂的作用表现在对材料体积的改变、硬化的程度、穿透的速度以及对染色的影响等方面。

这些作用的好坏、大小，都依所固定的材料性质而定，同样一种固定液对某一材料来说是良好的，但对另外一些组织可能就不很适用。

良好的固定剂必须具备的特征是：穿透组织的速度快。

，能将细胞中的内含物凝固成不溶解物质，不使组织膨胀或收缩以保持原形，硬化组织的程度适中，增加细胞内含物的折光度，增加媒染和染色能力，具有保存剂作用。

固定剂有简单固定剂和混合固定剂的划分。

简单固定剂即单一的固定剂，常用的有乙醇、甲醛、冰醋酸、升汞、苦味酸、铬酸、重铬酸钾和锇酸。

石蜡切片制作超详细步骤1．取材颈椎脱臼法处死小鼠，打开腹腔，剪取肝组织（或其他组织）。

切取的组织块不宜太大，以利于固定剂穿透，通常以5mm×5mm×2mm或10 mm×10 mm×2 mm为宜。

取下所需要的肝组织，切成一小块2－3mm厚。

注意事项：（1）取材动作要迅速，不宜拖太久，以免组织细胞的成分、结构等发生变化。

（2）切片材料应根据需要观察的部位进行选择，尽可能不要损伤所需要的部分。

2．固定将切好的肝组织用生理盐水洗一下，立即投入中性福尔马林固定液中固定30－50min。

注意事项：（1）一般固定液，都以新配为好，配好后应贮存在阴凉处，不宜放在日光下，以免引起化学变化，失去固定作用。

（2）有些混合固定液的成分之间会发生氧化还原作用，一定要在使用前混合，如果混合太早，固定时就没有作用了。

（3）固定材料时，固定液必须充足，一般为材料块的20~30倍，有些水分多的材料，中间应更换1-2次新液。

（4）材料固定完毕后，保存于严密紧塞或加盖的容器里，同时在容器外贴上标签，并随同材料在溶液中投入相应的标签，以免混淆。

标签上注明固定液、材料来源、日期等。

标签上的文字，用黑色铅笔写。

3.洗涤材料经固定后,流水冲洗，数小时或过夜。

4.脱水材料依次经70%、80%、90%各级乙醇溶液脱水，各30min，再放入95%、100%各2次，每次20min。

注意事项：（1）脱水必须在有盖的玻璃瓶中进行，防止吸收空气中的水分。

（2）在更换高一级的脱水剂时，最好不要移动材料以免损坏，可用吸管吸出器皿中的脱水剂，再用吸水吸尽器皿内剩余液，然后于皿中加入高一级脱水剂。

（3）在低浓度酒精中，每级停留不宜太长，否则易使组织变软，助长材料的解体。

（4）在高浓度或纯酒精中，每级停留的时间也不宜太长，否则会使组织变脆，影响切片。

（5）如需过夜，应停留在70%酒精中。

（6）脱水必须彻底，否则不易透明，甚至使透明剂内出现白色混浊现象5．透明纯酒精、二甲苯等量混合液15min，二甲苯Ⅰ15min、Ⅱ15min （至透明为止）。

小鼠部分组织的石蜡切片制作一、实验原理：利用脱水剂除去组织中的水分，再用透明剂二甲苯可以去除脱水剂酒精，而二甲苯可以溶解石蜡并将其导入到已脱水的组织细胞中，然后用熔化的石蜡对组织进行包埋，冷却后即可将柔软的组织包埋在石蜡中，使其具有一定硬度，且不改变其大小和形状。

用旋转切片机可将其切为极薄的薄片，经染色、脱水、装片后在显微镜下可以清晰地观察其组织结构。

二、材料与用具1．材料：小鼠肝脏、脾脏等。

2．用具：溶蜡箱、蜡杯、不同熔点的石蜡、酒精灯等。

三、实验内容与步骤1．取材及固定取小鼠，采用拉颈处死或麻醉处死法将其杀死，取其脾脏和肝脏，切为边长约为0.5cm的组织块。

用先用0.85％的生理盐水漂洗以洗去血液与污渍，如果是管状组织则必须把管腔中污物洗净，可用注射器自一端向管腔中注射生理盐水数次，使其管腔冲洗干净，切忌不可用刀或其他器具刮之。

由动物身上切取的组织必须是新鲜的，材料越新鲜越好，一般不应超过死后24 hr。

如果是管状器官或是其中有分泌之消化液，则死后应迅速采取，以免组织自溶或上皮剥落。

取下的材料马上进行固定，采用FAA固定液，固定液的用量与组织块体积之比一般在20:1，固定时间2 hr以上，超过24hr时可继续浸泡或转入70%酒精中保存。

不应使组织块贴于容器壁上，应记录固定液的名称，材料的种类，动物品种及开始固定的时间。

2．冲洗固定后的组织块在进行脱水前用70%酒精洗去固定液。

3．脱水和硬化经过固定后的组织在水洗后要进行脱水，脱水的目的将组织内的水分用酒精或其他溶剂置换出来，使组织逐渐变硬，便于油类或其他透明及浸入，为熔化的石蜡浸渗到组织中创造条件。

常用的脱水剂是不同浓度的酒精，因为酒精与水有很大的亲和力，酒精浓度可以逐渐升高，置换出组织中的水。

脱水必须充分，脱水不充分会影响透明和浸蜡。

脱水过程要逐级上升，不能操之过急，跳级脱水会引起组织块强烈的收缩变形。

脱水所用的酒精浓度及过程如下：30％—→50％—→70％—→80％—→90％—→95％—→100％(Ⅰ)—→100％(Ⅱ)组织块在各级较低浓酒精（小于70％）中脱水的时间应视组织块的大小而定，大小不超过0.5立方厘米的组织块脱水时间为6～12 hr，在高浓度酒精中（大于70％）脱水时间为3 hr 左右。

石蜡切片的制作石蜡切片法即用石蜡作为支持剂进行切片的方法。

石蜡切片法是一般组织学、病理学等常规制片方法，它有很多优点，例如，比较省时间，容易操作，可切成极薄的切片，能制作连续切片，组织块可包埋在石蜡中永久保存等。

缺点是只能用于较小的组织块，较大的组织块不易切好容易破碎，组织在脱水透明过程中产生收缩并易变脆，制片时间太长。

一、石蜡切片的制作过程石蜡切片的制作过程主要是：取材→水洗→固定→水洗→脱水→透明→浸蜡→包埋→切片→贴片→染色。

（一）取材及水洗根据实验要求选取材料来源及部位，取要求部位的小块组织成为组织块，组织块的大小以不超过0.5立方厘米为宜。

切去组织块时动作要轻，切忌用力牵引或挟持，以免组织内部发生变化。

由动物身上切取的组织必须是新鲜的，材料越新鲜越好，一般不应超过死后24小时，因此一般情况下，将动物处死后立即取需要的材料。

组织块取下后，先用相应的生理盐水漂洗以洗去血液、污渍以及粘液等。

如果是管状组织则必须把管腔中污物洗净，可用注射器自一端向管腔中注射生理盐水数次，使其管腔冲洗干净，切忌不可用刀或其他器具刮之。

（二）固定材料由动物体取下后应当迅速固定，固定的目的是尽快使固定液渗入组织内部，将组织固定 以保持其原有的结构。

不同的组织应选用适当的固定液。

固定液的用量与组织块体积之比一般在20:1，不应使组织块贴于容器壁上。

材料固定完毕后，保存于严密紧塞或加盖的容器里，同时在容器外上标签，应记录固定液的名称，材料的种类，动物品种及开始固定的时间。

固定的时间长短依据材料大小而定。

固定液有许多种，在固定的过程中应该根据需要选取合适的固定液，一般固定液都以新配为好，配好后应贮存在阴凉处，不宜放在日光下，以免引起化学变化而失去固定作用。

有些混合固定液的成份之间会发生氧化还原作用，一定要在使用前才混合，如果混合太早固定时就没有作用了。

（三）水洗固定后的组织块在进行脱水前必须用流水洗去固定液。

，主要目的是洗去固定液的颜色以便后续的染色。

高校生物学教学研究（电子版）2019年2月，9（1）：3-4ISSN 2095-1574 CN 11-9307/R DOI 10.3868/j.issn 2095-1574.2019.01.001专题［编者按］在信息技术与教育教学深度融合的背景下，“微课”作为一种重要的在线学习资源已被广泛应用于教学实践与教学改革中。

为进一步促进高校生命科学类课程教师的教学理念更新和教学能力提升，本刊将陆续刊登各高校微课教学优秀作品及其教学设计方案，以供各高校教师相互交流与借鉴。

“动物组织的石蜡切片制作及HE 染色”微课教案李玉明（），谢莉萍，王洪钟，王宏英，张贵友清华大学生命科学学院，北京，100084基金项目：清华大学校级教改项目支持（ZY01_03）通讯作者：李玉明，E -mail：ym -li@生物学是一门实验性很强的学科，各领域的实验技术自成体系、操作性强。

作为从事生物实验教学多年的工作者，深感近年兴起的微课对生物学实验教学颇有益处。

传统的生物学实验教学模式通常以教师的语言、文字描述为主，虽然直面学生，但对技术细节的展示不够直观。

因此作为补充，常会设置演示实验环节，由教师或助教示范，学生观摩，但因操作者的习惯不同，使得演示过程缺乏规范性，并且如果一个班的学生人数多于20人，示范的效果便更不理想。

以微课的形式呈现一项生物实验技术的好处在于：①通过图片、动画、声音、视频等媒介传递知识，可以紧紧抓住学生的注意力，激发学生的学习兴趣，传递更为丰富的信息。

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教学背景本文介绍的“动物组织的石蜡切片制作及HE 染色”技术对于从事细胞生物学、发育生物学、临床医学等学科的教学、科研人员而言是一项常用的实验技术，也是生物学专业本科生需要理解和掌握的一项实验技能。

石蜡切片的操作方法石蜡切片是一种常用的组织切片制备方法，用于细胞学和组织学的研究。

下面是石蜡切片的操作方法：1. 收集样本：选择要制备切片的组织样本或细胞样本。

样本可以是动物组织、植物组织或细胞培养物。

2. 选择合适的浸渍剂：石蜡切片需要将样本浸渍在石蜡之中，以固定和保护样本。

常用的浸渍剂包括甲醇、乙醇和二甲苯。

3. 固定样本：将样本固定在固定剂（如甲醛）中，以保持其形态结构。

固定时间根据样本的类型和大小而定，一般在4C下静置数小时或过夜。

4. 脱水：在一系列浓度逐渐增加的乙醇溶液中，将固定的样本从水中脱水，使其逐渐转移到纯度较高的乙醇中。

5. 渗透：将脱水的样本浸渍在二甲苯或其他有机溶剂中，使其渗透并置换乙醇。

浸渍时间根据样本的大小和组织特性而定，一般在一到数小时之间。

6. 包埋：将渗透后的样本置于石蜡中，使其完全浸润。

石蜡块可以预先加热至液态，然后将样本放入其中，或者将样本以及适量的石蜡放入模具中，然后通过加热使其固化。

7. 切片：将制备好的石蜡块放入石蜡切片机中，使用旋转切片刀将其切成薄片。

切片厚度一般为4-10微米。

8. 取片：用切片刀或镊子将切好的石蜡切片取出，并放置在清洁的显微镜载玻片或切片架上。

9. 脱脂：将石蜡切片置于加热的二甲苯或其他脱蜡剂中，使其脱去石蜡。

10. 染色：根据需要，可对石蜡切片进行染色，例如常用的血液和组织标本染色方法如伊红染色(H&E染色)。

11. 干燥：将染色的切片在室温下晾干或在加热台上加热至干燥。

最后，将切片用显微镜载玻片覆盖，并封口保存。

以上就是石蜡切片的一般操作方法，每个实验室可能会根据具体需求进行微调。

在操作过程中要注意安全，避免接触有毒溶剂和使用锋利的刀片时的切割操作。

一种快捷安全的动物病理组织石蜡切片制作技术何书海，陈宏智（信阳农业高等专科学校动物科学系，河南信阳４６４０００）摘要：为探索一种快捷、安全、实用的病理切片制作技术，本试验在传统石蜡切片制作技术的基础上，通过技术改良与创新，发现了一种快捷安全的病理切片制作方法。

试验结果表明，运用这种方法制作病理切片不仅简单快捷，而且制得的病理切片质量高，Ｈ．Ｅ．染色细胞着色良好，镜下观察细胞结构清晰，胞质与胞核对比鲜明；本方法兼具冰冻切片和石蜡切片二者的优点。

关键词：石蜡切片；超声波；冰冻切片；正丁醇中图分类号：Ｓ８５２．３１ 文献标识码：Ａ 文章编号：０５２９－６００５（２０１２）０１－００１５－０３Ａ　ｑｕｉｃｋ　ａｎｄ　ｓａｆｅ　ｍｅｔｈｏｄ　ｔｏ　ｍａｋｅ　ｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌ　ｐａｒａｆｆｉｎ　ｓｅｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｎｉｍａｌ　ｔｉｓｓｕｅｓＨＥ　Ｓｈｕ－ｈａｉ，ＣＨＥＮ　Ｈｏｎｇ－ｚｈｉ（Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｘｉｎｙａｎｇ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ　Ｃｏｌｌｅｇｅ，Ｘｉｎｙａｎｇ　４６４０００，Ｃｈｉｎａ）Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｉｎ　ｏｒｄｅｒ　ｔｏ　ｓｔｕｄｙ　ａｑｕｉｃｋ，ｓａｆｅ　ａｎｄ　ｐｒａｃｔｉｃａｌ　ｍｅｔｈｏｄ　ｔｏ　ｍａｋｅ　ｐａｒａｆｆｉｎ　ｏｆ　ｓｅｃｔｉｏｎ　ａｂｏｕｔ　ａｎｉｍａｌｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌ　ｔｉｓｓｕｅｓ，ｗｅ　ｈａｖｅ　ｅｘｐｌｏｒｅｄ　ａ　ｎｅｗ　ｑｕｉｃｋ　ａｎｄ　ｅａｓｙ　Ｒｉｐｐｉｎｇ　Ｍｅｔｈｏｄ　ｏｆ　ｐａｒａｆｆｉｎ　ｓｅｃｔｉｏｎ　ｂｙ　ｉｍｐｒｏ－ｖｉｎｇ　ａｎｄ　ｉｎｎｏｖａｔｉｎｇ　ｔｈｅ　ｋｅｙ　ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ　ｐｒｏｃｅｓｓ　ｔｈａｔ　ｂａｓｅｄ　ｏｎ　ｃｌａｓｓｉｃａｌ　Ｒｉｐｐｉｎｇ　Ｍｅｔｈｏｄ　ｏｆ　ｐａｒａｆｆｉｎ　ｓｅｃｔｉｏｎ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈｅ　ｃｏｌｏｒ　ｏｆ　ｐａｒａｆｆｉｎ　ｓｅｃｔｉｏｎ　ｍａｄｅ　ｂｙ　ｔｈｅ　ｎｅｗ　ｍｅｔｈｏｄ　ｗａｓ　ｂｅｔｔｅｒ　ｂｙ　ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ－ｅｏｓｉｎｓｔａｉｎｉｎｇ．Ｗｅ　ａｌｓｏ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｃｅｌｌ　ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ　ｗａｓ　ｍｕｃｈ　ｃｌｅａｒｅｒ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｃｙｔｏｐｌａｓｍ　ａｎｄ　ｎｕｃｌｅｕｓ　ｈａｄｓｈａｒｐ　ｃｏｎｔｒａｓｔ　ｕｎｄｅｒ　ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ．Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：ｐａｒａｆｆｉｎ　ｓｅｃｔｉｏｎ；ｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ；ｆｒｏｚｅｎ　ｓｅｃｔｉｏｎ；ｎｏｒｍａｌ　ｂｕｔａｎｏｌ 病理切片对于兽医疾病诊断起着重要的作用，高质量的病理切片对疾病性质的判断特别是肿瘤良恶收稿日期：２０１１－０６－０７作者简介：何书海（１９７９－），男，讲师，硕士，从事中兽医药与免疫病理研究，Ｅ－ｍａｉｌ：ｃｏｃｏ．ｅ２００８＠１６３．ｃｏｍ性判断起着非常关键的作用。

小鼠部分组织的石蜡切片制作一、实验原理：利用脱水剂除去组织中的水分,再用透明剂二甲苯可以去除脱水剂酒精，而二甲苯可以溶解石蜡并将其导入到已脱水的组织细胞中，然后用熔化的石蜡对组织进行包埋，冷却后即可将柔软的组织包埋在石蜡中,使其具有一定硬度，且不改变其大小和形状.用旋转切片机可将其切为极薄的薄片，经染色、脱水、装片后在显微镜下可以清晰地观察其组织结构。

二、材料与用具1．材料：小鼠肝脏、脾脏等.2．用具：溶蜡箱、蜡杯、不同熔点的石蜡、酒精灯等。

三、实验内容与步骤1．取材及固定取小鼠,采用拉颈处死或麻醉处死法将其杀死，取其脾脏和肝脏,切为边长约为0。

5cm的组织块.用先用0.85％的生理盐水漂洗以洗去血液与污渍,如果是管状组织则必须把管腔中污物洗净，可用注射器自一端向管腔中注射生理盐水数次，使其管腔冲洗干净，切忌不可用刀或其他器具刮之.由动物身上切取的组织必须是新鲜的，材料越新鲜越好，一般不应超过死后24 hr.如果是管状器官或是其中有分泌之消化液,则死后应迅速采取,以免组织自溶或上皮剥落.取下的材料马上进行固定,采用FAA固定液，固定液的用量与组织块体积之比一般在20：1，固定时间2 hr以上，超过24hr时可继续浸泡或转入70%酒精中保存。

不应使组织块贴于容器壁上,应记录固定液的名称，材料的种类，动物品种及开始固定的时间。

2．冲洗固定后的组织块在进行脱水前用70％酒精洗去固定液。

3．脱水和硬化经过固定后的组织在水洗后要进行脱水,脱水的目的将组织内的水分用酒精或其他溶剂置换出来，使组织逐渐变硬,便于油类或其他透明及浸入，为熔化的石蜡浸渗到组织中创造条件。

常用的脱水剂是不同浓度的酒精，因为酒精与水有很大的亲和力，酒精浓度可以逐渐升高，置换出组织中的水。

脱水必须充分，脱水不充分会影响透明和浸蜡。

脱水过程要逐级上升,不能操之过急，跳级脱水会引起组织块强烈的收缩变形。

脱水所用的酒精浓度及过程如下：30％—→50％—→70%—→80%-→90％—→95％—→100％（Ⅰ)-→100％（Ⅱ）组织块在各级较低浓酒精(小于70%）中脱水的时间应视组织块的大小而定，大小不超过0.5立方厘米的组织块脱水时间为6~12 hr,在高浓度酒精中(大于70％）脱水时间为3 hr左右。

石蜡切片步骤石蜡切片基本步骤（一）取材和固定根据实验目的选择材料。

将整个虫体或虫体的内部器官（如肠道、马氏管、唾液腺等）取出后，立即投入固定液。

取材大小：0.5cm×0.5 cm×0.2或者1.0 cm×1.0 cm×0.2，厚度不宜超过3mm。

固定液：2.5%的戊二醛固定液，Bouin氏液，10%甲醛等。

固定时间：4oC固定24小时。

注意事项：取材：1．勿使组织块受挤压切取组织块所用刀、剪要锋利，切割时不可来回切割。

夹取组织时，镊子要轻，切勿挤压，以免损伤组织。

取材时，组织块可稍大一点，以便在固定后，将组织块的不平整部分修去。

2.选好组织块的切面应熟悉器官组织的组成，并根据观察目的来确定纵切或横切。

3．保持材料的清洁组织块上如有血液、污物、粘液、食物等，先用生理盐水冲洗干净，再入固定液。

4．切除（清除）不需要的部分特别是组织周围的脂肪等，应尽可能清除掉，以免影响以后的程序和观察。

固定：1．材料新鲜取出组织后须立即固定。

否则时间相隔过久，体积就要收缩变形或发生自溶现象。

2．抽气生物组织常有气体的存在，使材料不能沉入固定液中，抽气使得固定液有效渗入。

真空泵抽气或者用空针管抽气。

昆虫整体固定，固定前用解剖针刺数个小孔，以利用固定液渗透。

3．固定剂用量一般为组织体积的10~20倍。

勿使组织贴于瓶底或瓶壁，以免影响固定剂的渗入。

4．避免阳光尽可能避免接触阳光以免失去固定作用。

5．加速固定轻轻摇动盛器使组织移动有利于固定液渗入，对长期固定的标本可经常更换固定液。

（二）洗涤2.5%戊二醛固定液固定的组织：0.2M, pH7.2磷酸缓冲液漂洗三次，每次10minBouin氏固定液固定的组织：直接入70%酒精更换数次即可脱水，注意苦味酸。

甲醛固定的组织：直接投入50%或70%酒精脱水，不经水洗。

但如果在甲醛中时间过长，则仍应当用流水冲洗。

陈旧性标本和混合性固定液应及时洗涤，有利于脱水、切片和染色。

动物组织切片的制作与染色一、目的掌握动植物材料石蜡切片及染色的原理和技术。

二、原理石蜡切片（paraffin section）是组织学常规制片技术中最为广泛应用的方法。

石蜡切片不仅用于观察正常细胞组织的形态结构，也是病理学和法医学等学科用以研究、观察及判断细胞组织的形态变化的主要方法，而且也已相当广泛地用于其他许多学科领域的研究中。

活的细胞或组织多为无色透明，各种组织间和细胞内各种结构之间均缺乏反差，在一般光镜下不易清楚区别出；组织离开机体后很快就会死亡和产生组织腐败，失去原有正常结构，因此，组织要经固定、石蜡包埋、切片及染色等步骤以免细胞组织死亡，而能清晰辨认其形态结构。

石蜡切片制作基本过程包括取材、固定、洗涤和脱水、透明、浸蜡、包埋、切片与粘片、脱蜡、染色、脱水、透明、封片等步骤。

一般的组织从取材固定到封片制成玻片标本需要数日，但标本可以长期保存使用，为永久性显微玻片标本。

三、仪器与试剂（一）仪器组织切片机及配套刀片、摊片用水浴锅、恒温箱、电子天平、酒精灯、脱水篮、染色架等。

（二）试剂1. Bouin氏液苦味酸饱和水溶液75 mL甲醛25 mL冰醋酸 5 mL渗透速度快，对于小块组织只须固定数小时，组织收缩很少，着色良好，不使组织变硬和变脆。

固定后的组织可直接投入70%酒精脱水。

2. 70%、80%%、95%酒精及无水酒精：95%以下的各级浓度酒精是用95%酒精加蒸馏水稀释而成。

简单的稀释方法：所需稀释的浓度是多少，就量取多少毫升原浓度的酒精，再加蒸馏水至该酒精的原浓度即可。

例如，配制70%酒精，就量取70 ml95%酒精，然后加入25 ml蒸馏水即成。

3.蛋白甘油：蛋白甘油是粘贴蜡片用的粘片剂。

配方如下：取一新鲜鸡蛋的蛋白，充分搅拌成雪花状泡沫，然后滤去泡沫，加入等量甘油，搅拌均匀，再加入一小粒麝香草酚防腐。

4. Ehrilich氏酸性苏木素液苏木素 2 g纯酒精100 ml钾明矾15 g蒸馏水100 ml甘油100 ml冰醋酸10 ml将苏木素溶于纯酒精，再将钾明矾溶于蒸馏水中，溶解后将甘油倾人混合，然后加入苏木素酒精混合，最后加人冰醋酸，溶液全部混合后，应暴露在日光下使其自然成熟，时间约要三个月（若加人300毫克碘酸钠，使苏木素迅速氧化则可立即使用）。