利用原生质体育种技术获得优良酵母菌设计实验路线

酵母菌的分离纯化酵母菌的分离纯化实验方案导读:就爱阅读网友为您分享以下“酵母菌的分离纯化实验方案”资讯，希望对您有所帮助，感谢您对的支持!酵母菌的分离纯化实验目的1. 了解培养基的配置与灭菌技术;2. 无菌操作技术;3. 工业微生物的分离与纯化技术;4. 工业微生物的检测及保藏。

基本原理1、培养基是人工配置的用于培养、分离、鉴定和保存各种微生物的营养基质。

也适合微生物在生命活动中积累各种代谢产物。

由于微生物种类不同，营养类型各异以及实验目的不同，因此培养基的种类也很多。

不同微生物对营养的要求不同，在配置时根据微生物对PH的要求选择合适的PH。

1由于本次实验主要是分离纯化酵母菌，所以配置的培养基是适合酵母菌生长麦芽汁平板培养基，同时添加抗生素抑制霉菌及其它菌的生长。

2、接种和培养过程中必须保证不被其它微生物所污染，关键在于严格进行正确的无菌操作，但是绝对无菌是不可能的，只能人工创造相对无菌的环境。

所以本次实验无菌操作是在超净工作台的酒精灯火焰旁进行。

3、把特定微生物从混杂的微生物群体中分离出来而获得某一种或某一株微生物的过程叫微生物的分离与纯化。

首先根据其生长特性设计只利于此菌生长的条件，再根据各种稀释法使他们在固体培养基上单独长成菌落。

分离纯化的方法通常有:稀释混合倒平板法、稀释涂布平板法和平板划线。

此次实验采用梯度稀释涂布平板法。

4、微生物检测项目最常用的是细胞数的检测，方法比较多，主要有显微镜直接计数法、平板菌落计数法(CFU)、光电比浊计数法等。

本次实验设计酵母菌的数量检测，选用显微镜直接计数法和平板菌落计数法。

实验器材仪器设备恒温水浴锅、电热干燥箱、蒸汽灭菌锅、超净工作台、恒温培养箱、恒温摇床、水浴锅、电炉、铜锅、酒精灯、接种环、电子天平、研钵、光学显微镜、血细胞计数器玻璃器2皿烧杯、锥形瓶、大小试管、培养皿、漏斗、三角涂棒、吸管、试管架、玻璃涂棒、盖玻片试剂与材料苹果、大麦芽、琼脂、蒸馏水、碘液、抗生素、染色液其它纱布、滤纸实验内容及操作步骤(一)、样品的选择酵母菌一般在果园的土壤中或者水果的表面含量较多，因此选择苹果为样品。

酵母菌的纯培养实验原理酵母菌是一种单细胞真核生物，广泛存在于自然界中，常见于土壤、果皮和发酵食品等环境中。

酵母菌的纯培养实验是一种常用的实验手段，通过这种实验可以得到纯净的酵母菌培养物，为后续的研究提供了可靠的基础。

酵母菌的纯培养实验主要包括以下几个步骤：酵母菌的分离、酵母菌的培养和酵母菌的纯化。

酵母菌的分离是实验的第一步。

我们可以从自然界中采集到含有酵母菌的样品，比如果皮、土壤等。

将样品放入培养基中，利用其富含的养分和适宜的温度等条件，促使酵母菌开始生长。

然后，通过显微镜观察，可以看到培养基中存在着许多酵母菌细胞。

选取单个酵母菌细胞，将其转移到另一个培养基中，再次进行培养。

经过多次的分离，我们可以得到纯净的酵母菌培养物。

酵母菌的培养是纯培养实验的关键步骤。

酵母菌的培养基一般由碳源、氮源、矿物质和维生素等组成，提供了酵母菌生长所需的养分。

培养基的配制需要根据酵母菌的需求来确定，以确保酵母菌能够正常生长和繁殖。

在培养过程中，温度和氧气供应也是需要注意的因素。

一般情况下，酵母菌的最适生长温度为28-30摄氏度，过高或过低的温度都会对其生长产生不利影响。

此外，酵母菌对氧气的需求较高，需要提供充足的氧气供应。

酵母菌的纯化是实验的最后一步。

在酵母菌培养物中，可能会存在其他微生物的杂菌。

为了获得纯净的酵母菌培养物，我们可以采用多种方法，如温度选择法、抗生素选择法和营养选择法等。

这些方法可以通过调节培养基中的温度、添加抗生素或改变培养基中的营养成分，来选择性地培养酵母菌，排除其他微生物的干扰。

通过以上的步骤，我们可以得到纯净的酵母菌培养物。

这些纯净的酵母菌培养物可以用于研究酵母菌的生理特性、代谢途径、基因表达和蛋白质功能等方面的问题。

同时，纯培养的酵母菌也为酵母菌在工业生产中的应用提供了基础。

总结起来，酵母菌的纯培养实验是一种重要的实验手段，通过分离、培养和纯化等步骤，可以得到纯净的酵母菌培养物。

这些纯净的酵母菌培养物可以为酵母菌的研究提供可靠的基础，也为酵母菌在工业生产中的应用提供了有力支持。

一、实验名称酵母发酵实验二、实验目的1. 了解酵母在发酵过程中的作用。

2. 掌握酵母发酵的基本原理和实验操作方法。

3. 培养学生的实验操作技能和观察能力。

三、实验原理酵母是一种单细胞真菌，在适宜的条件下，酵母能够将糖类物质转化为酒精和二氧化碳。

本实验通过观察酵母发酵过程中酒精和二氧化碳的产生，验证酵母的发酵作用。

四、实验材料与试剂1. 实验材料：酵母粉、葡萄糖、琼脂、蒸馏水、烧杯、试管、酒精灯、酒精、滴管、pH试纸、碘液、锥形瓶、玻璃棒等。

2. 实验试剂：酵母粉、葡萄糖、琼脂、蒸馏水、碘液、酒精等。

五、实验步骤1. 准备实验材料：将琼脂加入蒸馏水中，加热溶解后，冷却至室温备用。

2. 配制培养基：将葡萄糖加入琼脂溶液中，搅拌均匀，倒入锥形瓶中，待凝固后，制成固体培养基。

3. 接种酵母：用无菌滴管将酵母粉接种于固体培养基上，用玻璃棒轻轻搅拌，使酵母均匀分布。

4. 观察酵母发酵：将接种后的培养基置于37℃恒温培养箱中培养，每隔一定时间观察酵母菌的生长情况和酒精、二氧化碳的产生。

5. 测定pH值：用pH试纸测定发酵过程中培养基的pH值变化。

6. 验证二氧化碳产生：将装有发酵培养基的锥形瓶倒置，观察瓶底是否有气泡产生。

7. 验证酒精产生：用碘液检测发酵过程中酒精的产生。

六、实验注意事项1. 实验过程中要保持无菌操作，避免污染。

2. 实验过程中要严格遵守实验操作规程，确保实验结果准确。

3. 注意观察实验现象，做好实验记录。

七、实验报告要求1. 实验报告应包括实验目的、原理、材料与试剂、实验步骤、实验结果、实验讨论等内容。

2. 实验结果应包括酵母菌的生长情况、pH值变化、二氧化碳和酒精的产生情况等。

3. 实验讨论应结合实验结果，分析酵母发酵过程中的变化和原因。

八、实验拓展1. 探究不同温度、不同浓度的葡萄糖对酵母发酵的影响。

2. 研究其他微生物的发酵作用，如乳酸菌、醋酸菌等。

3. 了解发酵技术在食品、医药、化工等领域的应用。

酵母菌的纯培养实验原理酵母菌是一种单细胞真菌，广泛存在于自然界各种环境中，包括土壤、水体和植物表面等。

酵母菌的纯培养实验是一种基本的实验手段，用于研究酵母菌的生长、代谢以及其他生物学特性。

本文将探讨酵母菌的纯培养实验的原理和方法。

酵母菌的纯培养实验是指将酵母菌分离出单个纯种，使其在培养基上单独生长。

这样可以避免不同种类的酵母菌相互干扰，从而更好地研究其生物学特性。

纯培养实验的关键是分离出单个酵母菌，实验过程大致分为以下几个步骤。

需要选择适当的培养基。

常用的培养基有酵母抽提物培养基、酵母营养盐琼脂培养基等。

培养基应提供适当的碳源、氮源和其他必需的营养物质，以满足酵母菌的生长需求。

需要从自然环境中分离出酵母菌。

可以通过取样、稀释和涂布等方法，将样品均匀地分布在培养基表面。

然后，将培养皿放置在适当的温度和湿度条件下，等待酵母菌的生长。

接下来，需要进行单菌分离。

当培养皿上出现酵母菌生长的斑点时，可以使用显微镜和接种针等工具，将单个酵母菌菌落转移到新的培养基上。

这个步骤需要非常细心和准确，以确保每个菌落只含有一个酵母菌。

需要进行鉴定和纯化。

通过观察酵母菌的形态特征、生长性状和代谢产物等，可以初步鉴定酵母菌的种类。

然后，可以将纯培养的酵母菌菌落转移到新的培养基上，进行进一步的培养和研究。

酵母菌的纯培养实验不仅可以研究其基本生物学特性，还可以应用于酵母菌的育种和工业生产等领域。

例如，通过培养高产酵母菌株，可以提高酵母菌的发酵产物的产量和质量；通过培养抗逆性强的酵母菌株，可以提高发酵过程的稳定性和效果。

酵母菌的纯培养实验是一种重要的实验手段，用于研究酵母菌的生物学特性和应用价值。

通过适当的培养基和实验方法，可以成功地分离和纯化酵母菌，并进行进一步的研究和应用。

酵母菌的纯培养实验对于推动酵母菌研究的发展和应用具有重要意义。

酵母菌原生质体融合育种第一部分：酵母菌原生质体融合育种一、基本原理进行微生物原生质体融合时，首先必须消除细胞壁，它是微生物细胞之间进行遗传物质交换的主要障碍。

在酵母属进行细胞融合时，通常采用蜗牛酶除去细胞壁，采用聚乙二醇促使细胞膜融合。

细胞膜融合之后还必须经过细胞质融合、细胞核重组、细胞壁再生等一系列过程，才能形成具有生活能力的新菌株。

融合后的细胞有两种可能：一是形成异核体，即染色体DNA 不发生重组，两种细胞的染色体共存于一个细胞内，形成异核体，这是不稳定的融合。

另一是形成重组融合子，通过连续传代、分离、纯化，可以区别这两类融合。

应该指出，即使真正的重组融合子，在传代中也有可能发生分离，产生回复或新的遗传重组体。

因此，必须经过多次分离，纯化才能获得稳定的融合子二、实验材料（一）菌种：酵母菌（二）培养基：1、完全培养基（液体CM）2、完全培养基（固体CM）在液体培养基加入2%琼脂3、基本培养基（MM）葡萄糖柠檬酸钠培养基或YNB培养基4、再生完全培养基固体完全培养基中加入0.5mol/L的蔗糖(三) 缓冲液(1) 0.1 mol/L pH 6.0 磷酸缓冲液。

(2) 高渗缓冲液，于上述缓冲液中加入0.8 mol/L 甘露醇。

(四) 原生质体稳定液(SMM)0.5 mol/L 蔗糖、20 mol/L MgC12、0.02 mol/L 顺丁烯二酸，调pH 6.5。

(五) 促融剂40％聚乙二醇 (PEG)的SMM 溶液。

(六) 器皿培养皿、移液管、试管、容量瓶、锥形瓶、离心管、玻璃棒、显微镜、离心机等。

四、试验内容(一) 原生质体的制备1．活化菌体将单倍体酿酒酵母菌Y-1 和Y-4 活化分别转接新鲜斜面。

自新鲜斜面分别挑取一环接入装有25 mL 完全培养基的锥形瓶中，30℃培养16 h 至对数期。

2．离心洗涤、收集细胞分别取5 mL 上述培养至对数生长期的酵母细胞培养液，3000 r/min 离心 10 min，弃上清液，向沉淀的菌体中加入5 mL 缓冲液，用无菌接种环，搅散菌体，振荡均匀后离心洗涤一次，再用5 mL 高渗缓冲液离心洗涤一次。

酵母菌表面展示操作步骤实验流程引言：酵母菌是一种广泛应用于生物学实验的微生物模型，其表面展示系统成为研究蛋白质结构和功能的理想工具。

本篇回复将详细介绍酵母菌表面展示的操作步骤以及实验流程。

实验流程：1. 酵母菌培养：a. 准备培养基：制备合适的酵母菌培养基，如YPD培养基（酵母粉、蛋白胨和葡萄糖混合）。

b. 培养酵母：将酵母菌的冻存样品接种到含有YPD培养基的试管中，培养16-18小时，温度控制在30℃。

2. 质粒构建：a. 选择目标基因：根据研究目的选择需要表达或展示的蛋白质基因。

b. 购买质粒：购买适合表达或展示目标蛋白质的酵母质粒。

c. 转化质粒：将质粒导入酵母菌中，可采用电穿孔法或利用酵母菌的自然转化能力。

3. 筛选酵母菌：a. 选择培养基：制备含有选择性物质的培养基，如缺少某种氨基酸的培养基。

b. 生长筛选：将转化的酵母菌悬浮液均匀涂布在含有选择性物质的培养基平板上，培养18-24小时。

4. 筛选酵母菌克隆：a. 选择单克隆：从培养基平板上选择单个克隆，通过划线法或用取样棒分别转移到新的培养基平板上。

b. 培养单克隆：将细菌筛选出的单个克隆分别培养，培养时间根据实验要求确定。

5. 表面展示：a. 酵母细胞表面展示系统：选择适合的表面展示系统，如酵母菌表面展示蛋白质的α-型肽酶底物反应。

b. 表面展示融合蛋白构建：将目标蛋白质与酵母表面展示系统进行融合构建，如利用重组DNA技术。

c. 酵母培养：将酵母菌在含有特定诱导物的培养基中培养，诱导表面展示蛋白质的表达。

6. 验证表面展示：a. 检测方法：根据实验要求和研究目的选择合适的检测方法，如荧光显微镜观察、ELISA或Western blot等。

b. 检测结果：分析检测结果，确认酵母菌表面是否成功展示目标蛋白质。

7. 进一步研究：a. 功能研究：根据实验目的，可以进行目标蛋白质功能的研究，如与其他蛋白质的相互作用。

b. 应用研究：利用酵母菌表面展示的结果进行应用研究，如药物筛选、疫苗研发等。

酵母菌细胞融合实验一、实验目的学习酵母菌原生质体制备和再生技术，为了解酵母菌为材料的外源基因转移等技术奠定基础。

二、实验原理酵母菌如酿酒酵母，在遗传学和分子生物学的研究中有很大作用，尤其是近些年来，随着科技的进步，酵母菌的遗传操作如转化、基因克隆和外源基因在酵母受体中的表达等技术都有了突破性的进展。

作为受体系统的酵母菌原生质体在这些技术中有独特的地位。

这种经溶菌酶处理脱壁后的细胞（脱壁不完全者称原生质球）既可以作为不同种属间细胞融合的母体，实现细胞器等大结构的转移，又可作为外源基因转移的受体，大大提高基因转移的效率。

这些新技术不仅促进了酵母菌遗传学的发展，而且很多已应用到构建新的酿酒业酵母。

本实验以酿酒酵母为材料，进行原生质体的分离制备和再生。

酵母菌原生质体的制备一般采用蜗牛酶、酵母溶菌酶或其它细胞壁溶解酶类。

分离制备过程受许多因素的影响，如不同菌株的生长期、细胞浓度、溶菌酶类型和用量、处理时间和温度等。

所以整个实验过程设计应综合考虑各种因素，才能获得较好的效果。

分离制备的原生质体在适当的再生培养基上培养时，可以再生出细胞壁而恢复完整细胞状态，即完成再生过程，这也是以原生质体为受体的所有实验技术最终能实现的一个关键步骤。

在原生质体制备中，应选用适当生长时期的菌体作为分离的材料。

一般来说，对数生长期的酵母菌细胞易脱壁，静止期细胞较难甚至不可能形成原生质体。

而不同菌种的生长对数期也略有差异，一般在12～16小时之间（108细胞/ml）。

制成的原生质体悬浮液在0℃条件下保存4～6小时，不会影响融合再生率。

所以欲进行原生质体融合，应在制备后尽快进行，以免时间过长，影响再生。

分离过程中采用的β-巯基乙醇可使细胞壁组分中的二硫键破坏，使蜗牛酶易于分解细胞壁。

此外，渗透压的调节可用0.8mol/L山梨醇、16％蔗糖，或者0.6mol/L KCl溶液。

三、实验材料菌种：酿酒酵母SP-48、L-酵母：器具和试剂：恒温摇床、恒温水浴、显微镜、台式离心机、培养皿、试管、过滤灭菌装置。

酵母菌的纯培养实验原理
酵母菌的纯培养实验是通过分离单个酵母菌细胞，并将其培养在含有适当营养物质的培养基中，以获得大量的纯种菌种。

其原理包括以下几个步骤：
1.分离单个酵母菌细胞：将酵母菌培养基平板上生长的菌落通过传统的划线法或微孔过筛法等方法进行单菌分离。

2.稀释法制备适宜浓度细胞悬液：通过向含有适宜营养成分的液体培养基中加入一定浓度的单菌酵母菌悬液进行瓶内培养。

3.筛选最优液体培养基类型：在选择酵母菌的液体培养基时，需充分考虑其酵母菌生长最适宜的环境和所需营养成分。

4.瓶内培养及传代：将原始酵母菌细胞悬液放入培养瓶中进行培养，继续传代使其增殖。

同时进行基因分型分析，确认其为同一纯种菌。

5.酵母菌的鉴定与获得纯种：经过不断的筛选和传代，获得单纯无污染的酵母菌纯种，可通过形态学、生化特性鉴定、分子生物学、基因组测序等方法进行鉴定。

通过上述步骤，可成功获得大量的酵母菌纯种，在酒、面包、气泡饮料、酱油等食品工业中的应用中起到了重要的作用。

准备培养基及酵母菌种的操作步骤介绍：培养基是生物学实验中非常重要的一部分，它提供了微生物生长所需的营养物质。

在培养基中培养酵母菌种，既可以用于学术研究，也可以用于工业生产。

本文将介绍准备培养基及酵母菌种的操作步骤。

材料准备：1. 干净的培养皿或试管2. 称量器具3. 培养基粉末（例如，YPD培养基）4. 蒸馏水或去离子水5. 培养基加热器6. 高压灭菌器或高压高温灭菌器7. 酵母菌株操作步骤：步骤1：准备培养基1. 使用称量器具称取所需的培养基粉末，按照厂商提供的配方添加适量的粉末。

2. 在一个干净的培养皿或试管中加入适量的蒸馏水或去离子水，搅拌均匀直至溶解。

3. 将培养皿或试管放入培养基加热器中，加热至溶液达到沸腾状态。

4. 让溶液在沸腾状态下继续煮沸1-2分钟，以确保培养基已灭菌。

5. 关闭加热器，让培养基冷却至室温。

步骤2：准备酵母菌种1. 从酵母菌培养基上选择一颗酵母菌斑点，用无菌的酒精酒精烟灭菌火柴沾取少量酵母菌斑点。

2. 将沾取的酵母菌点均匀涂抹在新准备的培养基表面。

3. 用洁净的无菌钢圈将酵母菌点轻轻均匀地划过培养基表面。

4. 重复上述步骤，直到所有酵母菌斑点均匀分布在培养基表面。

5. 使用无菌技术，在无菌环境中将培养皿或试管密封。

步骤3：培养酵母菌种1. 将密封好的培养皿或试管置于高压灭菌器或高压高温灭菌器中，进行高压灭菌。

2. 设定灭菌温度和时间，通常为121℃，15-20分钟。

3. 灭菌后，使用无菌技术将培养皿或试管移至无菌操作台上。

4. 将培养皿或试管倒置保存，以避免营养物质沉积在口部，导致污染。

注意事项：1. 操作过程中保持无菌环境，使用无菌器皿和器具，避免外界细菌和微生物的污染。

2. 严格按照配方准确称取培养基粉末，避免因质量误差导致培养基制备不准确。

3. 培养基在加热过程中要达到沸腾状态，并保持一定时间，以确保培养基的灭菌效果。

4. 在培养酵母菌种时要使用无菌环境，避免细菌的污染。

利用原生质体育种技术获得优良酵母菌设计实验路线一、引言原生质体是一种独立的细胞结构，能够从细胞中分离出来，其膜结构与细胞膜相似，内含有细胞质、细胞器和液泡等细胞组分。

利用原生质体进行质体育种技术可以快速筛选和培育出优良的酵母菌株，提高酵母菌的发酵能力和产物产量。

本文将结合原生质体育种技术的原理和操作步骤，设计一条实验路线，以获得优良的酵母菌株。

二、实验原理原生质体育种技术是利用细胞外靶酶介导外源DNA进入酵母细胞质的一种技术。

其步骤包括：1）制备原生质体，将酵母细胞经过适当处理（如酶解细胞壁）制备成原生质体；2）选择合适的外源DNA，如含有目标基因的质粒；3）利用凝集素介导质粒与原生质体的结合，使质粒进入原生质提；4）将质粒整合到酵母基因组中，通过筛选培养条件促使原生质体内的外源基因表达。

三、实验步骤1.酵母菌细胞培养选择优良的酵母菌株，进行预培养。

在含有适宜培养基的培养瓶中，加入适量酵母菌液，经过恒温摇床培养，直至菌体生长到对数期（约达到OD600≈1）。

2.细胞壁酶解将酵母菌细胞收取，用含有Zymolyase的酶解缓冲液进行细胞壁酶解。

将酵母菌菌体与酶解缓冲液按照一定比例混合，恒温摇床酶解一定时间，使得酵母菌细胞壁酶解。

3.质体分离酶解后的细胞在低速离心下，使得原生质体分离出来。

去除上清液，保留沉淀中的原生质体。

4.质粒与原生质体结合准备含有目标基因的质粒，并与原生质体进行结合。

可以利用凝集素对质粒进行修饰，使质粒能够与原生质体特异性结合。

5.内化质粒将质粒与凝集素修饰的原生质体进行混合，经过适当条件的处理，使质粒进入原生质体内。

6.利用选择性培养基筛选培养原生质体内的酵母菌，用含有选择性抗生素的培养基进行筛选，筛选出带有外源基因的酵母菌。

7.验证外源基因表达通过PCR或蛋白质表达分析等技术，验证筛选出的酵母菌是否具有外源基因的表达。

8.进一步培养和优选将表达外源基因的酵母菌进行进一步培养，优选出其发酵能力和产物产量更高的菌株。

一种酵母原生质体的制备方法(一)
一种酵母原生质体的制备方法
引言
酵母原生质体是研究酵母生物学和细胞功能的重要工具。

本文将详细介绍一种酵母原生质体的制备方法，包括材料和步骤。

材料
•酵母菌株
•酵母培养基
•液氮
•酶（如裂解酶）
•加压破碎机
步骤
1.酵母菌株的培养
–选取合适的酵母菌株，并在适宜的酵母培养基中培养。

–确保培养条件适宜，包括温度、pH值和营养物质。

2.收获酵母菌细胞
–将培养好的酵母菌细胞收获到离心管中。

–使用低温和高速离心将酵母菌细胞沉淀到管底。

3.冻存酵母细胞
–将收获到的酵母菌细胞用液氮快速冷冻保存。

–这样可以保持细胞的完整性和活力。

4.酵母细胞的裂解
–从冻存酵母菌中取出适量细胞液。

–加入适量的裂解酶，在恰当的温度下孵育制备酵母细胞裂解液。

5.原生质体的制备
–将酵母细胞裂解液加入加压破碎机。

–根据设备要求进行适当压力和时间的制备。

6.分离原生质体
–经过加压破碎机后，从制备好的原生质体悬浮液中轻轻吸取上清液。

–上清液中富集了酵母原生质体。

7.原生质体的储存
–将得到的酵母原生质体储存于低温条件下，如冰箱等。

–注意保持原生质体的稳定性和活性。

结论
本文介绍了一种酵母原生质体的制备方法，该方法可以有效地从酵母菌株中制备出具有活性和稳定性的原生质体。

通过这种方法，可以为酵母生物学和细胞功能的研究提供有力的工具。

以上是详细的酵母原生质体制备方法，我们希望本文能对该领域的研究者和实验室工作者有所帮助。

酵母菌的培养和观察实验方法与步骤目的熟悉材料器具甜酒酿汁液，新奇步骤1.观看酵母菌(1)用滴管从甜酒酿的汁液中吸取一滴汁液，滴在载玻片上，用针摊开，盖上盖玻片，在低倍镜下就能清晰地看到甜酒酿的汁液中悬浮着很多酵母菌。

再换高倍镜认真观看一个酵母菌，可以看到酵母菌是椭圆形的单个细胞，细胞中有很多小颗粒，也有几个大的液泡(图示)。

有的酵母菌的一端长出大小不同的突起，这是酵母菌的芽体。

芽体成长脱落，就成为新的个体，有的芽体在从母体脱落前又长出突起。

这种繁殖方法叫出芽繁殖。

(2)在盖玻片一边加一滴碘液，从另一边用吸水纸把染液引入盖玻片下。

不久就能看到被染成棕褐色的细胞核和变成蓝紫色的淀粉粒。

2.培育酵母菌(1)用蔗糖液培育在盛有100毫升的三角烧瓶里加5克蔗糖，煮沸。

等到溶液稍稍冷却，加一小块鲜酵母，用玻璃棒搅拌匀称;再用棉絮塞紧瓶口。

然后把烧瓶放在 25～30℃的暖和地方，数小时后就可见到溶液里有气泡产生，并散发出酒味。

这是由于酵母菌正在把糖分解成乙醇和二氧化碳。

(2)二三天后吸取溶液在显微镜下观看，就可看到已培育出大量酵母菌。

留意事项1.观看酵母菌时，视野里杂质较多，有淀粉粒、半分解的淀粉团块、曲霉孢子和其他杂菌等等，只要把握住酵母菌的外形和体内具有液泡，尤其是染色后体内具有褐色的核和蓝色的淀粉粒这些特点，就可以跟其他杂菌区分开来。

2.发酵在缺氧的环境里仍能良好地进行，不必为了增加氧气去搅拌已放入菌种的培育液。

分析和争论酵母菌是少数能在缺氧环境里生存较长时间的一种微生物，它属于兼性菌类。

在一般状况下进行有氧呼吸。

如环境中有丰富的糖类，它进行缺氧呼吸。

其过程如下：1.C6H12O6+6O2rarr;6CO2+6H2O+2.87103兆焦(有氧呼吸)2.C6H12O6rarr;2CO2+2C2H5OH+109103兆焦(缺氧呼吸)建议培育酵母菌还可以采纳下列两种方法。

1.用乳酸、豆芽汁和蔗糖液培育(1)取10克豆芽放入100毫升水中，加热煮沸半小时，盛起，用细布过滤。

生物实验教案：中学生物实验《酵母发酵条件探究》设计一、引言中学生物实验在培养学生科学实验能力的同时，也有助于提高他们的科学思维和研究兴趣。

本教案旨在设计一项生物实验，名为《酵母发酵条件探究》，通过改变不同条件下的酵母发酵情况，让学生了解酵母发酵的基本原理和影响因素，并培养学生的实验设计和数据分析能力。

本教案将对实验的目的、所需材料、实验步骤、数据记录和实验结果分析进行详细描述。

二、实验目的本实验的目的是让学生了解酵母发酵的条件以及不同条件对酵母发酵效果的影响。

通过实验，学生将学会如何设计并进行实际操作，以便最大限度地掌握实验技能，培养他们的科学思维和创新能力。

三、实验材料1. 酵母粉2. 砂糖3. 盐4. 温水5. 温度计6. 量杯7. 实验管8. 密封瓶9. 实验记录表格四、实验步骤1. 准备工作：a) 将酵母粉、砂糖和盐分别称量好b) 准备一定量的温水c) 温水的温度应在实验开始前测量并记录2. 实验设计：a) 将4个实验管标记为A、B、C、Db) 在A实验管中加入10ml温水和5g酵母粉，搅拌均匀c) 在B实验管中加入10ml温水、5g酵母粉和5g砂糖，搅拌均匀d) 在C实验管中加入10ml温水、5g酵母粉和5g盐，搅拌均匀e) 在D实验管中加入10ml温水、5g酵母粉、5g砂糖和5g盐，搅拌均匀3. 实验操作：a) 将实验管A、B、C、D放置在温度恒定的环境中，定时观察酵母发酵的情况b) 在实验过程中，要记录温度的变化以及酵母的发酵状态5. 数据记录：a) 记录每个实验管中酵母的发酵时间和产生的气体量b) 使用实验记录表格记录数据，确保准确性和规范性6. 实验结果分析：a) 比较不同条件下酵母发酵的时间和产生的气体量b) 分析酵母发酵所需的最佳温度、理想的盐浓度以及糖对发酵的影响七、实验结果与讨论通过对实验结果的观察和数据分析，我们可以得出一些结论：1. 酵母发酵的最佳温度为X摄氏度，超过或低于该温度将会影响酵母发酵效果。

从土壤中分离提纯高效的酵母菌主要内容：利用各种微生物实验技术，从土壤中分离并提纯酵母菌，再通过检测酵母菌发酵速率，从而筛选出高效的酵母菌。

关键词：分离提纯高效酵母菌在土壤中分离酵母菌，因此土壤的采样地点在果树下较好。

采集好土壤，将土壤配制成10^-2悬液，主要方法是称取1g土壤，放入三角瓶，迅速倒入99ml无菌水，震荡5-10min即成所需的土壤悬液。

1.由于土壤中酵母菌含量较低，因此在分离前要先进行富集培养24h。

2.接下来是配制培养基，由于要分离的是酵母菌，配制马丁氏培养基。

3.对培养基进行灭菌放入高压蒸汽灭菌锅115℃/30min4.取出后待50℃以下是加入链霉素，每一百克三毫升5.队超净台消毒，点燃酒精灯6.在酒精灯旁倒平板。

7.接种，画线。

8.放入26℃保温箱3-4d。

9.取生长较好的六个菌落分别接入0.05mol/L4ml的六个试管中，编号1-6。

10.3d后检测葡萄糖含量。

11.配置新制的氢氧化铜0.5mol/L50ml12.将强氧化铜分别放入六个试管中每个4ml。

摇匀加热。

13. 5min后比较六个试管的颜色深浅。

编号颜色1褐色'++褐色+2褐色'--3褐色-4褐色+5褐色6结论：三号试管的颜色最浅，所含葡萄糖最少，所以三号试管的酵母菌效率最高。

结果讨论：实验比较成功，但是培养基的菌株较少，这可能和富集培养的时间太短有关系，忘了设置对照试验。

选取高校教务军，可以重复做这个实验，选出比较高效的酵母菌。

注意:1.注意培养基的灭菌2.注意紫外线只能在无人的时候开启3.注意接种环要灼烧彻底4.注意在培养箱中放培养技师要倒置5.注意统一变量。

实验设计方案从环境中分离酵母菌班级：10级生科（2）班组员:刘楠楠: 201008010222潘婷: 201008010225李炜昊：201008010221马森:201008010224实验：从环境中分离出酵母菌实验设计方案一、采样采样的理由：1、酵母菌与人类的关系密切酵母菌是一类单细胞真菌的俗称，分类学上分属于子囊菌纲半知菌类特征:1. 个体一般以单细胞状态存在；2. 多数营出芽生殖，有的裂殖；3. 能发酵糖类产能；4. 细胞壁常含有甘露聚糖；5. 喜在含糖量较高、酸度较大的水生环境中生长。

酵母菌分布：主要生长在偏酸的含糖环境中，在水果、蜜饯的表面和果园土壤中最为常见。

种类：据1982年的资料，已知的酵母有56属，500多种。

酵母菌与人类的关系极其密切。

千百年来，人类几乎天天离不开酵母菌，例如酒类的生产，面包的制作，乙醇和甘油发酵，石油及油品的脱蜡，饲用、药用等的生产。

2、酵母菌细胞的形态和构造电子显微镜下的酿酒酵母细胞结构示意图细胞直径比细菌粗10倍左右，如Saccharomyces cerevisiae细胞的宽度为2.5~10μm，长度为4.5~21μm。

因此在光学显微镜下可以模糊地看到它们细胞内的各种结构分化。

酵母菌细胞的形态通常有球状、卵圆状、椭圆状、柱状或香肠状等多种。

细胞壁：酵母细胞壁呈“三明治”结构外层：甘露聚糖（约占30%，以α-糖苷键联结（并非所有酵母菌都有）内层：葡聚糖（约占30-40%，由D-葡萄糖以β-糖苷键联结）中间层：蛋白质（含6-8%，多为酶类）细胞膜：酵母菌的细胞膜与原核生物的基本相同。

但有的酵母菌如酿酒酵母中含有固醇类（甾醇）、VitD的前体----麦角固醇，这在原核生物是罕见的。

细胞核:核膜：核孔40～70nm ，透性比任何生物膜都大。

•染色体:由DNA和组蛋白牢固结合而成，呈线状, 数目因种而异。

•核仁：核内有一或几个区域rRNA含量很高，这一区域为核仁，是合成核糖体的场所。

酵母菌细胞融合实验一、实验目的学习酵母菌原生质体制备和再生技术，为了解酵母菌为材料的外源基因转移等技术奠定基础。

二、实验原理酵母菌如酿酒酵母，在遗传学和分子生物学的研究中有很大作用，尤其是近些年来，随着科技的进步，酵母菌的遗传操作如转化、基因克隆和外源基因在酵母受体中的表达等技术都有了突破性的进展。

作为受体系统的酵母菌原生质体在这些技术中有独特的地位。

这种经溶菌酶处理脱壁后的细胞（脱壁不完全者称原生质球）既可以作为不同种属间细胞融合的母体，实现细胞器等大结构的转移，又可作为外源基因转移的受体，大大提高基因转移的效率。

这些新技术不仅促进了酵母菌遗传学的发展，而且很多已应用到构建新的酿酒业酵母。

本实验以酿酒酵母为材料，进行原生质体的分离制备和再生。

酵母菌原生质体的制备一般采用蜗牛酶、酵母溶菌酶或其它细胞壁溶解酶类。

分离制备过程受许多因素的影响，如不同菌株的生长期、细胞浓度、溶菌酶类型和用量、处理时间和温度等。

所以整个实验过程设计应综合考虑各种因素，才能获得较好的效果。

分离制备的原生质体在适当的再生培养基上培养时，可以再生出细胞壁而恢复完整细胞状态，即完成再生过程，这也是以原生质体为受体的所有实验技术最终能实现的一个关键步骤。

在原生质体制备中，应选用适当生长时期的菌体作为分离的材料。

一般来说，对数生长期的酵母菌细胞易脱壁，静止期细胞较难甚至不可能形成原生质体。

而不同菌种的生长对数期也略有差异，一般在12～16小时之间（108细胞/ml）。

制成的原生质体悬浮液在0℃条件下保存4～6小时，不会影响融合再生率。

所以欲进行原生质体融合，应在制备后尽快进行，以免时间过长，影响再生。

分离过程中采用的β-巯基乙醇可使细胞壁组分中的二硫键破坏，使蜗牛酶易于分解细胞壁。

此外，渗透压的调节可用0.8mol/L山梨醇、16％蔗糖，或者0.6mol/L KCl溶液。

三、实验材料菌种：酿酒酵母SP-48、L-酵母：器具和试剂：恒温摇床、恒温水浴、显微镜、台式离心机、培养皿、试管、过滤灭菌装置。

实验四酵母菌原生质体细胞融合（一）实验目的学习以酵母菌为材料的原生质体细胞融合的方法。

（二）原理（略）（三）实验材料1.菌种：S.cerevisiae Y-1 a ade-，S.cerevisiae Y-2 his、leu、thr。

2.培养基：（1）完全培养基（YPAD）：葡萄糖2%，酵母膏1%，盐酸腺嘌呤0.04%，蛋白胨2%，pH5.5（2）基本培养基：葡萄糖2%，YNB0.67%，pH5.5，琼脂2%（处理琼脂）（3）再生完全培养基：每100毫升完全培养基中加入18.2g山梨醇。

固体再加入2%琼脂。

（4）再生完全培养基软琼脂：组分同再生完全培养基，加入0.8～1%琼脂。

（5）再生基本培养基：与基本培养基组分相同，加入18.2%山梨醇，再加入处理琼脂2%。

（6）再生基本培养基软琼脂：组分同再生基本培养基，加入处理琼脂0.8～1%。

（7）生孢子培养基3.溶液：（1）ST溶液：1mol/L山梨醇，0.01mol/Ltris-HCl（pH7.4）（2）Zymolyase酶混合液：10mLST溶液，0.2mL0.05mol/L EDTA（pH7.5），Zymolyase酶1mg，过滤除菌（3）STC溶液：ST溶液中，加入0.01mol/LCaCl2（4）PTC溶液：35%PEG-4000，0.01mol/L tris-HCl（pH7.4），0.01mol/LCaCl2（5）0.05mol/LEDTA溶液（6）0.5mol/Lβ-巯基乙醇（四）方法与步骤1.菌体前培养分别从斜面取1环菌种接种于装有20mL完全培养基的250mL三角瓶中，30℃振荡培养16～18h；分别取2mL培养物接种于装有20mL完全培养基的250mL三角瓶中，30℃振荡培养6～8h，呈对数生长状态。

将上述培养液分别离心（3500r/min，10min）收集菌体，用10mL 无菌水离心洗涤菌体两次，尽可能出去杂质。

2.原生质体制备（1）将两亲本细胞分别悬浮于10mL溶液（25mL0.05mol/LEDTA和1mL0.5mol/Lβ-巯基乙醇混合液）中，30℃振荡处理10min。

酵母原生质体制备实验标签：酵母原生质体制备原生质体由原生质分化形成，具体包括细胞膜和膜内细胞质及其他具有生命活性的细胞器。

植物和动物的如细胞核、线粒体和高尔基体等，而细菌如核糖体、拟核等。

实验方法实验方法基本方案实验材料酵母试剂、试剂盒YPD 酵母消解缓冲液山梨醇抽提缓冲液贮存缓冲液液氮仪器、耗材摇床水浴锅转子离心机培养箱实验步骤1. 将酵母菌接种于YPD培养基（100 ml 到20 L），剧烈摇动或强制通气条件下培养至对数中期（OD600≈1~5）。

培养物在预称重的离心瓶中于4℃，1 500 g 离心5 min。

2. 确定酵母细胞的湿重，它与压紧的细胞体积大致相同。

在所有的后续步骤中菌体的量将当作1体积来考虑。

3. 细胞用2~4体积冰水重悬，并立即于4℃，1 500 g 离心5 min，加入1体积含30 mmol/l DTT的酵母消解酶缓冲液重悬细胞、室温放置15 min。

4. 于4℃，1 500 g 离心5 min，菌体用3体积的酵母消解酶缓冲液重悬。

5. 在每毫升原压紧细胞中加入2 mg（200 U）酵母消解酶-100T，于30℃水平摇床以大约50 r/min 的转速温育40 min，通过水渗破法确定菌体是否完全转变为原生质体，如果原生质体化不完全，应继续温育直到完全。

6. 1 500 g 离心原生质体5 min，小心弃上清，原生质体球沉淀块不如细胞沉淀块般紧密。

7. 用2体积冰冷的酵母消解酶缓冲液轻轻重悬沉淀，原生质体1 500 g 离心5 min，重复2次。

8. 用2体枳酵母消解酶缓冲液轻轻重悬沉淀，不要试图得到均一的悬液，只需将沉淀物从管壁上洗下来，悬转10~20次，于1 500 g 离心10 min回收原生质体。

9. 用玻璃棒仔细将原生质体沉淀重悬于1体积裂解缓冲液中。

10. 在Dounce 匀浆器中用最紧密的研杵，冲击15~20次以裂解原生质体。

11. 往超离心管中加入一半管体积原生质体裂解液，再加等体积的抽提缓冲液，将离心管封口。