大肠杆菌表达系统
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8。
大肠杆菌表达系统与蛋白表达纯化大肠杆菌表达系统遗传背景清楚,目的基因表达水平高,培养周期短,抗污染能力强等特点,是分子生物学研究和生物技术产业化发展进程中的重要工具.因此熟练掌握并运用大肠杆菌表达系统的基本原理和常规操作是对每一个研究生来说是非常必要的.本章节介绍了实验室常用的大肠杆菌表达系统的构成特点,归纳了利用大肠杆菌表达系统纯化重组蛋白的基本流程和详细操作步骤,并且结合笔者的操作经验,总结了初学者在操作过程中可能遇到的问题和解决策略。
8.1大肠杆菌表达系统的选择与构建8.1。
1表达载体的选择根据启动子的不同这些载体大致可以分为热诱导启动子,如λPL,cspA 等和另外一类就是广泛使用的IPTG诱导的启动子,如lac,trc,tac,T5/lac operator,T5/lac operator等.根据表达蛋白质的类型可分为单纯表达载体和融合表达载体。
融合表达是在目标蛋白的N端或C端添加特殊的序列,以提高蛋白的可溶性,促进蛋白的正确折叠,实现目的蛋白的快速亲和纯化,或者实现目标蛋白的表达定位。
常用的用于亲和纯化融合标签包括 Poly—Arg,Poly—His, Strep—Tag Ⅱ,S—tag,MBP等.其中His—Tag 和GST-Tag 是目前使用最多的。
His Tag 大多数是连续的六个His 融合于目标蛋白的N端或C端,通过His 与金属离子:Cu2+>Fe2+>Zn2+>Ni2+ 的螯合作用而实现亲和纯化,其中Ni2+是目前使用最广泛的。
His 标签具有较小的分子量,融合于目标蛋白的N端和C端不影响目标蛋白的活性,因此纯化过程中大多不需要去除。
目前常使用的表达载体主要是由Novagen 提供的pET 系列和Qiagen 公司提供的pQE 系列。
除了His 标签外,还原性谷胱甘肽S—转移酶是另一种实验室常用的融合标签.它可以通过还原性谷胱甘肽琼脂糖亲和层析而快速纯化.此外,与His 相比,GST 很多时候能够促进目标蛋白的正确折叠,提高目标蛋白表达的可溶性,因此,对于那些用his 标签表达易形成包涵体的蛋白,可以尝试用GST融合表达来改进。
8.大肠杆菌表达系统与蛋白表达纯化大肠杆菌表达系统遗传背景清楚;目的基因表达水平高;培养周期短;抗污染能力强等特点;是分子生物学研究和生物技术产业化发展进程中的重要工具..因此熟练掌握并运用大肠杆菌表达系统的基本原理和常规操作是对每一个研究生来说是非常必要的..本章节介绍了实验室常用的大肠杆菌表达系统的构成特点;归纳了利用大肠杆菌表达系统纯化重组蛋白的基本流程和详细操作步骤;并且结合笔者的操作经验;总结了初学者在操作过程中可能遇到的问题和解决策略..8.1大肠杆菌表达系统的选择与构建根据启动子的不同这些载体大致可以分为热诱导启动子;如λPL;cspA等和另外一类就是广泛使用的IPTG诱导的启动子;如lac;trc;tac;T5/lacoperator;T5/lacoperator等..根据表达蛋白质的类型可分为单纯表达载体和融合表达载体..融合表达是在目标蛋白的N端或C端添加特殊的序列;以提高蛋白的可溶性;促进蛋白的正确折叠;实现目的蛋白的快速亲和纯化;或者实现目标蛋白的表达定位..常用的用于亲和纯化融合标签包括Poly-Arg;Poly-His;Strep-TagⅡ;S-tag;MBP等..其中His-Tag和GST-Tag是目前使用最多的..HisTag大多数是连续的六个His融合于目标蛋白的N端或C端;通过His与金属离子:Cu2+>Fe2+>Zn2+>Ni2+的螯合作用而实现亲和纯化;其中Ni2+是目前使用最广泛的..His标签具有较小的分子量;融合于目标蛋白的N端和C端不影响目标蛋白的活性;因此纯化过程中大多不需要去除..目前常使用的表达载体主要是由Novagen提供的pET系列和Qiagen公司提供的pQE系列..除了His标签外;还原性谷胱甘肽S-转移酶是另一种实验室常用的融合标签..它可以通过还原性谷胱甘肽琼脂糖亲和层析而快速纯化..此外;与His相比;GST很多时候能够促进目标蛋白的正确折叠;提高目标蛋白表达的可溶性;因此;对于那些用his标签表达易形成包涵体的蛋白;可以尝试用GST融合表达来改进..当然;GST具有较大的分子量26kDa;可能对目的蛋白的活性有影响;因此很多时候切除GST是必须的..目前;GST融合表达系统主要是由GEHealthcare原Amersham提供..重组质粒的构建一般选择遗传稳定;转化效率高;质粒产量高的菌株作为受体菌;常用的有E.coliDH5α;E.coliJM109;E.coliDH10B;E.coliNovaBlμe等rec A–和end A–型细胞..作为表达宿主菌必须具备几个基本特点:遗传稳定;生长速度快;表达蛋白稳定..具体操作过程中;根据所使用的表达载体的特点;目的基因密码子的组成等选择特定的表达宿主菌..以下是实验室常用的几种表达宿主:BL2:lon和ompT蛋白酶缺陷型;避免了宿主对外源蛋白的降解..是经典的使用最广泛的表达受体..适用于Tac;Trc;Lac;λPL;cspA等作为启动子的载体..BL21DE3:DE3噬菌体溶源于BL21形成的带有染色体T7RNA聚合酶基因大肠杆菌..IPTG诱导的lacΜV5启动子控制T7RNA聚合酶基因表达T7RNA聚合酶;进而控制T7表达系统表达目的蛋白..BL21DE3衍生系列:在经典的T7表达系统BL21DE3的基础上;Novagen公司开发了一些特殊的表达宿主细胞..比如:OrigamiDE3;OrigamiBDE3和Rosetta-gamiDE3菌株带有trxB和gor双突变..拥有trxB和gor突变的菌株比单具;trxB突变的菌株更有可能促进二硫键的形成;使蛋白可溶性更好;活性更高..Rosetta 系列:是经过修饰;专用于带有大肠杆菌稀有密码子的真核蛋白表达的菌株..经提高稀有tRNA水平;可以提高一些真核基因表达效率更多信息可参考相应公司的资料..BL21-CodonPlus系列:包括BL21-CodonPlus DE3-RIPL;BL21-CodonPlμs-RIL;BL21-CodonPlμs DE3-RIL;BL21-CodonPlμs -RP;BL21-CodonPlus DE3-RP等..这些受体菌添加了大肠杆菌中编码精氨酸R;亮氨酸L;异亮氨酸I和脯氨酸P稀有密码子的tRNA 基因;更多用于表达一些真核生物的基因..其中RIL系列常用于AT含量高的基因;而RP系列主要用于GC含量高的基因更多信息参考Stratagene公司资料..M15/SG13009:自身表达T5RNApolymerase;主要用于pQE系列载体的表达..另一个需要考虑的是大肠杆菌的密码子及其偏爱性..表1大肠杆菌密码子使用频率统计8.2表达条件的建立为了方便后续的纯化操作;保持目标蛋白的活性;提高蛋白的得率;我们在进行蛋白的大量制备之前应该首先确定目标蛋白的最佳表达条件..首先;保证表达蛋白稳定;尽量避免蛋白酶的降解;我们可以通过使用一些蛋白酶缺陷性的表达宿主;其次在表达的过程中可以在培养体系中添加一些蛋白酶抑制剂等来解决..与实现外源蛋白的稳定表达相比;更多时候保证目标蛋白的可溶性表达;是建立表达条件的主要工作..很多外源基因在大肠杆菌表达时很容易形成不可容的包涵体;其原因可能有:表达量过高;研究发现在低表达时很少形成包涵体;表达量越高越容易形成包涵体;蛋白合成速度太快;以至于没有足够的时间进行折叠;二硫键不能正确配对;过多蛋白间的非特异性结合;蛋白质无法达到足够的溶解度等..目前对包涵体的形成和复性过程中发生聚集的机制尚不清楚;但已经报道了很多用于优化表达以增加目标蛋白可溶性的方法..转化构建好的质粒至表达宿主感受细胞;挑取单克隆子至5ml含有相应抗性的LB培养基=0.5左右;加入IPTG至终浓度0.2mM;转移至28℃;200rpm继中;37℃;200rpm;培养至OD600续诱导培养;可以在2h;4h;6h分别取样以分析表达状况..将取出的1ml菌液12000rpm离心1min;收集菌体;加入1mlPBS缓冲液重悬沉淀;同样离心1min..再加入300~500mlPBS重悬细胞..超声破碎细胞具体见操作细胞破碎将破碎液体4℃;12000rpm离心10min;分离上清和沉淀..SDS-PAGE分析上清和沉淀的蛋白分布具体操作参考SDS-PAGE..若在上清中有明显的目的蛋白的条带;即可以放大培养进而纯化目标蛋白..若目标蛋白的表达主要分布于沉淀;则可以尝试一下几种方法来改善表达..改变表达载体下手;像GST;NΜS;MBP;TrxA等融合标签能够提高很多蛋白在大肠杆菌中表达的可溶性;此外一些分泌标签如ompA;Pet-22b上的pelB也能够将目标蛋白运输至细胞的周质空间;从而提高目标蛋白的可溶性..降低表达速度;可采取低温诱导;如15℃诱导过夜;或者采用弱启动子表达载体..尝试一些特殊设计的表达宿主Origami:thioredoxinredμctase/glμtathioneredμctase 双突变适合带thioredoxinredμctase的融合表达载体;帮助形成更多的二硫键..对于一些蛋白可能无法实现可溶性表达;这时候溶解包涵体后再纯化是唯一的解决办法..大肠杆菌表达纯化外源蛋白;SDS-PAGE是必不可少的操作..可以用来检测蛋白的表达情况表达量;表达分布等;用来分析纯化的目的蛋白的纯度..本小节列出SDS-PAGE操作中一些试剂的配置及其基本的操作过程..130%丙烯酰胺贮存液:29g丙烯酰胺和1gN;N’-亚甲双丙烯酰胺溶于100ml热水中;验证其pH值不大于7.0..置棕色瓶中;4℃保存..丙烯酰胺具有很强的神经毒性并可以通过皮肤吸收;其作用具累积性..称量丙烯酰胺和亚甲双丙烯酰胺时应戴手套和面具..可认为聚丙烯酰胺无毒;但也应谨慎操作;因为它还可能会含有少量未聚合材料..建议实验室划出专门的台面;设置单独的配置器皿进行SDS-PAGE 的相关实验..21.5mol/LTrispH8.8溶液..OToTo100..310%SDS溶液:SDS10.0g加入ddH2410%过硫酸铵:新鲜配制..5TEMED溶液:4℃保存..61.0mol/LTrispH6.8溶液..72×样品溶解液:2%SDS;5%巯基乙醇;10%甘油;0.02%溴酚蓝;0.01mol/LTris-HClpH8.0缓冲液..85×Tris-甘氨酸电极缓冲液:15.1gTris;94g甘氨酸和5gSDS定容到1000ml建议每次电泳用新稀释的缓冲液..9考马斯亮蓝R染色液:每100ml甲醇、水、冰乙酸混合物9:9:2中;溶解0.25g考马斯亮蓝R;搅拌溶解..10脱色液:10%冰醋酸可加如乙醇;建议不要使用甲醇..1、凝胶制备1安装洗涤干净的玻璃板、板条;并将玻璃板固定在电泳槽中..2配制10%的分离胶具体参考表2:迅速在两玻璃板间隙中灌注分离胶;直至剩余的板宽比梳子长度多1cm..小心在胶上覆盖一薄层异丙醇或水..3在分离胶聚合的过程可置于37℃;约10min中;配制5%的积层胶参考表格3..4分离胶聚合完全后;倒去异丙醇或水;用滤纸吸干胶面上的残余..5灌注积层胶;立即插入干净的梳子;避免产生气泡..6积层胶聚合完全后;小心拔出梳子;拨去封胶用的塑料条;固定于电泳槽..7在上下电泳槽中加入足够的电泳缓冲液..2、样品的制备在蛋白溶液中加入等体积的2×样品溶解液;混合液在沸水浴中加热5min;冷却后即可上样..3、上样用微量移液器上样;每加入一种样品;上样量根据根据具体的样品浓度确定;未知浓度一般用10微升..4、电泳对于一块胶;在浓缩胶中电流设置在15~20mA; 当染料进入分离胶后可设置电压至电流约为25~30mA;继续电泳直至染料到达离凝胶底部1cm处..5、后处理1染色:加入染色液用量同上;室温染色30min~1h..Tip:染色前可将染色液在微波炉里加热至沸;然后摇床震荡染色约10min即可..2脱色:将染色后的胶块用水洗涤三次去除表面染料;然后加入脱色液脱色;其间更换脱色液3~4次至条带清晰..Tip:10min快速脱色:将脱色液置于微波炉煮沸;更换三次脱色液..表2.配制SDS-PAGE不同浓度分离胶的配置10%SDS0.050.10.150.20.250.3 10%过硫酸氨0.050.10.150.20.250.3 TEMED0.0040.0080.0120.0160.020.0248%水 2.3 4.6 6.99.311.513.9 30%丙烯酰胺溶液 1.3 2.74 5.3 6.78 1.5mol/LTrispH8.81.32.53.85 6.37.510%SDS0.050.10.150.20.250.3 10%过硫酸氨0.050.10.150.20.250.3 TEMED0.0030.0060.0090.0120.0150.01810%水 1.94 5.97.99.911.9 30%丙烯酰胺溶液 1.7 3.35 6.78.310 1.5mol/LTrispH8.81.32.53.85 6.37.510%SDS0.050.10.150.20.250.3 10%过硫酸氨0.050.10.150.20.250.3 TEMED0.0020.0040.0060.0080.010.01212%水 1.6 3.3 4.9 6.68.29.9 30%丙烯酰胺溶液24681012 1.5mol/LTrispH8.81.32.53.85 6.37.510%SDS0.050.10.150.20.250.3 10%过硫酸氨0.050.10.150.20.250.3表3.SDS-PAGE5%浓缩胶的配置8.3细胞破碎获取蛋白质大肠杆菌细胞破碎有很多方法;譬如反复冻融法;渗透冲击;超声破碎;压力破碎等..其中超声破碎和压力破碎破碎是我室常用方法..在建立表达条件过程中;小量制备样品可用小型超声细胞粉碎仪..离心1.0~1.5ml诱导后的菌液收集菌体;然后视菌体的量加入300~500μl的缓冲液重悬细胞;然后置于冰上超声破碎..因很多实验室有自己的小型超声粉碎器;各个操作不尽相同;具体操作参考仪器说明书..常规操作步骤如下以100ml培养液为例:=1.2左右;12000rpm;4℃离心2min;收集菌体..1100ml诱导后的菌液OD6002加入预冷的缓冲液50ml;重悬细胞洗涤菌体一次;12000rpm;4℃离心2min;收集菌体;常规的操作所使用的缓冲液多为PBS或者Tris-NaCl;针对不同的载体和纯化方法;选择相应的缓冲液..对于一些蛋白酶敏感的目的蛋白;可以在整个操作过程中加入一些蛋白酶抑制剂..3向沉淀中加入15ml的缓冲液同上若菌体太浓;可加倍;充分悬浮;将菌悬液装在一个玻璃小烧杯中;置于冰水混合物中..4破碎:将用缓冲液洗涤过的超声探头伸入到菌液中;不要接触烧杯底部;每处理30sec间隔1min使菌液冷却;输出强度为5~6;频率为60~70%..5分离上清和沉淀:12000rpm;4℃离心20min;分离上清和沉淀..6SDS-PAGE分析蛋白表达情况..7准备纯化蛋白..超声破碎注意事项与一些小的改进:1破碎完全的判断:超声前菌悬液是浑浊的;超声完全后变的透明、清澈..2如果超声时出现黑色沉淀;说明超声功率太强..3超声时间太长、功率太高对蛋白活性肯定有影响..4尽量防止泡沫的产生..5大量破碎时将菌液置于一玻璃器皿中;破碎时放在冰水混合物中;以增加散热;减小对蛋白的破坏作用..6破碎前的预处理;在破碎前可用溶菌酶100μg/ml处理破环细胞壁10min;30℃;增加细胞的通透性..高压破碎是大量的破碎提取细胞内成份的首先方法;相对于超声破碎;它具有过程温和;操作迅速等优点;具体使用需要根据具体的仪器使用说明..FRENCH PRESS细胞破碎仪标准操作规程1使用前将高压腔、底座、活塞杆在4℃冰箱中预冷30min..2将三脚固定器置于水平桌面上;将高压腔正放在固定器器上;在活塞杆的O型环、底座的O型环和针形阀的O型环上均匀涂上少量凡士林..3 把活塞杆正向插入高压腔至最大加样线;将整个腔体连同活塞杆一起倒转固定在固定器上..4 将菌液倒入腔体;最大处理量为35ml;最小为5ml..视样品体积;大致估计并调整活塞杆的位置..5将针形阀和样品喷射管装配于底座上;针形阀拧到轻轻不能拧动为止;并向反方向稍微松动;保证阀门处于开启状态注意:务必不能用力拧紧;否则会降低其密封性..把底座倒扣于腔体上;向上调整活塞杆的位置;直至腔内空气完全排出;流出一滴样品为止;轻轻旋紧针形阀..6双手托起整个高压腔组件;翻转至正向位置;将其置于升降台上事先要确保操作台足够的低;以容的下整个组件;向后推动底座;使底座固定于三个位置校准针之间;并调整腔体使针形阀朝向正面..将固定夹固定于支持杆上;拧紧固定夹上的两个螺丝以固定腔体..将活塞杆上的手柄转至与固定夹垂直的方向..7 打开电源;将档位手柄转至HIGH档;顺时针旋转压力控制阀至50psi;升降台开始上升;当活塞杆接触上顶台后;继续顺时针旋转压力控制阀;直至压力达到需要的压力大肠杆菌的破碎压力一半设定为12000psi;芽孢杆菌设定为2000psi..7取一冰预冷的离心管或者将离心管至于冰中置于样品喷射管出口处;轻轻逆时针转动针形阀;小心控制样品的流出速度;根据破碎程度决定流速建议在喷射管出口处接一个1cm长的透明的塑料管如输液管;通过观察塑料管流出样品的透明度来判断破碎是否完全..当活塞杆上的安全指示线StopLine降至腔体上表面时;迅速关紧针形阀不要过紧;旋转档位手柄至DOWN位置..待升降台完全下降后;继续降低压力至零;关闭电源..8松开固定夹;取出高压腔;重新倒置于三脚固定器上;取出底座..将各部分拆开;彻底清洗..底座及喷射管的内壁要重点冲洗;涂有凡士林处要用洗洁精彻底洗净..注意事项1仪器最大承受压力为4000psi指示针2500..2各O形环处包括样高压腔;底座;活塞杆和针形阀一定要涂凡士林润滑;以降低磨损;防止损伤..3压力的升高或降低速度要控制在一定范围内..升高压力前务必保证整个组件固定于升降台上;任何的松动可能导致事故..4活塞杆的手柄要与固定夹垂直;否则会发生危险..5严禁将出样阀过分拧紧;否则会损坏内部撞针;以不流出液体为准..6严禁使活塞杆下至安全线以下;否则会导致活塞杆与底座损坏..7使用完毕要将压力控制阀转至压力为零..8各部件清洗要彻底;否则底座小孔容易堵死;活塞杆上残留的菌体会在未洗净的凡士林上滋生..9长期不用应保存在干燥的环境中;必要时可涂凡士林防止生锈..10压力腔的空气一定要完全排出;否则当样品完全排出时;造成活塞与压力池底座直接接触;造成损伤;由于压力非常大;有可能导致活塞或压力池底座变形;造成永久性损伤11在搬动装好的样品池时;一定要双手;一手扶住住高压腔;一手托住底座;防止底座脱落而造成事故..12O型环若老化则及时更换..13操作过程中禁止将液体溅入机箱内部..14仪器使用过程中出现故障应及时与负责人联系..8.4目的蛋白的纯化8.4.1HisTag纯化操作实例本实验室中所用的表达载体pET28a+中含有一个编码多聚组氨酸的序列;即His-Tag;因此会获得带有His-Tag的重组目标蛋白..His-Tag可与金属Ni2+离子结合;从而有利于目标蛋白的纯化..加上了His-Tag的蛋白在非变性的条件下可用Ni2+亲和层析柱纯化..纯化蛋白的原理是:当亲和层析柱负载了Ni2+后;可以选择性吸附暴露在蛋白表面具有复杂结构的氨基酸残基特别是组氨酸残基..蛋白质中含有的组氨酸越多;与Ni2+结合的特异性就越高;则将其洗脱下来会需要更高的咪唑浓度..含有组氨酸标签的目标蛋白与细胞中的总蛋白相比;具有更高的Ni2+结合特异性..为了得到具有较高纯度的目标蛋白;必须找到一个合适咪唑浓度的洗脱液结合缓冲液;在此浓度下非特异性的杂蛋白能从柱上洗脱下来;而与Ni2+特异性结合的目标蛋白不会被洗脱..最后用更高咪唑浓度的缓冲液洗脱缓冲液将目标蛋白洗脱下来;此时目标蛋白特异性的存在于该咪唑浓度的洗脱液中;从而得到纯化了的目标蛋白质.. 1载体构建:本实验采用pET-28a+表达载体;克隆受体菌为E.coliDH5α;表达宿主为E.coliBL21DE3..具体操作参考基因克隆与转化部分..2挑一个转化重组质粒的单菌落接种于5mlLB液体培养基中含100μg/m卡那霉素和;于37℃过夜培养..3取1ml过夜培养物;转接于100ml含100μg/ml卡那霉素的LB液体培养基中;于37℃培养1.5~2小时至对数生长期..4在培养物中加入异丙基硫代半乳糖苷IPTG至终浓度为0.2mM;按照预先建立的最佳表达条件进行诱导表达..51200rpm;离心2min;收集菌体..6弃上清;向沉淀中加入500mlStartingbuffer20mM磷酸缓冲液Na2HPO4和NaH2PO4;200mMNaCl;10%甘油;pH7.0;充分悬浮洗涤菌体..712000rpm;离心2min;收集菌体..8向沉淀中加入15ml的startingbuffer;重悬菌体..9冰浴条件下超声波处理3min;每处理30sec间隔1min使菌液冷却;输出强度为5~6;频率为60~70%;处理时以不发生气泡;不过热为准;以菌液变清晰为终止标准..1012000rpm;4℃离心20min;将上清移到干净灭过菌的50ml离心管..SDS-PAGE分析蛋白的表达情况..若目的蛋白分布在上清中;继续进行下面的纯化操作..1灌制好Ni2+-NTA亲和层析柱Ni-NTA琼脂糖亲和层析柱;用去离子水进行缓慢洗脱;避免在柱床中引入气泡..2用10倍柱床体积的startingbuffer进行预平衡;上样;将细胞破碎后的上清液注入Ni2+-NTA亲和层析柱中..3用10倍ml的startingbuffer进行漂洗;收集滤过液..4开始用5倍柱床体积的含20mM咪唑的startingbuffer进行洗脱;并对洗脱液进行收集.. 5依次用5倍柱床体积的含40mM;60mM;80mM;100mM;200mM;300mM和500mM咪唑的startingbuffer进行洗脱;分别对洗脱液进行收集..6通过SDS-PAGE检测回收的效果;确定咪唑最合适洗脱浓度..7从每管收集的滤出液取出10μl的样品;加入10μl的2XSDS凝胶加样缓冲液;摇匀..8沸水浴处理3min..9取出样品;将10μl样品全部上样于适当浓度的SDS聚丙烯酰胺凝胶上电泳..注意事项1样品可贮存于4℃;以备在聚丙烯酰胺凝胶上加样..2用考马斯亮蓝或银染液进行染色;检测重组蛋白的纯化程度;并找到咪唑最合适洗脱浓度;也就是纯化蛋白含量最多的一管洗脱液所对应的浓度;并将该纯化出来的蛋白质经过PD-10柱子以去掉溶液中的咪唑..3蛋白质被洗脱完成之后;要及时地清洗柱子;使柱子能重复使用..4在下次对同一蛋白的纯化过程中;即可根据胶图所显示的个洗脱液中蛋白浓度的情况来优化整个洗脱过程..蛋白质溶液的去盐处理使用PD-10去盐柱1用10ml的startingbuffer平衡PD-10去盐柱..2上样:往PD-10去盐柱中加入2.5ml的蛋白质溶液..3用10ml的startingbuffer去洗PD-10去盐柱;开始收集滤出液;每1ml收集一管..离心管应该先在冰上预冷..4电泳检测重组蛋白质的纯化程度..5具体方法和过程与上面步骤一致..6选择合适的纯化蛋白样品;加入1倍体积的预冷甘油..接着将蛋白质样品置于-80℃保存;以备使用..注意PD-10去盐柱可以多次反复使用;但是不能使柱子变干;保存时应该用相应的缓冲液浸泡;并且置于4℃..图1:PD-10去盐柱除去盐离子示意图载自AmershamBiosciences产品说明1若His标签蛋白没有结合;请依次检查:可能原因1:样品或者是结合缓冲液不正确..策略:检测pH及样品和结合缓冲液的组成份..确保在溶液中鳌合剂或强还原剂的浓度及咪唑的浓度不是太高..可能原因2:组氨酸的标签没有完全的暴露..策略:在变性条件下用4~8M脲;或4~6M 盐酸胍进行纯化..可能原因3:HIS标签丢失..策略1:WB或者anti-his的抗体检查His是否表达;上游构建;改变his-tag的位置C-terminalorN-terminal;必要时增加his个数常用6~10个;策略2:孵育的时间不够;降低流速和增加孵育的时间;策略3:改变螯合的金属离子;寻找到最佳的结合金属离子..2若没有洗脱下来;请依次检查:可能原因1:洗脱条件太温和组氨酸标记的蛋白质仍然结合在柱上;结合力较强..策略:用增加咪唑的梯度洗脱或降低pH来找出最佳的洗脱条件..可能原因2:降低PH的方法洗脱的;因为若PH低于3.5;会导致镍离子脱落..策略:改变洗脱办法;咪唑竞争性洗脱..可能原因3:蛋白已沉淀在柱上..策略:减少上样量;或使用咪唑的线性梯度而不是分步洗脱以降低蛋白的浓度..试用去污剂或改变NaCl的浓度;或在变性条件去折叠下洗脱用4~8M脲;或4~6M盐酸胍..可能原因4:非特异性疏水或其他相互反应..策略:加非离子去污剂到洗脱缓冲液如;2%TritonX-100或增加NaCl的浓度..3HIS标签蛋白洗脱后杂带较多;什么原因如何优化高纯度的蛋白是纯化工作者的追求;但是由于很多天然的蛋白也会带有HIS;所以经常会出现HIS标签蛋白洗脱后有一些杂带;可能的原因和优化的方法如下:可能原因1:蛋白酶部分降解了标签蛋白..策略:请添加蛋白酶抑制剂;慎用EDTA..可能原因2:杂质对镍离子有更高的亲和性..策略1:咪唑浓度必须优化;以确保高纯度宿主细胞蛋白质的低结合和高产率组氨酸标记的目标蛋白质的强结合之间的最佳平衡..分步或者线性洗脱摸索出最优的咪唑结合和清洗浓度;在样品中加入与结合缓冲液同样浓度的咪唑;咪唑的梯度不大20个或更多的柱床体积;可能分离出有相似结合强度的蛋白..策略2:筛选最适合的缓冲液条件;NaCl浓度;PH的范围都需要进行筛选;以便决定最适的结合和洗脱条件..对于单一目标蛋白在进行缓冲液筛选时;将缓冲液、盐、甘油和还原剂设计成几个不同的混合配方..可能原因3:杂质和标签蛋白结合在一起..策略:在超声破碎细胞之前加入去垢剂或者还原剂;增加去垢剂的浓度;2%TritonX-100or2%Tween20;或者在washbuffer中增加甘油的浓度50%减少非特异性的相互反应;考虑增加咪唑的浓度或者改变金属离子可能原因4:洗涤不充分..策略:增加洗涤的次数;使洗涤充分..NTA树脂在使用若干次数3~5次后;结合效率有所下降;可以用以下方法再生;提高树脂的使用寿命和蛋白质的结合效率..注意:NTA树脂再生前需要从层析柱下端流干所有溶液;估计出NTA的树脂体积;按下列次序将再生试剂加到层析柱里;在等上一再生溶液流干后;再加下一再生溶解..用户需要自行准备25%;50%;75%;100%v/v乙醇和去离子水..NTA再生步骤:1从层析柱下端流干所有溶液;用2倍NTA树脂体积的0.2MAceticAcid/6MgμanidineHCl 洗..2用2倍体积的去离子水洗..3用3倍体积的2%SDS洗..4用1倍体积的25%乙醇洗..5用1倍体积的50%乙醇洗..6用1倍体积的75%乙醇洗..7用5倍体积的100%乙醇洗..8用1倍体积的75%乙醇洗..9用1倍体积的50%乙醇洗..10用1倍体积的25%乙醇洗..11用1倍体积的去离子水洗..12用5倍体积的0.1MEDTApH8.0洗..13用3倍体积的去离子水洗..14如果立即使用;用5倍体积的100mMNiSO4.6H2O洗;再用10倍体积的平衡溶液NTA-0buffer或GμNTA-0buffer洗..15如果想长期储存;加入1倍体积的20%乙醇;4度保存;使用前需要执行步骤14..8.4.2GST亲和标签的纯化谷胱甘肽S-转移酶GST是继组氨酸之后的第二个应用最多的重组蛋白标记..GST融合于目标蛋白的N端;可以通过谷胱甘肽-琼脂糖亲和层析进行纯化..由于GST对底物还原性谷胱甘肽的亲和力是亚摩尔级的;因此谷胱甘肽固化于琼脂糖形成的亲和层析树脂对GST及其融合蛋白的纯化效率很高..用1ml的树脂纯化1L的大肠杆菌培养物可得到的目的蛋白产率为0.1~6.0mg..GST亲和纯化融合蛋白主要包括结合;洗涤;洗脱三个步骤;全过程只需要一到两种缓冲液;可以大量纯化;也可以小量的实现快速纯化..非常适合实验室小量制备大肠杆菌重组蛋白..下面以克隆到表达载体pGEX-6p-1上的GFP表达纯化为例;介绍一种小量快速的纯化方法;供大家参考..蛋白的诱导与样品的制备方法基本同上..1从4℃冷柜中取出GlμtathioneSepharose4B本产品购置GE公司;储存于20%乙醇;树脂的量和20%乙醇1:1;轻柔、充分翻转摇匀树脂悬浊液..2用宽嘴吸头吸取1ml的脂浆;加入到装有40ml的PBS整个操作过程所有的PB均需预冷V 型离心管中;轻柔颠倒数次;洗涤除去残留的20%乙醇;2000rpm;离心5min;小心倾倒出PBS..3将破碎后的上清加入平衡上一步骤中的树脂中;轻轻混匀;4℃振荡温育;500rpm;1h;期间不断混匀;防止树脂沉淀;保GST-GFP充分结合于树脂上..42000rpm;离心5min;小心倾倒出上清..5向沉淀中加入约40ml的PBS;轻柔混匀;振荡温育10min;2000rpm;离心5min;小心倾倒出上清..6重复步骤5一次;然后向沉淀中加入5ml的PBS悬浮树脂;并将悬浮液转移到一个10ml的塑料层析柱;并打开阀门放掉PBS..。
原核大肠杆菌蛋白表达系统是一种常用的表达系统,它基于细菌细胞(通常为大肠杆菌)对外源基因的转录和翻译过程。
在表达载体中,包含有启动子、激活子和选择子等元件,这些元件使得外源基因能够被细菌细胞识别、转录成mRNA,并通过翻译过程合成目标蛋白。
大肠杆菌表达载体的要求如下:
1. 操纵子以及相应的调控序列,因为外源基因产物可能会对大肠杆菌有毒害作用。
2. SD序列,即核糖体识别序列,一般SD序列与起始密码子之间间隔7\~13bp翻译效率最高。
3. 多克隆位点以便目的基因插入到适合位置。
此外,目的基因在大肠杆菌表达体系中要表达的基因即外源基因,包括原核基因和真核基因。
原核基因可以在大肠杆菌中直接表达出来,但是真核基因含有内含子不能直接表达,大肠杆菌不能对mRNA进行剪切,从而形成成熟的mRNA,所以真核基因一般以cDNA的形式在大肠杆菌表达系统中表达。
同时还需要提供大肠杆菌能识别的且能转录翻译真核基因的元件。
以上内容仅供参考,如需更多信息,建议查阅相关文献或咨询生物学家。
基因工程制药综述班级:生技132XX:学号:大肠杆菌表达系统的研究进展综述自上世纪70 年代以来, 大肠杆菌一直是基因工程中应用最为广泛的表达系统。
尽管基因工程表达系统已经从大肠杆菌扩大到酵母、昆虫、植物及哺乳动物细胞,并且近年来出现了很多新型的真核表达系统, 但是大肠杆菌仍然是基因表达的重要工具。
尤其是进入后基因组时代以来, 有关蛋白构造以及功能研究的开展,对基因表达的要求更高,这时大肠杆菌往往是表达的第一选择。
文章综述了近年来有关大肠杆菌表达载体及宿主细胞的改造工作。
1 表达载体1. 1 表达调控构建有效的表达载体是表达目的基因的根本要求, 同时也是影响基因表达水平以及蛋白活性的重要因素。
标准的大肠杆菌表达载体的主要组成: 启动子、操纵子、核糖体结合位点、翻译起始区、多克隆位点、终止子、复制起点以及抗性筛选因子等。
理想的表达载体要求在转录和翻译水平上可以控制目的基因的表达,然而目的基因在宿主体内过分表达(选用较强的启动子等)会对宿主造成压力, 引起相关的细胞应答反响, 影响蛋白的活性等。
基因组、RNA 转录组、蛋白质组、代谢调控组等领域的研究成果给我们提供了大量关于基因表达调控的信息[ 1]。
现已能从基因和细胞的整体水平来方便地选择适宜的启动子或合理开发新的载体系统。
譬如Lee 等利用二维凝胶电泳法比较了重组载体和空载体被分别转入宿主细胞后蛋白组学的差异,发现两者都产生了大肠杆菌热休克蛋白并引起了cAMPCRP 调节蛋白的应答, 其中重组子的影响更为强烈;另外, 还发现外源基因的表达使宿主核糖体合成速率、翻译延长因子和折叠酶表达水平、细胞生长率下降, 而使细胞呼吸活力上升[ 2]。
目前应用的表达载体主要问题是表达过程中出现的全或无的情况, 通常表达的培养物都是非纯种的细胞群, 其中有一些细胞可以最大限度地被诱导,而另一些细胞在诱导后基因的表达被关闭。
别离具有适宜强度启动子及翻译速率的载体变种可以优化表达水平,说明启动子的选择对于基因的诱导表达非常重要。
大肠杆菌表达系统的研究大肠杆菌表达系统是基因表达技术中发展最早,目前应用最广泛的经典表达系统。
大肠杆菌表达系统的发展历史可追溯到二十年前,Struhl等(1976)、Vapnek等(1977)和Chang等(1978)分别将酿酒酵母DNA片段、粗糙链孢霉DNA片段和哺乳动物cDNA片段导入大肠杆菌,引起其表型的改变,证明了外源基因在大肠杆菌中可以使现有功能的活性表达。
这些研究工作为大肠杆菌表达系统的发展奠定了理论基础。
Guarante等(1980)在Science杂志上发表了以质粒、乳糖操纵子为基础建立起来的大肠杆菌表达系统,这一发展构成了大肠杆菌系统的雏型。
随着80年代后期分子生物学技术的不断发展,大肠杆菌表达系统也不断得到发展和完善。
与其它表达系统相比,大肠杆菌表达系统具有遗传背景清楚,目的基因表达水平高,培养周期短,抗污染能力强等特点。
在基因表达技术中占有重要的地位,是分子生物学研究和生物技术产业化发展进程中的重要工具。
1 表达载体大肠杆菌质粒是一类独立于染色体外自主复制的双链、闭环DNA分子,大肠杆菌质粒可分为结合转移型和非结合转移型两种,非结合转移型质粒在通常培养条件下不在宿主间转移,整合到染色体上的频率也很低,具有遗传学上的稳定性和安全性。
又因其大小一般在2-50kb范围内,适合于制备和重组DNA的体外操作,因此几乎所有的大肠杆菌表达系统都选用非结合转移型质粒作为运载外源基因的载体,这些表达载体通过对天然质粒的改造获得。
理想的大肠杆菌表达载体要求具有以下特征:(1)稳定的遗传复制、传代能力,在无选择压力下能存在于大肠杆菌细胞内。
(2)具有显性的转化筛选标记。
(3)启动子的转录是可以调控的,抑制时本底转录水平较低。
(4)启动子的转录的mRNA能够在适当的位置终止,转录过程不影响表达载体的复制。
(5)具备适用于外源基因插入的酶切位点。
复制子、筛选标志、启动子、终止子和核糖体结合位点是构成表达载体的最基本元件。
ecoli表达体系E. coli表达体系引言:E. coli(大肠杆菌)是一种常见的细菌,广泛应用于基因工程和蛋白质表达领域。
其独特的表达体系为科学家们在基因工程研究中提供了强大的工具。
本文将介绍 E. coli表达体系及其在蛋白质表达中的应用。
一、E. coli表达体系的基本原理E. coli表达体系是利用大肠杆菌作为宿主细胞来表达外源基因的一种方法。
其基本原理是将目标基因插入到表达载体中,然后将载体转化到E. coli细胞中,通过细胞的代谢和转录机制来实现目标基因的表达。
E. coli表达体系具有高效、简便、经济的特点,因此被广泛应用于基因工程领域。
二、E. coli表达体系的关键组成部分1. 表达载体:表达载体是E. coli表达体系的核心部分,通常由启动子、多克隆位点、选择标记和复制起始子等功能元件组成。
启动子用于启动目标基因的转录,多克隆位点用于插入目标基因,选择标记用于筛选转化成功的细菌,复制起始子用于维持载体的复制。
常用的表达载体有pET、pBAD、pGEX等。
2. 宿主细胞:E. coli细胞是E. coli表达体系的宿主细胞,其具有较高的生长速度和简单的培养条件,能够满足大规模表达的需求。
同时,E. coli细胞也具有较高的遗传稳定性和表达效率,使其成为理想的表达宿主。
3. 外源基因:外源基因是指需要表达的目标基因,可以是来自其他物种的基因序列,也可以是人工设计的合成基因。
外源基因的选择应根据研究目的和需求进行合理设计。
三、E. coli表达体系的应用E. coli表达体系在蛋白质表达领域具有广泛的应用前景。
以下是几个常见的应用领域:1. 重组蛋白表达:利用E. coli表达体系可以高效表达各种重组蛋白,如药物、酶、抗体等。
通过对目标基因的合理设计和优化表达条件,可以实现大规模的蛋白质产量,并且具有较高的纯度和活性。
2. 代谢工程:E. coli表达体系在代谢工程中也发挥着重要的作用。
外源蛋白在大肠杆菌中的表达一、引言外源蛋白是指不属于宿主生物体自身的蛋白质,通常是由其他生物体合成的蛋白质。
在大肠杆菌中表达外源蛋白已经成为了基因工程和生物技术领域中的一个重要研究方向。
本文将从大肠杆菌表达外源蛋白的原理、方法、策略等方面进行详细阐述。
二、原理1. 大肠杆菌表达系统原理大肠杆菌表达系统是指利用大肠杆菌作为宿主细胞,通过转化外源DNA进入细胞,使其在细胞内得到表达并产生相应的蛋白质。
这个系统包括三个部分:载体、宿主细胞和诱导剂。
2. 质粒载体质粒载体是指一种环状DNA分子,可以携带外源DNA序列并在大肠杆菌中进行复制和表达。
常用的载体有pUC19、pET28a等。
3. 宿主细胞宿主细胞是指被转化了质粒载体的大肠杆菌细胞。
常用的宿主细胞有BL21(DE3)等。
4. 诱导剂诱导剂是指在宿主细胞中引发表达外源蛋白的物质。
常用的诱导剂有IPTG、L-arabinose等。
三、方法1. 克隆外源DNA序列到质粒载体中将外源DNA序列克隆到质粒载体中,形成表达载体。
常用的方法有限制性酶切和连接法、PCR扩增法等。
2. 将表达载体转化到宿主细胞中将表达载体通过热激转化或电转化等方法导入到宿主细胞中,使其在细胞内进行复制和表达。
3. 选择正常表达的克隆通过筛选,选择出正常表达目标蛋白的克隆。
常用的筛选方法有PCR 检测、Western blotting等。
4. 诱导表达目标蛋白在选定的克隆中加入适量的诱导剂,使其开始表达目标蛋白。
通常在温度、时间、浓度等方面进行调节,以得到最佳效果。
四、策略1. 选择合适的载体和宿主细胞根据需要表达的外源蛋白的不同,选择适合的载体和宿主细胞。
例如,如果需要表达带有His标签的蛋白质,可以选择pET28a载体和BL21(DE3)宿主细胞。
2. 优化表达条件通过调节温度、时间、浓度等参数来优化表达条件,以提高目标蛋白的表达量和纯度。
3. 联合表达将多个外源蛋白基因克隆到同一个载体中,使其在同一宿主细胞中进行联合表达。
大肠杆菌表达系统本文主要介绍了大肠杆菌蛋白表达原理、具体操作步骤、大肠杆菌表达系统及其与其他系统的比较等。
诱导原理:Lac阻遏物是一种具有4个相同亚基的四级结构蛋白,都有一个与诱导剂结合的位点。
在没有乳糖存在时,lac操纵子(元)处于阻遏状态,Lac阻遏物能与操纵基因O结合,阻碍RNA聚合酶与P序列结合,抑制转录起动。
而当有诱导剂与阻遏蛋白结合后,其蛋白构象就发生变化,导致阻遏物从操纵基因O上解离下来,RNA聚合酶不再受阻碍,发生转录。
大肠杆菌表达系统步骤不包括基因构建等上游操作和蛋白纯化部分。
基因构建参考密码子优化,蛋白纯化参考蛋白纯化专题。
以下内容主要包括蛋白表达鉴定:1.表达鉴定第一天的任务,常用抗性选择根据感受态细胞选择•拿到质粒,离心(3000r/min;2min)•在质粒中加入TE(使质粒最终加入到110μL感受态细胞中的量为80-100ng,据此确定加入TE的量),一般为(1μg质粒加20μLTE;2μg质粒加50μLTE;5μg质粒加100μL TE)•将质粒与TE混匀,加入2μL混液于感受态细胞中•将感受态细胞放入冰箱(4℃)中,30min•取出后立即放入水浴锅中(42℃),热激90s,•再次放入冰箱(4℃)中,3min•拿出后取200μL的LB液体培养基加入到已转入质粒的感受态细胞中•放入摇床(37℃; 195r)中, 30nim至60min; (最佳45min)•取出离心(3000r/min;2min)•去掉200μL的上清,留100μL左右上清悬浮沉淀,吸取50μL 悬液涂平板,(先将对应抗性的平板放入培养箱(37℃)中预热20min)•把平板放入培养箱(37℃),过夜(12h至16h)2. 表达鉴定第二天的任务,注意Pcold的表达温度•每个平板挑取单菌落至4支对应抗性的L(4ml)试管中,编号为“0”“1”“2”“3”•将试管放入摇床(37℃;195r)中,(单抗3h左右;双抗4左右;刚开始用可见分光光度计测OD值;熟练后可目测(背光下,以试管中的枪头为例,刚刚看不见枪头即可)),测OD值(0.6至0.8)•从“0”号管中取700μL悬液加入到100μL(C=80%)的保种甘油中,震匀,放入冰箱(-20℃)冻存•在每组菌的“1”“2”“3”号试管中分别加入2μL的IPTG(终浓度0.5mM最适)•视不同的载体选择适合的表达环境(PET/PGEX:15℃表达过夜;25℃表达6h;37℃表达3h至4h(4支试管,“0”“1”号试管15℃表达过夜;“2”“3”试管37℃表达3h至4h)。
大肠杆菌表达系统总结
随着分子生物学和蛋白组学的迅猛发展,外源基因表达的遗传操作技术日趋成熟。
表达系统是外源基因表达的核心,常用表达系统一般为模式生物,包括真核表达系统和原核表达系统,其中真核系统包括了哺乳动物细胞表达系统、植物体表达系统、昆虫杆状病毒表达载体系统以及酵母表达系统,原核表达系统则主要为大肠杆菌表达系统。
大肠杆菌是目前应用最广泛的原核表达系统,也是最早进行研究的外源基因表达系统,其遗传学背景清晰、生长快、较易实现高密度培养、成本低、产量高,相较于其它表达系统具有难以比拟的优越性,是商业生产中应用最广泛的表达系统,取得了巨大的科研价值和经济效益。
大肠杆菌表达系统目前广泛应用于表达生产多种蛋白质/多肽类药物和生物化学产品,包括:重组人胰岛素、a2b型干扰素、兰尼单抗、紫色杆菌素和牡丹皮葡萄糖苷等。
据统计,1986-2018年由美国FDA和欧洲EMA批准上市的重组蛋白类药物中有26%来自于大肠杆菌。
与此同时,目前通过大肠杆菌表达的基因工程疫苗也进入市场或处于临床实验阶段,如戊型肝炎疫苗、人乳头瘤病毒疫苗、流感A型疫苗等。
常见的大肠杆菌表达系统有BL21系列、JM109系列、 W3110系列和K802系列等,其中大肠杆菌 BL21( DE3)菌株是目前应用于重组蛋白表达研究最广泛的菌株之一,BL21(DE3)是由大肠杆菌B系列与K-12系列的衍生菌株通过 P1 转导等遗传突变获得的。
该类菌株通常为宿主蛋白酶缺失型,以保证外源蛋白在表达过程中不被降解,维持表达的稳定性。
大肠杆菌表达系统在商业生产中具有巨大的优越性和价值,但建立高效匹配的表达系统是实现商业价值的关键,包括宿主菌、外源基因、载体的选择与匹配。
宿主菌的选择是第一步,对表达活性和表达量影响很大,理想的宿主菌株是蛋白酶缺陷型,避免蛋白酶过多引起的产物不稳定,常见的蛋白酶缺陷型菌株为BL21系列菌株。
其次是外源基因,外源基因决定了是否可获得目的产物,原核基因可在大肠杆菌中直接表达,而真核基因不能再大肠杆菌中直接表达。
表达载体也是影响外源基因表达的重要因素,它是表达系统中最关键的元件,包括启动子、目的基因、抗性基因和终止子等,表达载体需具有高拷贝数、产量高、应用范围广、表达产物易纯化及稳定性好等特点,应用在大肠杆菌中的载体包括融合表达型载体、分泌型表达载体和共表达载体等,常用的表达载体为pET、pUC、pSC、
pPBB、pBV220、 pRK1、pRLK14等,常用的启动子有Ptrp、 Ppho、PL、PR、Ptac、Plac、T7 噬菌体启动子、 trp-lac 杂合启动子等。
高效表达系统建立后就需进行高密度发酵。
大肠杆菌高密度发酵是目前发酵工业的研究热点之一,影响高密度发酵的因素除了高效表达系统外,还需要适配性的工艺。
适配性工艺包括:培养基组分,温度、pH值和溶氧控制,诱导和补料策略等,可有效提高菌浓和单位菌体产量。
首先是培养基成分,大肠杆菌表达所需的培养基成分有碳源、氮源和无机盐,碳源是优化的关键,常用的碳源包括糖类、油脂、低碳醇和有机酸等。
葡萄糖虽然是廉价且易用的碳源,也是高密度表达最常用的碳源,但高浓度葡萄糖会导致菌体生长旺盛并加速乙酸积累,进而抑制生长和合成。
利用甘油作为碳源不会导致生长过于旺盛和乙酸的大量积累,有利于菌体生长和蛋白表达。
氮源是培养基中另一种关键营养因素,包括有机氮源和无机氮源,选择合适的氮源有利于菌体生长和蛋白表达。
除了选择最优的碳源和氮源,合适的碳氮比也是影响高密度发酵的重要因素,不同的碳氮比情况下菌体生长和蛋白表达存在差异。
另外,微量因素、无机盐浓度也会影响蛋白表达。
其次是发酵条件控制,包括:溶氧、温度、pH。
高密度发酵过程中溶氧是非常关键的因素,其影响发酵过程中质粒稳定性和乙酸生成,当溶氧浓度低于5%时,质粒会快速丢失,溶解氧浓度需维持在30%-40%。
除了溶氧,不同的重组蛋白和高密度发酵不同阶段对温度要求不同,需根据蛋白性质、质粒性质和菌体状态等调整温度。
此外维持合适的pH 也有利于蛋白表达。
补料策略也是高密度发酵的关键因素,大肠杆菌高密度发酵过程中常用的补料策略有恒速流加、梯度流加、指数流加3种非反馈补料和根据溶解氧、pH值和CER的反馈补料,根据菌体生长速率、底物消耗速率、产物生成速率、有害物积累速率和质粒稳定性选择合理的补料策略是高密度发酵的关键。
通过补料策略控制菌体比生长速率是影响高密度培养的重要因素,因为不同比生长速率会影响菌体生长和蛋白表达,较高比生长速率可能引起质粒丢失。
最后,诱导剂的种类和浓度、诱导的时间选择也影响菌体生长和蛋白表达,需根据实际情况选择合适的诱导条件。
大肠感觉工业发酵过程中采用的诱导方式主要包括包括营养源诱导、温度诱导、丙基硫代半乳糖苷(IPTG)和乳糖诱导。
产业化规模应用的大肠杆菌绝大多数为IPTG诱导型,但由于IPTG对细胞具有毒害作用、价格较贵并增加纯化的难度,在大规模发酵时一般采用乳糖代替。
利用大肠杆菌表达系统表达重组蛋白是目前行业研究的热点,具有巨大的优越性的同时存在部分问题。
首先,大部分表达的重组蛋白存在于细胞质中,易被大肠杆菌内源性蛋白酶降解,导致表达量低;其次,部分重组蛋白虽然可形成包涵体而避免被降解,同时分离纯化方便且效率高,但复性难;最后,可分泌至细胞周质或细胞培养液中的重组蛋白同时具有分离纯化简单和避免被降解的优点,但由于细胞周质空间较小且重组蛋白不能跨膜转运,表达量较低。
另外,噬菌体也是影响大肠杆菌表达系统的关键因素。
综上所述,大肠杆菌表达系统相较于其它表达系统具有简单、快速、成本低、产量高等众多优点,已广泛应用于多种生物制品和化学品的商业生产中;但其在表达不同产品时,需匹配适配性的工艺,对发酵过程中的温度、pH、溶氧和诱导条件等关键因素进行优化,进而达到产量最大化和成本最低化。
最后,大肠杆菌表达系统存在表达量低、复性难和噬菌体污染等问题,需进一步优化解决。