生理学设计性实验
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动物生理学实验设计引言:动物生理学实验是研究动物生理功能和机制的重要手段。
通过设计合理的实验方案,可以揭示动物身体各个系统的运作规律,深入理解生命的奥秘。
本文将从呼吸、循环和消化三个方面,设计一系列动物生理学实验,以探究动物的生理过程。
一、呼吸系统实验1. 实验目的:观察不同动物在不同环境条件下的呼吸变化,并探究呼吸与环境的关系。
2. 实验方法:选取鱼类、昆虫和哺乳动物为实验对象,将它们分别置于水中、低氧环境和正常环境下,测量它们的呼吸频率和呼吸深度。
3. 实验结果与讨论:不同动物在不同环境下的呼吸变化存在差异,鱼类在水中呼吸更为频繁,昆虫在低氧环境下呼吸更加困难。
这些结果表明动物的呼吸与其生活环境密切相关。
二、循环系统实验1. 实验目的:研究动物的心脏功能和血液循环过程,并探究身体活动对循环系统的影响。
2. 实验方法:选取青蛙和大鼠为实验对象,使用心电图和血压测量仪观察它们的心脏运动和血液压力变化,在运动前后进行对比分析。
3. 实验结果与讨论:实验结果显示,运动会导致心率和血压的升高,心脏的收缩力增强。
这说明运动对循环系统有促进作用,有利于保持心血管系统的健康。
三、消化系统实验1. 实验目的:研究动物的消化过程和消化酶的活性,探究食物对消化系统的影响。
2. 实验方法:选取小鼠为实验对象,分别给予其不同种类和含量的食物,观察其摄食量和消化器官的反应,并在不同时间段采集样本进行消化酶活性测定。
3. 实验结果与讨论:实验结果显示,不同食物对小鼠的摄食量和消化酶活性有不同的影响。
高蛋白饮食可以促进消化酶的分泌,高脂饮食会导致摄食量增加。
这些结果揭示了食物对消化系统的重要影响。
结论:通过以上实验设计,我们可以更深入地了解动物的呼吸、循环和消化等生理过程。
这些实验不仅可以为人类生理学研究提供参考,还有助于揭示动物适应环境的生存机制。
动物生理学实验的设计和探究将为人类提供更多关于生命奥秘的启示,推动科学的进步。
不同pH值对牛蛙离体心脏收缩活动的影响2008231144 赖泽红生科一班摘要:本实验主要是采用斯氏蛙心插管法,在保持灌流液高度恒定的情况下,分别以不同pH值的溶液对牛蛙离体心脏进行灌流,经张力换能器、RM6240D型生物信号采集处理系统与处理系统记录心肌的活动过程,探讨不同pH对离体心脏活动的影响,以揭示酸碱度与心脏收缩活动的关系。
关键词:pH值;离体心脏;收缩活动生理状态下,血液pH值保持在7.35—7.45,这是保证细胞惊醒正常代谢和机能活动的基本条件。
在生命活动的过程中,体内不断生成酸性或碱性产物,机体通过多方面的调解活动,使血液pH值保持在正常范围内。
然而,一旦机体酸碱调节失衡,会导致体内酸中毒或碱中毒,对机体造成影响。
心脏直接与血液接触,心肌细胞的收缩活动容易受血液pH值的影响。
本实验通过用不同PH值的灌流液灌流牛蛙离体心脏,观察其对心脏某些功能的影响,以揭示酸碱度与心脏收缩活动的关系,用离体牛蛙心脏,排除了在体时的神经体液干扰,故实验结果更为可靠。
一、实验材料:1、实验仪器:RM6240D型生物信号采集处理系统、张力换能器、pH酸度计。
2、常用器械:蛙板或蜡盘,蛙心夹、蛙心套管,滴管,培养皿或小烧杯,玻璃板、容量瓶,移液管、量筒、污物缸,纱布,棉线,常用手术器械。
3、药品:任氏液, HCL溶液,NaOH溶液。
4、实验动物:牛蛙2-4只(雌雄不限)。
二、实验步骤与方法1、药品配制(1)任氏液配制母液及容量成分 NaCl、 KCl 、CaCl2 、NaH2PO4 、NaHCO3 、葡萄糖、蒸馏水,注: 表内各成分除葡萄糖以 g 为单位外,均以 ml 为单位. 任氏液的配制方法:一般先将各成分分别配制成一定浓度的母液,而后按所要的容量混合。
需要注意的是:CaCl2 应在其他母液混合并加入蒸馏水后,再边搅拌边加入,以防钙盐生成。
另外,葡萄糖应在用前临时加入,否则不宜久置。
两栖类的为PH6.5-7.0 (2)不同PH浓度的任氏液配制。
动物生理学实验设计
一、实验题目:白鼠对训练后对无声刺激条件反射信号的反应实验
三、实验背景知识:白鼠属于哺乳类动物,头部有两只小眼睛,具有明显的情绪表现,嗅觉、听觉、触觉和视觉等感官反应较为敏感,可表现出良好的条件反射能力。
五、实验仪器:无声环境室、PC机、鼠实验箱及训练键等。
六、实验原理:在安静环境下,鼠实验台会利用定时脉冲触发模块产生信号,要求鼠
在受到脉冲信号时作出一定的反应(例如按下键、点击屏幕或者去采集食物),从而实现
对鼠反射训练的目的。
七、实验步骤:
1.放置实验动物:把一只白鼠放入无声环境室中,并反复观察它的行为,如吃、坐、站等;
2.对实验动物进行虚拟训练:用PC机控制实验箱中的定时脉冲触发模块产生训练
信号,给实验动物展示相应的训练任务,让实验动物在常规时间间隔内完成灯光按键等训
练动作;
3.检测实验动物的反射反应:检测实验动物在无声环境中是否存在条件反射,让
它在不同的时间间隔下,面对不同类型的刺激信号,对训练时的任务作出反应;
4.进行反应数据收集:对实验动物的反射反应做出回应,定期记录反应时间,并
计算出反应时间与实验条件的关系;
5.分析和评价:根据实验结果,得出结论。
八、预防措施:
1.检查实验仪器和实验动物:检查实验仪器是否正确连接,实验动物是否放置正常;
2.严格观察训练过程:在训练过程中注意实验动物的反射反应,并及时给予调整
和修改;
3.定期更换实验动物:定期更换实验动物,以防止实验动物训练过程中出现过度
疲劳等问题。
九、实验结论:
经过上述实验,证明了白鼠在无声环境条件下,可以完成有关训练任务,可以对刺激
信号做出反应,具有良好的条件反射能力。
第1篇一、实验目的1. 观察和了解蛙的生理现象。
2. 掌握蛙的生理实验基本操作方法。
3. 学习使用生理学实验仪器,提高实验技能。
4. 分析蛙的生理机制,为后续生理学学习打下基础。
二、实验原理蛙是一种两栖动物,具有丰富的生理现象,如呼吸、循环、神经和消化等。
本实验通过观察蛙的生理现象,了解蛙的生理机制,掌握生理实验的基本操作方法。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:蟾蜍、生理盐水、剪刀、镊子、解剖剪、显微镜、滴管、生理盐水瓶等。
2. 实验仪器:解剖台、显微镜、生理信号采集系统、生理信号处理软件等。
四、实验步骤1. 蛙的解剖:将蟾蜍置于解剖台上,用解剖剪剪开蟾蜍的皮肤,暴露出内脏器官。
2. 呼吸观察:观察蟾蜍的呼吸运动,记录呼吸频率和深度。
3. 循环观察:观察蟾蜍的心脏搏动,记录心跳频率和强度。
4. 神经观察:观察蟾蜍的神经系统反应,如刺激蟾蜍的皮肤,观察蟾蜍的反应时间。
5. 消化观察:观察蟾蜍的消化系统运动,如给蟾蜍喂食,观察蟾蜍的吞咽和消化过程。
五、实验结果与分析1. 呼吸观察:蟾蜍的呼吸运动表现为腹式呼吸,呼吸频率约为30次/分钟,深度适中。
2. 循环观察:蟾蜍的心脏搏动明显,心跳频率约为100次/分钟,心跳强度适中。
3. 神经观察:刺激蟾蜍的皮肤,蟾蜍的反应时间为0.5秒,表明神经系统反应迅速。
4. 消化观察:给蟾蜍喂食后,蟾蜍的吞咽和消化过程明显,食物从口腔进入食道,再进入胃和肠道。
六、实验讨论1. 呼吸现象:蟾蜍的呼吸运动是通过肺进行气体交换,呼吸频率和深度适中,表明蟾蜍的呼吸功能正常。
2. 循环现象:蟾蜍的心脏搏动有力,心跳频率和强度适中,表明蟾蜍的循环系统功能正常。
3. 神经现象:蟾蜍的神经系统反应迅速,表明神经系统功能正常,对外界刺激有良好的适应性。
4. 消化现象:蟾蜍的消化系统运动明显,表明消化功能正常,能将食物消化吸收。
七、实验结论通过本次实验,我们成功观察了蛙的呼吸、循环、神经和消化等生理现象,了解了蛙的生理机制。
生理学实验课程设计1. 引言生理学是一门研究生物体功能活动规律的学科,是医学、生物学等学科的基础学科之一。
生理学实验课程是生理学教学中非常重要的一部分,通过实验教学可以深化学生对生理学理论的认识,增强学生的实践能力和科学研究意识。
本文将介绍一种生理学实验课程的设计方案。
2. 实验目的本实验旨在通过观察和比较不同年龄段、不同性别和不同体质的人对运动耐力测试的表现,探讨身体状态对运动能力的影响。
3. 实验材料和方法3.1 实验材料•健康志愿者20名,其中男性10名,女性10名•一台定速跑步机•心率监测仪•血压计•实验记录表3.2 实验设计将20名志愿者分为两组,分别进行不同强度的运动耐力测试。
其中一组进行低强度跑步测试,跑步过程中速度为每小时6公里,持续时间为30分钟。
另一组进行高强度跑步测试,跑步过程中速度为每小时10公里,持续时间为10分钟。
实验期间记录每个志愿者的心率和血压情况。
3.3 实验步骤1.对参加实验的志愿者进行身体检查,保证其身体健康,符合实验要求。
2.对参加实验的志愿者按照性别、年龄和身体状况进行随机分组。
3.一组进行低强度跑步测试,另一组进行高强度跑步测试。
4.在运动过程中实时监测每个志愿者的心率和血压变化情况。
5.记录每个志愿者运动前后的数据变化。
6.分析数据,探讨身体状态对运动能力的影响。
4. 实验结果和分析根据实验数据统计结果,得出结论:1.不同年龄段的人对于低强度的运动能够有较好的耐力表现,并且运动前后心率和血压变化相比较小;2.不同性别的人对于运动能力表现差异较大,男性较女性耐力表现更好,在同样的运动强度下,心率和血压的变化程度也远远小于女性;3.高强度运动对于身体状态较好的人来说较为容易实现,对于身体状态欠佳的人则需要适当的篇幅,通过逐渐增加运动强度的方式来提高耐力。
5. 结论通过本次实验,我们可以发现不同身体状态对于运动能力的表现具有较大的影响,因此我们需要适当地调整自己的身体状态,通过适量的运动和锻炼来提高自己的身体素质,将有助于我们更好地适应日常生活和工作状态。
《人体及动物生理学实验》设计性(创新性)实验实验一血型鉴定实验设计[设计要求]已知甲某的血型为A型(或B型),现在又无标准血清,要求设计一实验来判断乙某的血型?[实验目的][实验原理][实验对象][实验药品][仪器与器材][实验方法与步骤]:[注意事项][思考题](可以引伸思考的问题)实验二影响心输出量的因素[设计要求]心输出量是衡量心功能的重要指标。
心输出量是指一侧心室每分钟射出的血量,等于每搏输出量与心率的乘积。
心输出量的多少取决于每搏输出量的多少和心率的快慢。
每搏输出量反映了心肌收缩力与做功的大小,可受前负荷、后负荷及心肌收缩能力等因素的影响。
本实验拟用离体蟾蜍(或豚鼠等)心脏,在消除了神经反射对心率的影响,可保持心率基本恒定。
因此,主要考虑每搏输出量对心输出量的影响。
心室收缩前负荷是心肌尚未收缩时所遇到的阻力,与心室舒张末期容积(充盈量)直接有关。
在一定范围内,回心血量增加,心室舒张末期容积增加,心肌收缩开始前受到的前负荷增加,使心肌纤维初长度拉长,每搏输出量也增加,心肌开始收缩受到的总外周阻力(大动脉血压)即是后负荷。
后负荷如大动脉血压增加时,心室壁收缩期张力增大,做功增加。
心肌收缩力是指心肌内在收缩机制改变所引起的收缩力量的改变,与前、后负荷无关,而且可受去甲肾上腺素、乙酰胆碱等神经递质和体液因素的影响。
现要求根据上述原理,设计一实验来探讨前负荷、后负荷及心肌收缩能力改变对每搏输出量的影响(可是某一单个或多个因素),并对心脏功能进行评价。
[实验目的][实验原理]要求在上述原理的基础上,进一步阐述拟采用的实验方法和技术路线的理论根据(即通过何仪器和技术实现引起心输出量改变的因素?如何评价心泵血功能)。
[实验药品][仪器器械][实验对象][实验步骤与方法]1.现介绍两种离体心脏灌流标本的制备方法供参考:(1)离体蛙心双管灌流标本的制备①取蟾蜍(或蛙)破坏脑和脊髓,背位固定于蛙板上,剪开胸壁,暴露心脏,分离两侧主动脉,用线结扎右主动脉后再在左主动脉下穿一线备用。
青蛙呼吸的测量及温度对呼吸的影响两栖动物是比较低级的物种,幼体是用鳃呼吸,长成成体后,由于尚未形成胸廓,故不能进行胸腹式呼吸,其呼吸方式为特有的口咽式呼吸,肺呼吸时主要依靠口腔底部的颤动升降来完成,并通过口咽腔粘膜进行气体交换。
呼吸时,口通常是紧闭的,下巴升降来控制口咽腔的体积来呼气和吸气。
吸气时,外鼻孔的瓣膜张开,口裂和喉门紧闭,口底下降而将空气吸入,经内鼻孔到达口咽腔内。
呼气时,口底抬升,将空气循原路由外鼻孔呼出,此时因喉门紧闭二空气不能进入“肺囊”,只能由口咽腔粘膜执行气体交换功能。
蛙每呼吸一次,下巴都要升和降一次,因此通过用针钩住下巴的大颌舌骨肌和皮肤,通过记录大颌舌骨肌的收缩频率和幅度来间接测量青蛙的呼吸状况。
青蛙除了用肺呼吸,还以皮肤辅助呼吸。
为此,我们设计了间接的方法来测定蛙呼吸曲线。
1 材料与方法1.1实验动物:青蛙1.2实验仪器:常用手术器械,生理信号采集系统,张力传感器(10g),支架,棉,针灸针1.3实验试剂:氨基酸乙酯1.4方法1.4.1实验仪器用品的针刺穿下巴的正中央并弯曲钩住大颌舌骨肌,在另一端穿线,面线的另一端连准备选一根针灸用的接张力传感器。
将青蛙翻过来,以腹部向上,用胶布固定青蛙。
将张力传感器连接到输入端口。
随着蛙呼吸的进行,拉动棉线1.4.2计算机采集系统的准备开通与张力传感器相连的通道,选择张力信号输入,然后启动波形显示图标。
随着蛙的呼吸拉动棉线,开始记录呼吸曲线。
记录蛙的正常呼吸曲线。
1.4.3记录正常呼吸曲线,然后加蒸馏水湿润青蛙皮肤,记录呼吸曲线。
1.4.4记录正常呼吸曲线,然后用台灯照射烘烤青蛙,使蛙的皮肤变干,体温升高,记录呼吸曲线。
1.4.5测量低温及低体温时蛙的呼吸曲线。
记录正常呼吸曲线,在皮肤上加大量冰块,观察蛙的呼吸变化,记录呼吸曲线。
1.4.6将青蛙放到冰箱里冰冻15分钟后拿出来解冻,然后测量低体温时蛙呼吸曲线。
测量记录在蛙体温逐渐上升过程中呼吸的变化状况。
动物生理学实验设计一、引言动物生理学是研究动物体内各种生理过程的科学。
通过实验设计和实验研究,可以深入了解动物的生理机制和调节方式。
本文将介绍一种基于动物生理学的实验设计。
二、背景动物生理学实验设计旨在探究动物体内的生理过程,如呼吸、循环、消化、排泄等。
通过实验观察和测量,可以获得有关这些生理过程的数据,并进一步分析和解释其机制。
三、实验目的本实验旨在研究动物的呼吸过程。
通过测量动物在不同条件下的呼吸频率和氧气摄入量,探究动物呼吸过程的调节机制。
四、实验材料和方法实验材料:- 实验动物(如小鼠、大鼠等)- 氧气供应装置- 呼吸频率计- 氧气浓度检测仪实验方法:1. 将实验动物置于实验箱中,保持其舒适并适应环境。
2. 测量动物的基础呼吸频率和氧气摄入量,作为对照组。
3. 提供不同浓度的氧气供应给动物,并记录其呼吸频率和氧气摄入量。
4. 分析实验数据,比较不同条件下的呼吸频率和氧气摄入量的变化。
五、预期结果预计在提供高浓度氧气时,动物的呼吸频率和氧气摄入量会增加,而在提供低浓度氧气时,呼吸频率和氧气摄入量会减少。
这表明动物的呼吸过程受到氧气浓度的调节。
六、讨论根据实验结果,可以推测动物的呼吸过程受到氧气浓度的调节。
当氧气浓度较低时,动物会通过增加呼吸频率和氧气摄入量来弥补氧气不足。
而当氧气浓度较高时,动物会减少呼吸频率和氧气摄入量,以避免过量的氧气摄入。
七、实验意义该实验设计有助于深入了解动物的呼吸过程及其调节机制。
同时,通过实验数据的分析和解释,可以为相关领域的研究提供参考和依据。
八、结论通过本实验设计,我们可以初步了解动物呼吸过程受到氧气浓度的调节。
然而,该实验仅作为初步研究,仍需进一步探索和验证相关机制。
九、致谢感谢参与本实验的动物提供者和实验技术支持人员的辛勤工作和付出。
十、参考文献[1] Smith A, et al. The regulation of animal respiration. J Physiol. 20XX;XXX(X):XXX-XXX.十一、附录实验数据表格及图表等详细数据见附录。
植物生理学设计性实验生长素和细胞分裂素诱导植物不定根发生作用的比较---以IAA和6-BA为例的研究一、实验目的1.了解植物激素的生理作用;2.开展植物生长素和细胞分裂素对植物不定根发生作用的研究;3.学习植物材料的培养方法;4.比较IAA和6-BA对于植物不定根发生的作用;5.培养实验者的实验设计和协作能力。
二、实验原理植物生长物质是一些调节植物生长发育的物质。
可分为两类:植物激素和植物生长调节剂。
植物激素:在植物体内合成,并从产生之处运送到别处,对生长发育产生显著作用的微量(<1μmol/L)有机物。
植物生长调节剂:具有植物激素活性的人工合成物质。
类型:生长素、细胞分裂素、赤霉素、ABA、乙烯等(一)生长素的生理效应促进作用:促进黄瓜、南瓜雌花增加,单性结实,子房壁生长,细胞分裂,维管束分化,光合产物分配、叶片扩大,茎伸长,偏上性生长,乙烯产生,叶片脱落,形成层性活,伤口愈合,不定根形成,种子发芽,侧根形成,根瘤形成,种子和果实生长,坐果,顶端优势。
抑制作用:抑制花朵脱落、侧枝生长,块根形成,叶片衰老(二)细胞分裂素生理作用促进作用:促进细胞分裂,细胞膨大,地上部分化,侧芽生长,叶片扩大,叶绿体发育,养分移动,气孔张开,伤口愈合,种子萌发,形成层活动,根瘤形成果实生长,某些植物坐果。
抑制作用:抑制不定根形成和侧根形成,延缓叶片衰老应用:果蔬保鲜,组织培养,提高坐果。
IAA是Indole-3-acetic acid的简称,化学名称为为吲哚乙酸,生物学名称为生长素,是一种天然植物激素。
6-BA是人工合成的细胞分裂素,的主要作用是促进芽的形成,也可以诱导愈伤组织发生。
三、实验材料与试剂1.材料:长出第一片三出复叶的绿豆幼苗若干;2.试剂:IAA母液、6-BA母液,一般为0.5-1.0mg/L;3.仪器及器材:植物培养箱、200ml容量瓶、烧杯或一次性饮水杯、保鲜膜、自封塑料袋、滴管、移液管;四、实验步骤1、选取生长状况基本一致的三出复叶的绿豆幼苗120株,在子叶下方2-3cm处切去根部,再用蒸馏水仔细冲洗幼苗叶片后置于蒸馏水中备用; 2、据表1、2配置营养储备液和1/4完全培养液; 3、配置激素母液(0.5-1mg/L );(生长素类物质先用少量95%酒精助溶,再用水定容;细胞分裂素类物质先用0.5mol/LNAOH 溶液助溶,再用水定容); 4、用1/4完全营养液配置不同浓度的激素:IAA (1、0.1、0.01、0.001、0.0001、0.00001mg/L );6-BA (1、0.1、0.01、0.001、0.0001、0.00001mg/L ),各200mL 。
浅谈动物生理学综合设计性实验的创新实践
动物生理学综合设计性实验是创新实践的重要方面
它要求学生综合运用经典理论、实验方法以及信息处理技术的基本知识,以及运用一定的逻辑分析和思维分析技巧,加强动物生理学研究技术方面的实践与实践的能力。
一般来说,综合设计的实验,应以探讨观察对象的某一方面作为实验对象,利用假设,从比较不同条件下的实验数据中把握实验设计、实验过程和结果分析之间的关系,以确保实验结果正确可靠。
实验过程中,学生需要使用完整的理论和知识,不断试探和思考,通过综合设计、假设、实验与实验,调查具体环节过程,最终得出结论。
除了要求学生具有较强的理论基础外,针对综合设计性实验的创新实践,还应注重激发学生的创新思维,培养他们在实践中发现
问题,解决问题的能力,以提高教学效果。
因此,在动物生理学的实验训练中,要注重注重对学生思想的引导和学习心理探索,提醒学生在实践中总结重要观察分析结果,加深学习体会,开拓创新。
另外,综合设计性实验的教学还应加强相关教学资源搭建,提供学生有关技术材料,为学生展示实验目的、仪器操作方法等,帮助学生理解实验的具体内容,同时丰富学习内容,提高学习效析。
总而言之,动物生理学综合设计性实验是创新实践的重要组成部分
教师和学生要注重探究式实践,从实践中发现问题,并在实践中充分发挥创新思维,探索新的知识,以提高教学效果。
⽣理学期末设计性实验终稿研究不同因⼦对肠道平滑肌⽣理特性的影响实验⼀实验原理取离体兔肠段置于台⽒液中,⽤计算机采集系统扫描其收缩曲线,假如滴加不同的因⼦,观察他们对于离体肠段平滑肌收缩的影响。
通过这种观察,学习离体肠段平滑肌的实验⽅法,分析酸和碱环境下以及不同中药试剂下消化管的收缩作⽤。
⼆、试剂配制1000ml 台⽒液:NaCl 8.0g 、 KCl 0.2g 、10% MgCl 2 0.1g NaH 2PO 2 0.05g 、NaHCO 3 1.0g 、 CaCL 2 0.2g 、葡萄糖 1.0g 。
蒸馏⽔加⾄1000ml 。
配制Ph 分别为6.0,7.0,8.0的试剂,以盐酸和氢氧化钠为原料。
并且分别准备好10ml 的王⽼吉,菊花茶,凉茶王,藿⾹正⽓⽔。
三、材料与器材家兔两只计算机BL-310⽣物机能系统、HU-I 型⼒换能器、麦⽒浴⽫、恒温⽔浴锅、温度计、⼿术器械、注射器、缝针、⼤⼩烧杯、滴管、丝线。
四、实验步骤1.如右图装好实验装置,麦⽒浴槽外的⽔浴温度为37℃,浴槽内调温⾄37±0.5℃.2.制备离体兔肠段兔⽿缘静脉注射乌拉坦,致其昏迷后⽴即剖开腹腔,找到胃幽门与⼗⼆指肠交界处。
在⼗⼆指肠起始端扎⼀线,剪取⼗⼆指肠、空肠,放⼊冷台⽒液内。
先⽤20m1注射器冲洗肠内容物,冲洗⼲净后剪成若⼲约1.5cm长的⼩肠段(每⼀实验⼩组⼀段)。
在其两端结扎,⼀端做⼀短线环固定在通⽓的L管下⽅或浴⽫内,另⼀端扎线与张⼒传感器相连。
将肠段完全浸浴在调好温度的麦⽒浴槽中,并调整好台⽒液充⽓量(⼩⽓泡接连不断)。
游离及取出肠段时,动作要快,取兔肠及兔肠穿线时,尽可能不⽤⾦属及⼿指触及。
为保持离体肠段的活性,可先预冷充氧的营养液,游离肠段及穿线在预冷的营养液中进⾏。
3.开启计算机采集系统,接通与张⼒传感器相连的通道。
固定L管并调节扎线与张⼒传感器,使肠段运动⾃如⼜能牵动传感器(注意:扎线不可贴壁或过紧过松)。
几种有刺激性的蔬菜提取液对离体蟾蜍心脏活动的影响一、实验目的1.学习Straub氏法灌流蟾蜍离体心脏方法2.了解心肌的生理特性及蔬菜提取液的制法3.观察洋葱、辣椒等有刺激性蔬菜的提取液对心脏活动的影响。
二、实验原理作为蛙心起搏点的静脉窦能按一定节律自动产生兴奋,因此,只要将离体的蛙心保持在适宜的环境中,在一定时间内仍能产生节律性兴奋和收缩活动。
心脏正常的节律性活动需要一个适宜的理化环境,离体心脏也是如此。
离体心脏用理化性质近似于血浆的生理溶液(任氏液)进行灌流,以保持其新陈代谢顺利进行,这种节律性可维持较长时间。
离体心脏脱离了机体的神经支配和全身体液因素的直接影响,可以通过改变灌流液的某些成分,观察其对心脏活动的作用。
三、实验材料牛蛙;RM6240BD微机生物信号处理系统,张力换能器;离心机;5ml离心管8支,蛙心套管(straub),常用手术器械,蛙板或蜡盘,蛙心夹,滴管4支, 10ml小烧杯10个,100ml大烧杯1个,细线,任氏液,新鲜蔬菜(洋葱、辣椒、大蒜、生姜),蒸馏水,纱布。
四、实验步骤1. 蔬菜提取液的制备本实验选用有刺激性蔬菜4种: 洋葱、辣椒、大蒜、生姜。
蔬菜用冷水冲净, 各称取50克(根据蔬菜含水量适当增减)。
切碎挤压出菜汁,分别取菜汁5ml于离心管中,在O~ 4 ℃、3000 r p m离心15min 后, 分别吸3ml上清液于已标记好的4只小烧杯中备用。
2.仪器连接和参数设置张力换能器输出线接微机生物信号处理系统第1通道(亦可选择其它通道),微机生物信号处理系统参数设置:RM6240系统:点击“实验”菜单,选择“生理科学实验中”的“蛙心灌流”项目。
系统进入该实验信号记录状态。
仪器参数:通道时间常数为直流,滤波频率10Hz,灵敏度3g,采样频率400Hz,扫描速度 1s/div。
3.离体蛙心制备(1)取蟾蜍一只,破坏脑和脊髓后,仰卧固定在蛙板上,从剑突下将胸部皮肤向上剪开,然后剪掉胸骨,打开心包,暴露心脏,分离左、右主动脉。
不同pH值对牛蛙离体心脏收缩活动的影响2008231144 赖泽红生科一班摘要:本实验主要是采用斯氏蛙心插管法,在保持灌流液高度恒定的情况下,分别以不同pH值的溶液对牛蛙离体心脏进行灌流,经张力换能器、RM6240D型生物信号采集处理系统与处理系统记录心肌的活动过程,探讨不同pH对离体心脏活动的影响,以揭示酸碱度与心脏收缩活动的关系。
关键词:pH值;离体心脏;收缩活动生理状态下,血液pH值保持在7.35—7.45,这是保证细胞惊醒正常代谢和机能活动的基本条件。
在生命活动的过程中,体内不断生成酸性或碱性产物,机体通过多方面的调解活动,使血液pH值保持在正常范围内。
然而,一旦机体酸碱调节失衡,会导致体内酸中毒或碱中毒,对机体造成影响。
心脏直接与血液接触,心肌细胞的收缩活动容易受血液pH值的影响。
本实验通过用不同PH值的灌流液灌流牛蛙离体心脏,观察其对心脏某些功能的影响,以揭示酸碱度与心脏收缩活动的关系,用离体牛蛙心脏,排除了在体时的神经体液干扰,故实验结果更为可靠。
一、实验材料:1、实验仪器:RM6240D型生物信号采集处理系统、张力换能器、pH酸度计。
2、常用器械:蛙板或蜡盘,蛙心夹、蛙心套管,滴管,培养皿或小烧杯,玻璃板、容量瓶,移液管、量筒、污物缸,纱布,棉线,常用手术器械。
3、药品:任氏液, HCL溶液,NaOH溶液。
4、实验动物:牛蛙2-4只(雌雄不限)。
二、实验步骤与方法1、药品配制(1)任氏液配制母液及容量成分 NaCl、 KCl 、CaCl2 、NaH2PO4 、NaHCO3 、葡萄糖、蒸馏水,注: 表内各成分除葡萄糖以 g 为单位外,均以 ml 为单位. 任氏液的配制方法:一般先将各成分分别配制成一定浓度的母液,而后按所要的容量混合。
需要注意的是:CaCl2 应在其他母液混合并加入蒸馏水后,再边搅拌边加入,以防钙盐生成。
另外,葡萄糖应在用前临时加入,否则不宜久置。
两栖类的为PH6.5-7.0 (2)不同PH浓度的任氏液配制。
不同PH值灌流液的配制。
首先,校整酸度计。
先将酸度计“PH-mv”开关拨到位置。
打开电源开关,指示灯亮,预热30分钟。
取下放蒸馏水的小烧杯,并用滤纸轻轻地吸去玻璃电极上多余水珠,在小烧杯内放入选择好的已知的PH值准确的缓冲溶液。
将电极浸入。
根据标准缓冲液的PH,将量程开关拧到 0~7 或 7~14 处。
调节控温钮指示的温度与室温相同,调节零点,使指针在PH为7.0处。
轻轻按下或稍许转动读数开关使开关卡住。
调节定位旋钮,使指针恰好指在标准缓冲溶液的PH值处。
放开读数开关,重复操作,直到数值稳定为止。
校整后,切勿再旋动定位旋钮,否则需要重新校整。
取下标准液小烧杯,用蒸馏水冲洗电极10。
其次,配制不同PH值的任氏液。
将电极上多余的水珠吸干或用被测溶液冲洗二次,然后将电极浸入被测溶液中,并轻轻转动小烧杯,使溶液均匀接触电极。
校整零位,按下读数开关,指针所指的数值即是待测溶液的PH值,若在量程PH值在 0~7 的范围内测量时指针读数超过刻度,则应该将量程开关置PH值在 7~14 处再测量。
测量完毕,放开读数开关后,指针必须指在PH值处,否则重新调整。
关闭电源,冲洗电极,并按照前述方法浸泡。
第三,将配制好的任氏液用酸度计精确标定PH值分别为 4.0, 5.0, 6.0,7.0,8.0,9.0等值梯度,密封于瓶内。
(3)离体心脏的制备动物离体处理将牛蛙双毁髓后,背位置于蛙板上,暴露心脏,仔细识别心脏左右的大血管。
找准左主动脉,并将其挑起下方穿一线,并在动脉圆锥处结扎,接着左手轻轻提起主动脉上的结扎线,挑起左右主动脉,并于左右主动脉下方穿一线,打一个活结备用,左手提起主动脉上的结扎线,右手用手术剪在动脉圆锥附近沿蛙心方向将动脉上壁剪一个小的斜口,选择大小适宜的蛙心套管,然后将盛有少量套管内 2-3 ㎝高度任氏液的斯氏蛙心套管(为了防血液凝固,堵塞套管细口部,可加少许柠檬酸钠),由开口处插入动脉圆锥。
当套管内尖端到达动脉圆锥基部时,应将套管稍稍后退,使尖端向动脉圆锥的背部后下方及心尖方向推进,经主动脉瓣插入心室腔内(于心室收缩时插入,但不可插得过深以免心室壁堵住套管下口),此时可见套管中血液冲入套管,并使液面随心脏搏动而上下移动,表明操作成功否则需退回并重新插入。
将原来准备的活结系紧,用滴管吸去套管中的血液,更换新鲜任氏液。
稳定住套管后轻轻提起备用线,将左、右主动脉,连同插入的套管用双结扎紧(不得漏液),用任氏液反复冲洗心室内余血(动作要快,不然有可能少量的血液凝固,堵住蛙心管细口),使套管灌流液不再有残留血液。
看清静脉的位置,于静脉窦下方剪断有牵连的组织,仅保留静脉窦与心脏的联系,使心脏离体(切勿损伤静脉窦)。
保持套管内液面高度一致(1.5~2 ㎝)。
(4)仪器准备:打开RM6240生物信号采集与处理系统(多道生理信号采集处理系统要先预热二十分钟),接通张力换能器输入通道。
从显示器的“设置”菜单,弹出“设计实验标记”对话框,选择“蛙心灌流”后,再从“实验项目”的“循环实验”中,选定“蛙心灌流”实验,系统进入该实验信号记录状态。
(5)将蛙心插管固定在铁支架上,用蛙心夹在心室舒张期夹住心尖,并将蛙心夹的线头连至张力换能器的应变梁上,插管内加任氏液2ml,并在插管上标记灌流的高度,在此后的实验过程中,灌流液恒定于2ml。
(千万不要夹破心脏,连接的过程中注意力量要恰当。
力过大,易拉破心脏或拉断线;力过小,张力传感器不能接受信号)(6)灌流牛蛙离体心脏:在蛙心套管 1/2 处做一标记,用任氏液将斯氏蛙心套管内血液清洗干净后,加任氏液至标记处,记录蛙心搏曲线,待心搏稳定后,记录正常蛙心搏曲线,然后更换溶液,在蛙心套管中滴加与任氏液同样液面的PH值不同的任氏液(先滴加与牛蛙正常体液相差不大的值的灌流液),并观察记录心搏曲线,待心搏出现反应后,暂停记录并快速用25℃任氏液清洗蛙心 3 次以上,然后再观察记录心搏恢复情况。
每种浓度的溶液分别在 3 只蛙心上进行重复试验。
(7)观察指标,描记心动曲线,记录心室搏动频率心率和心脏舒张状态,运用用 DPS 软件进行数据处理和数据分析。
2、实验方法1)在蛙心套管中添加2ML任氏液,标记好液面,观察心搏变化,待曲线走了一段后,保存稳定正常的曲线。
2)吸去套管中的任氏液,用已配制好的pH值为6的溶液2ml灌流离体牛蛙心脏,观察心搏变化。
待曲线出现明显变化时,立即吸取套管中的灌流液,并用新鲜任氏液清洗2到3次,待心搏回复正常。
(换液时注意不要碰到套管,以免影响描记曲线的基线)。
(3)吸去套管中的任氏液,用pH值为5的溶液2ml灌流离体心脏,观察心搏曲线的频率和振幅变化,当曲线出现明显变化时,立即吸去套管中的灌流液,迅速用新鲜任氏液清洗2到3次,待心搏回复正常。
(4)同法向套管内加入pH值为4的溶液2ml,观察并记录心搏曲线的变化。
当出现明显的变化时,立即更换任氏液,待心搏回复正常(如果恢复迟缓,可多次冲洗)。
(5)同法记录套管中分别加入pH值为8、9、10的灌流液2ml 后心搏曲线的变化。
三、试验结果:见后面页。
四、试验结果分析实验结果描述:心脏舒张状态用PH为 4.0 的灌流液灌流时,心脏完全舒张。
以后随着灌流液的PH的不断升高,当心肌收缩性逐渐增强,为PH=9.0时心脏呈痉孪性收缩状态,而当用PH为5.0-6.0的灌流液灌流时,心脏的心搏曲线变化不明显,心率变化不显著,因此可以说强酸强碱对心脏的活动有显著影响。
如图:当用PH为7.0的任氏液灌流时,心搏曲线与正常时的心搏曲线一样。
只是通过观察可发现,蛙的搏动减慢,但是变化不大。
而在整个过程中,通过心搏曲线可观察到心肌收缩幅度没有明显变化,这说明心脏功能正常,心肌收缩能力未受到影响。
但是通过数据处理软件,处理后获得的结果显示,正常的蛙心搏动曲线与PH为7.0时的心搏曲线有显著的差异。
我认为,可能是实验操作的误差,可能是配制的溶液的PH浓度存在误差。
如图:当添加PH为6.0时,心搏曲线与正常情况相比较变得很不稳定,具体情况是心率减慢,但是心率变化不大。
但是在整个过程中,心肌收缩幅度没有明显变化。
说明心脏功能正常,心肌收缩能力未受到影响。
另外经过T检验分析后,PH为6.0与正常情况有明显差别,原因可能是由于心肌活力受损,所以曲线不稳定,也可能是在实验过程中清洗不干净,或受到振荡,影响了实验结果。
如图:当添加PH为5.0的灌流液时,由于心脏受到一定程度的损伤,表现出心率减慢,收缩幅度下降的情况,但仍可以对比出,PH 为6.0的灌流液使当蛙心率明显下降,心肌收缩幅度也相应的减小,说明心肌的收缩力减弱。
如图:当添加PH为4.0的灌流液时,虽然正常情况下,由于心脏的损伤,蛙心率减慢,收缩幅度降低,但是仍可以明显的观察到,蛙心脏的心率极其明显的下降,收缩幅度也明显缩短,正如T检验结果所示,正常情况与PH为4.0的情况有极显著的差异。
如图:当添加PH为8.0时,由于在强酸的作用下,心脏表现出明显的衰弱现象,但是添加了PH为8.0的灌流液后,心率反而增加,收缩峰值也增加。
与正常时相比心率也增加了,收缩性也加强了,是整个实验中心率最高的点。
如图:当添加PH为9.0时,与正常情况相比较,心率下降,收缩幅度变小,但是变化不明显。
四、实验中的注意事项1.制备离体心脏标本时,勿伤及静脉窦。
2.蛙心夹应在心室舒张期一次性夹住心尖,避免因夹伤心脏而导致漏液。
3.每一观察项目都应先描记一段正常曲线,然后再加药并记录其效应。
加药时应在心跳曲线上予以标记,以便观察分析。
4.各种滴管应分开,不可混用。
5.在实验过程中,插管内灌流液面高度应保持恒定;仪器的各种参数一经调好,应不再变动。
6.给药后若效果不明显,可再适量滴加,并密切注意药物剂量添加后的实验结果。
给药量必须适度,加药出现变化后,就应立即更换任氏液,否则会造成不可挽回的后果,尤其是K+,H+稍有过量,即可导致难以恢复的心脏停跳。
7.标本制备好后,若心脏功能状态不好(不搏动),可向插管内滴加1~2滴2%CaCl2或1:10000肾上腺素,以促进(起动)心脏搏动。
在实验程序安排上也可考虑促进和抑制心脏搏动的药物交换使用。
8.谨防灌流液沿丝线流入张力传感器内而损坏其电子元件。
七、实验中遇到的问题与解释在此次实验中,总共解剖了四只蛙,但有三只解剖后,心脏活性差,现试做出以下解释:1.插管插入后,管中的液面不能随心脏搏动而波动,或波动幅度不大,影响结果的观察。
(1) 插管插到了主动脉的螺旋瓣中,未进入心室。
(2)插管插到了主动脉壁肌肉和结缔组织的夹层中。
(3)插管尖端抵触到心室壁。
(4)插管尖端被血凝块堵塞。
2.插管后,心脏不跳动。
(1)心室或静脉窦受损。