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1. 挑取INVScI单菌落于5 mL YPAD培养基的试管中，30℃振荡（约250 rpm)培养过夜，OD600为1-2，取2 mL转入30 mL YPAD的50 mL的三角瓶中，30℃振荡（约250 rpm）孵育直至OD600为0.6（注：高培养密度会导致转化率下降）。
2. 4℃下1500×g离心10 min收集细胞。
3. 用1×TE Buffer ( pH 7.4) 冲洗细胞一次。
4. 用含200 mMLiAc 10-15 mL 的1×TE Buffer 9（无菌）重悬细胞，室温下放置10分钟。
5. 2500g离心收集细胞弃上清。
6. 用含200 mMLiAc的0.5 mL 1×TE Buffer(无菌)重悬细胞，用于转化。
7. 每次转化用上述制备好的感受态细胞溶液100μL。
8. 在含有100μL感受态细胞的离心管中，加入1μg待转化质粒DNA和100μg变性鲑鱼精DNA(salmon sperm DNA)。
9. 加入700μL的1XLiAc/40% PEG-3350/1XTE，彻底混匀。
10. 30℃孵育溶液30 min。
11. 加入88μL的二甲基DMSO，混匀，42℃热激7 min。
12. 高速离心10s，收集细胞。
13. 1mM 1× TE重新悬浮，再次离心，去除上清。
14. 重新加入50-100μL1×TE，混匀，均匀涂抹在筛选平板上。
15. 30℃生长2-3d，观察结果。
电转法设计方案一:感受态制备：1 .挑一环酵母菌接种于5mLYEPD培养基中，30C、250-300rpm培养过夜；2 .取1mL一级种子分别接种于两瓶50mLYEPD培养基中，30C、250-300rpm培养约16-18h（OD:1.3-1.5）;3 .于4c离心收集菌体，用25mL冰无菌水洗涤一次后，细胞用10ml冰无菌水重悬，可换成较小的离心管；4 .加入1ml,pH7.5,10灯E缓冲液，摇晃均匀，再加入1ml10*iAc,旋转摇匀，于30度轻轻摇动45min；5 .再加入0.4ml1mol/LDTT,并同时旋转摇动，于30度轻轻摇动15min；6 .于4c离心，弃上清（用枪吸），再用25mL冰无菌水洗涤；7 .2.5ml冰冷的1mol/L山梨醇洗涤，离心收集菌体，弃上清（用枪吸）；8 .每管用100ul山梨醇溶解，分装于EP管中（80ul/管），于-70C冰箱保存。
电转化：1 .向感受态细胞中加入约5〜10ug（体积小于10ul）的DNA,用枪吹吸均匀，转移至预冷的电转杯中，静置5min；2 .擦干电转杯，电击，电击参数：1.5KV,25uF,200欧姆；3 .立即加入1ml预冷的山梨醇，转移至EP管中，于30c静置1h;4 .离心，弃上清，加入1mLYEPD后，于30C、200rpm培养2h;5 .离心得菌体后，吸除550ul上清液，然后按150ul版进行涂板。
说明：该方法可直接采用50或100mL体系的一步法，即直接挑单菌落于YEPD中培养至预定菌浓，也可采用试管摇菌收集菌体制备感受态。
设计方案二：感受态制备：1 .挑一环酵母菌接种于5mLYEPD培养基中，30C、250-300rpm培养过夜；2 .取1mL一级种子分别接种于两瓶50mLYEPD培养基中，30C、250-300rpm培养约16-18h（OD:1.3-1.5）;3 .于4C,5000rpm,5min离心收集菌体，用25mL冰无菌水洗涤后，细胞重悬于8ml处理液中（处理液配方：100mMLiAc,10mMDTT,0.6M山梨醇，10mMTris-HCl,pH7.5）,室温静置30min;4 .4C,5000rpm,5min离心收集菌体，用1.5mL1mol/L预冷的山梨醇洗涤三次，离心条件一样；5 .每管用100ul山梨醇溶解（以黄枪头能吸取为宜，菌浓低时可适量少加入山梨醇），最后以80ul的终体积转移至EP管中（菌体太多可适当放弃部分），置于-70C冰箱保存。
酵母是如何做成粉剂的原理酵母是一种微生物，以其在食品加工和发酵过程中的重要作用而闻名。
酵母常见的形态有酵母细胞（单细胞）和酵母菌团（聚集细胞）。
酵母菌主要是通过生长、培养和分离等步骤制备成粉剂。
下面将详细阐述酵母制备成粉剂的原理。
首先，酵母的生长主要依赖营养物质，如碳源、氮源、矿物盐和维生素等。
在培养过程中，人们通常选择适当的培养基，提供充足的营养物质，促进酵母的繁殖和生长。
常用的培养基包括琼脂糖、葡萄糖、酪蛋白胨和酵母粉等。
酵母菌在最适宜的温度、pH值和氧气条件下培养，通过无限增殖和分裂，形成可见的酵母悬浮液。
其次，酵母菌团的形成是酵母制备成粉剂的关键步骤。
当酵母悬浮液培养到一定浓度时，可以采取离心分离或超滤等方法将酵母细胞从悬浮液中分离出来。
然后，采用适当的方法，如液-液接触、搅拌、吹膜等，使酵母细胞相互接触和聚集形成酵母菌团。
酵母菌团比酵母细胞更易于干燥和保存，所以将酵母制备成粉剂的过程中主要是转化为酵母菌团。
然后，酵母菌团经过适当的处理和处理，可将其转化为酵母粉。
处理过程中常见的方法有冷冻干燥、热风干燥、喷雾干燥和真空干燥等。
在干燥过程中，酵母菌团中水分逐渐蒸发，菌团中的酵母细胞逐渐死亡。
在适当的时间和温度条件下，酵母菌团完全干燥后，形成了酵母粉。
最后，酵母粉通常被加入食品加工中。
酵母粉在加工过程中可以发酵并产生二氧化碳和乙醇等物质，促进食品的膨松和美味。
此外，酵母粉还可以在食品加工过程中提供植物蛋白、增加营养成分、改善食品口感和延长保质期等。
总的来说，酵母制备成粉剂的原理主要包括：1）提供适宜的培养基和条件，促进酵母的繁殖和生长；2）将酵母悬浮液中的酵母细胞分离并聚集形成酵母菌团；3）对酵母菌团进行适当的处理和干燥，转化为酵母粉；4）将酵母粉应用于食品加工中，发挥其发酵和促进作用。
酵母粉作为食品和饮料加工中的常见原料，被广泛应用于面包、饼干、啤酒、葡萄酒、酸奶等产品中，为食品产业的发展和食品质量的提高做出了重要贡献。
酵母转化试剂盒使用说明书（第二版）储存条件：Carrier DNA-20℃保存，其它组分可室温保存，有效期1年。
产品内容：Components SK2400-200PEG Solution50mlLiAc Solution50mlCarrier DNA2×1ml说明书1份酵母感受态细胞的制备：1.活化菌种。
-80℃保存的菌种在固体YPDA培养基（YPDA加20g Agar/L）上划线，在30℃培养2-4天。
2.挑取酵母单菌落在固体YPDA培养基上划3-5mm的短线，在30℃培养2-4天。
待酵母单菌落长至2mm长时，接种。
3.首先把酵母细胞接种到3ml液体YPDA培养基中，30℃过夜培养。
4.第二天转接到含有30ml液体YPDA培养基的三角瓶中继续培养，待OD600到0.4-0.5范围内。
收集细胞，1000g，离心5min,去上清。
5.沉淀用30-50ml的无菌的去离子水悬浮。
1000g，离心5min，去上清。
6.沉淀用合适体积的1/10浓度的LiAc悬浮（30ml的酵母菌最多用不超过1mL的1/10浓度的LiAc悬浮，通常100μl的酵母细胞用于转化一个质粒，即一个反应）。
1/10浓度的LiAc稀释方法：100μl LiAc Solution+900μl无菌水。
7.把酵母细胞的悬浮液分装到1.5ml的离心管中，每管分装100μl，用于转化一个质粒即一个反应。
1000g，离心5min，去上清。
制备好的感受态细胞备用。
酵母转化：1.配制预混液，每转化一个质粒即一个反应需要360μl的预混液。
PEG Solution240μlLiAc Solution36μlCarrier DNA10μl质粒（大约200ng/μl）5μl（根据质粒的浓度加入相应的体积）总体积360μl（不足体积用ddH2O补充）2.吸取360μl的预混液加入到感受态细胞中，用枪头反复吹吸沉淀，使离心管底的酵母细胞彻底地悬浮在含有PEG的预混液中。
酵母转化的原理
酵母转化指的是酵母菌体内发生的一系列生化反应，将底物转化为产物的过程。
其原理是酵母菌体内的酶作用下，将底物分解为较小的分子或化合物，进而合成新的产物。
酵母转化的具体过程包括底物的吸附、底物与酵母酶的结合、催化反应、产物的释放等。
其中，底物吸附与酵母酶的结合是酵母转化的第一步，在这一步中，底物需要与酵母酶发生亲和作用，才能进一步发生催化反应。
催化反应是酵母转化的核心步骤，酵母酶将底物分解为较小的分子或化合物，从而形成新的产物。
催化反应的速度受到多种因素的影响，如底物浓度、酵母酶浓度、反应温度、反应pH等。
在酵母转化的过程中，产物的释放同样是十分关键的一步。
产物必须及时地从酵母菌体中释放出来，以避免在酵母菌体内积累过多的产物，影响酵母菌体的生长和发育。
总之，酵母转化是一种复杂的生化过程，是酵母菌体内多种酶协同作用的结果。
了解酵母转化的原理，对于优化酵母发酵、提高发酵产物的质量和产量等方面具有重要的作用。
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酵母实验操作方案一．质粒酶切及线性化1）用维特洁日常型小量DNA纯化试剂盒抽提9KSF2，可得到较纯的质粒10μg/3ml菌液，终体积80ul。
2）线性化质粒使用80μl酶切体系9KSF2质粒70μl内切酶（SacI，SalI，BglⅡ）2μl10 x buffer 8μl3）酶切3－16小时，一般3小时即可；二．乙醇回收酶切质粒1）2倍体积无水乙醇和0.1倍体积的3M NaAC（PH 5.2），混匀，沉淀DNA；2）－200C数个小时（>2小时），13,200rpm离心10～20分钟，吸弃上清；3）300ul 70％乙醇洗一次，13,200rpm离心10分钟，吸弃上清（注意离心管位置，从含有DNA的离心管另一侧吸取）；4）37℃烘干水分和残留乙醇；5）用20μl ddH2O重溶；6）1ul样品电泳检测DNA量，计算DNA总量；三．电转化1．准备感受态细胞1）5ml YPD 接种GS115单菌落，250rpm，300C，摇菌24 hours；2）100ml YPD，接种百分之一，同时留1ml空白YPD，300C ，250rpm，7～8hours，直到OD600＝1.3～1.5；3）菌液转入500ml离心管，JA14，1500g，40C离心5 min，弃上清；4）100ml冰水重悬，同上离心，弃上清；5）80～90ml冰水重悬【50ml】，同上离心，弃上清；6）20ml冰1M sorbitol 重悬【5ml】，然后转移到50ml 离心管中，同上离心，弃上清；7）约150μl 1M sorbitol重悬【250ul】，40C备用，剩下的感受态细胞可以保存在－700C冰箱大约3周。
2．转化1)100μl GS115感受态细胞加入＋20μl 线性化质粒，用枪打匀；2)冰浴5min，加入0.2cm转化杯中，轻轻将液体震到杯底，立即冰浴；3) 电转化，参数设定：电压1500V 电容25μF电阻200欧姆，放电时间4～5ms4)立即加650μl 冰1M sorbitol 入转化杯，打匀；5) 迅速涂板，250μl/块MD板，共3块；6) 涂好的板放在300C培养箱中培养4～5天，至菌落直径1mm即可。
酵母转化原理：Like Saccharomyces cerevisiae, linear DNA can generate stable transformants of Pichiapastoris via homologous recombination between the transforming DNA and regions of homology within the genome (Cregg et al., 1985; Cregg et al., 1989). Such integrants showextreme stability in the absence of selective pressure even whenpresent as multiple copies. Note that single crossover events(insertions) are much more likely to happen than double crossoverevents (replacements). Multiple insertion events occur spontaneously atabout 1-10% of the single insertion events.像酿酒酵母,线性化的转化DNA和Pichiapastoris基因组的同源区域发生同源重组,使得线性化DNA产生稳定的转化子(Cregg et al., 1985; Cregg etal.,1989).这样的整合方式显示极强的稳定性,即使多拷贝转化子在没有选择压力的情况下也很稳定.单交换事件(插入)比双交换事件(置换)发生几率更大.单插入事件中约发生1-10%概率的多插入事件.电转化注意点：一、制备感受态的菌液收集时间：1、准确测定OD值：OD在1.2～1.5之间。
1）为了准确测定OD值，建议将菌液稀释不同浓度测定（1、2、4、8、16倍稀释，看其OD值是否呈线性关系）。
酵母转化(一)原理：我们采用的是PEG/ LiAc法转化酵母。
PEG是一种高分子聚合物,只有分子量达到3000 左右的PEG才会发挥最大的转化促进作用。
本文使用的PEG分子量为3350 ,实验结果表明促转化效果可以达到103～105cfu/μg 。
PEG在酵母转化中起到在高浓度醋酸锂环境中保护细胞膜,减少醋酸锂对细胞膜结构的过渡损伤,同时促进质粒与细胞膜接触更紧密。
PEG的浓度是务必适宜,这一点很重要。
LiAc可使酵母细胞产生一种短暂的感受性状态,此时它们能够摄取外源性DNA 。
鲑鱼精担体DNA 为短的线形单链DNA ,在转化实验中主要是保护质粒免于被DNA 酶降解;另外还可能在酵母细胞摄取外源性环形质粒DNA 中发挥协助作用。
在每次使用前务必进行热变性,使可能结合的双链DNA 打开,保证鲑鱼精担体DNA在转化实验体系中以单链形式存在(二)材料、仪器设备及试剂：1.SD 培养基：●YNB： 1.6 g/L●硫酸铵：5g/L●氨基酸：根据质粒的筛选压力选择性添加●调节pH=5.8，121°灭菌15min2.YPDA培养基●胰蛋白胨20g/L●酵母浸膏10g/L●琼脂20g/L(固体)●腺嘌呤15ml 0.2% 腺嘌呤/ L●调节pH =7.5，121°灭菌15min3.0.9%NaCl（w/v）●NaCl: 0.9g●milipore水定容到100ml●灭菌121°，20min4.100%DMSO从试剂瓶中分装到ep管中，500ul每管，室温保存5.10×TE（pH=7.5）：（0.1M Tris-HCl，10mM EDTA）●Tris-HCl 1.211g/100ml●EDTA 0.37g/100ml●调节pH=7.5, 121°，20min6.10×LiAc（pH=7.5）●1M LiAc 10.202g/100ml●用醋酸调节pH=7.5，121°灭菌20min7. 1.1×TE/LiAc●Tris-HCl 11ml 10×LiAc（pH=7.5）/100ml●EDTA 11ml 10×EDTA （pH=7.5）/100ml●调节pH=7.5, 121°，20min8.50% PEG3350：●PEG3350：50g●已灭菌的milipore水：定容到100m●（可用50°水浴助溶，PEG易吸水，不可灭菌）9.PEG/LiAc：现配现用，在超净台中操作，吸取母液到ep管或50ml离心管中终浓度10mlPEG3350 40% 8ml 50%PEG3350TE buffer 1×1ml 10×TELiAc 1×1ml 10×LiAc10.变性的鲑鱼精DNA(10mg/ml)ipore水，70%酒精棉球，50ml离心管4个，ep管一盒，15ml试管架，50ml试管架，ep管架(三)具体方法：◆A：酵母感受态制备1.从平板上或保种管中，挑少许酵母，在YPDA平板上划单克隆，30°培养3天左右。
酵母转化（By HMM）
1.取50mL YPD液体培养基于100mL已灭菌的三角锥形瓶中，从中吸取1mL培养基于已灭菌的管，挑单克隆接种于1mL YPD培养基中，吹吸混匀（可再vortex继续混匀）后转移至50mL 的YPD液体培养基中，过夜培养约11h45min；
PS: 晚上21:15开始准备，21:30接种完毕开始摇菌。
（30℃ 250rpm）。
2.第二天早上9:15开始准备，取出1mL菌液用于测OD600，用1mL YPD培养基作为Blank. 9:30测完。
PS: a.要求OD600在至之间。
b.测完OD后打冰盒，将ssDNA置于冰上融化。
3.将菌液分装在2支50mL离心管（蓝色，无菌）中（锥形瓶留用），2500Xg常温离心5min.弃上清于之前的锥形瓶中，各用1mL灭菌ddH2O重悬转移至管中，共水洗两次，再各用1mL 灭菌ddH2O重悬后转移至同一个5mL无菌EP管中，吹吸混匀置于冰上。
PS：a.离心期间将灭菌水置于65℃烘箱中预热，将所需平板置于30℃培养箱中预热。
b.为避免菌液浓度差异，故将重悬后的菌液混匀，因重悬后体积大于2mL，因此转移至5mLEP管中，也可在2mL EP管中混匀后分装出一部分在一个管中。
4.待ssDNA溶化后根据所需量在无菌管中分装几管，各100uL（有助于煮沸后迅速冷却）。
PS: a. ssDNA要尽量多出一些，煮沸和转移过程中均有损失。
b.看ssDNA快融化时即可打开水浴锅，中频煮沸（800即可），煮沸ssDNA时用最低频120.
5.将ssDNA沸水浴5min, 然后迅速冰浴5min;
PS：a.重复沸水浴5min与冰浴5min可提高转化效率。
b.冰浴ssDNA时将50％PEG与1M LiOAc也置于冰上。
6.在超净台中配制mix，vortex混匀。
PS: 50 % PEG特别粘稠，在分装时容易损失，因此配制mix时要注意量要足够。
7.每支转化中分装300ul mix,100ul 酵母悬浮液。
PS:分装酵母悬浮液前要注意吹吸混匀。
8.加入plasmids，单转为; 双转为+. Vortex 1 min混匀。
9.42℃水浴45min.
10. 700Xg离心5 min，用枪头吸走上清，用% NaCl重悬菌液。
根据所需涂的平板个数确定重悬液的体积（可调整）。
1个平板：100uL重悬液：100uL涂板；
2个平板：150uL重悬液：75uL涂板；
3个平板：150uL重悬液：50uL涂板。
11.Parafilm膜封口，30℃培养3至4天。
PS：单转效率为：105. 培养基要稍厚一些，在实验台上冷却使其平板厚度均匀。
