微生物标本采集及保存要求

临床微⽣物标本的采集,储存和转运临床微⽣物标本的采集，储存和转运微⽣物检验的基本原则1.及时采集微⽣物标本作病原学检查2.在抗菌药物使⽤前采集标本3.采样时严格执⾏⽆菌操作4.采样后⽴即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使⽤消毒剂6.送检标本应注明来源和检验⽬的标本采集1.尽早采集2.⽆菌操作3. 合适部位4.适量标本5. 适当⽅法6. 安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗⽣素使⽤之前采集1.3对已⽤抗⽣素⼜不能停药者，可在下次⽤药前采集2-合适部位“背景⼲扰”2.1⽆菌标本:注意局部及周围⽪肤的消毒，严格进⾏⽆菌操作与外界相通的腔道:避开腔道⼝区标本，以免⽪肤表⾯正常菌群的污染，造成混淆和误诊。

2.2正常菌群寄⽣部位:采集时应特别⼩⼼;应明确检查的⽬的菌在进⾏分离培养时，采⽤特殊选择性培养基2.3⾎标本采集:应避免输液的影响。

3-⽆菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近⽪肤或粘膜常居菌群污染和防⽌外源性细菌污染标本。

3.1.在采集⾎液、脑脊液、胸腔积液、关节液等⽆菌标本时，应注意对局部及周围⽪肤的消毒，严格进⾏⽆菌操作;3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，⽽⾮从窦道⼝取标本，以免受⽪肤表⾯正常菌群的污染，造成混淆和误诊;3.3.采集的标本均应盛于⽆菌容器内送检。

盛装标本的容器须先经⾼压灭菌、煮沸、⼲热等物理⽅法灭菌，或使⽤⼀次性⽆菌容器，不能⽤消毒剂或酸类处理。

标本中也不得添加防腐剂，⼀⾯降低病原菌的分离率。

4-适量标本4.1标本采集应⾜量。

标本量过少，可能会导致假阴性结果。

4.1.1⾎液标本:通常成⼈采⾎量每瓶8-10ml,⼉童每瓶1-5ml;脑脊液、⾻髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本:≥1ml尿液标本: >3ml4.1.3粪标本: 1-3g或1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊:4.2.1痰、肺泡灌洗液或⽀⽓管冲洗液: >5ml;4.2.2清晨中段尿: 5-10ml;4.2.3粪标本: >1g;4.2.4穿刺液(胸⽔、腹⽔、关节液等) : 5- 10ml。

临床微生物标本的选择、采集、运送及保存要发挥实验室的有效作用，选择正确生理部位和采集合适的标本及其正确运送等环节最为重要。

标本的采集和处理应该优先考虑，否则，实验室所做的工作几乎没有什么价值。

因此，所有与标本质量的各环节有关的医务工作者必须要了解在整个实验过程中保证标本质量的重要性和必要性。

实验室有责任提供相关信息资料，使之编入各科室的护理手册中。

包括详尽的安全标准，标本的选择、收集、运送、接收和填写及粘贴标签的标准。

在此手册中为您提供了临床微生物实验室的送检标本的正确采集和处理指南。

安全指南对于实验室工作人员最先考虑到的应是实验台的安全。

其他医务人员也许没在意在送往实验室的标本中潜在有病原体。

所以要制定安全规章制度以保护实验室人员和其他可能接触到病原体的人员。

大多数的微生物实验室的手册中都有实验室安全操作章节部分，实验室操作手册中还应该包括有关标本管理的安全操作的内容。

有关生物安全的参考资料对于每个微生物实验室都适用。

适用于实验室的安全参考资料应该包括有‘微生物实验室和生物实验室的生物安全指南，第三版’,以及实验室的生物安全指南：‘谨慎操作和处理传染性材料准则’。

直接有关标本的安全管理方针：1.所有采集标本的操作要戴手套，穿工作外套、口罩、甚至护目镜。

2.所有标本容器必须防漏，运送也应装入密封防漏的塑料袋中，袋上附有一表格用于填写日期、时间、姓名之用。

3.决不能将带有针头的注射器送到实验室。

应将注射器中的标本注入无菌试管中。

或采用防护手段取掉针头，再盖上注射器并放入密封防漏的塑料袋中送检。

4.不得将装有标本的破损容器送往实验室，也不能对其进一步处理。

应该及时向医生通报容器渗漏，解释如果留用标本，会带来的潜在危害性并要求重新送检。

如果新标本送来，则将泄漏的标本高温高压处理后再废弃掉。

标本的选择与采集采集送检标本前，必须有所选择标本的种类和采集部位并要反应有效病程。

如果不选择有效部位，再好的方法采集的标本，没有有效病原体也没多大临床价值。

微生物检验标本的正确采集及注意事项正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。

据相关统计：微生物标本的检测误差来源：80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源：45%分析前10%分析中（仪器））45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的，在我们的大型医院都存在这个问题，而在我们医院应该不会低于这个数据。

可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。

为此应正确采集各种细菌学标本。

一、血液标本的采集1、采集方法（1）75%酒精清洁局部皮肤。

（2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm （直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。

（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。

（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。

2、注意事项（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。

（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。

切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。

（3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。

（4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。

（5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。

（6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。

微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。

下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。

采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。

采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。

送检尽快送检，一般不超过2小时。

若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。

微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。

2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。

应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。

3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。

4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。

5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。

6.采用专用无菌容器收集标本。

容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。

标本中不可添加防腐剂。

7.采样后应立即送检，最好在2h内。

如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。

对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。

当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。

8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。

9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。

(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。

微生物标本采集的一般原则以微生物标本采集的一般原则为题，我们将从以下几个方面进行介绍。

一、采集时间和地点微生物标本的采集时间和地点非常重要，采集应尽可能在病情发生后的早期进行，以确保标本的准确性。

同时，标本的采集地点也应根据病情进行选择，例如：血液标本应从患者的静脉中采集，尿液标本应从患者的膀胱中采集等。

二、采集器具和保护标本的采集需要使用专门的采集器具和保护措施，以避免标本被污染或受到损害。

例如：血液标本应使用无菌采血器具进行采集，尿液标本应使用无菌尿采集器具进行采集等。

同时，采集后的标本应放置在适当的容器中，并妥善保存以避免温度过高或过低等情况导致标本失效。

三、采集前的准备工作标本采集前，采集者应进行适当的准备工作，例如：洗手、穿戴无菌手套等。

同时，采集者还应向患者详细介绍标本采集的过程和注意事项，以避免患者的紧张和担忧情绪对标本采集造成影响。

四、标本采集的技巧和操作标本采集的技巧和操作非常关键，采集者应具备专业知识和操作技巧，以确保标本的准确性和安全性。

例如：血液标本的采集应注意采血管的位置和深度、采血时的速度和压力等。

尿液标本的采集应注意尿液的收集量和时间、采集器具的无菌性等。

五、标本采集后的处理标本采集后，应及时进行处理，以确保标本的质量和可靠性。

例如：血液标本应在采集后立即进行标本处理，以避免血液凝固或血细胞破裂等情况导致标本失效。

尿液标本应尽快送至实验室进行检测，以避免细菌的生长和繁殖导致标本失效。

微生物标本采集的一般原则包括采集时间和地点、采集器具和保护、采集前的准备工作、标本采集的技巧和操作以及标本采集后的处理等方面。

遵循这些原则，能够确保标本的准确性和可靠性，为临床治疗和疾病诊断提供有力支持。

采集微生物学标本时有哪些注意事项？
微生物学标本的正确采集直接关系到培养结果的准确性。

采集标本前，临床医生首先应考虑是否有适应证和禁忌证。

正确采集微生物学标本，需要明确以下几方面内容：①选择适当的时机，最好在病原体浓度最高的时间点。

②留取感染的正确部位。

部位不正确，结果无法解释。

③留取标本时，注意不能造成体内感染播散或人际传播。

④避免标本被污染，且应防止标本污染环境。

⑤采集标本量要足够，以提高检出率。

⑥选择无菌、无消毒剂、无污染、密封好的容器进行运送。

⑦准确标识患者信息、标本类型和检查目的。

⑧不同标本有不同的运送要求，温度、湿度和送检时限都应符合相关要求。

⑨采集和运送过程要遵循生物安全规范。

在保证适应证、可行性和必要性的前提下，考虑进行微生物学检查不是盲目的。

检查有针对性，临床诊断才有利无弊。

微生物标本采集方法及注意事项微生物标本采集方法及注意事项微生物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养、鉴定结果有十分密切的关系。

医生、护士、检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。

下面是yjbys店铺为大家带来的微生物标本采集方法及注意事项，欢迎阅读。

一、粪便标本采集和处理(1)采集方法1.自然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2～3g或 1～2 m1，盛无菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中(PH8.6)。

2. 直肠拭子法：难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采用此法，将拭子前端用无菌甘油或生理盐水湿润,然后插入肛门约4～5cm(幼儿2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。

擦取直肠表面粘液后取出，盛于无菌试管中或保存液中送检。

(2) 注意事项1.尽可能在抗生素使用之前采集标本。

2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆)，粪便样本中不应混入尿液及其他异物，采集过程应尽量无菌操作。

3.不应用厕纸收集粪便。

4.对同一病人在同一天不宜重复送检。

5.宜在感染急性期(通常是5d-7d内)采集标本。

6.下列腹泻患者应连续3d送检标本--社区获得性腹泻(入院前或72h内出现症状)--医院腹泻(入院72h后出现症状)，且至少有下列情况之一：大于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞<0.5)及疑似院内暴发。

--怀疑肠道感染的非腹泻性表现。

7.肠炎和发热病人建议做血培养。

8.伤寒沙门菌感染时骨髓培养高出血培养。

9新鲜粪便标本应在采集后尽快送检，不应超过2h。

(3)标本拒收干燥的拭子、含钡粪便、黄软成形便、干便、明显污染的粪便、一日内重复送检的标本，应设法与临床医师联系，可要求重新留取标本，并做好记录，在没有与医师沟通之前标本不应丢弃，仍按实验室标本保存原则存放。

二、尿液标本采集和处理(1)采集方法1. 中段尿采集法：清晨起床后用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用清水冲洗尿道口周围，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿5～10ml盛于带盖的无菌容器内立即送检，采集后于0.5h内进行接种。

一、我院微生物标本的采集和运送基本原则1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于70％。

2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。

5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子等，应标明标本种类，并立即送检。

6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。

中段尿培养的标本应用专用的无菌尿标留取（在仓库领取）。

静脉导管、胸腹水，脑脊液等到细菌室取无菌试管留取。

7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

二、常见医院微生物标本采集送检方法1．血液与骨髓①通常采血部位为肘静脉。

疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。

切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。

②采血部位的局部皮肤应严格消毒。

将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。

血培养瓶应在避光室温中保存，不必置冰箱保存。

③每次采血量成人5一10ml，婴幼儿l一5ml，培养基与血液之比以10：1-5：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。

④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。

对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下次用药前采血。

⑤每例病人至少采血两次，间隔0.5-lh，以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。

多次多部位采血可提高阳性率。

⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml 作增菌培养。

2．尿液①中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用0.1％新洁尔灭消毒尿道口．灭菌纱布擦干后收集标本10ml，0.5小时内送检。

②导尿管导尿采样可减少污染。

对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。

微生物标本采集的一般原则以微生物标本采集的一般原则为标题，本文将介绍微生物标本采集的基本原则和注意事项，以帮助医务人员正确采集标本，提高微生物检测的准确性和可靠性。

一、采集前准备1.了解患者病史和临床表现，确定采集标本的类型和数量。

2.告知患者采集标本的目的和方法，以及可能的不适和风险。

3.准备好采集工具和消毒液，保证采集过程的无菌和安全。

二、采集标本的基本原则1.选择合适的采集部位和方法，避免污染和误诊。

2.采集前要进行局部消毒，避免细菌和病毒的污染。

3.采集标本时要避免空气污染和手部污染，保证标本的纯度和可靠性。

4.采集后要及时送检，避免标本变质和误诊。

三、常见标本的采集方法和注意事项1.血液标本采集方法：选择合适的采血部位和针头，按照规范的采血程序进行采集。

注意事项：采集前要进行局部消毒，避免细菌和病毒的污染；采集时要避免空气污染和手部污染，保证血液的纯度和可靠性；采集后要及时送检，避免血液变质和误诊。

2.尿液标本采集方法：让患者用清洁的容器收集中段尿液，避免污染和误诊。

注意事项：采集前要告知患者正确的收集方法，避免尿液污染和误诊；采集时要避免手部污染和空气污染，保证尿液的纯度和可靠性；采集后要及时送检，避免尿液变质和误诊。

3.呼吸道标本采集方法：选择合适的采集部位和方法，如咽拭子、鼻拭子、痰液等，按照规范的采集程序进行采集。

注意事项：采集前要告知患者正确的采集方法，避免误诊和污染；采集时要避免手部污染和空气污染，保证标本的纯度和可靠性；采集后要及时送检，避免标本变质和误诊。

4.皮肤和软组织标本采集方法：选择合适的采集部位和方法，如切口分泌物、脓液、组织等，按照规范的采集程序进行采集。

注意事项：采集前要进行局部消毒，避免细菌和病毒的污染；采集时要避免手部污染和空气污染，保证标本的纯度和可靠性；采集后要及时送检，避免标本变质和误诊。

四、采集后的处理和保存1.采集后要及时送检，避免标本变质和误诊。

临床微生物标本采集与运送临床微生物标本采集与运送一、血培养标本采集、运送与报告标准操作规程血培养是一种常见的检测方法，适用于疑似血流感染的患者。

当患者出现寒战、体温超过38℃或低体温时，应考虑进行血培养检测。

特别是对于存在以下情况的患者，更应该抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72小时；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。

二、采血时机一旦怀疑患者可能存在血流感染，应立即采血做血培养。

最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24小时后采集，以寒战、发热时采集为宜。

三、采血流程一）消毒对于培养瓶，应使用消毒液进行消毒，并等待其干燥后再使用。

对于皮肤，应使用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm以上。

待消毒液挥发干燥后（常需30秒以上），再进行穿刺采血。

二）静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头。

如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头。

先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。

近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。

三）注意事项检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。

采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。

除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。

对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。

4.关于细菌性心内膜炎的血培养方法：需要在24小时内取血3次，每次间隔不少于30分钟；如果必要，可以在次日再做2次血培养。

5.采血量的要求：推荐采用培养基与血液1：10的比例，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。

病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确地标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本地选择，采集，运送，保存及处理地一般原则.一、标本采集地一般原则.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌地检出..无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群地污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊.采集地标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌地检出..适量地标本标本量过少可能导致假阴性结果..适当地采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌地采集方法是不同地，用于厌氧菌培养地标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻..盛放标本地容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖地容器内.二、标本地运送.标本采集后立即送检，若有延迟也应在小时内送到实验室，否则会影响病原菌地检出，一般性地细菌培养标本若需延迟送检时，应置于度冰箱保存，且不能超过小时..临床标本最佳运送时间取决于标本地量，少量液体（小于）或组织（小于）应在分钟内送到实验室，较多量地标本置于运送培养基中可放小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过小时.三、不同标本地采集，运送（一）血液标本采集，运送.血培养指针征当患者出现：发热（大于度）或低温（小于度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养..对怀疑菌血症、真菌血症地患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本.必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本.成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于.（少于病人总血容量地）.在采取血培养后地—天内，无需重复采取血培养.两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症..血标本采集地量是影响检出率地最重要地因素.检出率与采血量成比例增长，每增加地血液，病原菌地检出率就会相应增加.儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人.采用一对（需氧瓶厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶地组合可检出更多地葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌.采血量不能满足推荐地量时，应首先满足需氧瓶地需要.推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率.如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果地判读..血标本采集地注意事项在采血之前，血培养瓶地橡皮塞需使用酒精消毒并干燥.然后再进行穿刺部位地皮肤消毒.严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”地消毒步骤操作，并等待足够地消毒时间.严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后地血培养瓶应在小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻.(二)痰培养标本采集，运送.痰培养指征上呼吸道感染包括咽炎，喉炎，会咽炎等都可采集鼻，鼻咽，口咽拭子标本培养.下呼吸道感染：凡是咳嗽，咳痰，痰呈脓性，粘稠或血性等都可采集痰标本..标本地采集采集前嘱咐病人先用清水漱口，摘去牙托，因唾液中口咽部定植菌地浓度可达，去除表面地菌群.教育病人深咳，收集从下呼吸道咳出地痰液.在抗生素应用前采集痰标本;标本采集后～内送往实验室进行处理，采集标本过程中要有专业地医务人员指导;无痰可用％～％雾吸约导痰；也可用物理疗法、体位引流、鼻导管抽吸等方法取痰..正常地痰标本低倍视野下鳞状上皮细胞小于个，白细胞大于个.如果低倍视野下鳞状上皮细胞大于个，白细胞小于个应不做或仅在特殊要求时做培养，如做培养，报告中注明“镜检结果表明标本口咽分泌物污染明显”.痰培养方法地局限性多数引起肺炎地病原菌不能培养出，如病毒，军团菌，衣原体等.影响因素很多：如黏液包裹、定植菌污染.建议痰培养同时做血培养和痰涂片镜检..注意事项常规地痰培养需在小时内送检，若怀疑嗜血杆菌，肺炎链球菌感染时必需随留随送;标本中不能混入唾液与鼻咽分泌物等.（三）尿培养标本采集，运送.尿培养指征尿路感染，肾结核，泌尿系结石，膀胱排空功能受损或前列腺增生等患者，出现尿频，尿急，尿痛等膀胱刺激症状，肉眼脓尿或血尿，尿常规检查有白细胞或亚硝酸盐阳性，，不明原因地发热，尿道口有脓性分泌物等症状，需采集尿培养标本送检..标本地采集清洁中段尿液，嘱咐患者用肥皂水清洗，弃去开始流出地尿液，以冲刷尿道口地细菌，取能代表膀胱部位病原菌地中段尿；导尿管尿液，留置导管尿液标本常通过专门地采样端口采集，不能把导尿管与尿袋拔开后收集尿液，采样端口用酒精消毒；必要时，可先夹住导尿管但不能超过分钟；将注射器针头插入采样端口，抽吸出尿液；注入无菌杯或试管中.膀胱穿刺尿，无菌操作，用无菌注射器刺入膀胱抽取—尿液送检，主要用于厌氧菌地培养或留取标本困难地婴幼儿标本地采集，此法可避免尿液标本地污染..标本地采集量一般成人采集,婴幼儿不得少于.诊断症状明显地病人（如尿急、尿频、尿痛），一份标本就已足够，治疗小时后再采集第二份标本.对于症状不明显地病人，需采集份标本.怀疑肾结核时，应连续天采集晨尿..室温都有利于病原菌和污染菌生长繁殖，标本采集后立即送检和接种，室温下存放不能超过小时，（夏季保存时间应适当缩短或冷藏），度冷藏保存时间也不能超过小时，冷藏地尿液不能用于淋球菌地培养.．注意事项必须无菌操作，采用带盖防渗漏地无菌杯收集，多次收集或小时尿不能用作培养.集尿袋内地尿液不能用作培养.导尿管末端地尿液也不能用于培养，很难避免没有尿道菌群污染.在使用抗菌药物前留取标本，尿液中不能加任何防腐剂或消毒剂，抑制细菌地生长.（四）粪便标本采集，运送.送检指征当患者出现腹泻，大便每天大于或等于次，粪便地性状异常，可为稀便，水样便，粘液便，脓血便或血便，伴有恶心，呕吐，食欲不振，发热，腹痛及全身不适等，大便镜检白细胞大于等于个每高倍视野，抗菌药物治疗后地腹泻等..标本地采集方法，时间与量尽可能在发病早期（急性期）或应用抗菌药物治疗之前，采集新鲜地粪便，怀疑沙门菌感染时，应在发病周以后采集.自然排便法，排便后，挑取有脓血或粘液部位地大便，液状粪便取絮状物盛于无菌地容器内；直肠拭子采集法，用于排便困难地患者或婴幼儿.一般用拭子采集大于地标本送检，若标本为水样，采集大于地标本于无菌容器中送检.．标本地运送与保存标本采集后应尽快送检，室温条件下不能超过小时，如不能及时送检可加入磷酸盐甘油缓冲保存液中或专门地大便运送培养基中置度冰箱保存，但不能超过小时.高度怀疑霍乱弧菌感染地标本必须符合特殊标本地安全要求..注意事项最好在用药前，采集新鲜地标本盛装在无菌容器内，立即送检，提高阳性检测结果.厌氧菌地培养尽量避免与空气接触和正常地菌群污染.(五)脓液及创伤感染分泌物标本地采集及运送.送检指征凡是当患者有外伤感染，术后切口感染，导管感染，脐带残端感染，有脓液和分泌物时，应采集标本培养..标本地采集时间和方法在使用抗生素前或停用药—天以后，或使用下一次抗生素前采集，对脓肿性分泌物应先用生理盐水或地酒精冲洗溃疡表面渗出物，尽可能抽取脓液于无菌杯内送检.对于封闭性脓肿时，应无菌操作抽取脓液—于无菌试管内或血培养瓶内送检，怀疑厌氧菌感染时，应做床旁接种或注入厌氧瓶内（—）送检，最佳方法是采集组织送检..标本地运送标本采集后应于小时内送微生物实验室进行处理，若不能及时送检，需氧培养地标本除对环境敏感地淋病奈瑟菌，脑膜炎奈瑟菌和流感嗜血杆菌外，可保存在度冰箱中，但保存时间不能超过小时;厌氧培养时，需用厌氧瓶或厌氧袋在室温下保存，但不能超过小时..注意事项尽可能在用抗生素前采集，若患者也用药，应在检验单上注明抗菌药名，并在下次用药前采集；对于开放性地伤口，采集前应先除去表面污染菌，以防带入与感染无关地皮肤定值菌.干燥结痂地标本一般不做培养，除非有渗出物.采集标本时应无菌操作.（六）穿刺液标本地采集与运送穿刺液主要包括脑脊液，胸腹水，心包液，胆汁，关节液及鞘膜液，在正常标本中，上述液体是无菌地，在排除污染地情况下，一旦检出细菌均视为病原菌.在相关地部位有相应地临床症状时，应无菌操作采集相应地标本于无菌容器内送检，标本采集后应立即送往实验室处理.脑脊液采集后应在分钟内送到实验室，若不能，应室温保存，不得超过小时，不能冷冻或冷藏注意事项：标本地采集严格执行无菌操作，最好在用抗菌药物前采集.防止标本凝固，可事先在容器内加入抗凝剂，（脑脊液标本时不需加抗凝剂），也可直接加入血培养瓶内.。

临床微生物学标本采取和处理的规范化要求 正确的采取、处理与运送用于细菌培养的标本是临床细菌检验成功的关键。标本采取与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础；而标本采取与处理不符合要求，则细菌培养的结果毫无意义。如标本采取或处理失当，造成污染，甚至使检验结果给临床以误导，延误对患者的正确治疗，造成严重后果。因此，著名的临床微生物检验专著Manual of Clinical Microbiology的主编Patrick R．Murray在书中提出“正确的微生物检验始自正确的标本采取。临床医师、护师及检验技师都必须通晓其要领。” 如今，全面的检验保证系统更加重视分析前与分析后的因素对检验质量的影响，微生物检验分析前质量控制的主要内容之一，即是对标本采取与处理的质量保证。 为推行检验方法的标准化，我国借鉴国外部分经验已成立中国临床实验室标准化委员会(CCCLS)，临床实验室的认证工作已开始准备。微生物检验的标准化首先应从标本采取与处理的规范化开始。为此，我们提出初步的参考意见，并希望在实践中不断完善。 一、血液细菌培养标本的采集和处理 临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血流感染的患者，需做血液细菌培养以明确病原。及时、准确地从患者血液中分离出病原茵，才能正确实施有效的抗菌治疗，从而有助于治愈率的提高和医疗费用的降低。 1．采血时机：在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，以正在发冷发热时或发冷发热前半小时为宜。 2．采血次数及间隔：在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌。性肺炎，需马上做抗菌治疗；或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者，应立即从两臂分别取2份标本。对感染性心内膜炎患者，在24h内取血3次，每次间隔不少于30min；必要时次日再做血培养2次。对发热原因不明者两次抽血间隔60min；必要时于24—48h后再抽血2次。因为1次血培养不足以说明问题，且会遗漏阳性结果。国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80％，2次检出90％，3次检出99％。国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8％，18家医院2次以上血培养阳性率14.8％。 3.采血部位：多次采血应在不同部位的血管穿刺以排除皮肤菌污染的可能。要避免从血管插管内取血，因插管常被污染其培养结果不能反映真实情况。在不同部位取血，2次分离出同样菌种才是确定病原菌的有力证据。 4．采血量：成人茵血症或败血症的血液中含茵量较少，平均1—3ml血液中仅有1个细菌。所以采血量一定要足够。成人一般为10ml，新生儿与婴幼儿为1-2ml。有人引述多篇文章指出：对成人每增加1ml血量平均能提高阳性率3.2%。 5.无菌操作：无论采取何种方法，在血液培养的全过程，从皮肤消毒、标本采取、运送、分离移种等，皆应十分注意。用头皮针为新生儿和婴儿取血时，应更换针头再将血注入培养瓶中。 二、下呼吸道分泌物(痰培养)的标本采取与质量要求 下呼吸道分泌物(痰)的细菌学检查对病原学诊断起着重要作用，但目前亦存在着严重的问题—标本的质量问题，因此，往往造成作出的病原学诊断和实际引起感染的病原菌脱节，以致造成抗菌药物的应用不合理甚至耐药菌的出现或流行。痰标本的细菌学检查应注意如下几个问题。 1.标本的采取：自然咳痰：要求患者清晨留取，留取标本前用清水漱口3次，之后用力咳出。咳痰较困难者可用雾化蒸气吸入以利痰液咳出。幼儿可用手指轻叩胸骨柄上方以诱发咳痰。 2．气管穿刺法：仅用于昏迷患者，由临床医师进行。 3．纤维支气管镜抽吸：通常用于在给患者行纤维支气管镜检查时顺便抽取。 4．胃液抽取法：多用于可疑患有肺结核的患者在有可能将痰液咽下的情况时采用。 5．标本的运送：标本采集后应立即送检，应争取在20min内送达检验科微生物室或临床微生物科。 三、尿液细菌培养标本的采集和保存 尿液的细菌培养检查对于膀胱和肾脏感染的及早发现和病原学诊断很有价值。对于尿道、前列腺以及内、外生殖器炎症的诊断也有一定价值。 1． 标本收集：需在应用抗菌药物之前或停用抗菌药5d之后留取尿液标本；尿液在膀胱内应停留6.8h以上，使细菌有足够时间繁殖。(1)清洁排尿法：女患者以手指将阴唇分开，用肥皂水或碘伏清洗外阴，然后以清水冲洗尿道口周围，擦干并排出前段尿液后，用无菌容器接取中段尿；男患者应翻转包皮冲洗，用2％红汞或1：1000新洁尔灭消毒尿道口；婴儿消毒其阴部后，将无菌小瓶直接对准尿道口以橡皮膏贴于皮肤上，待排尿后立即送检。(2)膀胱穿刺法：为避免尿道正常菌群的污染，收集尿液最好的方法是膀胱穿刺。尤其做厌氧菌检查时必须采用膀胱穿刺法。穿刺时膀胱应充盈，皮肤严格消毒后用装有19或20号针头的注射器在耻骨联合距脐1／3处穿刺。膀胱穿刺的适应症有：①有尿道感染的临床症状，但中段尿培养细菌数很低，而又难以确定感染源者。②婴幼儿、新生儿、不能用导管者。③怀疑有厌氧菌感染时。(3)肾盂尿采集法；若取左右两侧肾盂尿，应请泌尿科医生采取，左右侧的标本要标记明确，以免出现错误。(4)对用封闭式引流装置的留置导尿患者留取尿液标本培养时，用适当的消毒剂严格消毒引流管和导尿管连接处的管壁，用装有2l号针头的注射器穿刺导尿管壁吸取尿液。不可打开导尿管和引流管连接处收集标本，培养用的尿液标本也不能从引流袋中留取。(5)膀胱镜检查、输尿管插管或逆行肾盂造影时，收集的尿液可用来做细菌培养。(6)做病毒学检测时用容器收集清洁的标本即可，不需特殊方法收集。标本中加入抗生素可抑制细菌的过度生长，且标本需冷藏。 检测衣原体时，尿液标本不能代替尿(阴)道分泌物。 巨细胞病毒(cM)的检测，需多次检测标本，因其释放常是周期性的。 结核分枝杆菌的检查，应留取24h尿，无症状的血尿可能是肾结核病，应用清洁排泄法收集连续3份晨尿标本。 淋病奈瑟菌培养留取清晨第1次尿，盛于无菌容器内立即送检。 尿道结石标本可作其内部及表面培养，内部培养出的细菌与表面存在者可能不同。 ２．标本的运送和保存：用无菌带螺帽的容器盛标本，标本应在1h之内送检。超过2h者应重送，否则易致假阳性结果。 四、粪便标本微生物学检查的质量要求 关于腹泻患者粪便中肠道病原微生物的检测，根据世界卫生组织(WHO)腹泻病纲要和我国卫生部临床检验中心有关操作规程要求，粪便标本应取材得当，并严格按细菌分离 培养操作规程进行各种病原微生物的鉴定。 1．标本采集：粪便标本应在发病早期并且尽量在用抗生素治疗前采集，直接用棉拭子，也可用直肠拭子，取双份粪便标本，1份置 Cary—Bliar运送培养基中，另1份置灭菌小瓶中送检。 五、生殖道标本的采集 1． 男性标本：(1)如疑为急性淋病奈瑟菌或其他化脓性细菌感染应在清洗龟头部后，以碘伏或其他非粘膜刺激性消毒剂消毒后，挤出分泌物立即以无菌棉拭子采取，立即送检，或以专用的细拭子插入尿道口1-2cm，旋转采取。(2)如疑为前列腺炎、精囊炎或慢性淋病奈瑟菌感染应由医师按摩前列腺．以无菌手续自尿道口采取前列腺液送检。 2． 女性标本：(1)成年妇女自宫颈采取标本，应在扩阴器的支持下，选取有炎症或分泌物部位，先以无菌棉拭子拭去浅表层分泌物，再用另一拭子取分泌物送检。如做厌氧或真菌培养应另外取标本。(2)如未成年幼女疑患性传播疾病时，不应使用扩阴器，应以无菌拭子在阴道口处采取分泌物送检。 六、 胸膜水、脑脊液标本的采集 １． 均由医师以无菌手续穿刺取得，必须应用带盖的无菌容器，立即送检。