临床微生物标本采集

微生物检验标本的正确采集及注意事项正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。

可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。

为此应正确采集各种细菌学标本。

一、血液标本的采集1、采集方法（1）75%酒精清洁局部皮肤。

（2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。

（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。

（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。

2、注意事项（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。

（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。

切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。

（3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。

（4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。

（5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。

（6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。

（7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。

（8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。

二、骨髓的采集1、采集方法在病灶部位或髂前（后）上脊处严格消毒后抽取骨髓1ml，注入血培养瓶内。

2、注意事项（1）骨髓内含有大量的单核巨噬细胞系统的细胞，因而骨髓培养对伤寒病人的诊断较血培养优越。

临床微生物学检验的标本采集一、血液和骨髓细菌学检验标本的采集（一）适应症菌血症、败血症和感染性骨髓炎等感染菌的培养鉴定和药物敏感试验。

（二）病人准备1．凡怀疑菌血症和败血症的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用过抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，或在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。

2．应在病人发热期或寒颤时采集（三）标本采集1．血培养瓶领取：凭医嘱和检验申请单到检验科细菌室领取。

按照实际情况选择相应类型的血培养瓶：如灰色瓶盖为普通成人培养瓶；粉红色盖为儿童需氧菌培养瓶；紫色盖为厌氧菌培养瓶。

2．将患者信息录入相应的血培养瓶条码中，并在作好病人姓名、科别、床号等标识。

2．采集方法：严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液或骨髓后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀。

3．标本量：成人每次采血5~10ml，小儿采血3~5ml，骨髓2~3ml，采血量足够则阳性率高，反之阳性率减低。

（四）注意事项1．抽血、抽骨髓和接种时，须严格注意无菌操作，避免污染杂菌。

2．从抽血、抽骨髓到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固。

3．成人不明原因发热、怀疑血流细菌感染时宜在不同部位抽血2套，每套2瓶（需氧、厌氧各一瓶）。

4．怀疑伤寒、亚急性细菌性心内膜炎及布鲁氏菌病的病人等，一般一日抽血三次培养，必要时需追加次数。

（五）标本送检和保存1．标本采集后应及时送检，一般不超过1h送交细菌室。

2．送检过程中应注意防止培养瓶打破或其它潜在性污染可能。

二、痰液或下呼吸道分泌物细菌学检验标本的采集（一）适应症肺炎、肺气肿、支气管炎、鼻窦炎、肺结核等感染菌的培养鉴定、药物敏感试验和抗酸菌检查。

（二）病人准备1．尽量在未使用抗菌素前留取标本。

准备好无菌标本容器，贴上条码、标明标识。

2．住院病人应留取清晨起床第一口痰。

为减少正常菌群的污染，嘱患者早上起床后用清水或生理盐水漱口，不要刷牙，除去鼻咽分泌物。

（三）标本采集1．一般病人用力咳出气管深处或肺部痰液，留于无菌标本容器内。

临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中，微生物检验是不可缺少的一环。

临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。

本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。

1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。

2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时，一定要做好消毒工作。

选择采血部位后，用酒精或碘酒消毒，再用无菌针头采血，避免受污染。

血液标本采集后可以分成两份，一份用于血常规，另一份用于血培养。

2.2 尿液标本收集尿液标本时，要让患者用清洁肥皂清洁外阴部，再用无菌尿杯收集尿液，避免手部直接触摸尿杯和尿液。

尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。

2.3 粪便标本采集粪便标本时，要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。

最好不要使用纸巾，而是用无菌容器收集粪便。

粪便标本采集窗口为3天。

2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时，首先要选择采血部位进行消毒，然后将血培养瓶插入采血针器上，打开外部装置，使血液顺利流入血培养瓶中。

采集集中在早晨时段，每次采集2-3个血培养瓶。

2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行，患者应严格卧床休息，医生在患者腰部，采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。

2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时，需要选择无菌医用棉签，消毒采集部位。

在采集过程中，应尽量避免被采集部位感染污染到。

3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。

标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。

并且在运送过程中需要遵循以下几点：3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长，应尽早将标本送至检验室进行分析。

3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器，容器体积大小要相应合适。

送检前，要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。

标本包装时，应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。

3.3 运输温度不同种类的标本，其运输温度介于4-25摄氏度之间。

临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。

采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。

采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位，以确保标本的代表性和可靠性。

2.采集工具与消毒采集微生物标本时，应使用无菌、一次性采集器具。

采集器具在使用前应进行消毒处理，以确保不会引入外来微生物污染。

消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。

3.采集操作步骤（1）准备工作：评估患者病情，向患者及家属解释采集目的和注意事项，取得患者知情同意。

（2）佩戴个人防护装备：口罩、手套、护目镜或面罩。

（3）消毒：使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。

（4）采集：根据不同标本类型，进行相应操作，如穿刺、刮片、抽取等。

（5）封装：将采集完成的标本放入无菌容器中，密封，注明患者信息、采集部位、日期等。

二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时，应选用防漏、耐压、易保存的容器。

容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等，以便于实验室接收和处理。

2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室，一般要求在2-4小时内完成。

运送过程中，应保持标本容器密封，避免剧烈晃动，确保标本质量。

3.运送过程中的注意事项（1）夏季高温时，可采取冰袋降温措施，防止标本变质。

（2）注意标本容器不离手，避免摔碎或泄露。

（3）如需长途运输，应采取适当包装，确保标本在运输过程中不受损。

三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系，包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等，以确保检验结果的准确性和可靠性。

2.标本接收与处理实验室接收标本时，应核对标本信息，检查标本容器、运送条件等。

对标本进行登记、分类、编号，并按照标准化流程进行处理。

3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制，包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。

临床微生物标本采集和运送基本原则有：
第一，要及时采集微生物标本，做病原学检查。

第二，严格执行无菌操作，减少和避免污染。

第三，标本采集之后，要立即送到实验室，床旁接种可以提高病原菌的检出率。

第四，尽量的在使用抗菌药物之前采集标本，这样对于结果的影响比较小一些。

第五，以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子要立刻送检。

第六，盛标本容器须经灭菌处理，不要使用消毒剂。

第七，送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

第八，对于混有正常菌群的污染标本，要做定量或半定量培养，然后判断是感染菌和定植菌。

第九，对分离到的病菌，要做药敏实验，提倡分级报告和现实报告。

临床微生物标本采集规范•微生物标本采集意义与原则•临床常见微生物标本采集方法•微生物标本采集注意事项与操作规范•微生物标本运输、保存和处理流程目录•临床微生物实验室检测技术应用与进展•总结回顾与拓展思考01微生物标本采集意义与原则准确诊断指导治疗监测病情变化预防和控制感染通过采集微生物标本，可以对病原体进行准确鉴定和分类，为医生提供准确的诊断依据。

通过对微生物标本的连续检测，可以及时了解患者病情的变化情况，为医生调整治疗方案提供依据。

根据微生物标本的检测结果，医生可以选择针对性的治疗药物和方法，提高治疗效果。

通过对微生物标本的检测和分析，可以及时发现和控制感染源，防止感染的扩散和传播。

无菌操作正确选择采集部位采集足量标本及时送检01020304在采集微生物标本时，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染标本和引入外源性微生物。

根据不同的病原体和感染类型，选择正确的采集部位，以提高标本的阳性率和准确性。

采集足够量的标本，以保证检测的准确性和可靠性。

采集后的微生物标本应及时送检，避免延误诊断和治疗。

血液标本通过静脉采血或末梢采血获得，用于检测血液中的病原体和抗体等。

尿液标本通过患者自行排尿或导尿获得，用于检测泌尿系统感染等。

粪便标本通过患者自行排便或灌肠获得，用于检测肠道感染和寄生虫病等。

呼吸道标本通过鼻咽拭子、喉拭子、痰液等获得，用于检测呼吸道感染和肺部感染等。

生殖道标本通过阴道分泌物、宫颈分泌物、前列腺液等获得，用于检测生殖道感染和性传播疾病等。

其他标本如脑脊液、穿刺液、组织活检等，用于检测相应部位的感染和病变情况。

微生物标本类型及来源02临床常见微生物标本采集方法血液及骨髓标本采集建议在患者寒战或发热初起时采集，同时在使用抗生素之前采集。

成人一般选择肘静脉，新生儿和婴儿选择颈静脉或股静脉。

成人一般采集8-10ml，儿童采集3-5ml，婴儿采集1-2ml。

严格无菌操作，避免污染，同时防止溶血。

采集时间采集部位采集量注意事项一般建议清晨第一次尿，即晨尿。

临床微生物标本的正确采集与运送图文微生物学在临床上发挥着重要作用，正确的采样和运送过程对于准确诊断和治疗具有决定性影响。

本文将介绍临床微生物标本采集和运送的基本原则。

一、标本采集前的准备工作1.1 了解患者的情况在进行采样之前，了解患者病史、症状、用药情况等可以帮助选择合适的采样部位和方法。

例如，对于胸腔感染，应在患侧插入穿刺针进行胸腔穿刺；对于泌尿系感染，应在初尿流进行尿液采集。

1.2 选择合适的采样部位和方法选择合适的采样部位和方法可以提高标本的阳性率。

下面介绍一些常见的采样部位和方法：血液标本血液标本是诊断血液感染和细菌性心内膜炎的关键。

采血前需要消毒采血部位，并选择合适的采血管和采血顺序。

常见的采血部位有手腕、肘窝、背侧手腕、踝部，而采血顺序为无菌采血管先于常规采血管。

尿液标本尿液标本是诊断泌尿系感染的重要手段。

采样前需要让患者清洁外阴，并选择合适的采样时机。

中段尿和早晨起床第一次排尿的尿液最为理想。

呼吸道标本呼吸道标本可用于诊断呼吸道感染、肺炎等疾病。

采样前需要清洁口腔和鼻腔，并采用合适的方法进行采样。

常见的方法有喉拭子和气管切开。

胃肠标本胃肠标本可用于诊断肠道感染、胃溃疡等疾病。

采样前需要清洁口腔和肛门，并选择合适的采样方法。

常见的方法有粪便标本、肠内容物吸取和胃液抽取。

1.3 配置必要的采样器材采集标本需要用到一些专门的器材，例如无菌采血针、采尿器、拭子、鱼雷管等。

采集前需要进行消毒和验证，并确保器材无损坏和过期。

二、标本采集时的注意事项2.1 彻底消毒采样部位对于需要皮肤穿刺的采样部位，必须进行彻底的消毒，以避免细菌污染。

消毒前应先清洁采样部位，并使用适宜的消毒剂进行消毒。

2.2 采样过程中遵循无菌原则采样过程中必须遵循无菌原则，以防止其他有害细菌或病毒的污染。

进行采样操作前，应先进行手卫生并配备隔离装备。

2.3 避免污染和误差在采集标本的过程中，必须避免污染和误差。

应严格按照标本类型、采样方法和储存条件进行操作，防止错误或污染发生。

临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。

在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。

本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。

一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。

采集工具应一次性使用，避免交叉感染。

2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。

将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。

（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。

将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。

（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。

将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。

3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。

（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。

（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。

二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。

如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。

2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。

标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。

3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。

如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。

4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。

在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。

临床微生物标本采集和运送基本原则【最新版】目录一、微生物标本采集和运送的重要性二、微生物标本采集的基本原则1.采集时机2.无菌操作3.采集量4.标本保存5.标本运输三、微生物标本运送的基本原则1.运送条件2.运送时间3.运送包装四、微生物标本采集和运送的意义正文微生物标本采集和运送是临床微生物学检验的基础环节，对于保证检验结果的准确性和可靠性具有重要意义。

本文将详细介绍微生物标本采集和运送的基本原则。

一、微生物标本采集的基本原则1.采集时机：微生物标本的采集应在抗生素使用前，以避免抗生素对病原微生物的杀灭作用。

在感染初期或病情加重时采集标本，可提高病原体的检出率。

2.无菌操作：在微生物标本采集过程中，应严格执行无菌操作，避免正常菌群和其他杂菌的污染。

采集非无菌部位的标本时，应尽量减少污染。

3.采集量：微生物标本的采集量要充足，以便进行后续的培养和检测。

不同类型的标本有不同的采集量要求，一般要求采集足够量的标本。

4.标本保存：微生物标本在采集后应及时保存，室温下保存时间不得超过 2 小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存），冷藏保存时间不得超过 8 小时。

5.标本运输：微生物标本在运输过程中应保持无菌状态，避免温度过高或过低，以及剧烈震动。

运输包装应具有良好的保护性能，防止标本破损或泄漏。

二、微生物标本运送的基本原则1.运送条件：微生物标本在运送过程中应保持适宜的温度和湿度，避免高温、低温和干燥。

不同类型的标本有不同的运送条件要求，一般要求在 2-8℃的条件下运送。

2.运送时间：微生物标本的运送时间应尽量缩短，以减少病原体的死亡或活性降低。

一般要求在采集后 24 小时内送检。

3.运送包装：微生物标本的运送包装应具有良好的保护性能，防止标本在运输过程中破损或泄漏。

包装材料应无毒、无菌、防渗漏。

三、微生物标本采集和运送的意义微生物标本采集和运送的质量直接关系到临床微生物学检验的结果。

正确采集和运送微生物标本，可以提高病原体的检出率，为临床诊断、治疗和预防感染提供可靠的依据。

1. 什么是临床微生物标本？
2. 为什么需要采集临床微生物标本？
3. 请列举常见的临床微生物标本类型。

4. 如何正确采集血液标本？
5. 如何正确采集尿液标本？
6. 如何正确采集呼吸道标本？
7. 如何正确采集粪便标本？
8. 如何正确采集伤口分泌物标本？
9. 采集临床微生物标本时需要注意哪些事项？
10. 采集临床微生物标本后，应如何进行初步处理？
11. 请描述临床微生物标本的保存和运送要求。

12. 在运送临床微生物标本时，应注意哪些问题？
13. 请解释为什么要对临床微生物标本进行快速检测？
14. 请列举几种常见的临床微生物标本快速检测方法。

15. 请解释为什么要对临床微生物标本进行实验室检测？
16. 请列举几种常见的临床微生物标本实验室检测方法。

17. 请解释为什么要对临床微生物标本进行药敏试验？
18. 请列举几种常见的临床微生物标本药敏试验方法。

19. 请解释为什么要对临床微生物标本进行抗生素敏感性测试？
20. 请列举几种常见的临床微生物标本抗生素敏感性测试方法。

微生物检验标本的正确采集及注意事项微生物检验标本的采集直接影响微生物培养与鉴定结果，准确的结果可为临床诊疗提供指导，有助于科学用药、控制感染，进而延缓细菌耐药、监测医院感染、减少抗菌药物滥用，而正确采集微生物检验标本是最为关键、重要的一步。

为此，本文总结了微生物检验标本的正确采集方法和注意事项，下面让我们一起来了解一下。

一、采集血液标本应用75%酒精清洁局部皮肤，待皮肤干燥后应用1%--2%碘酊或者1%碘伏消毒穿刺点及周围皮肤，消毒范围至少需要3厘米，再次使用75%酒精脱碘后采集血液；对于碘过敏的患者，则采用75%酒精消毒30秒，自然干燥后再用75%酒精消毒60秒的消毒策略。

消毒后不可用手直接触摸穿刺部位，穿刺抽吸8--10毫升成人血液（婴幼儿及儿童患者采血量则不能超过总血量的1%），注入血培养瓶中并立刻颠倒混匀，以防血液凝固，但不可剧烈震动，以防标本溶血。

值得注意的是，血液标本作培养时需格外小心，皮肤表面含有较多微生物，消毒不规范则会污染血液，故应在采血前由内至外认真消毒；血液注入培养基之前不可更换针头，以防感染；采血前应用抗菌药物且无法停药者应在下次用药前采血，注意，不可在静脉穿刺处采集血液标本，除怀疑导管相关感染外亦不可经由静脉导管或动脉插管内抽血；采血量并不是越多越好，采血量太多，则会稀释培养液，营养成分不够；怀疑为菌血症的患者应尽早采血，避免延误最佳时机；怀疑为布鲁式病以及细菌性心内膜炎患者应选择肘动脉、股动脉穿刺采集血液，除发热期以外，均应多次采血，建议24小时内采集3--4次，且要增加采血量，以10毫升左右为宜。

二、采集痰液标本于清晨起床后使用凉白开多次漱口，去除口腔内的杂菌，并用力咳嗽，以咳出肺部深处的脓痰，吐入清洁、干燥的容器中送检。

如果患者痰液量比较少，可以应用25毫升45摄氏度3%--10%氯化钠溶液行雾化吸入，如果是患儿，则需要轻轻按压其胸骨上方的气管，在其咳痰后使用无菌棉棒采集痰液标本。