实验动物学实验报告学院：学号：姓名时间：实验一：小鼠实验一、实验目的1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法；2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法；3、掌握小鼠的标记方法；4、掌握小鼠的基本采血技术；5、掌握小鼠的常用给药方法；6、掌握小鼠的解剖方法,熟悉内部脏器的自然位置；二、实验材料1、实验动物：每组两只雌鼠,两只雄鼠；2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛；三、实验内容及方法1、小鼠的抓取和固定抓取时先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤,将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可;这种在手中固定方式,能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作;2、小鼠的雌雄鉴别雄鼠的阴囊明显,雄鼠可见阴道开口和五对乳头;幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定,近者为雌,远者为雄;另外,雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟,而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛;3、小鼠的标记方法1耳孔法用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口,左耳为十位,右耳为个位;2剪趾法适用于出生一周以内新生仔鼠；3染色法用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位,注意逆着毛发生长方向刷;4、小鼠的基本采血1剪尾采血当所需血量很少时采用本法;固定动物并历出鼠尾,将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟,也可用酒精棉球涂擦,使局新血管扩张;将鼠尾擦干,再用刀片剪去1-2mm,让血液滴入盛器或直接用吸取,同时自尾根部向尾尖按摩;取血后,先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处,使伤口外结一层火棉胶薄膜,保护伤口;也可采用切割尾静脉的方法采血,三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0.2～0.3ml血,切割后用棉球压迫止血;这种采血方法在大鼠进行较好,可以较长的间隔时间连续取血,进行血常规检查;2眼眶后静脉丛取血当需中等量的血液,而又需避免动物死亡时采用此法;用左手固定鼠,尽量捏紧头部皮肤,使头固定,并轻轻向下压迫颈部两侧,引起头部静脉血液回流困难,使眼球充分外突示眼眶后静脉丛充血,右手持毛细玻璃管,沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入;刺入深度小鼠2～3mm;当感到有阻力时再稍后退,保持水平位,稍加吸引,由于血压的关系,血液即流人玻璃管中;得到所需的血量后,拨出毛细管;若手法恰当,小鼠约可采血0.2～0.3ml;3心脏取血动物仰卧固定在固定板上,剪去心前区部位的被毛,用碘酒酒精消毒皮肤;在左侧第3～4肋间,用左手食指摸到心搏处,右手取连有4～5号针头的注射器,选择心搏最强处穿刺,当针刺入心脏时,血液由于心脏跳动的力量自动进人注射器;此法要求实验者掌握以下要点：要迅速而直接插入心脏,否则,心脏将从针尖处滑脱；如第一次没刺准,将针头抽出重刺,不要在心脏周围乱探,以免损伤心、肺；要缓慢而稳定的抽吸,否则,太多的真空反而使心脏塌陷;若不需保留动物生命时,也可麻醉后切开动物胸部,将注射器直接刺人心脏抽吸血液;5、小鼠的常用给药方法1经口给药：小鼠灌胃左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定,右手持灌胃针,将灌胃针插入动物口中,沿咽后壁徐徐插入食道;动物应固定成垂直体位,针插入时应无阻力;若感到阻力或动物挣扎时,应立即停止进针或将针拔出,以兔损伤或穿破食道以及误入气管;一般当灌胃针插入小鼠3~4cm,常用的灌胃量小鼠为0.2~1ml；2皮下注射给药皮下注射给药部位以颈部三角区最佳;操作时,常规消毒注射部位皮肤,然后将皮肤提起,注射针头取一钝角角度刺入皮下,把针头轻轻向左右摆动,易摆动则表示已刺入皮下,再轻轻抽吸,如无回血,可缓慢地将药物注入皮下;拔针时左手拇、食指捏住进针部位片刻,以防止药物外漏;3肌肉注射给药小鼠体积小,肌肉少,很少采用肌肉注射;当给小鼠注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时,采用肌肉注射;操作时1人保定小鼠,另一人用左手抓住小鼠的1条后肢,右手拿注射器;将注射器与半腱肌呈90°角迅速插入1/4,注入药液.用药量不超过0.1ml/10g体重;4腹腔注射给药左左手提起并固定小鼠,使鼠腹部朝上,鼠头略低于尾部,右手持注射器将针头在下腹部靠近腹白线的两恻进行穿刺,针头刺入皮肤后进针3nm左右,接着使注射针头与皮肤呈45°角刺入腹肌,穿过腹肌进入腹膜腔,当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后抵抗感消失;固定针头,保持针尖不动,回抽针栓,如无回血、肠液和尿液后即可注射药液; 5尾静脉注射给药鼠尾静脉有两根,左右两侧各一根;操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在中,使尾巴露出,尾部用45～50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩张,并可使表皮角质软化,以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,使静脉充盈,用中指从下面托起尾巴,以无名指和小指夹住尾巴的末梢,右手持注射器,使针头与静脉平行小于30℃,从尾下四分之一处约距尾尖2-3厘米处进针,此处皮薄易于刺入,先缓注少量药液,如无阻力,表示针头已进入静脉,可继续注入;注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血;如需反复注射,应尽可能从末端开始,以后向尾根部方向移动注射;动进入注射器;6、小鼠的解剖将小鼠放在解剖盘上,用大头针将四肢固定在解剖盘上;用酒精棉球将小鼠腹部的皮肤消毒;用手术剪沿腹中线将小鼠的腹部和胸部的皮肤剪开,然后用手术剪将腹腔和胸腔剪开,仔细观察小鼠腹腔和胸腔的各内脏器官;内部脏器观察1肺：分左右两叶,右肺分为四叶,左肺为一整叶;2心脏：呈圆锥状,位于近胸骨端,心尖位于第四肋间;3肝：附于隔上,呈暗褐色,分5叶;4胃：分贲门、幽门、胃底及胃体;5肠：分小肠和大肠;小肠包括回肠、空肠和十二指肠;6脾：脾斜卧在胃的左侧,呈暗红色,长条扁平状;7胰：在十二指肠附近,呈粉红色;8肾：右肾比左肾位置稍高,肾脏前方有肾上腺,每肾内侧各有一根输尿管,开口于膀胱背侧;9卵巢和子宫：卵巢形似绿豆状,粉红色,左右各一,位于肾脏下方;小鼠为双角子宫,为Y字形;10睾丸：小鼠睾丸有一对,幼年时睾丸位于腹腔内,性成熟后则下降至阴囊内;实验二：大鼠实验一、实验目的1、掌握大鼠抓取、固定的基本方法；2、掌握大鼠的雌雄鉴别方法；3、掌握大鼠的标记方法；4、掌握大鼠的基本采血技术尾静脉采血、心脏釆血、腹主动脉采血；5、掌握大鼠的常用给药方法灌胃、腹腔注射、尾静脉注射、皮下注射、皮内注射、麻醉；6、掌握大鼠的解剖方法,熟悉内部脏器的自然位置；二、实验材料1、实验动物：每组SD大鼠2只1雌1雄；2、实验器械及试剂：鼠笼、大鼠固定器、大鼠固定板、1ml注射器、5ml注射器、眼科剪、弯头镊、灌胃针、10%水合氯醛、生理盐水；三、实验内容及步骤1.抓取和固定右手从鼠笼将大鼠尾巴上段抓住并提起,放在鼠笼上部;轻轻向后拉鼠尾,大鼠向前挣脱时,用左手拇指和食指抓住两耳后和劲部大部分皮肤;其余手指及掌心夹住背部和尾部,将大鼠尾巴钩绕于小指上,将尾巴固定;注意不要用力过大使大鼠窒息死亡;2.性别鉴定成年雄鼠的睾丸沉降至阴囊中,故其阴囊明显,成年雌鼠可见阴道开口和乳头,幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定,雄性：距离长,毛发密和其他部位一样,雌性：距离短,毛发稀疏;3.给药1灌胃:将注射器装入药物溶液,装上灌胃针;抓取固定大鼠后,使大鼠头部朝上,从大鼠口角一侧进针,沿咽后壁缓缓插入食道;若感到巨大阻力或动物挣扎时,应立即停止进针或将针拔出,以免损伤或穿破食道以及误入气管;一般当灌胃针插入大鼠4~5cm,常用的灌胃量大鼠为0.5~1ml；若药物灌入肺中,大鼠死亡;2腹腔注射：左手固定大鼠后,右手持针,45度沿腹白线两侧进针,刺入腹肌,穿过腹肌进入腹膜腔,当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后有落空感;针头刺入皮肤后进针3nm 左右,将注射针头朝上,减少与皮肤间的倾斜角度,继续进针;固定针头,保持针尖不动,回抽针栓,如无回血、肠液和尿液后即可注射药液;3尾静脉注射：鼠尾静脉有两根,左右两侧各一根;操作时先将动物固定在鼠筒内,使其尾巴露出,尾部用45～50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩张,并可使表皮角质软化,以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,使静脉充盈,用中指从下面托起尾巴,以无名指和小指夹住尾巴的末梢,右手持注射器,使针头与静脉平行小于30℃,从尾上三分之一处进针,此处皮薄易于刺入,回抽出血液后,表示针头已进入静脉,可缓慢将药物注入小鼠尾静脉中;注射完毕后用干棉球压迫尾部向注射以止血;如需反复注射,应尽可能从末端开始,以后向尾根部方向移动注射;切勿从后3/1处注射,此处大鼠易发生断尾现象;4皮下注射：将大鼠以俯卧位固定,将腹部皮肤去毛后,左手拇指和食指捏住腹部皮肤,右手持针沿纵轴方向刺入皮下,进针时感觉有阻力,继续刺入后突然阻力消失,判断针头可活动后注射入药液;注射成功后可见一个小丘状隆起,经过段时间后注射入的药物可被吸收;5皮内注射：小鼠以俯卧位固定,将腹部皮肤去毛后,左手拇指和食指捏住腹部皮肤,右手持针沿皮肤平行方向刺入捏住的皮肤,注射药液;若感觉注射时有阻力,注射部位局部形成光亮泛白的皮丘即为注射成功;为避免药液流出,停留片刻后将针头拔出,用干棉球按压针孔;4.麻醉：抓取固定大鼠后,通过腹腔注射的方式按10%水合氯醛2ml/kg的用量将适量的麻醉剂注射如大鼠体内,等待几分钟后观察大鼠反应;若大鼠行动迟缓或几乎不动为麻醉成功;若注射过量麻醉剂会造成大鼠死亡;5.釆血1尾静脉采血先将大鼠固定在鼠筒内,使其尾巴露出,尾部用45～50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩张,并可使表皮角质软化,以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,使静脉充盈,用中指从下面托起尾巴,以无名指和小指夹住尾巴的末梢,右手持注射器,使针头与静脉平行小于30℃,从尾上三分之一处进针,此处皮薄易于刺入,回抽出血液后继续采集血液,每次0.1ml;2心脏釆血：将麻醉后的小鼠以仰卧位放置,用指腹触摸观察确定小鼠心脏的位置为搏动为剧烈处;右手持注射器,左手在左侧固定心脏,针头紧贴剑突下以30度角向前刺入2.5cm左右,边进针边回抽针管,可见血液借心脏搏动的力量进入注射器内;此时固定针管及心脏的位置,继续采血;采血完成后拔出针头,用干棉球按压住针头的位置;每次采血量可达2~3ml;3腹主动脉采血：将大鼠麻醉固定后,用手术剪沿腹正中线剪开腹腔,将腹主动脉充分暴露后腹主动脉与腹主静脉伴行,紧贴脊柱,右手持注射器,针尖斜面朝下,入针角度约25~30度,朝向心端方向刺入,深度以5mm左右为宜,抽吸血液,若观察到针管中血液为鲜红色即为进针成功,继续采血;一般体重200~300g大鼠可采集血液8~10ml,采样过程迅速;6.大鼠解剖；将大鼠麻醉后放至在解大鼠固定板上,仰位放置,充分暴露颈部、胸部和腹部;用酒精棉球将小鼠腹部的皮肤消毒;用手术剪沿腹中线将小鼠的腹部和胸部的皮肤剪开,然后用手术剪将腹腔和胸腔剪开,仔细观察小鼠腹腔和胸腔的各内脏器官;内部脏器观察：1肺：分左右两叶,右肺分为四叶,左肺为一整叶;2心脏：呈圆锥状,位于近胸骨端,心尖位于第六肋间;乳白色胸腺附于主动脉弓前部;3肝：紧邻隔下,呈暗褐色,分7叶,无胆囊;4胃：分贲门、幽门、胃底及胃体;5肠：分小肠和大肠;小肠包括回肠、空肠和十二指肠;6脾：脾斜卧在胃的左侧,呈深红色,长条扁平状;7胰：在十二指肠附近,不规则状且呈粉红色,与脂肪相似但颜色不同;8肾：为黄豆大小,右肾比左肾位置稍高,肾脏前方有肾上腺米粒大小,每肾内侧各有一根输尿管,开口于膀胱背侧;9卵巢和子宫：在肾脏前方见肉色带有颗粒样突起的腺体为卵巢,两侧卵巢下方各连有一条输卵管,输卵管连接于下方子宫,两侧子宫结合形成“V”字形,经阴道开口于体外;10睾丸：小鼠睾丸有一对,幼年时睾丸位于腹腔内,性成熟后则下降至阴囊内;11颌下腺：打开颈部皮肤后在口腔底部可见两对椭圆形暗红色腺体为颌下腺;实验三：豚鼠、家兔的基本实验操作一、实验目的通过实际操作,掌握豚鼠和家兔的一般操作方法,包括豚鼠的抓取和固定、性别鉴定、灌胃、腹腔注射、心脏釆血、豚鼠解剖；家兔的抓取和固定、性别鉴定、耳缘静脉采血、耳缘静脉注射、耳缘静脉空气栓塞法注射、家兔解剖,了解豚鼠和家兔的各脏器解剖学位置;二、实验材料1、实验动物：豚鼠1只雌性、家兔1只雄性2、实验器械及试剂：鼠笼、鼠板、家兔固定器、兔板、头皮针、5ml注射器、眼科剪、弯头镊、导尿管、10%水合氯醛、生理盐水、手术剪、三、实验步骤1、豚鼠的抓取和固定豚鼠的抓取和固定：左手拇指和食指抓住豚鼠两耳后和颈部大部分皮肤;其余手指及掌心夹住背部和尾部,豚鼠四肢不会阻碍实验操作即为抓取固定成功,注意不要用力过大使豚鼠窒息死亡;2、豚鼠性别鉴定将豚鼠抓取固定后使其腹面朝上,用手按压豚鼠的会阴部,观察是否有阴茎出现即可判断雌雄;雄性豚鼠可观察到阴茎,雌性豚鼠可观察到会阴部;3、豚鼠麻醉左手抓取固定豚鼠后使其腹面朝上,右手持针,于豚鼠腹部呈30度沿腹白线两侧进针,刺入腹肌,穿过腹肌进入腹膜腔,当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后有落空感;针头刺入皮肤后进针3nm左右,将注射针头朝上,减少与皮肤间的倾斜角度,继续进针;固定针头,保持针尖不动,回抽针栓,如无回血、肠液和尿液后即可注射麻醉剂按10%水合氯醛4ml/kg的用量,豚鼠体重260g,故需注射1.1ml10%水合氯醛;将适量的麻醉剂注射入豚鼠体内,等待几分钟后观察豚鼠反应;若豚鼠全身瘫软几乎不动为麻醉成功;若注射过量麻醉剂易造成豚鼠死亡;4、豚鼠心脏釆血将麻醉后的豚鼠以仰卧位放置,用指腹触摸观察确定豚鼠心脏的位置为搏动为剧烈处,通常在胸骨左缘;右手持注射器,左手在左侧固定心脏,在三四肋间进针以30度角向左上刺入2.5cm左右,边进针边回抽针管,可见血液借心脏搏动的力量进入注射器内;此时固定针管及心脏的位置,继续采血;采血完成后拔出针头,用干棉球按压住针头的位置;每次采血量可达4~5ml;5、豚鼠解剖将通过心脏采血处死后的豚鼠放至在鼠板上,仰卧位放置,充分暴露颈部、胸部和腹部;用酒精棉球将豚鼠腹部的皮肤消毒;用手术剪沿腹中线将豚鼠腹部和胸部的皮肤剪开,然后用手术剪将腹腔和胸腔剪开,仔细观察豚鼠腹腔和胸腔的各内脏器官;内部脏器观察：1肺：共七叶,右肺四叶,左肺三叶；2心脏：呈圆锥状,位于近胸骨端,心尖位于第六肋间;乳白色胸腺附于主动脉弓前部；3肝：紧邻隔下,呈暗红色,分四个主叶和四个小叶,可见一光亮的胆囊附着于肝下；4胃：分两部,贲门部和幽门部,胃容量约20-30g；5肠：分小肠和大肠;小肠包括回肠、空肠和十二指肠,大肠包括结肠、盲肠和直肠;盲肠特别发达,占腹腔容积的1/3,占体重的15%；6脾：脾斜卧在胃的左侧,呈深红色,长条扁平状；7胰：一端紧贴脾脏,一端邻近十二指肠,不规则状且呈粉红色；8肾：为黄豆大小,右肾比左肾位置稍高,肾脏前方有肾上腺米粒大小,每肾内侧各有一根输尿管,开口于膀胱背侧；9卵巢和子宫：在肾脏前方见肉色带有颗粒样突起的腺体为卵巢,两侧卵巢下方各连有一条输卵管,输卵管连接于下方子宫,两侧子宫结合形成“V”字形,经阴道开口于体外;6、家兔的抓取和固定自笼内取出时,用手抓住家兔颈部被毛与皮肤,另一手托住其臀部,将其中心承托在掌上;切忌强提兔耳或某一肢体;用兔盒将家兔的头部及四肢固定,使其头部无法向后缩即为固定成功;7、家兔的性别鉴定家兔的性别鉴定类似于豚鼠的性别鉴定;将家兔抓取后使其腹面朝上,用手按压家兔的会阴部,观察是否有阴茎出现即可判断雌雄;雄性家兔可观察到阴茎,雌性家兔可观察到会阴部;8、家兔耳缘静脉采血用兔盒固定家兔后,先拔去耳缘静脉注射部位的被毛,用手指轻弹兔耳使静脉充盈;或者用酒精棉擦拭耳缘静脉注射区使静脉充盈后,左手食指与中指夹住静脉的近心端,阻止静脉回流,用拇指和无名指固定耳缘静脉远心端,右手持5ml注射器从远端刺入,然后移动左手拇指固定针头,回抽注射器,若有血液进去注射器即为采血成功,继续缓慢采血;一次最多可采5ml;9、家兔灌胃给药兔灌胃系用导尿管配以一根粗的棉绳,用棉绳固定家兔开口,将导尿管从家兔牙齿外侧缓慢沿上颚插入食道;插入约导尿管的2/3的位置;回抽针管,观察到无气体进去针管后注射药物;灌胃完毕后先取出导尿管后松开棉绳;10、家兔麻醉以耳缘静脉采血的方式在耳缘静脉处进针,回抽针管后若有回血,则可将适量麻醉剂按10%水合氯醛4ml/kg的用量;将适量的麻醉剂注射入家兔体内,等待几分钟后观察家兔反应;若家兔全身瘫软几乎不动为麻醉成功;11、家兔处死空气栓塞法以耳缘静脉采血的方式在耳缘静脉处进针,向耳缘静脉中注入一定量的空气5ml即可,使之发生空气栓塞而致死;观察到注入空气的家兔挣扎了两下后瞳孔扩散;12、家兔解剖将通过空气栓塞法处死后的家兔放至在兔板上,仰卧位放置,充分暴露颈部、胸部和腹部;用水将家兔的胸腹部的被毛充分润湿;用手术剪沿腹中线将家兔腹部和胸部的皮肤剪开,然后用手术剪将腹腔和胸腔打开,仔细观察家兔腹腔和胸腔的各内脏器官;内部脏器观察：1肺：共七叶,右肺四叶,左肺三叶;胸腔中间有纵膈将胸腔分为左右两部,互不相通;2心脏：呈圆锥状,位于近胸骨端,由左心房、左心室、右心房、右心室组成;3肝：紧邻隔下,呈暗红色,可见一墨绿色的胆囊附着于肝下;4胃：分两部,贲门部和幽门部;5肠：分小肠和大肠,其总长度为体长的10倍;盲肠非常大,长约0.5米;在回肠和盲肠相接处膨大呈一个后壁,呈圆形,为圆小囊;6脾：脾斜卧在胃的左侧,呈深红色,长条扁平状;7胰：一端紧贴脾脏,一端邻近十二指肠,为分布零散而不规则状且呈粉红色,与脂肪相似但颜色不同;8肾：为扁豆大小,右肾比左肾位置稍高,肾脏前方有肾上腺米粒大小,每肾内侧各有一根输尿管,开口于膀胱背侧;9雄兔睾丸下降到阴囊,两侧阴囊为乳白色;实验四：孕鼠剖腹取胎、近交系小鼠皮肤移植及小鼠卵巢和睾丸切除手术技巧操作一、实验目的1、小鼠的睾丸及卵巢切除是目前实验动物手术操作中最基础的技巧,要求初步掌握手术操作的基本流程、术中的细节及了解术后护理；2、掌握尾尾直皮的操作方法；3、通过实际操作,了解通过剖腹取胎术得到幼鼠的基本原理、操作和用途；二、实验材料1、实验动物：试验用孕鼠、清洁级小鼠雌雄各一只；2、实验器械与试剂：鼠笼、鼠板、5ml注射器、眼科剪、弯头镊、10%水合氯醛、手术剪、干棉球、酒精棉球；三、实验内容1、小鼠的睾丸切除手术小鼠常规麻醉,采用俯仰卧位,置于固定台上;尿道口上5mm处脱毛,常规消毒;在腹白线左或右2-3mm处平行于腹白线开一个5-8mm手术口直达腹腔;进入腹腔可见包裹在睾丸周围的脂肪组织;将脂肪组织拉至腹腔,分离附睾并结扎相关血管,即可切除睾丸;将腹膜与肌层一起缝合,缝合皮肤;2、小鼠卵巢切除手术小鼠卵巢切除术多采用背部切口;小鼠常规麻醉,采用俯卧或侧卧位,置于固定台上,以肋下0.5cm,脊柱处1cm为中心剪除或拔出长毛,常规消毒,切口约0.5cm,切开皮肤,一边扩张一边钝性分离,用眼科镊夹住创口看到的肌层,在离脊柱肋下剪开腰肌,长约0.5切口,立即可见两侧包绕卵巢的脂肪组织及紧密相连的子宫角,用弯镊带环镊轻轻夹住脂肪组织将其拉出创口,在子宫角上部及下部的输卵管的部位做两个结扎,结扎后用环形镊或眼科剪切断子宫角,将卵巢摘除,检查有无出血,把脂肪组织推回腹腔内,将腹膜与肌层一起缝合,缝合皮肤;背部切口创伤小,直观,视野清楚,易操作,不需牵拉其它脏器,手术时间短;3、近交系小鼠皮肤移植实验尾尾植皮法是在一组近郊系内,将小鼠尾部的皮肤轮换移植到另外一个小鼠的尾部;此方法一个可以同时做几只,省时间;而且有自体移植,可以用于鉴别植皮的脱落是排斥反应,还是手术失败造成的;麻醉动物,用75%的酒精棉球,消毒动物的尾部以及手术者的双手,随后用左手食指与中指夹住小鼠尾根,拇指与无名指夹紧鼠尾的尖部;右手用手术刀在尾皮上割一块长约0.75cm长的尾皮,刀口深度应露出白色的健,但又不割坏血管;这样即提供了一块供体植皮,又得到一处受体植床;取下皮片后,将皮片手术刀从右手方向转到左手方向,这样皮片也就旋转了180度,使皮片上的毛与尾部的毛长向相反,然后用眼科镊将植皮镶嵌到异体的尾部植床上,用滤纸轻轻地来回按几下皮片,使其尽可能紧贴在上面,本次实验由于时间限制,不进行结果观察;4、孕鼠剖腹取胎实验1以颈椎脱臼法将孕鼠处死后,取仰卧位固定小鼠于动物固定板上,暴露腹部手术部位进行酒精消毒；注意处死动作要快,勿用力按压腹部,防止胎儿受损;2用剪刀沿腹中线剪开腹部皮肤、腹肌和腹膜,暴露子宫,用止血钳分别夹住子宫颈部和两侧卵巢韧带,剪断后取出子宫;取下子宫用盐水冲洗下,剪开子宫尽快将胎儿连胎盘一同取出;3用棉球擦拭幼鼠,轻轻按摩腹腔和腹部促使新生鼠开始呼吸,待新生鼠呼吸,血循环正常后,以止血钳扎断脐带;4本组孕鼠经剖腹产手术得到18只小鼠;新生小鼠体表无毛,皮肤红润,眼闭,胸前有一个深红色胎盘附于其上,体表略湿;。
