水体微生物的检测

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水体微生物的检测指标
菌落总数(aerobic bacterial count)
是指1ml水样在营养琼脂培养基中,于37℃经24h培养后,所生长的细菌菌落的总数。
检测意义:作为一般性污染的指标,即评价被检样品的微生物污染程度和安全性。水样菌落
总数越多,说明水被微生物污染程度越严重,病原微生物存在的可能性越大,但不能说明污
染的来源
总大肠菌群(coliform bacteria)
是指一群需氧及兼性厌氧的,37℃生长时能使乳糖发酵,在24h内产酸产气的革兰氏阴
性无芽胞杆菌。
检测意义:作为粪便污染的指标。水样总大肠菌群数的含量,表明水被粪便污染的程度,而
且间接地表明有肠道致病菌存在的可能。
水样采集
菌落总数的测定;
总大肠菌群的测定。
采样原则
所采集的样品具有代表性。
采样容器:选择硼硅玻璃瓶和聚乙烯塑料瓶。
不能是新的污染源;不吸收或吸附某些待测组分;不与待测组分发生反应。保证从采样
到分析期间,样品各组分的浓度不发生改变。
必须按一般无菌操作的基本要求采集,并保证在运送、贮存过程中不受污染。
▪ 自来水水样:先将自来水龙头用火焰烧灼3min灭菌,再开放水龙头使水流5 min(经
常用水的水龙头放水1~3min)后,采集水样于无菌锥形瓶,约占瓶容量80%,以
便摇匀水样。
▪ 水源水水样:选有代表性的地点及可疑地方,一般距水面下10~15cm采样。采样
后,将瓶塞盖好,再从水中取出。
▪ 注意事项
▪ 严格无菌操作。
▪ 做好标记:采得水样后应立即记录水样名称、地点、时间等项目。
▪ 从速送检。水样从采集到检验不应超过2h,在0~4℃下保存不应超过24h。
— 平板菌落计数法
(一)生活饮用水
➢ [器材与试剂]
 无菌1ml吸管1支/组,无菌平皿3个/组,营养琼脂。
➢ [方法]
 水样摇匀20~25次,使细菌分散。
 倾注培养:无菌吸取1ml水样分别置于2个空平皿,另一个作空白
对照。再倾注15ml琼脂(约45℃)于平皿中旋转,混匀待琼脂凝
固后倒置37℃24h。
 菌落计数:用肉眼或放大镜检查,计数平皿内菌落数目。
➢ [结果分析与报告]
➢ 计算平均菌落数:
➢ 报告方式:菌落总数(cfu/ml)。 cfu:colony forming units
 当检样的菌落数为l~100时,按实有数报告;大于100时,采用二
位有效数字报告。
➢ 国家标准(GB5749-2006)规定生活饮用水菌落总数每毫升不得超过100个。
(二)水源水
▪ [器材与试剂]
➢ 无菌1ml吸管6支/组,无菌10ml吸管1支/组。
➢ 无菌平皿9个/组,营养琼脂。
➢ 90ml灭菌盐水1瓶(内置适量玻璃珠),9ml灭菌盐水管3支。
▪ [方法]
➢ 稀释水样:
▪ 无菌吸10ml混匀水样注入90ml灭菌水瓶中,混匀成1:10水样。
▪ 取1:10水样1ml注入9ml灭菌试管中混匀成1:100水样。同法稀释
成1:1000, 1:10000水样。
➢ 倾注培养:
▪ 用1ml无菌吸管吸取2~3个适当浓度的稀释液1ml,分别注入无菌平
皿中,每个稀释度应同时做2个平皿,另取一平皿作空白对照。再
做倾注培养(方法同饮用水)。
菌落计数:方法同饮用水。

▪ [结果分析与报告]
➢ 计算不同稀释度的平均菌落数:
➢ 稀释度的选择和菌落总数报告方式:
 首先选择平均菌落在30~300之间者进行计算。
 计算方法和报告方式如表1所示。
表1 稀释度选择及菌落总数报告方式

不同稀释度的平均菌落数 两稀释 度菌落 总数之比 菌落总数 (cfu/m1) 报告方式

(cfu/m1)
10-1 10-2 10-3

1 2 3 4 5 6 7 8 1365 2760 2890 150 多不可计 27 多不可计 0 164 295 271 30 4650 1l 305 0 20 46 60 8 513 5 12 0 — 1.6 2.2 2 — — — — 16400 37750 27100 1 500 513000 270 30500 <1×10 16000或1.6×104
38000或3.8×104
27000或2.7×104
1500或1.5×103
510000或5.1×105
270或2.7×102
31000或3.1×104
<10
▪ 由表2可判定水质被污染的程度。

表2 一般水源水中菌落总数与水清洁程度的关系
水的类别 最清洁水 清洁水 不太清洁水 不清洁水 极不清洁水

菌落总数 cfu/m1 10~100 100~ 1000 1000~ 10000 10000~
100000
>100000

[注意事项]
➢ 菌落总数测定中,应选择合适的稀释度进行。(生活饮用水,国家标准规定
每毫升不得超过100个,因此可以直接吸取1毫升到平板进行培养)
➢ 各稀释管、相应平皿做好标记。包括:水样名称、稀释度、时间、小组。
➢ 严格无菌操作。进行水样稀释时,每一稀释度均需更换吸管。
➢ 倾注时,要注意营养琼脂的温度。
➢ 倾入琼脂后要混匀,待琼脂凝固后倒置培养。
▪ 实验目的与要求:

(1)学习并掌握水体中细菌总数的检验方法、检验的原理、检验的依据、数据处理和报告
方法。
(2) 强化水体细菌总数检验的卫生意义知识。
▪ 二、基本原理
本实验应用平板计数技术测定水中细菌总数。由于水中细菌种类繁多,它们对营养和其
他生长条件的要求差别很大,不可能找到一种培养基在一种条件下,使水中所有的细菌均能
生长繁殖,因此,以一定的培养基平板上生长出来的菌落,计算出来的水中细菌总数仅是一
种近似值。目前一般是采用普通牛肉膏蛋白胨琼脂培养基。
三、器材
▪ 牛肉膏蛋白胨琼脂培养基,灭菌水;
灭菌三角烧瓶,灭菌的带玻璃塞瓶,灭菌培养皿,灭菌吸管,灭菌试管,培养箱等。
四、操作步骤
▪ 1.水样的采取
(1)自来水先将自来水龙头用火焰烧灼3分钟灭菌,再开放水龙头使水流5分钟后,
以灭菌三角烧瓶接取水样,以待分析。
(2)池水、河水或湖水应取距水面10—15cm的深层水样,先将灭菌的带玻璃塞瓶,
瓶口向下浸入水中,然后翻转过来,除去玻璃塞,水即流入瓶中,盛满后,将瓶塞盖好,再
从水中取出,最好立即检查,否则需放入冰箱中保存。
▪ 2.细菌总数测定
(1)自来水
(a)用灭菌吸管吸取1ml水样,注入灭菌培养皿中。共做两个平皿。
(b)分别倾注约15ml已溶化并冷却到45℃左右的肉膏蛋白胨琼脂培养基,并立即在
桌上作平面旋摇,使水样与培养基充分混匀。
(c)另取一空的灭菌培养皿,倾注肉膏蛋白胨琼脂培养基15ml,作空白对照。
(d)培养基凝固后,倒置于37℃温箱中,培养24小时,进行菌落计数。
两个平板的平均菌落数即为1ml水样的细菌总数。
▪ (2)池水、河水或湖水等
(a)稀释水样取3个灭菌空试管,分别加入9ml灭菌水。取1ml水样注入第一管9ml
灭菌水内,摇匀,再自第一管取1ml至下一管灭菌水内,如此稀释到第三管,稀释度分别
为10-1、10-2与10-3。稀释倍数看水样污浊程度而定,以培养后平板的菌落数在30—300
个之间的稀释度最为合适,若三个稀释度的菌数均多到无法计数或少到无法计数,则需继续
稀释或减小稀释倍数。一般中等污秽水样,取10-1、10-2、10-3三个连续稀释度,污秽严重
的取10-2、10-3、10-4三个连续稀释度。
(b)自最后三个稀释度的试管中各取1ml稀释水加入空的灭菌培养皿中,每一稀释度
做两个培养皿。
(c)各倾注15ml已溶化并冷却至45℃左右的肉膏蛋白胨琼脂培养基,立即放在桌上
摇匀。
(d)凝固后倒置于37℃培养箱中培养24小时。

▪ 3.菌落计数方法
▪ (1)先计算相同稀释度的平均菌落数。若其中一个培养皿有较大片状菌苔生长
时,则不应采用,而应以无片状菌苔生长的培养皿作为该稀释度的平均菌落数。若
片状菌苔的大小不到培养皿的一半,而其余的一半菌落分布又很均匀时,则可将此
一半的菌落数乘2以代表全培养皿的菌落数,然后再计算该稀释度的平均菌落数。
▪ (2)首先选择平均菌落数在30—300之间的,当只有一个稀释度的平均菌落数
符合此范围时,则以该平均菌落数乘其稀释倍数即为该水样的细菌总数。
▪ (3)若有两个稀释度的平均菌落数均在30—300之间,则按两者菌落总数之比
值来决定。若其比值小于2,应采取两者的平均数;若大于2,则取其中较小的菌落
总数。
▪ (4)若所有稀释度的平均菌落数均大于300,则应按稀释度最高的平均菌落数
乘以稀释倍数。
▪ (5)若所有稀释度的平均菌落数均小于30,则应按稀释度最低的平均菌落数
乘以稀释倍数。
▪ (6)若所有稀释度的平均菌落数均不在30—300之间,则以最近300或30的
平均菌落数乘以稀释倍数。