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住友化学公司掌握大豆的不定胚培养-再生系统
孙国凤
【期刊名称】《生物技术通报》
【年(卷),期】1989(000)008
【摘要】美国俄亥俄州立大学农学部 John J.Finer 助理教授和住友化学公司合作,在从大豆种子诱导不定胚愈伤组织的同时,确立了再生植物体的技术。
最近在福冈召开的日本育种学会
【总页数】2页(P9-10)
【作者】孙国凤
【作者单位】
【正文语种】中文
【中图分类】Q81
【相关文献】
1.山新杨叶片不定芽再生系统优化 [J], 姚志红;李俊男;黄寿臣;姜传英;李亚楠;李淑珍;张荣沭
2.白菜高效再生系统的建立及其不定芽发生的组织学观察(简报) [J], 余小林;叶纨芝;曹家树;徐淑英
3.喜树茎段不定芽的诱导及再生系统的建立 [J], 陈颖;曹福亮;李淑娴;谢寅峰
4.大豆未成熟胚培养中高浓度植物生长素的作用及其植株再生 [J], 李大
玮;Schm.,J.
5.水稻成熟胚培养高效再生系统的创新 [J], 黄赛麟;李东宣;甘树仙;朱建荣;李娟;梁晶;陈丽娟
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小豆不定芽诱导及再生体系的建立小豆（Vigna angularis）是一种重要的食用豆类作物，具有丰富的营养价值和经济价值。
小豆生长发育过程中常常受到各种生物和非生物胁迫的影响，导致生长发育异常甚至死亡。
对小豆进行不定芽诱导及再生体系的建立具有重要意义，可以为小豆的育种改良、基因转化等领域提供重要的技术支持。
一、小豆不定芽诱导的研究现状不定芽诱导是植物再生体系建立的重要基础，对于小豆来说尤为重要。
目前关于小豆不定芽诱导的研究相对较少，主要集中在植物激素处理、组织培养方法和基因表达调控等方面。
植物激素处理是不定芽诱导研究的关键环节，通过外源激素的处理可以促进小豆愈伤组织的形成和增殖，进而实现不定芽的诱导。
二、小豆再生体系的建立针对小豆不定芽诱导的研究现状，我们团队进行了一系列相关研究，并成功建立了小豆的再生体系。
我们优化了小豆的愈伤组织培养条件，通过对植物激素种类、浓度和处理时间等因素的优化，最终确定了最适宜的小豆愈伤组织培养条件。
我们利用分子生物学技术对小豆的基因表达进行了研究，发现了与不定芽诱导相关的关键基因，为进一步揭示小豆不定芽诱导机制提供了重要的理论基础。
我们成功实现了小豆在体外再生的过程，得到了大量的不定芽和愈伤植株，为小豆的遗传改良和基因转化提供了重要的材料基础。
三、小豆再生体系的应用前景小豆再生体系的建立为小豆的育种改良、基因转化和抗逆性研究提供了重要的技术支持。
通过利用再生体系可以实现小豆的优良种质筛选和育种改良，可以快速培育出具有优良性状的新品种。
再生体系也可以为小豆的基因转化提供重要的材料基础，可以实现外源基因的导入和表达，为小豆的抗逆性研究和功能基因的研究提供了重要的平台。
小豆不定芽诱导及再生体系的建立具有重要的理论和应用价值，为小豆的遗传改良、基因转化和抗逆性研究提供了重要的技术支持。
未来，我们将进一步深入研究小豆再生体系的建立机理，探索更多的应用领域，为小豆的科研和生产提供更多更好的技术支持。
青蒿茎段愈伤组织的诱导及植株再生施波;孙小琴;任甜甜;石开明;丁莉;周毅峰;周光来【摘要】为了建立青蒿的快速繁殖与遗传育种体系,以青蒿茎段为外植体,研究其离体培养及试管苗再生途径.结果表明,青蒿基段愈伤组织诱导培养基为MS+6-BA1.0mg·L-1+NAA1.0mg·L-1,分化培养为MS+6-BA3.0·L-1+NAA0.5 mg·L-1,生根培养基为MS+NN1.5mg·L-1.【期刊名称】《湖北民族学院学报（自然科学版）》【年(卷),期】2008(026)002【总页数】3页(P217-219)【关键词】青蒿;青蒿素;愈伤;植株再生【作者】施波;孙小琴;任甜甜;石开明;丁莉;周毅峰;周光来【作者单位】湖北民族学院,生物科学与技术学院,湖北,恩施,445000;湖北民族学院,生物科学与技术学院,湖北,恩施,445000;湖北民族学院,生物科学与技术学院,湖北,恩施,445000;湖北民族学院,生物科学与技术学院,湖北,恩施,445000;湖北民族学院,生物科学与技术学院,湖北,恩施,445000;湖北民族学院,生物科学与技术学院,湖北,恩施,445000;湖北民族学院,生物科学与技术学院,湖北,恩施,445000【正文语种】中文【中图分类】R931.21.1 材料青蒿植株由恩施州农业科学研究所青蒿种植基地提供.1.2 方法(1)培养基:以MS为基本培养基，附加蔗糖30 g·L-1，琼脂7 g·L-1，pH调至5.8.由6-BA与NAA激素的不同浓度配制成诱导培养基、分化培养基和生根培养基，121℃高温灭菌20min［9］.(2)取青蒿幼嫩茎段(距顶端1～3 cm处)，用水冲洗30min，在超净工作台上用75%乙醇漂洗1min，转入5%次氯酸钠溶液中浸泡20min，无菌水冲洗4～5次. (3)将无菌外植体剪切成0.5～1.0 cm长的小段，接种在诱导培养基上无菌培养.培养条件为25±1℃，光照1500～2000 lux，每天光照14 h.10 d后观察愈伤组织形成的情况.(4)青蒿愈伤组织分化.将青蒿愈伤组织切成0.5 cm见方的小块分别接种在不同激素浓度的分化培养基上.培养条件为25±1℃，光照1500-2000 lux，每天光照14h.分别观察不同时间的培养后愈伤组织的分化情况.(5)青蒿试管苗的生根.将生长较好的试管苗切成带1～2个节的茎段，转接于生根培养基中，培养条件同上.11 d后观察试管苗的生根情况.2.1 愈伤组织的诱导本研究利用MS与不同浓度的激素(6-BA与NAA)组合培养基，对青蒿茎段愈伤组织进行诱导，生长10 d后进行结果统计(见表1).6-BA浓度的增加有利于青蒿茎段愈伤组织的诱导，但随浓度增至2.0mg·L-1时，出现了较严重的褐化现象，不利于青蒿愈伤组织的进一步分化;NAA浓度的增加对青蒿愈伤组织的诱导率没有太大的影响，但随浓度增至1.5mg·L-1时，产生的愈伤组织普遍细小，说明高浓度的生长激素不利于愈伤组织的产生.从3号培养基诱导的愈伤组织可以看出，愈伤组织较疏松，产生量大，颜色鲜艳，且只有局部褐化，故3号培养基(MS+6-BA 1.0mg·L-1+NAA 1.0mg·L-1)为最佳诱导培养基.2.2 愈伤组织的再分化将最佳诱导培养基产生的愈伤组织转接于分化培养基上，产生不定芽的情况见表2. 从表2中可以看出，适当提高6-BA浓度更利于愈伤组织的分化，当浓度达到3.5mg/L(6-BA∶NAA=7∶1)时，产生不定芽数量有所下降，说明细胞分裂素与生长素的浓度比过高反而不利于愈伤组织的分化.培养一周后，3号培养基(MS+6-BA3.0+NAA0.5)产生的不定芽，顶尖呈白色，基部呈淡绿色，且长势也很好，说明3号培养基为最佳的分化培养基.将分化出的不定芽切成带少量愈伤组织的小芽继代培养，观察发现，芽基部继续分化出许多不定芽，8天后长出许多小叶片.再经两周的培养，芽分化成丛生苗，叶片较密，颜色鲜绿，生长旺盛，由此可以看出，青蒿不定芽在3号培养基(MS+6-BA3.0+NAA0.5)上扩繁也较快.2.3 试管苗的生根将上述试管苗切分成若干单株，接种在生根培养基上进行培养.研究表明:青蒿试管苗较容易生根.11 d后统计生根情况如表3所示.由表3可以看出:NAA浓度的适当增加和6-BA浓度的减小有利于试管苗的生根，但当NAA浓度达到2.0mg/L时，根系较细，而3号培养基(MS+NAA1.5)的生根情况最好，生长很快且根系粗壮，更适用于遗传学的研究，故此培养基为最佳生根培养基.本文以青蒿幼嫩茎段为外植体，采用常规的培养基、激素和消毒剂，进行了愈伤组织的诱导、分化和生根等一系列研究.由结果可以看出，青蒿茎段产生愈伤组织与以青蒿子叶和花序等材料为外植体来诱导愈伤组织条件略有不同.王梦琼［10］以青蒿花枝为外植体，以MS+6-BA1.0+2，4-D0.5培养基诱导愈伤组织，并以MS+IAA0.1+KT1.0和MS+IAA0.1+6-BA1.0+NAA1.0培养基分别分化出芽及根;杨耀文［11］等以幼嫩花序为外植体，分别在MS+6-BA8+IAA10、MS+6-BA1.5+IAA0.2、1/2MS+IAA0.5+NAA0.5培养基上分化苗及生根;张伟华［12］用带腋芽的嫩茎和叶片为外植体，在MS+6-BA0.5+2.4-D1.5的培养基上诱导愈伤组织，诱导率分别为86%和100%.本研究表明:青蒿茎段在MS+6-BA1.0+NAA1.0培养基上诱导愈伤组织，在MS+6-BA3.0+NAA0.5培养基上分化与扩繁，在MS+NAA1.5培养基上生根.基于青蒿茎段来源丰富，取材方便，易消毒，成本低等优点，利用茎段为外植体进行组织培养，克服了以青蒿子叶、花序等材料为外植体诱导愈伤组织过程中的消毒时间不易掌控、愈伤不易分化等难题，并且在较短时间内就可获得大量分化良好的愈伤组织以及健壮的根系，为青蒿的快速繁殖提供了基础平台，更为青蒿的遗传分析、育种改良等研究提供了优良的基础材料.［1］钟国跃，周华蓉，凌云，等.黄花蒿优质种质资源的研究［J］.中草药，1998，29(4):264-266.［2］刘春朝，王玉春，欧阳藩.青蒿素研究进展［J］.化学进展，1999，11(1):4l-47.［3］中国中医药信息杂志通讯员.世界卫生组织呼吁中国增加青蒿素产量［J］.中国中医药信息杂志，2005，12(8):110.［4］穆胜玉，白志川，宋孝霞.青蒿组织培养体系建立的研究［J］.重庆科技学院学报，2006，8(4):21-24，35.［5］赵兵，王玉春，欧阳藩，等.生物合成青蒿素及其衍生物研究概况［J］.中药材，1998，21(12):639-642.［6］Alain Goossens，Suvit.Häkkinen，Into Laakso，et al.Secretion of secondarymetabolites by ATP-binding cassette transporters in plant cell suspension cultures［J］.Plant Physiol，2003，131:1161-1164.［7］耿飒，叶和春，李国风.中药青蒿的生理生化特征及研究进展［J］.应用与环境生物学报，2002，8(1):90-97.［8］Fulzele D P，Sopahimalarn AT，Heble MR.Tissue Cultures ofArtemisia Annua:Organogenesis and Artemisinin Production［J］.Phytother Res，1991，5:149-153.［9］周光来.湖北贝母愈伤组织诱导条件的研究［J］.湖北民族学院学报:自然科学版，2004，22(4):39-41.［10］王梦琼.青蒿的组织培养厦植株再生［J］.北京中医药大学学报，2004，27(2):74-75.［11］杨耀文，李保军，张廷襄.黄花蒿组织培养的初步研究［J］.云南中医学院学报，2001，24(2):8，19.［12］张伟华.不同激素组合影响黄花蒿快速繁殖的初步研究［J］.长春理工大学学报，2006，2(4):169-171.【相关文献】［1］钟国跃，周华蓉，凌云，等.黄花蒿优质种质资源的研究［J］.中草药，1998，29(4):264-266.［2］刘春朝，王玉春，欧阳藩.青蒿素研究进展［J］.化学进展，1999，11(1):4l-47.［3］中国中医药信息杂志通讯员.世界卫生组织呼吁中国增加青蒿素产量［J］.中国中医药信息杂志，2005，12(8):110.［4］穆胜玉，白志川，宋孝霞.青蒿组织培养体系建立的研究［J］.重庆科技学院学报，2006，8(4):21-24，35.［5］赵兵，王玉春，欧阳藩，等.生物合成青蒿素及其衍生物研究概况［J］.中药材，1998，21(12):639-642.［6］Alain Goossens，Suvit.Häkkinen，Into Laakso，et al.Secretion of secondarymetabolites by ATP-binding cassette transporters in plant cell suspension cultures［J］.Plant Physiol，2003，131:1161-1164.［7］耿飒，叶和春，李国风.中药青蒿的生理生化特征及研究进展［J］.应用与环境生物学报，2002，8(1):90-97.［8］Fulzele D P，Sopahimalarn AT，Heble MR.Tissue Cultures of ArtemisiaAnnua:Organogenesis and Artemisinin Production［J］.Phytother Res，1991，5:149-153. ［9］周光来.湖北贝母愈伤组织诱导条件的研究［J］.湖北民族学院学报:自然科学版，2004，22(4):39-41.［10］王梦琼.青蒿的组织培养厦植株再生［J］.北京中医药大学学报，2004，27(2):74-75.［11］杨耀文，李保军，张廷襄.黄花蒿组织培养的初步研究［J］.云南中医学院学报，2001，24(2):8，19.［12］张伟华.不同激素组合影响黄花蒿快速繁殖的初步研究［J］.长春理工大学学报，2006，2(4):169-171.Induction of Callus from Stem Segment of Artemisia annua L.and Plant Regeneration。
辣椒三系子叶愈伤组织诱导及植株再生宋利娜;康德贤;王红梅;王益奎;李文嘉;曹振木【期刊名称】《北方园艺》【年(卷),期】2012(000)009【摘要】以辣椒雄性不育系、保持系、恢复系子叶为外植体,研究了6-BA、IAA 浓度组合及AgNO3对子叶离体再生培养的影响.结果表明:三系之间在愈伤诱导和不定芽分化上均表现一定的差异,不仅最适的愈伤诱导和不定芽分化培养基不同,且分化出不定芽的数量也表现出较大差异,R-1分化出的不定芽数目明显多于A-1、B-1；AgNO3对愈伤组织诱导没有明显的作用,但3 mg/L的AgNO3可提高不定芽的分化率；6-BA/IAA比值为10时与比值为4时相比更有利于不定芽的分化；1/2MS+IAA 0.2 mg/L+NAA 0.1mg/L是辣椒三系最优的生根培养基配方.【总页数】4页(P109-112)【作者】宋利娜;康德贤;王红梅;王益奎;李文嘉;曹振木【作者单位】广西大学农学院,广西南宁530004;广西农业科学院蔬菜研究所,广西南宁530007;广西作物遗传改良重点实验室,广西南宁530007;广西作物遗传改良重点实验室,广西南宁530007;广西大学农学院,广西南宁530004;广西农业科学院蔬菜研究所,广西南宁530007;广西作物遗传改良重点实验室,广西南宁530007;中国热带农业科学院热带作物品种资源研究所,海南儋州571737;中国热带农业科学院热带作物品种资源研究所,海南儋州571737【正文语种】中文【中图分类】S641.303.6【相关文献】1."保冠一号"番茄子叶与下胚轴的愈伤组织诱导与植株再生 [J], 李永辉;白远国;邓红云;陈豪2.植物激素对药用植物山丹离体子叶愈伤组织诱导、器官分化及植株再生的影响[J], 胡人伦3.黄瓜子叶下胚轴愈伤组织诱导及植株再生试验 [J], 佟新萍4.苹果子叶愈伤组织的诱导及植株再生的研究 [J], 范昆华;蒋震涛5.屋久岛紫薇子叶愈伤组织诱导及植株再生技术初探 [J], 陈红;陆小清;王传永;蔡小龙;张凡;周艳威;李云龙因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
烟草愈伤组织诱导与植株再生摘要：烟草( Nicotiana tabacum L. )又名草烟，为茄科烟草属的一年生草本植物，是重要的经济作物，常被作为基因工程和分子生物学研究中重要的模式植物[1-5]，具有药用、工业用、保健和美容等多种价值。
近年来有人从花烟草中提取出NaD1,具有抗肿瘤的功效[6]。
利用愈伤组织诱导与植株再生的细胞工程技术来培育烟草可以大大节约烟草的培育成本。
本实验以烟草叶片为实验材料，分别在黑暗、16h/d光周期条件下，用MS+BA 2mg/L + NAA 2mg/L 培养基诱导烟草叶片形成愈伤组织。
用MS+BA 2mg/L + NAA 0.5mg/L培养基全光照诱导分化。
实验结果关键词：烟草；愈伤组织；诱导分化；植株再生；光周期Callus induction and plant regeneration of Nicotiana tabacum LShi Meng-wei(Biotechnology Class 1403)Abstract: Nicotiana tabacum L, also named herbal tobacco, which is classified in Solanaceae Nicotiana L plants, is an annual,as the important Model plant of Genetic engineering and Molecular biology. Tobacco possesses great value in medical, industrial, as well as in cosmetic area. In recent years,NaD1 which has the effect of anti-tumor has been extracted from Nicotiana alata. It is able to save the cost savings of cultivating tobacco by means of callus induction and plant regeneration. In this experiment, the leaves of tobacco are induced the formation of callus in culture medium MS+BA 2mg/L + NAA 2mg/L under the light conditions of completely dark and 16h/d photoperiod, then induced redifferentiation in culture medium MS+BA 2mg/L + NAA 2mg/L.1前言植物组织培养是植物细胞工程中研究得比较早、也比较成熟的技术。
