实验动物学 大鼠

一、实验目的1. 掌握解剖学的基本方法与技能；2. 熟悉大鼠的解剖结构，了解其器官的形态和功能；3. 培养学生的观察能力和实验操作能力。

二、实验材料与仪器1. 实验动物：成年雄性大鼠一只；2. 仪器：解剖盘、解剖剪、镊子、解剖刀、解剖针、解剖显微镜、解剖显微镜光源、解剖显微镜载物台、解剖显微镜镜头等；3. 药品：生理盐水、10%甲醛溶液、70%酒精、5%碘酊、5%氯化钠溶液等。

三、实验步骤1. 准备工作（1）将大鼠处死，解剖前应确保大鼠已死亡，以免造成实验者伤害。

（2）用生理盐水清洗大鼠体表，去除污物。

（3）将大鼠放在解剖盘上，用解剖剪沿背部正中线剪开皮肤，暴露肌肉和内脏。

2. 解剖顺序（1）从头至尾解剖：1）剪开颅骨，暴露大脑、小脑和脑干；2）剪开胸腔，暴露心脏、肺、气管、食管、胃、肝脏、脾脏、肾脏、肾上腺等器官；3）剪开腹腔，暴露小肠、大肠、胃、肝脏、脾脏、肾脏、肾上腺等器官；4）剪开盆腔，暴露生殖器官、膀胱、直肠等器官。

（2）器官解剖：1）大脑：观察大脑的形态、大小、重量，辨认大脑的各个叶和沟回；2）心脏：观察心脏的形态、大小、重量，辨认心脏的四个腔室；3）肺：观察肺的形态、大小、重量，辨认肺的叶和段；4）肝脏：观察肝脏的形态、大小、重量，辨认肝脏的叶和段；5）脾脏：观察脾脏的形态、大小、重量，辨认脾脏的叶和段；6）肾脏：观察肾脏的形态、大小、重量，辨认肾脏的皮质、髓质和肾盂；7）肾上腺：观察肾上腺的形态、大小、重量，辨认肾上腺的皮质和髓质；8）生殖器官：观察生殖器官的形态、大小、重量，辨认生殖器官的各个部分；9）膀胱：观察膀胱的形态、大小、重量，辨认膀胱的壁和腔；10）直肠：观察直肠的形态、大小、重量，辨认直肠的壁和腔。

3. 标本处理（1）将解剖好的器官用生理盐水清洗，去除血污和杂质；（2）将器官放入10%甲醛溶液中固定，浸泡24小时；（3）将固定好的器官取出，用70%酒精清洗，去除甲醛；（4）将清洗好的器官放入5%碘酊中染色，染色时间为30分钟；（5）将染色好的器官取出，用5%氯化钠溶液清洗，去除碘酊；（6）将清洗好的器官放入解剖显微镜下观察，拍照记录。

大鼠解剖实验报告讨论概述大鼠解剖实验是一项常见的实验手段，用于研究大鼠的解剖结构、器官功能以及疾病模型的建立等。

本文将重点讨论大鼠解剖实验的相关内容及其应用。

实验方法在大鼠解剖实验中，首先需要施行安乐死，通常采用麻醉药物如巴比妥类或氯仿进行。

然后，利用手术刀、剪刀和镊子等工具，从胸骨到耻骨进行剖腹手术，暴露内脏器官。

在观察和记录鼠体表面特征后，可以连同皮肤一起剥离，以便更好地观察和学习内部解剖结构。

实验结束后，可以进一步提取组织、器官用于后续的组织学、生理学和病理学实验。

解剖结构的观察与研究大鼠是一种广泛应用于生物医学研究的模式生物，其解剖结构与人类相似度较高，因此在解剖研究中具有重要意义。

通过解剖观察，可以深入了解大鼠各器官的位置、大小、外观特征等，为进一步研究其功能与相关疾病打下基础。

心脏大鼠的心脏位于胸腔中，由左右心房和左右心室组成。

通过解剖实验，可以清楚地观察和测量心脏的体积、重量以及心脏各组织结构的组织学特征。

这将有助于研究心脏相关疾病的发生机制和治疗方法。

肺部大鼠的肺部位于胸腔中，通过解剖实验可以观察和测量肺部的大小、重量等指标。

此外，还可以进一步观察肺部的组织学结构，如肺泡、支气管等，以了解呼吸系统的解剖特征和功能。

肝脏肝脏是大鼠体内最大的脏器之一，通过解剖实验可以观察和测量肝脏的大小、形状以及组织学结构。

肝脏是重要的代谢器官，参与脂肪、蛋白质和糖类的代谢过程，因此对肝脏的解剖研究将有助于探索相关代谢性疾病的机制和治疗方法。

肾脏大鼠的肾脏位于腹腔中，通过解剖实验可以观察和测量肾脏的大小、形状以及组织学结构。

肾脏是体内排泄废物和调节体内水、电解质平衡的重要器官，对肾脏的解剖研究有助于深入了解肾脏功能及其相关疾病的机制。

应用与意义基础科学研究大鼠解剖实验是许多基础科学研究的关键步骤，可以为研究人员提供大量解剖结构和器官相关的信息。

这些信息对于理解生物学、生理学以及疾病的发生和发展机制具有重要意义。

大鼠致畸试验实验报告一、实验目的本实验旨在研究某种受试物质对大鼠胚胎发育的致畸作用，评估其潜在的生殖毒性风险，为相关产品的安全性评价提供科学依据。

二、实验材料1、实验动物选用健康的 Wistar 大鼠，雌性体重约 200 220g，雄性体重约 250 280g。

动物饲养于温度（22 ± 2）℃、相对湿度（55 ± 5）％、12 小时光照/12 小时黑暗的环境中，自由饮食和饮水。

2、受试物质＿____（受试物质名称），纯度为_____%。

3、仪器设备电子天平、灌胃针、手术器械、显微镜等。

三、实验方法1、动物分组与交配将雌性大鼠和雄性大鼠按 1:1 的比例于傍晚合笼交配，次日清晨检查阴栓，以发现阴栓的当天确定为妊娠第 0 天。

将受孕大鼠随机分为 4 组，分别为对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组，每组15 20 只。

2、受试物质给予对照组给予等体积的生理盐水，各剂量组分别给予不同剂量的受试物质，于妊娠第 6 15 天经口灌胃给予。

3、标本采集在妊娠第20 天，对大鼠实施安乐死，剖腹取出子宫，检查黄体数、着床数、活胎数、死胎数和吸收胎数。

4、胎仔检查对每只活胎仔进行外观检查，包括有无畸形、腭裂、短肢等；然后将胎仔放入 Bouin 氏液中固定，进行骨骼检查，观察有无骨骼畸形，如肋骨缺失、胸骨畸形等。

四、实验结果1、孕鼠体重及增重在妊娠期间，各剂量组孕鼠的体重增长趋势与对照组相比，无明显差异。

2、妊娠结局对照组的着床数、活胎数、死胎数和吸收胎数均在正常范围内。

低剂量组的妊娠结局与对照组相似。

中剂量组出现了少量的死胎和吸收胎。

高剂量组的死胎和吸收胎数量显著增加，活胎率明显降低。

3、胎仔外观畸形对照组胎仔外观未见明显畸形。

低剂量组胎仔偶见轻微的外观畸形，如短尾。

中剂量组胎仔的外观畸形发生率有所增加，出现了腭裂、腹裂等畸形。

高剂量组胎仔的外观畸形严重，如无脑畸形、脊柱裂等。

4、胎仔骨骼畸形对照组胎仔骨骼发育正常。

Wistar大鼠Wistar大鼠开放分类：动物哺乳动物啮齿目真核生物自然目录1 来源2 概述3 在生物医学中的应用4 SD大鼠-SD大鼠与Wistar大鼠对比为大鼠（rat；rattus norregicus）的一个品系，1907年由美国维斯塔尔（wistar）研究所育成，现已遍及世界各国的实验室。

（1）毛色白化。

（2）主要特性：①头部较宽、耳朵较长、尾的长度小于身长。

②性周期稳定，繁殖力强，产仔多，平均每胎产仔在10只左右，生长发育快。

10周龄时雄性大鼠体重可达280～300g，雌性大鼠达170～260g。

③性情温顺。

④对传染病的抵抗力较强。

⑤自发性肿瘤发生率低。

⑥目前各地饲养的Wistar大鼠的遗传状况差异较大。

（1）生理学研究：大鼠垂体－肾上腺系统发达，垂体摘除比较容易，可用来进行肾上腺、垂体、卵巢等内分泌腺研究。

大鼠无胆囊，但胆总管较大，可经胆总管收集胆汁，研究消化功能等。

（2）营养学研究：大鼠是首先用于营养学研究的实验动物。

维生素就是用大鼠研究发现的。

由于大鼠杂食，解剖和生理性质与人相似，生长及代谢快，用大鼠做营养学研究的资料极多，常用于维生素或蛋白缺乏及氨基酸和钙、磷代谢的研究。

（3）代谢性疾病研究：动脉粥样硬化，淀粉样变性，酒精中毒，十二指肠溃疡等。

（4）药物学研究：急毒，长毒，生殖毒性试验和药物依赖试验等。

大鼠血压和血管阻力的变化对药物作用敏感，适合研究心血管药物的筛选。

大鼠踝关节易于发生炎症，可用于关节炎药物的研究等。

（5）肿瘤学研究：很多大鼠肿瘤有可移植性。

（6）心血管疾病研究：大鼠是研究心血管疾病的首选动物。

目前已培育出多种不同类型的高血压的大鼠品系。

还有自发动脉硬化大鼠品系。

（7）老年医学：大鼠因寿命相对短，体形大有足够的血液或体液可供测试，价格便宜易得而被广泛应用。

达到老年的标志是在50%的存活率时。

SD大鼠为14个月，wistar大鼠24～30个月，以后者为好。

概述1、Wistar大鼠：白色封闭群大鼠。

SD大鼠: 生长快，繁育性能好，大多用于安全性试验及营养与生长发育有关的研究。

该品系对性激素敏感，对呼吸道疾病有较强的抵抗力。

广泛用于药理、毒理、药效及GLP实验。

一般生物学特性繁殖性能：产仔率：92～95％；平均窝产仔数：9.96～12.07只；胎间隔：28～52天；离乳存活率：95～98％。

Wistar大鼠：Wistar大鼠由美国费城Wistar研究所育成。

常用的既有近交系，也有远交群。

其被毛呈白色，特征为头部较宽、耳朵较长、尾的长度小于身长。

Wistar大鼠性情温顺，性周期稳定，早熟多产，平均每窝产仔10只左右，生长发育快，乳腺癌发病率很低，对传染病抵抗力强。

近交系动物：近交系是指近交程度相当于20代以上连续全同胞或亲子交配，近交系数达98.6%以上、群体基因达到高度纯合和稳定的动物群。

近交系动物的育成是实验动物科学的一大进步，近交系动物的应用大大推动了遗传学、肿瘤学、免疫学等学科的发展。

远交群：一般情况下，远交系和封闭群作为和近交系相对的概念出现时，我们认为是一回事，但我们一般不用远交系这个概念而采用相对正式不会引起误解的封闭群这个概念，因为封闭群是指动物的一个种群在五年以上不从外部引进新种，仅在固定场所的一定群体中保持繁殖的动物群，其个体之间会存在一定的亲缘关系，而“远交系”只是通常供应使用的、保持于各种饲养系统(可能来源于不同的种群)的非近交群体而已，其个体之间可能不存在一点亲缘关系，所以封闭群和远交系从严格意义上讲并不是一回事，说到底其实是对一个种群培育过程的定义问题，封闭群这个概念更能定义这个过程而不会引起误解。

为什么白化？实验动物Wistar大鼠毛色：白化。

实验动物Wistar大鼠主要特性：①头部较宽、耳朵较长、尾的长度小于身长。

②性周朝稳定，繁殖力强，产仔多，平均每胎产仔在10只左右，生长发育快。

10周龄时雄鼠体重可达280～300g，雌鼠达170-260g。

③性情温顺。

④对传染病的抵抗力较强。

1. 了解并掌握大鼠足肿胀模型的制备方法。

2. 观察不同药物对大鼠足肿胀的影响，以评估其抗炎作用。

3. 探讨不同药物在治疗炎症性疾病中的应用潜力。

二、实验材料1. 实验动物：健康成年雄性SD大鼠，体重200-250g。

2. 药物：地塞米松、当归拈痛丸、福氏完全佐剂（CFA）、鸡蛋清、尿酸钠等。

3. 仪器设备：电子天平、足趾体积测量仪、解剖显微镜、手术器械等。

4. 试剂：生理盐水、75%酒精、氯仿、硫酸等。

三、实验方法1. 实验分组：将大鼠随机分为五组，分别为正常对照组、模型组、地塞米松组、当归拈痛丸组和尿酸钠组。

2. 模型制备：- 模型组：大鼠右后足跖部皮下注射CFA 0.1ml。

- 鸡蛋清组：大鼠右后足跖部皮下注射鸡蛋清0.1ml。

- 尿酸钠组：大鼠右后足跖部皮下注射尿酸钠溶液0.1ml。

3. 药物干预：- 地塞米松组：在大鼠足肿胀后，给予地塞米松腹腔注射，剂量为0.5mg/kg。

- 当归拈痛丸组：在大鼠足肿胀后，给予当归拈痛丸灌胃，剂量为0.2g/kg。

- 尿酸钠组：在大鼠足肿胀后，给予尿酸钠灌胃，剂量为0.1g/kg。

4. 观察指标：- 足肿胀度：采用足趾体积测量仪测量大鼠足跖体积，计算肿胀度和肿胀率。

- 组织学观察：取大鼠足跖部组织，进行HE染色，观察炎症细胞浸润和血管扩张情况。

1. 模型制备成功，大鼠足跖部出现明显肿胀，肿胀度和肿胀率显著高于正常对照组（P<0.05）。

2. 与模型组相比，地塞米松组和当归拈痛丸组大鼠足肿胀度明显降低，肿胀率显著降低（P<0.05）。

尿酸钠组大鼠足肿胀度与模型组无显著差异（P>0.05）。

3. 组织学观察显示，地塞米松组和当归拈痛丸组大鼠足跖部炎症细胞浸润和血管扩张情况明显减轻。

五、讨论1. 本实验成功制备了大鼠足肿胀模型，为研究抗炎药物提供了可靠的实验基础。

2. 地塞米松和当归拈痛丸均具有明显的抗炎作用，能够减轻大鼠足肿胀程度，降低肿胀率。

实验动物学SD大鼠综合性实验设计与探讨作者：苏小华张劲松李志东那顺巴雅尔许训陈一淑刘吉贞来源：《科技创新与应用》2019年第04期摘要：实验动物学实验课程具有高度的实践性与专业性。

在生物技术专业以“SD大鼠”为实验材料进行“雌雄鉴别、标记、麻醉、采血、肾衰动物模型和自由练习”6个方面综合性设计实验。

在以往的实验方案中增加了肾衰动物模型和自由练习板块。

让学生更加真切的认识鼠肾衰的造模原理、过程与症状，并让其用更少的动物取得更多的实操经验，开阔了学生的科研思路的同时激发了学生的科研兴趣，并能在实验中如何贯彻实验动物福利。

关键词：实验动物学；实验；肾衰中图分类号：Q95-3 文献标志码：A 文章编号：2095-2945（2019）04-0079-03Abstract： The course of laboratory animal science is highly practical and professional. With the "SD rats" as the experimental materials， the comprehensive design experiments in six aspects of "sex discrimination， mark， anesthesia， pulmonary edema animal mode of human disease， blood collection and free practice" related to biotechnology major were conducted in this study. The acute renal animal model and free practice were added in the previous experimental schemes， which enabled students learn about the modeling principle and symptoms of rat acute renal more clearly，broaden the scientific thinking and arouse their research interest. The students can gain more practical experience with fewer animals and deeply understand the experimental animal welfare.Keywords： laboratory animal science； experiment； pulmonary edema animal mode实验动物学是一门专门研究实验动物和动物实验的新兴边缘学科，它是现代科学技术的重要组成部分，是生命科学的技术和条件，是衡量现代医学科学的重要标志。

实验大鼠常见脏器形态学取材方法和注意事项[取材内容]大鼠肺组织、大鼠肝脏组织、大鼠胰腺组织、大鼠胃部组织、大鼠空场回肠组织、大鼠肾组织、门静脉血、淋巴组织、大鼠心脏。

[试剂及药品]戊巴比妥钠或10%水合氯醛、75%酒精、生理盐水、多聚甲醛或福尔马林液、3戊二醛磷酸盐缓冲液(PBS0.01mol/LP pH7.4)或4戊二醛、肝素钠、器械液器械清洗消毒液[器材]备皮刀、解剖台、弯盘、组织剪、眼科剪、手术刀柄、刀片、小号弯式血管钳、蚊式血管钳、眼科镊、无损伤血管夹、聚乙烯管、三通管、丝线、培养皿、天平、一次性离2ml、1.5ml 、冻存管、肝素锂真空采血管、微量移液器、高速离心机、注射器10ml、5ml、2ml、无菌手套、冰箱、冰盒、液氮罐[取材动物]大鼠[取材步骤]1. 取材前夜禁食，自由饮水。

2. 小鼠称重，按照50mg/kg的比例用5ml的注射器配合针头抽取戊巴比妥钠备用。

3. 正左手的小指和无名指抓住大鼠的尾巴，另外三个手指抓住大鼠的颈部，使大鼠头部向向下。

这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。

右手持注射器，从腹部近腿根处刺入后再腹部皮下穿行深入，动作轻柔，缓慢注射。

注射完药物后，缓缓拔出针头，手指按住针口对小鼠腹部轻柔按摩，促进麻醉药物的吸收，掐小鼠尾部检测小鼠麻醉程度。

4.将小鼠四肢固定于解剖台上，暴露小鼠整个胸部和腹部，修剪去腹部毛发，75%酒精消毒。

5.沿腹侧正中线自阴茎上源由下而上剪开腹部皮肤直至剑突，向两侧钝性剥开皮肤与皮下组织，暴露腹壁浅肌层。

沿白线钝性分离腹壁肌肉，剪开腹膜，暴露腹腔，将肝脏向上翻起，显露肝门。

6.门静脉血采集：将剪成斜口的聚乙烯管尖端背向肝门方向插入门静脉，抽取门静脉血2ml，无创血管夹夹闭门静脉止血。

将抽取门静脉血加入一次性离心管低温静置过夜，4℃离心，3000-3500/min，10分钟，吸出上清液，分装，-80摄氏度保存备用。

实验大小鼠知识点总结一、实验动物选择大小鼠是实验室中最常用的动物模型之一，其主要原因包括生理学相似性、遗传背景明确、繁殖能力强等。

在选择大小鼠作为实验动物时，需要考虑以下几个方面的因素：1. 生理学相似性：大小鼠与人类在解剖结构、生理功能等方面具有较高的相似性，因此在疾病模型建立、药物筛选等研究中被广泛应用。

2. 遗传背景：大小鼠的遗传背景相对较为清晰，能够为基因功能研究提供可靠的模型。

3. 繁殖能力：大小鼠具有较强的繁殖能力，便于实验室的动物饲养管理。

4. 实验对象数量：由于大小鼠较小，因此能够供给更多的实验对象，有利于统计学分析。

在实际应用中，根据研究目的和实验要求，可以选择不同品系的大小鼠进行研究。

下面将简要介绍一些常用的大小鼠品系及其特点。

二、常用品系1. C57BL/6小鼠：C57BL/6小鼠是最常用的实验动物之一，具有较为纯正的遗传背景和稳定的生理特征，因此被广泛应用于疾病模型建立、药物毒性评价等领域。

2. BALB/c小鼠：BALB/c小鼠具有较为稳定的免疫系统和免疫反应模式，因此常被用于免疫学研究和感染病原体模型的建立。

3. SD大鼠：SD大鼠是最常用的实验大鼠之一，具有较高的繁殖能力和较为稳定的行为特征，因此被广泛应用于药物筛选、心血管疾病模型建立等领域。

4. Wistar大鼠：Wistar大鼠是最早被用于实验室的大鼠品系之一，具有较为稳定的生理特征，因此被广泛应用于肿瘤模型建立、肝脏疾病模型建立等领域。

以上介绍的品系只是常见的几种，实际上实验室中还有许多其他品系的大小鼠可供选择。

在选择实验动物品系时，需要根据研究的具体目的和要求进行合理选择。

三、实验室动物饲养管理大小鼠是实验室中最常见的动物模型之一，其饲养管理对于保证实验结果的可靠性非常重要。

在实验室动物饲养管理中，需要注意以下几个方面的内容：1. 饲养环境：实验室动物的饲养环境应该保持适宜的温度、湿度和光照条件，以减少外界环境对实验结果的影响。

大鼠在生命科学中的应用
大鼠是一种常用的实验动物，被广泛应用于生命科学领域的研究。

以下是大鼠在生命科学中的几个应用方面：
1. 基础医学研究：大鼠是进行基础医学研究的主要实验动物之一。

研究大鼠神经生物学、遗传学、代谢学等方面的基础科学问题，可以为疾病的研究提供重要的理论基础。

2. 药物研发：大鼠广泛应用于药物研发过程中的毒性测试和药
效评价。

通过在大鼠身上测试药物的安全性和有效性，可以为临床药物的研发提供重要的参考依据。

3. 疾病模型：大鼠可以用于建立多种人类疾病的动物模型，例
如癌症、心血管疾病、糖尿病等。

这些模型可以帮助研究人员更好地理解疾病的发生机制，寻找治疗方法。

4. 基因编辑：近年来，CRISPR/Cas9 基因编辑技术的发展，大
大提高了对大鼠基因组的编辑效率和准确性。

通过编辑大鼠的基因，可以更好地研究特定基因在生命科学中的作用和机制。

总的来说，大鼠在生命科学中的应用远远不止上述几个方面，它在神经科学、免疫学、再生医学等领域也有着广泛的应用。

可以说，大鼠是生命科学领域中不可或缺的实验动物之一。

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【疑问回答】1.血浆样品中加入甲醇的作用是什么？用HPLC法测定药物浓度时，蛋白质会沉积在色谱柱上发生堵塞，严重影响分离效果。

因此为了防止分析仪器的污染、劣化，提高测定灵敏度、准确度、精密度和选择性，必须进行除蛋白等前处理。

常用的预处理方法有有机破坏法、盐析、加热、加酸等。

本次实验加入甲醇的目的是将药物与蛋白质分离开以避免损坏色谱柱。

2.若实验过程中产生溶血会对实验结果有影响吗？不影响。

与药物结合的血浆蛋白主要有三种：白蛋白主要与血浆中的弱酸性药物结合，α1-酸性糖蛋白主要与血浆中的弱碱性药物结合，脂蛋白主要与血浆中的脂溶性药物结合。

此外β、γ球蛋白主要与内源性生物活性物质结合。

对乙酰氨基酚为弱酸性、脂溶性药物，主要与白蛋白和脂蛋白结合。

溶血使血红蛋白释放，不与对乙酰氨基酚结合。

故溶血不会影响实验结果。

【思考题】1.简述血药法在药动学研究中的意义。

药物的药理效应往往与到达作用部位的药物浓度及维持时间密切相关，又因为绝大多数药物需经血液循环达到作用部位，而药物在血液和组织中往往保持着动态平衡和定量关系，所以血药浓度与药理作用有密切的相关性。

如果想按照作用部位药物浓度水平定量设计给药方案，必须掌握药物在ADME过程中血药浓度的变化规律。

药物动力学就是运用数学原理，研究体内药量（主要是血中药量）的经时变化规律，并用数学语言加以描述，即用一定的数学公式或坐标图象，来表示体内药量（或血药浓度）和时间之间的函数关系。

这种函数图线称之为血药浓度时间曲线，简称药-时曲线。

药物动力学中常用的基本概念如房室模型、速率常数、生物利用度、表观分布容积、生物半衰期等均是建立在血药法下。

2.血浆样品处理方法有哪些？(1)去除蛋白质在测定血样时，首先应去除蛋白质。

去除蛋白质可使结合型的药物分离出来，以便测定药物的总浓度；去除蛋白质也可预防提取过程中蛋白质发泡，减少乳化的形成，以及可以保护仪器性能（如保护HPLC柱不被污染），延长使用期限。

实验三大、小鼠的基本操作技术[实验目的]：通过大鼠、小鼠的抓取固定、性别辨认、灌胃、注射、采血、麻醉、标记、安乐死、动物剖检、脏器摘除与检查等实际操作，掌握大、小鼠动物实验的基本操作技术。

[实验动物]：大鼠、小鼠[材料与器材]：大、小鼠饲养盒（带面罩）、大鼠和小鼠手术固定台，常规手术器械、大鼠灌胃针、小鼠灌胃针、lml注射器、5ml注射器、l0ml注射器、烧杯、75％酒精及酒精棉，干棉球。

生理盐水、20％乌拉坦溶液（或3％戊巴比妥钠）、乙醚、新洁尔灭、3—5％苦味酸溶液、0.5％中性红或品红溶液、[实验内容]：一、实验动物标记编号的方法一染色法（一）被毛染色法1、单色涂染法；（3—5％苦味酸溶液，可染成黄色）。

2、双色涂染法：苦味酸（黄色）—为个位数；品红（红色）—为十位数．（二）耳缘打孔法：适于做长期实验用。

、（三）刺数钳烙印法：适用于长期或慢性实验的大动物编号。

（四）号牌法：用于大动物实验。

二、实验动物被毛的去除方法（一）剪毛法；（二）拔毛法；（三）剃毛法；（四）脱毛法；三、大鼠、小鼠性别的鉴定方法步骤：1、将动物抓取后，腹部朝上，观察肛门与生殖器之间的距离，距离近的为雌性，距离远的为雄性，2、成年雌性大小鼠有12个乳头。

3、天热时或性成熟后，雄性动物的睾丸一般会从腹腔降至阴囊内，此时易于区别。

四、大鼠、小鼠的抓取和固定（一）小鼠的抓取固定：[实验器材]：小鼠饲养盒(带面罩)1套，小鼠防护手套若干。

[方法步骤]：1、用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将小鼠提起，放在饲养盒面罩上。

2、用左手拇指和食指迅速、准确地捏住小鼠的两耳后、颈背部的皮肤，将小鼠提起。

3、翻转左手掌，以左手掌心和中指夹小鼠背部的皮肤，使小鼠整个呈一条直线。

4、用左手无名指压住小鼠背部的皮肤，小指压住小鼠的尾巴根部。

5、松开捏住小鼠尾巴的右手拇指和食指。

[注意事项]：1、在抓取动物时，禁止对动物采取突然、粗暴的方法。

2、抓取时注意，过分用力，会使动物窒息或颈椎脱臼，用力过小，动物头部能反转过来咬伤实验者的手，必须熟练掌握。