RNA干涉下调RACK1基因表达增强水稻抗旱能力(精)
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中国水稻科学(ChineseJRiceSci),2008,22(5):447~453
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RNA干涉下调RACK1基因表达增强水稻抗旱能力
李大红1,2 刘 卉1 杨艳丽1 甄萍萍1 梁建生1,*
(1扬州大学生物科学与技术学院,江苏扬州225009;
2
黄淮学院农林系,河南驻马店463000;
*
通讯联系人,E mail:jsliang@)
Down
RegulatedExpressionofRACK1GenebyRNAInterferenceEnhancesDroughtToleranceinRice
LIDa hong1,2,LIUHui1,YANGYan li1,ZHENPing ping1,LIANGJiang sheng1,*
(1CollegeofBioscienceandBiotechnology,YangzhouUniversity,Yangzhou225009,China;HuanghuaiUniversity,Zhumadian463000,China;
*
2
AgronomyandForestryDepartment,
Correspondingauthor,E mail:jsliang@)
Abstract:RACK1isascaffoldproteinwithversatilefunctions,andplaysimportantrolesintheregulationofplantgrowth
anddevelopment.Transgenicriceplants,ofwhichtheexpressionofRACK1genewasinhibitedusingRNAinterference(RNAi)approach,wereusedtostudypossiblefunctionsofRACK1intheresponsesofricetodroughtstress.Real
timePCRanalysisshowedthattheexpressionofRACK1intransgenicriceplantswasinhibitedmorethan50%.Thetransgenicriceplantsshowedhighertolerancetodroughtstressascomparedwiththenon transgenicriceplants.Theperoxidationofmem
braneandproductionofmalondialchehydeweresignificantlylower,andthesuperoxidedismutaseactivitywassignificantlyhigherthanthoseofthenon
transgenicriceplants.ItsuggestedthatRACK1negativelyregulatedricetolerancetodroughtstress,whichwasrelatedtoredoxsystemofriceplants.
Keywords:Oryzasativa;RACK1gene;RNAinterference;transgenicplant;droughttolerance摘 要:RACK1是一种多功能支架蛋白,广泛参与植物生长发育过程的调节。利用RNA干涉技术抑制水稻RACK1基因的表达,分析了RACK1基因在响应干旱胁迫中的功能。实时定量PCR对获得的转基因植株的RACK1基因表达分析结果表明,
转基因水稻RACK1基因表达受抑制程度达50%左右。与非转基因水稻(对照)相比,转基因水稻耐干旱能力显著强于对照,其膜的过氧化酶和丙二醛的产生显著低于对照,而超氧化物歧化酶活性极显著高于对照。表明RACK1蛋白质调节水稻对干旱胁迫的耐性,并且这种调节在很大程度上与植株体内的氧化还原系统有关。
关键词:水稻;RACK1基因;RNA干涉;转基因植株;抗旱性中图分类号:Q943.2;Q945.78;S511.034文献标识码:A文章编号:1001 7216(2008)05 0447 07
RNA干涉(RNAi)技术是通过正义RNA与反义RNA形成双链RNA,双链RNA在内切酶的作用下,被切成多个长度为21~25bp的较短的双链RNA,这些双链小RNA能使内源特异靶基因的
mRNA降解,从而达到阻止基因表达的目的[1 2]。该技术具有特异性、稳定性、高效、快速以及不改变基因组的遗传组成等特性,为人们研究未知功能的基因提供了新的反向遗传学手段。在拟南芥和水稻等基因组测序完成后,RNAi技术为植物功能基因组学研究及植物的遗传改良等方面提供了一个强有力的手段。
RACK1最初被认为是哺乳动物中蛋白激酶C(PKC)的一种锚定蛋白,如今被视为一种具有多种功能的支架蛋白,对动物中枢神经系统的多种信号通路具有调节作用[4]。RACK1能与多种蛋白质相互作用,如活性 PKC和动力蛋白 1。植物RACK1蛋白与从烟草BY 2悬浮细胞中分离到的生长素响应基因arcA编码的蛋白高度同源,是含有[3]
蛋白是一种典型的支架蛋白,对许多生理生化过程具有重要的调节作用[5]。有证据显示RACK1可能参与信号转导过程,并可能调节了多种发育过程,如cAMP信号[6 7]、细胞周期控制[8]、Ca2+释放[9]等;另外它还能与80S核糖体相结合,调节酵母和动物的转录过程[10 12];最近也有资料显示它在拟南芥中与细胞质的核糖体相结合。这些都说明RACK1在真核细胞中具有极其重要的功能。
水稻是重要的粮食作物,目前对水稻的RACK1蛋白研究还少有报道。我们以拟南芥RACK1蛋白的氨基酸序列为模板对水稻基因组序列进行比对分析,找到两个与编码拟南芥RACK1基因高度同源的基因(NCBI登录号分别为NC008394和NC008398)。在蛋白质水平两者与拟
收稿日期:2008 03 10;修改稿收到日期:2008 05 21。基金项目:国家自然科学基金资助项目(30571120);中国高等学校博士点基金资助项目。
第一作者简介:李大红(1969-),男,博士研究生,E mail:[13 14]
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中国水稻科学(ChineseJRiceSci) 第22卷第5期(2008年9月)
南芥RACK1蛋白的同一性和相似性分别达到70%和80%。由于我们筛选的拟南芥植物Atrack1突变体具有高度耐渗透胁迫性(未发表资料),因而推测水稻RACK1蛋白(OsRACK1)可能在提高水稻耐渗透胁迫中担负重要调节功能。本研究从水稻cDNA中克隆RACK1的RNAi片段,并构建了植物表达载体,通过农杆菌EHA105
介导转入水稻基因组中,从而获得水稻RACK1基因表达被RNAi抑制的转基因植株,利用转基因水稻植株,比较分析了OsRACK1在水稻耐干旱胁迫中的作用。
机引物试剂盒等为宝生物工程(大连)有限公司产品,DNA快速纯化回收试剂盒为上海捷瑞公司产品,抗生素、植物生长调节剂等药品为Sigma公司产品,DIG试剂盒购自Roch公司,SYBRGREEN购自ABI公司。其他试剂均采用进口或国产分析纯。
1.4 引物
引物序列由PrimerPremier5.0引物设计软件设计(表1)。RNAi正向引物5 和3 端分别加接BamH!和Kpn!限制性内切酶位点(下划线处);反向引物的5 和3 端分别加接Spe!和Sac!限制性内切酶位点(下划线处)。1.5 方法
1.5.1 RNAi表达载体的构建
从水稻品种日本晴叶中(3叶1心期)提取RNA,逆转录为cDNA,经克隆构建了pGEM T/R载体,以该载体为模板,以P1、P2和P3、P4为引物(表1),PCR扩增RNAi的正向和反向目的片段。经1.2%琼脂糖凝胶电泳分离后,通过胶回收试剂盒回收并纯化,再克隆到pGEM T18载体中。将克隆到的RACK1基因片段经BamH!/Kpn!和Spe!/Sac!酶切后,再克隆到双元载体pCAMBIA1301(经改造的)内含子的两侧(图1),形成一个反向重复的发卡结构,构建成表达载体pCAMBIA1301/I。
1.5.2 水稻RACK1RNAi表达载体的转化及检测分析
采用冻融法将植物表达载体pCAMBIA1301/I导入根癌农杆菌EHA105感受态细胞,构建适于植物遗传转化的工程菌EHA105(pCAMBIA1301/I)。
1 材料与方法
1.1 菌种及质粒
大肠杆菌DH5 为转化受体菌。表达载体pCAMBIA1301(其中包含有能在植物中表达的与35S启动子和Nos终止子相连的GUS报告基因,可作为目的基因转化水稻细胞筛选的标记)和根癌农杆菌(Agrobacteriumtumefaciens)EHA105由本实验室保存。克隆载体pGEM T购自大连TaKaRa公司。
1.2 植物材料和遗传转化
供试水稻品种为粳稻日本晴(Oryzasativasubsp.japonicacv.Nipponbare)。成熟种子诱导初生愈伤组织,作为与农杆菌共培养转化的受体材料。愈伤诱导及筛选使用N6D2培养基,分化使用(1/2)MS培养基。水稻组织培养、农杆菌介导转化水稻以及抗性愈伤组织的筛选与植株再生等按刘巧泉等建立的高效转化方法进行。1.3
酶及试剂
逆转录试剂盒、限制性内切酶、PCR试剂盒、随
表1 实验所用引物
Table1.Primersusedinthisexperiment.
引物名称Primername
RNAi正向引物上游P1RNAiprimerforwardP1RNAi正向引物下游P2RNAiprimerreverseP2RNAi反向引物上游P3RNAiPrimerforwardP3RNAi反向引物下游P4RNAiprimerreverseP4HPT基因的引物上游P5HPTprimerforwardP5HPT基因的引物下游P6HPTPrimerreverseP6GUS基因的引物上游P7GUSprimerforwardP7GUS基因的引物下游P8GUSprimerreverseP8
RQ PCRRACK1引物上游P9RQ PCRRACK1primerforwardP9RQ PCRRACK1引物下游P10RQ PCRRACK1primerreverseP10RQ PCRACTIN2引物上游P11RQ
PCRACTIN2primerforwardP11RQ PCRACTIN2引物下游P12RQ
PCRACTIN2primerreverseP12
[15]
引物序列Primersequence
5 CCGGTACCGGCGAGTGCAAGTACACCA 3 5
CCGGATCCTGGTTCTTGGAGACAGGGAT 3 5
CCGAGCTCGGCGAGTGCAAGTACACCA 3 5
CCACTAGTTGGTTCTTGGAGACAGGGAT 3 5 GCTGTTATGCGGCCATTGTC 3
5 GACGTCTGTCGAGAAGTTTC 3 5 CACACCGATACCATCAGAGATC 3 5