达科为小鼠脾脏淋巴细胞分离解决方案
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小鼠免疫器官摘取及淋巴细胞分离
“小鼠免疫器官摘取及淋巴细胞分离”实验过程
1. 培养皿加入纱布,在纱布上滴2ml淋巴细胞分离液。
2. 脱颈处死小鼠,在75%酒精中浸泡30s(示意消毒小鼠)。
3. 无菌条件下将腹部剪开,脱皮。
(2min)
4. 选取小鼠腹部左侧,剪开腹膜,深红色细长组织即脾脏(淋巴细胞组织)
5. 用镊子从下方夹取脾脏,,剔除结缔组织和脂肪后,将组织置于滴有小鼠淋巴细胞分离液的纱布上。
6. 脾脏用弯头镊子在纱布上研磨至无血色组织后,纱布上加入1ml淋巴细胞分离液,再用移液器吸取研磨的液体,移至1.5ml离心管内。
(3min)
7. 离心(1500rpm,3min)留上清,移入新的15ml 离心管中,去除红细胞,此时可以取胸腺。
(可以做到这里停止,示意淋巴细胞和免疫器官胸腺)
8. 在装有上清的离心管中加入3ml 1640培养基,离心1500rpm,3min,取沉淀,弃上清,重复清洗2次。
(6min)
9. 在显微镜下将细胞浓度调为5×106个/ml备用。
从小鼠脾脏平分别淋巴细胞
1小鼠断颈处逝世,酒精浸泡5分钟,超净台内打开左侧腹部皮肤,当心分别皮下组织和腹部肌肉吐露出脾脏,提起,剪去四周结缔组织,放入有PBS的小瓶中.无菌镊子夹碎,挤压脾脏,将获得的细胞悬液移入无菌试管中.2另取无菌试管,先参加淋巴细胞分别液,然后将试管竖直,略放平,汲取方才制备的细胞悬液迟缓的参加试管中,一般分别液和细胞悬液的体积比为1:2,要轻要慢,不冲要破了淋巴细胞分别液和细胞悬液的界面.选用合适本身分别目标细胞的离心力和时光进行离心.小我用1500转/分钟,20分钟.3离心后掏出试管,可以看到不合的分层,一般上面长短细胞成分和细胞碎片,接下来是单个核细胞,再往下是红细胞等.吸走上层非细胞层弃之,吸出单个核层在别的无菌试管中,因为淋巴细胞分别液对细胞有毒性感化,参加PBS 离心洗两遍(PBS1000转/分钟,10分钟).4,洗好的细胞参加1640造就液和20%的血清中重悬,迟缓参加已经制备好的尼龙毛柱子中,封好,放37度孵育一小时.一小时后掏出,超净台内将柱子立起,针头下面放无菌试管(我们的柱子是用大号打针器做的),以HANKS液和血清先后迟缓冲洗,巨噬细胞贴在尼龙毛上不下来,B细胞也相对吸附冲洗下来的不久不多,所以冲洗来的大多是T细胞,纯度可打到80%到90%,再次冲洗并且用力挤压,如许得到的就是B细胞.得到的细胞可以以1640加血清配制的造就液进一步造就或做它用.但是淋巴细胞分别液得到的细胞只能算是粗分,假如试验请求高最好选用磁珠或
流式分别.。
解刨小鼠提取脾细胞实验报告
解刨小鼠提取脾细胞实验报告
一、实验目的
本实验旨在通过解刨小鼠,提取脾细胞,以便进行后续的免疫学研究。
二、实验材料和仪器
1. 实验材料:小白鼠、生理盐水、70%乙醇、福尔马林、石蜡等。
2. 实验仪器:手术刀、注射器、组织培养皿、显微镜等。
三、实验步骤
1. 解剖小白鼠:将小白鼠放入无菌条件下,用70%乙醇消毒表面。
然后用手术刀在胸部进行切口,打开胸腔,找到心脏,将心脏割断。
接
着将小白鼠向上抬起头部,用手术刀在颈部进行切口,打开颈部皮肤
和肌肉层,在颈动脉两侧夹住气管和食管,并清除周围组织。
最后将
气管和食管割断,并将颈动脉及其分支全部割断。
2. 取出脾脏:用注射器注入生理盐水,将脾脏从周围组织中分离出来,然后将脾脏放入组织培养皿中加入生理盐水洗涤。
3. 细胞处理:将清洗干净的脾脏放入福尔马林中固定30分钟,再用酒精和石蜡等物质进行包埋。
最后用显微镜观察并提取细胞。
四、实验结果
通过本实验,成功地解剖出小白鼠,并提取了脾细胞。
经过显微镜观察,我们可以看到细胞形态正常,并且数量充足。
五、实验注意事项
1. 实验操作要求严格无菌。
2. 解剖小白鼠时要保持手术刀的锋利度。
3. 在取出脾脏时要注意不要损伤其结构。
4. 细胞处理过程中要避免污染。
六、实验结论
通过本实验,我们成功地解剖了小白鼠并提取了脾细胞。
这为后续的免疫学研究奠定了基础。
同时,在操作过程中也需要注意无菌和仪器使用等方面的细节。
Mouse IL-4 precoated ELISPOT kit说明书Cat# : DKW22-2040-500产品描述:达科为公司生产的达优®系列ELISPOT预包被试剂盒采用原装进口高亲和力高效价抗体对,经预包被PVDF 板、低温冷冻干燥、真空密封包装等工艺流程制备。
成品PVDF板上预包被的抗体分布均匀、效价稳定,2-8 ºC 可存放12个月。
达优®系列预包被ELISPOT试剂盒使实验检测时间从3天缩短为2天,大幅度减少无菌操作的实验步骤,减轻实验者的劳动强度和减少污染的机会。
使得实验者能够轻松、高效地完成复杂的ELISPOT检测实验。
试剂盒提供的试剂、规格:名称规格(5 ×96T)Biotinylated antibody 100μL× 5Streptavidin-HRP 500μLDilution buffer R(10×) 10mLWashing buffer (50×) 25mL×2AEC dilution 25mL×2AEC solutionⅠ(20×) 5mLAEC solutionⅡ(20×) 3mLAEC solution Ⅲ(200×) 500μL预包被PVDF板5块需要实验者自行准备的试剂与仪器:1.RPMI-1640基本培养基(需要添加双抗,不需要添加血清)2.无血清培养基(完全培养基,即用型)3.超净工作台4.CO2细胞培养箱5.微量移液器及配套Tip头6.8通道微量移液器7.0.5mL, 1.5mL EP管8.Biosys Bioreader自动读板仪试剂的配制:1.Washing buffer (50×):用去离子水稀释(1:50),制成1× Washing buffer备用。
2.Dilution buffer R(10×):用1×PBS稀释(1:10),制成Dilution buffer R(1×)备用。
[19]中华人民共和国国家知识产权局[12]发明专利申请公布说明书[11]公开号CN 101012449A [43]公开日2007年8月8日[21]申请号200610063555.6[22]申请日2006.11.09[21]申请号200610063555.6[71]申请人深圳市达科为生物技术有限公司地址518067广东省深圳市南山区蛇口工业六路科健大厦四楼西[72]发明人朱义鑫 [74]专利代理机构深圳创友专利商标代理有限公司代理人罗瑶[51]Int.CI.C12N 5/06 (2006.01)权利要求书 1 页 说明书 8 页[54]发明名称淋巴细胞分离液及分离脾脏淋巴细胞的方法[57]摘要本发明公开了一种淋巴细胞分离液,所述分离液中包含重量体积百分浓度为14.0~17.5%的碘克沙醇(Iodixanol)。
本发明还公开了采用上述分离液分离脾脏淋巴细胞的方法,该方法包括:将脾脏直接在分离液中研磨,制备成单细胞悬液,并将悬有脾脏细胞的分离液进行离心操作。
本发明的分离液及方法无毒、便于操作且易于分离得到的状态好、活力高的淋巴细胞。
200610063555.6权 利 要 求 书第1/1页 1、一种淋巴细胞分离液,其特征在于:所述分离液中包含重量体积百分浓度为14.0~17.5%的碘克沙醇(Iodixanol)。
2、根据权利要求1所述的一种淋巴细胞分离液,其特征在于:所述淋巴细胞分离液的渗透压为230~310mOsm,内毒素含量小于1EU/mL,pH 值为7.0~7.2。
3、根据权利要求2所述的一种淋巴细胞分离液,其特征在于:所述淋巴细胞分离液还包含体积百分浓度为70.8~76.7%的RPMI1640培养基以及体积百分浓度为9.3~11.7%的超纯水。
4、根据权利要求2或3所述的一种淋巴细胞分离液,其特征在于:所述淋巴细胞分离液的密度为1.077~1.095g/mL。
5、根据权利要求4所述的一种淋巴细胞分离液,其特征在于:所述淋巴细胞分离液用于分离小鼠或大鼠的脾脏淋巴细胞。
从小鼠脾脏中分离淋巴细胞
方法一:
1用注射器内芯或者研棒研磨过100目筛网,Hank’s液冲洗,收集分离的脾细胞悬液。
2另取无菌试管,先加入淋巴细胞分离液,然后将试管倾斜,略放平,吸取刚刚制备的细胞悬液缓慢的加入试管中,一般分离液和细胞悬液的体积比为1:2,要轻要慢,不要冲破了淋巴细胞分离液和细胞悬液的界面。
室温水平离心2000转/分钟,30分钟。
3离心后取出试管,可以看到不同的分层,一般上面是非细胞成分和细胞碎片,接下来是单个核细胞,再往下是红细胞等。
吸走上层非细胞层弃之,吸出单个核层在另外无菌试管中,因为淋巴细胞分离液对细胞有毒性作用,加入PBS离心洗两遍(1000转/分钟,10分钟)。
4倾倒上清,用RPMI-1640重悬细胞。
方法二:
用注射器内芯或者研棒研磨过100目筛网,Hank’s液冲洗,收集分离的脾细胞悬液,2000r/min离心3min,弃上清。
加红细胞裂解液8mL,混匀脾细胞,静置5-6min,待红细胞完全破碎,2000r/min离心3min,弃上清去除红细胞,Hank’s液洗1-2遍,用RPMI-1640(含10%胎牛血清)重悬细胞。
小鼠脾脏淋巴细胞分离方法000000需要提前准备的材料:0000000提前高压灭菌:手术器械,200目尼龙网,0000000除菌过滤:8.5%和0.85%的Nacl溶液各40ml,1XPBS溶液,hanks液40ml。
0000000红细胞裂解液,六孔板,培养皿,75%酒精,100ml烧杯,无菌注射器5-10ml,15ml、50ml 离心管,4mlEP管,离心机等。
00000001、配制的percoll工作液:配制15 ml0000000100%percoll液(简称工作液):13.5ml percoll原液+1.5 ml 8.5%Nacl溶液混匀备用。
0 000002、配制6个梯度,每个梯度2ml,实际配制3ml000000070%percoll液(1.090g/ml):2.1 ml工作液+0.9 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000 60%percoll液(1.077g/ml):1.8 ml工作液+1.2 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000 50%percoll液(1.067g/ml):1.5 ml工作液+1.5 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000 40%percoll液(1.050g/ml):1.2 ml工作液+1.8 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000 30%percoll液(1.043g/ml):0.9 ml工作液+2.1 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000 20%percoll液(1.031g/ml):0.6 ml工作液+2.4 ml 0.85%Nacl溶液混匀备用0000000找一只15ml离心管,从低到高(20% percoll液→70%percoll液)依次装入,装好备用。
0000003、小鼠脾脏细胞分离00000000(1)颈椎脱臼处死小鼠。
75%酒精浸泡10min0000000(2)无菌条件下取出小鼠脾脏,去除筋膜等置于Hanks’ 液中,将脾脏放入2ml离心管中剪碎。
小鼠淋巴细胞分离液说明书
Cat#:DKW33-R0100
本品为深圳达科为生物技术有限公司自主研发的新一代密度梯度分离液。
主要成份为Iodixanol ,分子量为1550。
它是完全化学惰性、无生物毒性的碘化物,不会结合任何已知的生物功能蛋白、不会干扰任何细胞表面膜蛋白、不会抑制酶活性、不会干扰抗原抗体反应。
EZ-Sep™Mouse 1×小鼠淋巴细胞分离液分离的淋巴细胞的纯度高、状态好、得率高。
小鼠脾脏淋巴细胞分离方法操作简单、易学,对实验者的经验要求不高。
本实验室的研究表明,小鼠脾脏淋巴细胞暴露在该分离液中长达1小时,离心分离后,淋巴细胞的数量和质量没有明显变化,随后的ELISPOT 检测结果同其它组完全一致。
产品信息:
商品名:EZ-Sep™Mouse 1×(英文)
易得小鼠淋巴细胞分离液(中文)
规格:100mL/瓶
密
度:1.0810±0.0005g/mL (20ºC)
渗透压:280±15mOsm
主要成份:Iodixanol ,化学惰性,无生物毒性
内毒素:≤0.5EU/mL
适用范围:分离小鼠/大鼠脾脏淋巴细胞
分离大鼠/兔子血液中的PBMC
保存方法:4ºC 避光保存,保持无菌保质期:12个月
使用方法:
自备材料:35mm 培养皿、10mL 玻璃注射器内活塞、200目尼龙网——裁
成90mm×90mm 正方形(以上材料均为无菌要求)、其他常用器材:离心管,移液管,加样枪,离心机等
实验步骤:1.断颈处死小鼠,浸泡于75%的乙醇中。
2.在超净台中取出小鼠脾脏。
注意无菌操作。
3.在35mm 培养皿中放入4-5mL EZ-Sep™Mouse 1×淋巴细胞分离液(取用前摇匀)。
研磨(研磨操作请参考图二)。
4.把悬有脾脏细胞的分离液立即转移到15mL 离心管中,覆盖200-500uL 的1640培养基(保持液面分界明显)。
5.室温,800g 离心30min 。
设置较慢的加速度和减速度,如果有十档,设为第三档。
离心结束后细胞分层如图一所示。
6.吸出淋巴细胞层,再加入10mL 1640培养基,颠倒洗涤。
室温,250g 离心10min 收集细胞。
7.
倾倒上清液,用无血清培养基或其他培养液重悬细胞,细胞计数。
注意
:
若小鼠饲养时间较长,或者小鼠脾脏异常肿大,导致研磨后细胞悬液呈现暗红色时,须将细胞悬液用小鼠
分离液等体积稀释并混匀后,再进行第4步操作。
分离液易挥发,每个脾脏的研磨时间应控制在5min以内。
大鼠脾脏淋巴细胞分离操作:
因大鼠脾脏较大,只须剪取一小部分进行实验即可,研磨与分离的方法与小鼠脾脏淋巴细胞的分离操作完全相同。
●大鼠/兔子血液中淋巴细胞分离操作:
1.新鲜抽取的大鼠/兔子抗凝外周血2-4mL用1640稀释一倍(血液稀释后分离效果更佳,注意无菌操作)。
2.在15mL离心管中加入3mL淋巴细胞分离液。
小心地将经过稀释的血液平铺在淋巴细胞分离液液面上
层,避免两种液体界面混合。
3.室温,800g离心15~20min。
设置较慢的加速度和减速度(如果有十档,设为第三档)。
4.后续步骤与小鼠脾脏淋巴细胞分离操作相同。
特别说明——关于小鼠脾脏研磨的达科为方法:
✧推荐使用尼龙网,因为尼龙网更柔韧。
✧推荐使用注射器活塞来研磨脾脏。
✧关键所在,利用尼龙网向上的反弹力来控制研磨的力
度。
将细胞可能受到的机械损伤降低到最小。
注意:
1.控制研磨力度,使尼龙网保持悬空,避免在皿底上直
接研磨而造成大批细胞死亡。
2.平皿的口径不能太大,否则尼龙网不能产生有效的弹
力。
3.镊子在一边夹住尼龙网,防止尼龙网在研磨过程中滑
动。
参考文献:
1.殷玉俊,等.[J]江苏大学学报医学版,2008,18(1):15-18
2.泰淑红,等.[J]免疫学杂志,2008,24(1):34-37
3.Juntao Zou,et,al.[J]Journal of the Neurological Sciences,2008,5:003-007
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