大鼠取材方案

一种小鼠或大鼠真皮成纤维细胞的分离培养方法真皮成纤维细胞是一种重要的细胞类型，其在生物医学研究、组织工程和再生医学等领域具有广泛的应用前景。

以下是一种常用的小鼠或大鼠真皮成纤维细胞的分离培养方法：1. 实验前准备：- 小鼠或大鼠- 麻醉剂，如异氟醚等- 消毒剂- 必需的培养基和培养液2. 小鼠/大鼠的取材：- 麻醉小鼠或大鼠，确保其在实验过程中不会感到疼痛或不适。

- 消毒动物的表面，以减少细菌或其他微生物的污染。

- 取下小鼠/大鼠的皮肤。

使用消毒剪刀和镊子将皮肤切割成小块，以便后续的分离过程。

3. 细胞的分离和培养：- 将皮肤块转移到含有酶解消化液（如胰蛋白酶）的培养皿中，并在37°C的恒温搅拌器上进行酶解（通常为1-2小时）。

- 将酶解后的皮肤块过滤，移至新的培养皿中，加入培养基和培养液，如DMEM/F12或RPMI-1640，并添加10%胎牛血清。

- 将培养皿放在37°C的细胞培养箱中，保持适当的温度、湿度和CO2浓度。

- 培养皿中的细胞会开始生长和扩增。

定期更换培养基，并进行细胞的孵育以保持其正常生长。

4. 细胞的传代：- 当细胞密度达到80-90%时，使用胰蛋白酶或胰蛋白酶-EDTA溶液将培养皿中的细胞与培养皿底部松散的连接断开。

- 将细胞计数，并根据需要的细胞数量进行传代。

一般情况下，将细胞按照1:3或1:4的比例重新分装到新的培养皿中。

- 重复上述步骤，直到获得足够数量且健康的细胞。

这种方法能够有效地分离和培养小鼠或大鼠真皮成纤维细胞，为相关研究提供了重要的细胞资源。

通过优化培养条件和细胞的传代方法，可以获得高质量和稳定的细胞群体，以支持各种实验或应用的需要。

大鼠灌注固定取脑大鼠灌注固定取脑准备物品：37℃的温生理盐水500ml、10%的中性甲醛或4%的多聚甲醛固定液500 ml、500 ml的输液瓶2个、输液管2副、三通1个,镊子、剪刀、止血钳各2把、灌注针(将12号注射用针头的针尖掐断磨钝圆、光滑即可)1个、麻醉剂、步骤1)将两个输液瓶中分别装满生理盐水和固定液并将输液管安装在生理盐水瓶上并调整好,使管内没有气泡。

2)将动物麻醉,数分钟后,待动物前后肢放松,即可准备灌注。

3)将已麻醉的动物仰卧在解剖台上,固定四肢,用左手持镊子夹起腹部皮肤,右手持剪刀自腹部剪一小口,由此沿腹中线和胸骨剑突中线向上将皮肤剪至下颌,分离皮下组织,将皮肤翻向两侧,再沿腹中线和胸骨中线向上剪开胸骨,沿膈肌向两侧剪开,并用止血钳将胸骨和胸部的皮肤钳紧,将止血钳翻向外侧以充分暴露心脏。

小心用镊子将心包打开,滴一些生理盐水保持湿润。

4)分离出主动脉,穿一根丝线,准备结扎灌针。

5)将左心室尖用眼科剪刀剪开一小口,将灌注针插入心室并送至主动脉内,用丝线结扎牢固,使之不能退出,打调节阀,灌注生理盐水,灌注时的灌流量约20 ml/分钟。

时,剪开右心耳,使血液排出。

观察肝脏逐渐变为白色为止6)旋转三通使之对准灌注液,开始灌注固定液。

固定液进大鼠血管后,逐渐出现四肢抽动,表明灌注液进入大鼠大脑,待抽动完全停止,全身组织器官变硬后即可取材。

7)取脑：枕骨大孔处用剪刀横断，小心地于枕骨大孔斜插入剪刀剪开顶骨，用止血钳掰断两边地顶骨，注意嗅球上地顶骨也要仔细去掉，用剪刀于一侧剪断视神经并探到颅底，就可以将整块的脑组织翘起。

取出的脑在同样固定液中4℃再固定4-6小时。

8)保存或切片注意事项：1、将灌注针插入主动脉内是灌注固定的关键,也是难点。

首先准确找到主动脉,这是此步骤的要点。

可用温生理盐水将胸腔内的血液冲洗干净,用眼科镊子轻轻夹住心外膜(夹的越少越好,以免影响取材)将心脏向左上方提起,即可看清主动脉,又可使灌注针很容易地插入主动脉内。

大鼠滑膜取材
1、造模分数达到最高峰，将大鼠脱颈处死，消毒，仰面固定，沿膝关节为中心的区域，用镊子提起髌骨，沿髌骨上沿约0.3-0.4cm处向下切割至股骨，再分别沿着髌骨两侧分离至胫骨，然后在体视镜下使用显微镊显微剪从关节腔中分离滑膜组织。

2、立即将滑膜组织浸泡在含有双抗的D-hank液里洗四次，用显微剪将脂肪组织去除，并将组织反复剪成1cm3左右的小块，加入配置好的含有0.4％II型胶原酶培养基置于37℃培养箱内消化2h，将未贴壁的细胞移入离心管内，1500rpm离心10min。

3、弃上清，加入4ml 0.25无EDTA胰酶37℃消化30min，期间每10min 吹打一次，将细胞消化开，加入8ml完全培养基终止消化，1500rpm 离心10min，弃上清。

4、加3ml完全培养基悬浮细胞，200目不锈钢筛网过滤细胞，在加入2ml完全培养基冲洗离心管中的细胞，用6cm培养皿培养。

配制0.4％II型胶原酶（4mg/ml）。

称200mg II型胶原酶溶于25ml的D-hanks中，在加入25ml完全培养基配制。

实验大鼠取材方案引言：实验大鼠作为研究生物学和医学领域的重要动物模型，广泛用于疾病机制研究、药物毒理学评价以及创伤修复等实验中。

为了保证科学合理、可靠可重复的实验结果，大鼠取材方案的制定十分重要。

本文将详细介绍一个实验大鼠取材方案，包括大鼠的选择与购买、饲养与管理、实验前准备及取材方法。

一、大鼠的选择与购买实验大鼠的选择应该根据研究的目的和要求，选用符合实验条件和研究对象的品种，如Sprague Dawley大鼠、Wistar大鼠等。

同时，购买大鼠的时候需要注意以下几个方面：2.注意大鼠的种类、性别、年龄等信息，确保符合实验需求；3.检查大鼠的体表特征，确保健康、无畸形、无伤口等；4.购买大鼠前可以进行一定的初检，如测量体重、观察活动情况等。

二、大鼠的饲养与管理实验大鼠的饲养与管理是保证实验结果可靠性的重要环节。

1.饲养环境：-温度：保持恒温（20-25度），避免极端温度的影响；-湿度：保持适宜湿度（40-70%），避免湿度过高导致疾病的发生；-光照：保持适宜光照，如12小时昼光与12小时黑暗的交替；-通风：保持通风良好，避免污浊空气对大鼠健康的影响。

2.饲料与水：-提供优质饲料，如标准饲料或专门配制的实验饲料；-饲料的存放应防潮、通风，保证其营养成分的稳定性；-提供清洁、安全的饮用水，确保水质的卫生。

3.健康监测：-定期检查大鼠的健康状况，观察是否存在异常行为或症状；-定期测量大鼠的体重、体温等生理指标。

三、实验前准备在进行实验前，需要对大鼠进行一些必要的准备工作：1.环境适应：-将大鼠从饲养环境转移到实验环境前，应进行适应期的过渡；-适当调整温度、湿度和光照等条件的过渡，减少对大鼠的应激。

2.实验前禁食：-固定禁食时间，如12小时或更长时间；-禁食能够减少胃肠道内容物对实验结果的影响。

3.麻醉和体表消毒：-根据实验需要选择合适的麻醉方式，如乙醚麻醉、氧化氮麻醉等；-在取材前进行局部体表消毒，减少感染风险。

实验大鼠常见脏器形态学取材方法和注意事项[取材内容]大鼠肺组织、大鼠肝脏组织、大鼠胰腺组织、大鼠胃部组织、大鼠空场回肠组织、大鼠肾组织、门静脉血、淋巴组织、大鼠心脏。

[试剂及药品]戊巴比妥钠或10%水合氯醛、75%酒精、生理盐水、多聚甲醛或福尔马林液、3戊二醛磷酸盐缓冲液(PBS0.01mol/LP pH7.4)或4戊二醛、肝素钠、器械液器械清洗消毒液[器材]备皮刀、解剖台、弯盘、组织剪、眼科剪、手术刀柄、刀片、小号弯式血管钳、蚊式血管钳、眼科镊、无损伤血管夹、聚乙烯管、三通管、丝线、培养皿、天平、一次性离2ml、1.5ml 、冻存管、肝素锂真空采血管、微量移液器、高速离心机、注射器10ml、5ml、2ml、无菌手套、冰箱、冰盒、液氮罐[取材动物]大鼠[取材步骤]1. 取材前夜禁食，自由饮水。

2. 小鼠称重，按照50mg/kg的比例用5ml的注射器配合针头抽取戊巴比妥钠备用。

3. 正左手的小指和无名指抓住大鼠的尾巴，另外三个手指抓住大鼠的颈部，使大鼠头部向向下。

这样腹腔中的器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官。

右手持注射器，从腹部近腿根处刺入后再腹部皮下穿行深入，动作轻柔，缓慢注射。

注射完药物后，缓缓拔出针头，手指按住针口对小鼠腹部轻柔按摩，促进麻醉药物的吸收，掐小鼠尾部检测小鼠麻醉程度。

4.将小鼠四肢固定于解剖台上，暴露小鼠整个胸部和腹部，修剪去腹部毛发，75%酒精消毒。

5.沿腹侧正中线自阴茎上源由下而上剪开腹部皮肤直至剑突，向两侧钝性剥开皮肤与皮下组织，暴露腹壁浅肌层。

沿白线钝性分离腹壁肌肉，剪开腹膜，暴露腹腔，将肝脏向上翻起，显露肝门。

6.门静脉血采集：将剪成斜口的聚乙烯管尖端背向肝门方向插入门静脉，抽取门静脉血2ml，无创血管夹夹闭门静脉止血。

将抽取门静脉血加入一次性离心管低温静置过夜，4℃离心，3000-3500/min，10分钟，吸出上清液，分装，-80摄氏度保存备用。

DRG的取材
DRG的取材，已经有很多⽂献报道，因为我最近也培养了DRG细胞，所以谈谈⾃⼰的经验：新⽣⼤⿏（红⽪）浸⼊酒精5min 处死，断头后剥开脊髓周围⽪和肌⾁，⽤显微镊剪开脊髓椎管，去除脊髓，使整个脊髓腔暴露，在解剖镜下，椎孔间的DRG 可以清晰看到，⼀个⿏应该有很多对DRG，⽤超细⼿术镊取DRG，动作要轻柔，不能将DRG夹坏。

取下的DRG放在冰PBS ⾥。

取好⾜够的DRG后，还需仔细将每个DRG的包膜剥去，这⼀步很重要，对下⼀步的组织块培养或消化培养时减少杂细胞都很关键。

这种⽅法要点就是要操作快，去除脊髓过程尽量减少出⾎，个⼈经验出⾎过多使DRG浸在⾎中会影响其活⼒。

实在有出⾎应该⽤冰PBS清洗⼀下。

还有就是剥好膜后也要放在新的冰PBS中去除⾎和杂质。

接下来就可以进⾏下⼀步操作了。

先买40只大鼠，在实验室适应一段时间{一周到两周}，实验开始前准备2ml、20ml注射器，一次性手套、口罩、50ml广口瓶，购买试剂卵清蛋白（OV A）、氢氧化铝，再去3号楼4楼找老师要PBS缓冲液（PH7.2-7.4）
第一步配置致敏剂，40只大鼠每只腹腔注射1ml，最好配置50毫升制剂（包括浪费的10毫升），每只大鼠OV A10毫克，氢氧化铝20毫克，把两种成分（OV A10mg×50=500mg，氢氧化铝20mg×50=1000mg）溶解在50毫升PBS液中或生理盐水中，制成OV A浓度为10mg/ml、氢氧化铝20mg/ml。

制成之后，每只小鼠1ml腹腔注射（腹中线左侧，大鼠头部朝下，回抽有无液体和空气，避免注入膀胱、肠管）。

隔天注射一次，或其他方案，致敏两周，大鼠产生抗体，两周之后，用PBS溶液配制滴鼻液开始激发大鼠。

华中科技大学硕士学位论文SD大鼠背根神经节细胞新取材和培养方法姓名：艾玛AmmarAliAhmed申请学位级别：硕士专业：外科学（手外科）指导教师：康皓2011-05SD大鼠背根神经结细胞的新取材和培养方法华中科技大学同济医学院附属协和医院血液病研究所　硕士研究生：艾玛　 指导教师：　康皓 教授　中文摘要　【目的】：探讨有效摘取ＳＤ大鼠背根神经结（ＤＲＧ）的方法，为实验取材奠定基础。

　方法①取材　选择为三周ＳＤ大鼠，提取ＤＲＧ神经元。

用显微解剖获取足够数量的ＳＤ大鼠背根神经结，通过胰蛋白酶＋Ⅳ型胶原酶消化②分离：ＰＢＳ洗涤吸干液体，加入０．２％Ⅳ型胶原酶和０．２５％胰蛋白酶放入３７０Ｃ温箱边消化边用眼科剪剪碎背根神经结重复数次，直到消化液变得粘稠后就可以用滴管吹打，吹打后就可以完全的把背根组织彻底的消化掉，加入含有血清的ＮＢＬ培养基终止消化，用１０００转离心，③原代培养将细胞悬液加入底面铺有Ｌ一多聚赖氨酸的培养皿（ＰＰ　）中，放人３７℃、体积分数为０．０５的ＣＯ２培养箱中，让其自然贴壁。

定期在倒置相差显微镜下观察。

　【结果】背根神经结细胞原代贴壁生长较慢，一个月以后才能长满瓶底生长二天后２０倍光镜下背根神经结细胞。

细胞成簇生长，向四周放射状排列，细胞核圆形透亮，细胞形态多边型，向四周伸出较长的触须，其他类型细胞基本上已经死掉而悬浮在培养基里。

　【关键词】背根神经结；细胞培养　New method in extracting and culture of dorsal rootganglion neurons of SD ratDepartment of Hand surgery, Union Hospital, Tong Ji Medical School, HuazhongUniversity of Science and TechnologyPostgraduate: Ammar Ali Ahmed TaherSupervisor: Pro. KangHaoAbstract【Objectives】To explore the effective method applied in extracting of dorsal root ganglion (DRG) of SD rats, thus lay a foundation for obtainment of the experimental materials.【Methods】①Obtainment of materials: Select 3-week SD rats to extract DRG neuron. Sufficient dorsal root ganglions of SD rat may be obtained via microdissection and digested using trypsin + collagenase IV. ② Isolation:The liquid is washed and sucked up with PBS, add 0.2% collagenase IV and 0.25% trypsin, after that it is placed in 37℃incubator for digestion, during which the dorsal root ganglion should be sheared with ophthalmic scissor for several time until the digestive juice becomes thick, and then a pipette is used to blow, the dorsal root tissue may be digested totally after blowing, add NBL medium containing serum to terminate the digestion process, and centrifuged at 1000r. ③Culture of primary generation of cells: Add cellular suspension in Petri dish (PP) with L-poly-lysine laid down at its bottom, and placed in incubator (37℃, 0.05 volume fraction of CO2) to allow natural adherent growth. The inverted phase contrast microscope is used regularly to perform the observation.【Results】The adherent growth of the primary generation of dorsal root ganglion cells isso slow that a month is needed to cover the bottom of the flask. The dorsal root ganglion cells under 20 x optical microscope grow for two days. The cluster of cells grows in radial arrangement to the surrounding; the nucleus appears round and transparent and cellular morphology in shape of polygon while the longer tentacles expand around the cell; other types of cell have been basically dead and suspend in the medium.【Keywords】Dorsal root ganglion; Cell culture独创性声明本人郑重声明，本学位论文是本人在导师指导下进行的研究工作及取得的研究成果的总结。

老鼠实验方案槲皮素肺、心含量的测定1. 药动物学试验实验鼠（150g~200g，265±？？g表达准确些）给药前禁食12h，自由饮水。

用0.5%的羧甲基纤维素钠溶液分别将橙皮素和甘草次酸制成悬浮液，高浓度（溶液组成：槲皮素+0.5%羧甲基纤维素钠）灌胃给药（橙皮素）20mg.kg-1，低浓度（溶液组成：槲皮素+0.5%羧甲基纤维素钠+甘草次酸）灌胃给药槲皮素)10mg.kg-1。

空白对照组实验鼠灌胃0.5%羧甲基纤维素钠。

将实验鼠按三雄三雌随机分组，每组共6只。

按要求给药，根据分布相、平衡相、消除相分别在给药后1.5小时、3小时、4小时、空白组为灌药后1小时宰杀实验鼠，迅速取出肺、心组织，用生理盐水冲洗，置于冻存管中（放置分别是1雌、1雄、2雌、2雄共4支离心管），于冰箱中冷冻保存。

2.溶液的配制槲皮素储备液：精密称取橙皮素25mg，置于50ml容量瓶中，加甲醇溶解并定容，制得500ug.ml-1的橙皮素贮备液，使用时用甲醇稀释至所需浓度。

橙皮素内标液：配制橙皮素浓度为0.2mg.ml-1溶液50ml，即0.2 mg.ml-1*50ml=10mg，槲皮素百分含量97%，则将M槲皮素=10mg/97%=0.0103g溶解于甲醇中配制成浓度为0.2mg.ml-1的橙皮素内标液.3. 组织样品的处理从冰箱中取出肺、心组织样，解冻，将组织先剪成几大片，剔除组织周围其他杂质成分如血块等，再剪碎，滤纸吸干。

▲分别称取组织0.2g，按2.5ml.g-1组织加入生理盐水（0.5ml）、20ul内标液（橙皮素浓度为0.5mg.ml-1）制成组织匀浆液。

在组织匀浆液中再加入甲醇600ul，涡旋60s，3500（可以转数更高，建议最好10000，以节约时间，和充分沉淀）转每分钟，离心15min，定量吸取上清液800ul（尽可能吸多，但所有过程要求取出体积一致），50摄氏度氮气流下吹干（即已预处理过的组织干样）冰箱冷藏备用。