下载文档原格式
细胞培养定义-概述说明以及解释1.引言1.1 概述细胞培养是一种重要的科学技术，用于在控制的实验室条件下，培养细胞体外生长和增殖。
通过提供合适的生长环境，包括适当的培养基、细胞状态维持剂和温度、湿度等因素的控制，细胞可以持续生长和繁殖。
细胞培养可以在无菌环境下进行，以保证培养过程中没有污染物的引入。
细胞培养的主要目的是研究细胞的特性和功能。
通过细胞培养，科学家可以观察和研究细胞在不同条件下的行为，进一步了解细胞的基本生理过程、信号转导途径和分化过程。
此外，细胞培养还被广泛应用于药物筛选、生物技术研究、生物工程和医药领域等。
细胞培养的发展历史可以追溯到19世纪末。
当时，人们开始尝试培养动物细胞，最早成功地实现了培养培养出鸟胚细胞。
经过长期的努力和技术改进，细胞培养的技术逐渐成熟，并被广泛应用于各个领域。
综上所述，细胞培养是一种重要的科学技术，通过在受控的实验室条件下培养细胞，可以研究细胞的特性和功能。
随着细胞培养技术的不断发展和完善，它在生物学研究、生物技术和医药领域的应用将会更加广泛。
1.2文章结构1.2 文章结构本文旨在探讨细胞培养的定义、历史、重要性以及应用领域。
为了更好地展示这些内容，本文将按照以下结构进行组织和展示：第一部分是引言部分，引言部分将对细胞培养进行概述。
我们将介绍细胞培养的基本概念，其在生物科学中的重要性以及本文的目的。
第二部分是正文部分，正文部分将分为两个小节。
首先，我们将详细介绍细胞培养的定义。
我们将解释什么是细胞培养，如何进行细胞培养以及细胞培养的目的和意义。
其次，我们将回顾细胞培养的历史，探讨细胞培养技术的发展和重要里程碑，以及这些里程碑对现代细胞培养的影响。
第三部分是结论部分，结论部分将总结细胞培养的重要性和应用领域。
我们将强调细胞培养在生命科学研究中的关键作用，并讨论细胞培养在医学、药物研发、生物工程等领域的广泛应用。
通过以上的文章结构，我们将全面、系统地介绍细胞培养的定义、历史、重要性和应用领域。
Hela细胞传代培养操作步骤1．观察培养基是否正常，细胞状态如何，细胞密度如何，决定是否传代。
观察时拧紧盖子。
2．加热PBS、versene、培养基，(提前做好) 瓶子不要倒着放，不要让液体接触到瓶塞。
3．打开超净台（先开风机，后开照明），用75%乙醇清洁台面，点燃酒精灯。
不要把废液缸拿出去倒，如果废液太多，可以用其他容器先装废液。
取小离心管一个，置于架子上。
4．取尖吸管、吸量管各一支，放置在专用的架上。
放置的方式，注意吸管、吸量管前端都不要与架子接触。
5．取待传代的细胞。
打开versene，用酒精灯外焰烧。
烧吸管时距离酒精灯心远些，不要把渣滓带进去。
把试剂拿入台子的时候，尽量平稳，不要让试剂碰到瓶口。
6．用吸量管吸取旧的培养基，置离心管中，吸量管加入versene，然后将versene瓶收起来。
（加versene 主要是为了将旧培养基洗去）。
在离心管中间部分将液体加入。
吸液体和加液体时都不要对着细胞。
7．打开胰酶，然后将versene弃掉。
换新管，用尖吸管吸取适量胰酶加入。
加胰酶后，尽快放平，使细胞消化时间一致。
8．将细胞放入37度孵箱。
放孵箱2min, 收胰酶，打开PBS. 之后拿出来镜下随时观察。
使用二次消化法，去除容器中残余的细胞。
别忘了用旧培养基中和。
9．取细胞，镜下观察消化情况。
消化程度合适之后（细胞变圆，但不漂起），用尖吸管弃去胰酶，取离心管中的培养基加入细胞，吹打，至所有细胞从培养皿底部脱落下来。
用PBS洗细胞，versene对细胞有毒性，且不能被血清中和。
然后吸取至离心管中，800 rpm离心5分钟。
10．吸量管吸取适量培养基加入新的培养皿中。
11．细胞离心毕，用吸新培养基的管弃去上清，先把泡沫吸走。
换吸量管吸取培养皿中培养基适量，加入离心管，小体积混匀，将细胞重悬，尖吸管吹匀。
12．擦计数板，用枪吸10ul的液体，计数。
不要把枪伸到离心管内。
13．吸量管吸取细胞悬液，加入新的培养皿中。
HEK293细胞培养心得首先，为了成功培养HEK293细胞，一个优良的细胞培养基是必不可少的。
一般来说，培养基应包含必需的营养物质，比如氨基酸、维生素、糖类和无机盐等。
同时，培养基还应该含有足够的抗生素以预防细菌和真菌的污染。
最好使用无血清的培养基，以避免动物源性成分对细胞培养的影响。
其次，准备一个合适的细胞培养环境也是至关重要的。
温度、湿度和二氧化碳浓度等条件应符合HEK293细胞的生长要求。
一般来说，细胞应在37°C的温度下培养，在5%的二氧化碳气氛中保持培养皿内的湿度。
细胞的传代是维持细胞活力和健康状态的重要步骤。
对于HEK293细胞，通常使用胰酶进行消化和洗涤来分离细胞。
对于细胞的新鲜分离，可以将细胞培养皿放入冰箱中进行预冷却，然后使用含有胰酶的PBS缓冲液进行洗涤。
定期检查细胞的密度和健康状况，并及时进行传代是非常重要的。
在培养细胞的过程中，细胞污染是一个常见的问题。
为了避免细菌和真菌的污染，可以在细胞培养过程中添加抗生素。
此外，操作时应注意细胞培养器具的无菌性，使用经过消毒的培养器具并保持培养环境的清洁是必要的。
细胞的冻存是为了保存和传递细胞的重要方法。
在将细胞冻存之前，应通过使用逐渐降低培养基中血清含量的方法适应细胞在无血清条件下生长。
然后使用冷冻保护剂配制适当的冻存液，将细胞分装到冻存管中，并使用液氮罐进行快速冷冻。
最后，定期检查细胞的健康和生长状态是维持细胞培养的重要步骤。
观察细胞的形态和贴壁情况，并使用显微镜检查细胞的活力和细胞数目。
如果细胞出现异常形态或生长减慢，可能是因为细菌或真菌污染，应及时采取相应的措施。
总之，HEK293细胞的培养需要一定的技巧和经验。
通过优化培养基、培养条件和消毒措施，加强细胞观察和细胞传代，可以有效地培养和维持HEK293细胞的活性和生长。
这些心得经验将有助于研究人员在实验室中更好地使用HEK293细胞进行相关研究。
293T细胞培养说明书一、实验简介293T细胞是由肾脏细胞系统转染外源基因而产生的细胞系，具有较好的培养性和转染性。
因此，293T细胞常用于基因表达研究，尤其是蛋白表达和病毒载体的构建。
二、培养条件1. 培养基：293T细胞培养最常用的培养基是Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)，其次是RPMI-1640培养基。
2. 氧气浓度：293T细胞培养一般需要一个较高的氧气浓度，如5%~10%。
3. 温度：293T细胞的培养温度一般为37℃。
4. 水分：293T细胞的培养液中的水分一般为95%~100%。
5. 添加物：293T细胞的培养液中通常会添加10%的牛血清，以促进细胞生长。
三、细胞培养步骤1. 将293T细胞从细胞库中取出，放入清洗后的培养皿中，以DMEM培养基浸泡；2. 将培养皿放入培养箱，调节温度为37℃，氧气浓度为5%~10%；3. 将添加10%牛血清放入培养液中，搅拌均匀；4. 用细胞活性检测试纸测定细胞活性；5. 根据细胞活性的变化情况，调整培养液中的水分，以维持细胞的生长；6. 将培养液更换，每1~2天更换一次；7. 定期观察细胞形态，记录细胞生长情况。
四、注意事项1. 在培养293T细胞时，需要注意细胞的温度、氧气浓度以及水分，以保证细胞的正常生长；2. 培养液的清洗和更换要及时，以保证细胞的正常生长；3. 在操作293T细胞时，一定要注意实验室的清洁卫生，以防止细胞的污染。
五、总结293T细胞培养是一种常用的培养方法，在培养293T细胞时，要注意培养液的温度、氧气浓度以及水分，并及时更换培养液，以保证细胞的正常生长。
在实验操作中，还要注意实验室的清洁卫生，以防止细胞的污染。
细胞培养科技名词定义中文名称：细胞培养英文名称：cell culture定义1：在模拟机体内的生理环境中维持细胞生长、繁殖的技术。
应用学科：水产学（一级学科）；水产生物育种学（二级学科）定义2：在体外条件下，用培养液维持细胞生长与增殖的技术。
应用学科：细胞生物学（一级学科）；细胞培养与细胞工程（二级学科）以上内容由全国科学技术名词审定委员会审定公布求助编辑百科名片细胞培养细胞培养技术也叫细胞克隆技术，在生物学中的正规名词为细胞培养技术。
不论对于整个生物工程技术，还是其中之一的生物克隆技术来说，细胞培养都是一个必不可少的过程，细胞培养本身就是细胞的大规模克隆。
细胞培养，既包括微生物细胞的培养，细胞培养技术可以由一个细胞经过大量培养成为简单的单细胞或极少分化的多细胞，这是克隆技术必不可少的环节，而且细胞培养本身就是细胞的克隆。
通过细胞培养得到大量的细胞或其代谢产物。
因为生物产品都是从细胞得来，所以可以说细胞培养技术是生物技术中最核心、最基础的技术。
目录基本概述设施器材培养基细胞培养的一般过程细胞培养的一般条件动物细胞培养的特殊条件植物细胞培养的特殊条件微生物细胞培养的特殊条件展开编辑本段基本概述细胞的生长需要一定的营养环境，用于维持细胞生长的营养基质称为培养基。
培养基按其物理状态可分为液体培养基和固体培养基。
液体培养基用于大规模的工业生产以及生理代谢等基本理论的研究工作。
液体培养基中加入一定的凝固剂(如琼脂)或固体培养物(如麸皮、大米等)便成为固体培养基。
固体培养基为细胞的生长提供了一个营养及通气的表面，在这样一个营养表面上生产的细胞可形成单个菌落。
因此，固体培养基在细胞的分离、鉴定、计数等方面起着相当重要的作用。
从多细胞生物中分离所需要细胞和扩增获得的细胞以及对细胞进行体外改造，观察，必须首先解决细胞离体培养问题，同微生物细胞培养的难易相比，比较困难的是来自多细胞生物的单细胞培养，特别是动物细胞的培养。
HEK293细胞培养心得HEK293细胞是一种来自人类胚胎肾细胞的细胞系，广泛应用于生物医学研究，药物筛选和疫苗生产等领域。
在培养HEK293细胞的过程中，需要注意一些关键因素，如培养基的选择、细胞传代和细胞冻存等。
在我个人的实验室研究中，我积累了一些关于HEK293细胞培养的心得体会，以下是我对HEK293细胞培养的常用操作和一些建议。
首先，关于培养基的选择。
HEK293细胞通常使用DMEM培养基，配合10%胎牛血清（FBS）和1%的抗生素/抗真菌溶液。
在选择FBS时，建议选择FBS批次稳定，比较适合细胞生长的产品，并进行细胞生长曲线的监测。
此外，培养基中的抗生素/抗真菌溶液可以有效地预防细胞培养中的细菌和真菌污染。
其次，细胞传代是保持HEK293细胞健康生长的关键环节之一、一般来说，当细胞达到80%~90%的密度时，可以进行细胞传代。
细胞传代前，应该先用1X磷酸缓冲盐水（PBS）洗涤细胞，然后使用胰酶或胰酶-EDTA溶解细胞。
胰酶处理时间不宜过长，一般5-10分钟即可。
通过观察细胞的形态变化，判断细胞是否已经完全分离，然后将新的培养基添加到细胞生长板中。
注意，传代时的细胞密度不宜过高，否则容易引起细胞凋亡和细胞质重叠。
此外，为了减少细胞传代带来的细胞突变风险，建议每隔一定的时间重新从冻存的细胞中获得新的细胞，而不是一直使用原始细胞系。
另外，一个常见的问题是细胞冻存和解冻。
细胞冻存是保存和传递细胞的重要方法，在培养HEK293细胞时也是常见的操作。
为了成功地冻存和解冻HEK293细胞，我们使用含10%DMSO的冻存液将细胞冷冻在液氮中。
在解冻细胞时，我们将冻存管迅速放入37°C水浴中，轻轻摇晃管子，直到细胞完全解冻。
然后，将细胞转移至预先装有适量培养基的离心管中，并离心以去除残留的DMSO。
最后，将细胞转移至培养皿中，进行正常的培养。
此外，尽管HEK293细胞生长迅速且易于培养，但仍然需要定期检查细胞的健康状态和污染。
HEK-293细胞 293A 293S 293T 和293FT cell区别⽐较....
293细胞的缺陷是⽣长过程中贴壁强度⽐较⼩。
所以在实验过程中容易流失，从⽽影响实验结果。
如果⼀个实验室新得到的293细胞是邮寄得到的并且细胞在培养瓶中，就需要让细胞沉降⼏天时间，因为⼤量细胞会漂浮在培养液⾥。
来源：⼈体肾脏形态：上⽪细胞⽣长特性：贴壁注释：该细胞含腺病毒5 DNA 。
培养液：完全培养基。
传代：吸去培养液。
胰酶消化，以1：2到1：4为宜，传代期间培养液2-3天更换1次。
冻存：90%培养液+10%DMSO冻存于液氮。
293A：是293中后来⼜建的细胞亚株，这个A是adhere的意思，就是说293倾向于形成单层细胞（monolayer），它⽐293好的地⽅是在做计算病毒数量的空斑试验（plaque assay)293A是均匀的⼀层，没有细胞重叠和细胞空隙（hole），就这个意思，这个A所对的是293S（suspension).
293细胞系是原代⼈胚肾细胞转染5型腺病毒(Ad 5) DNA的永⽣化细胞，表达转染的腺病毒5的基因。
293T细胞表达 E1A蛋⽩，S40⼤T抗原，含有S40复制起始点与启动⼦区的质粒可以复制。
293FT细胞能制造⾼滴度的慢病毒。
293A细胞来源于⼈肾纤维母细胞，组成性表达 E1A 和 E1B 蛋⽩。
293细胞的大规模培养细胞培养技术是生物学、医学和生物工程学等领域的基础技术之一。
近年来，随着新的细胞系技术的发展，细胞培养技术也得到了长足的发展。
其中，293细胞由于其在蛋白质表达和病毒生产等方面具有重要的应用价值，被广泛应用于科研和工业生产。
293细胞是一种人类胚肾细胞系，该细胞系由美国病毒学家Frank Graham于1977年首次从正常人的胚胎肾组织中分离并培养而来。
由于293细胞具有较高的增殖速率和强大的蛋白质表达能力，因此被广泛应用于病毒生产和蛋白质表达等领域。
然而，由于293细胞比较难以培养，因此大规模培养293细胞是一个较为复杂的过程。
在293细胞的大规模培养中，主要涉及以下几个方面的技术问题。
首先是细胞的营养需求。
由于293细胞对营养物质的要求较高，因此在293细胞的培养过程中需要加入多种营养物质，包括氨基酸、葡萄糖、维生素等。
同时，在大规模培养293细胞时，需要对营养物质的浓度进行优化，以保证细胞的正常生长和增殖。
其次是细胞的培养环境。
293细胞需要在特定的培养环境中生长并繁殖，因此在大规模培养293细胞时，需要对其培养环境进行严格的控制。
比如，需要控制培养液的pH值、温度和湿度等参数，以保证细胞在最适宜的环境中生长。
此外，细胞的处理和传代也是大规模培养293细胞时需要注意的问题。
在细胞的传代过程中，需要对细胞进行适当的处理，以保证细胞的健康和增殖能力。
同时，还需要注意不同传代次数的细胞之间的差异，以提高细胞的质量和稳定性。
在进行大规模培养293细胞时，还需要考虑到细胞生长的规律和产量的控制。
在细胞生长的规律方面，需要对细胞的生长速度和增殖周期进行优化，以提高细胞的生长速度和增殖效率。
在产量的控制方面，需要对细胞的表达系统进行优化，以提高细胞的蛋白表达能力和病毒产量。
总之，大规模培养293细胞是一个需要综合考虑多个技术问题的复杂过程。
随着细胞系技术的不断发展和进步，相信在未来的研究和应用中，将会有更加高效和可靠的方法被开发出来，为细胞培养技术的发展和应用带来更大的贡献。
题目：293T细胞培养操作规程
1目的293T细胞是常用于包装和扩增病毒载体的工具细胞，因此做好293T细胞的培养,为保证相关实验的正常进行提供必要条件.
2适用范围本部门293T细胞培养
3操作方法
3.1将移液器和移液枪、15ml离心管、离心管架、75cm2新的细胞培养瓶放于生物安全柜中，按照生物安全柜的标准操作规程，将生物安全柜的紫外开启半小时。
3。
2将含10％胎牛血清和100U/ml双抗的DMEM及PBS放于37℃水浴锅中预热。
3.2.1将已长到80％—90％的293T细胞培养瓶从37℃，5%的CO2培养箱中取出，先用75％的酒精喷洒于瓶表面，将细胞培养瓶旋转放于生物安全柜中，用无菌的移液管吸净其中的培养基,加5ml的预热的PBS洗涤一次，吸净PBS。
3.2.2将含EDTA—0.25% tyption用PBS稀释两陪到五倍，向该75cm2的细胞瓶中加入3ml稀释好的EDTA—0.25% tyption,让其充分平铺于细胞表面。
盖好瓶盖，将细胞瓶放在显微镜下观察,直到细胞变圆,加含10%胎牛血清的DMEM终止反应，用移液管轻轻将瓶上的细胞吹下，将细胞液移到15ml无菌的离心管中,1000rpm离心3分钟.
3.2.3将离心上清吸弃掉，用手指轻轻拍打离心管底将底部细胞分散开，再加3mlDMEM培养基将分散的细胞重悬稀释开，取一定量的细胞液进行n倍稀释后计数，按照细胞计数标准操作规程进行。
3.2。
4 计数好之后细胞传代密度按照2~5×104个细胞/cm2的培养瓶中10mlDMEM培养基，放于37℃，5%的co2培养箱中培养。
3。
2.5 24小时后观察细胞状态,待细胞长到80％-90％时进行下一次传代培养。
293T细胞培养293T 细胞培养1.培养基: DMEM =丙酮酸钠++10%血清++青链霉素2.复苏：37 度融化后，擦干冻存管酒精擦，细胞加入15ml 离心管，加5ml 培养基，500g 离心5min，弃上清，加1ml 培养基重悬后加入到培养瓶中，5~6ml 左右，记得晃匀。
3. 传代:吸出旧培基，加5mlPBS 洗一遍，用移液管加1ml 胰酶，洗一遍吸出，37 度放1min 左右计时，看到大片大片脱落了即加入新培基吹打，吹洗充分后，吸1ml加到事先加好10ml 新培育基的新瓶里。
293T 细胞是用5 型腺病毒75 株系转化，含有Ad5 E1 区的人胚肾亚三倍体细胞系，是一种E1 区缺陷互补细胞系。
293T 细胞是贴壁依赖型呈上皮样细胞，表现出典型的腺病毒转化细胞的表型，细胞允许Ad5 和其他血清型腺病毒在其上增殖。
哺乳细胞的大规模培养方式有三种：贴壁培养、微载体培养、无血清悬浮培养。
这三种方式均可用于293T 细胞的大规模培养。
293T 细胞在无Ca2+或含Ca2+培养基中可同样生长，也可生长在血清浓度降低的培养基中。
单层培养细胞在5-10％FBS-DMEM 中能生长很好。
一般来讲，1:10 传代后，一周可以长满。
严禁过度生长，这点很重要。
因为会导致细胞密度加大和堆积，影响病毒斑的形成和转染，传代时也不易打散。
悬浮的293T 细胞很容易大规模培养，但不容易长期保持稳定。
293T 细胞在传代120 次以后，其表型可能改变，生长状况不再完全是单层的了，偶尔会形成局部的细胞成团聚集，应立即抛弃，重新引入新传代的细胞。
293 细胞培养特性：1、细胞明显适应酸性环境,pH 值在6.9～7.1 时,可顺利贴壁生长, 换液293T 时动作要轻。
一般用高糖的DMEM 培养基。
2、传代：倒去废液，PBS 洗一次（轻），用0.02%EDTA 与0.25%Trypsin 消化，生长良好细胞，培养瓶中轻摇,使之流遍所有细胞表面,即将其吸除或弃去消化30s，然后吸去，再让剩下的EDTA/Trypsin 作用30s,镜下观察细胞脱落,就可加DMEM 终止消化，反复吹打至细胞全成单个悬浮细胞即可。
Hela细胞传代培养操作步骤1．观察培养基是否正常，细胞状态如何，细胞密度如何，决定是否传代。
观察时拧紧盖子。
2．加热PBS、versene、培养基，(提前做好) 瓶子不要倒着放，不要让液体接触到瓶塞。
3．打开超净台（先开风机，后开照明），用75%乙醇清洁台面，点燃酒精灯。
不要把废液缸拿出去倒，如果废液太多，可以用其他容器先装废液。
取小离心管一个，置于架子上。
4．取尖吸管、吸量管各一支，放置在专用的架上。
放置的方式，注意吸管、吸量管前端都不要与架子接触。
5．取待传代的细胞。
打开versene，用酒精灯外焰烧。
烧吸管时距离酒精灯心远些，不要把渣滓带进去。
把试剂拿入台子的时候，尽量平稳，不要让试剂碰到瓶口。
6．用吸量管吸取旧的培养基，置离心管中，吸量管加入versene，然后将versene瓶收起来。
（加versene主要是为了将旧培养基洗去）。
在离心管中间部分将液体加入。
吸液体和加液体时都不要对着细胞。
7．打开胰酶，然后将versene弃掉。
换新管，用尖吸管吸取适量胰酶加入。
加胰酶后，尽快放平，使细胞消化时间一致。
8．将细胞放入37度孵箱。
放孵箱2min, 收胰酶，打开PBS. 之后拿出来镜下随时观察。
使用二次消化法，去除容器中残余的细胞。
别忘了用旧培养基中和。
9．取细胞，镜下观察消化情况。
消化程度合适之后（细胞变圆，但不漂起），用尖吸管弃去胰酶，取离心管中的培养基加入细胞，吹打，至所有细胞从培养皿底部脱落下来。
用PBS洗细胞，versene对细胞有毒性，且不能被血清中和。
然后吸取至离心管中，800 rpm离心5分钟。
10．吸量管吸取适量培养基加入新的培养皿中。
11．细胞离心毕，用吸新培养基的管弃去上清，先把泡沫吸走。
换吸量管吸取培养皿中培养基适量，加入离心管，小体积混匀，将细胞重悬，尖吸管吹匀。
12．擦计数板，用枪吸10ul的液体，计数。
不要把枪伸到离心管内。
13．吸量管吸取细胞悬液，加入新的培养皿中。
镜下观察，摇匀，放入37度孵育。
收超净台。
293T细胞?培养条件：37℃，5%?CO2，PH值~，无菌恒温培养。
?细胞相关操作：细胞复苏1.?37°C水浴预热培养基（DMEM+10%?FBS）；2.?从液氮中取出细胞迅速放入37°C水浴快速解冻（解冻后不要继续暖细胞）；3.?在超净台中加入5ml培养基重悬细胞，1000rpm离心5min；4.?弃上清，加入5ml培养基重悬细胞后转入T25培养瓶中，轻轻晃匀；5.?置于37°C，5%?CO2培养箱中培养(培养瓶盖没有透气孔的话,瓶盖不要拧太紧)；6.第二天，用新鲜的培养基给细胞换液后继续培养。
细胞传代1.?当细胞融合度达到90%以上时，给细胞传代；2.?37°C水浴预热培养基（DMEM+10%?FBS）；3.?在超净台中，弃培养基，加入2-5mlPBS清洗细胞后，再加入1ml 胰酶消化细胞；4.?显微镜下观察到细胞变圆，有细胞开始脱离瓶壁时，加入5ml培养基（DMEM+10%?FBS）终止消化；5.用移液器轻轻吹下瓶壁上剩余的细胞，并轻轻吹打将细胞吹散；6.将细胞移入离心管中，1000rpm离心5min；7.弃上清，加入15-20ml的培养基（含血清）重悬细胞后转入T75培养瓶中或按适当比例传到T25瓶中（确保细胞贴壁后融合度在25-50%之间），细胞密度在1×104?cells/cm2?×105?cells/T-25瓶），混匀细胞悬液，确保细胞均匀分布；8.将培养瓶置于37°C，5%?CO2的无菌培养箱中培养。
细胞冻存°C水浴预热培养基（DMEM+10%?FBS）；2.消化细胞后给细胞计数:1)洗净晾干血小板计数板和盖玻片，将盖玻片完全覆盖计数区；2)充分混匀细胞，取少量细胞悬液与等体积的染色液台盼蓝混合，移液器吹吸混合均匀，用移液器取20ul混合液从盖玻片两端(与中间凹槽平行的两端)分别打入细胞，以细胞悬液刚好浸湿盖玻片为佳；3)显微镜下，数四个计数区的总细胞数，无活性细胞染成蓝色，活细胞不被染色；4)细胞密度=细胞总数/4×10000×2；这里10000是不变的，因为计数的细胞是在体积为1mm×1mm×即10-4cm3计数池内，1cm3=1ml，将四个计数区的细胞数除以4取平均数，乘2是补偿加等体积台盼蓝形成的稀释。
5)细胞活性=活细胞数/细胞总数×100%。
注:细胞密度高时，可调整细胞悬液和台盼蓝的比例，计数时乘以相应的稀释倍数即可。
3.当细胞密度达到传代密度且细胞活性在90%以上时，可以冻存细胞。
4.在超净台中将要冻存的细胞移入离心管，1000rpm离心5min。
5.弃上清，用90%培养液+10%DMSO的混合液重悬细胞，并调整细胞密度为1-3×106/ml。
6.将细胞悬液分装到冻存管中管)。
7.将装有细胞的冻存管放入程序降温冻存盒，-20°C放1-2h后，-80°C过夜，然后快速转移到液氮中。
293细胞培养293细胞培养特性：1、293细胞明显适应酸性环境,pH值在～时,可顺利贴壁生长,?换液时动作要轻。
一般用高糖的DMEM培养基。
2、传代：倒去废液，PBS洗一次（轻），用%EDTA与%Trypsin消化，生长良好细胞，培养瓶中轻摇,使之流遍所有细胞表面,即将其吸除或弃去消化30s，然后吸去，再让剩下的EDTA/Trypsin作用30s,镜下观察细胞变圆,就可加DMEM终止消化，反复吹打至细胞全成单个悬浮细胞即可。
12小时-24小时90%以上细胞贴壁。
293细胞传代时机为达80-90%汇合，传代比例为1：3。
3、293细胞在低代时容易贴壁，生长良好，在传到几十代以后，易聚集成团，且贴壁不牢，用PBS冲洗时即可能脱落，即使消化后也不容易吹打成单细胞悬液，最好购入时先大量冻存。
4、复苏293细胞的另一生长特性是贴壁所需时间长且贴壁不牢。
细胞冷冻后复苏时,都有不同程度的肿胀,若以50ml培养瓶待细胞长满瓶底的70%～80%时消化冻存,复苏时将其全部接种至2个50ml瓶中时较为合适。
刚复苏的293贴壁很慢，复苏接种后24小时内,应尽量减少观察细胞次数或不作观察,以免因晃动而影响细胞贴壁。
复苏后48小时左右观察贴壁情况并进行首次更换培养基比较合适,如果用一次性塑料培养瓶可增加细胞贴壁牢度。
换液前宜将培养基预热。
5、转染：体外应用293细胞进行细胞转染时，如果是采用磷酸钙转染，一定要注意293细胞不要全部长满细胞培养盘，长满细胞时加入磷酸钙就会使293细胞大片的脱落，最好是当293生长到1/2或2/3时进行磷酸钙转染，可以避免细胞的大量脱落。
其它的经验：1、用大瓶培养较小瓶要好，可能是更有利于293均匀的分布，利于营养的摄取2、培养液要新鲜，每次只配1000ml，分为2-4瓶，不用的培养液，冻存在-20度，3、要及时传代，最好是细胞基本铺满培养瓶底部，但是细胞之间还没有完全贴紧，总是多少有空隙的时候最好。
4、如果细胞贴壁不好，可能是消化过久，或是培养瓶不够干净，当然要除外细胞污染。
5、如果使用用玻璃培养瓶或皿，可以采用高压灭菌的%明胶溶液预处理培养瓶/培养皿，方法是将明胶加入培养皿，使之浸泡到底面的各个部分，然后吸出，置超净台内晾干即可使用。
这样处理后细胞贴壁效果好且镜下细胞立体感强。
如果是新的塑料培养瓶就不用处理。
培养基；GIBCO DMEM粉剂，加双抗，HEPES，NaHCO3配置高糖的DMEM培养基1000ml，1.一袋DMEM培养基（GIBCOBRL)用去离子水溶解2.加入NaHCO3?3.加入谷氨酰胺?（终浓度为5mM）4.加入青霉素10万U（终浓度100u/ml），链霉素万U（终浓度100u/ml）5.定容900ml6.过滤除菌、分装到两个消毒的500ml瓶子中7.加入灭活小牛血清100ml。
Jurkat细胞（人外周血白血病T细胞），是一种悬浮细胞。
我的经验如下：1、培养液：RPMI1640，15％小牛血清，2％Na2CO3，1％HEPES，青霉素100IU／1ml，庆大霉素100IU／ml；2、培养条件：5％CO2，37度，30％湿度；3、细胞复苏：要快速将冻存管放入37度水中，不断轻轻摇晃，直到细胞完全溶解，加入10ml左右的培养液，800～1000rpm，10分钟离心，之后倒掉液体，加入新的培养基就可以进行培养了；4、细胞培养：起初进行传代时由于细胞刚刚复苏，长得比较慢，所以可以3～4天传一代，传过两代后，一般2～3天传一代，每次传代后在倒置显微镜下观察细胞形态，在传过几代合适的时候可以进行实验。
5、细胞冻存：1000rpm离心后，弃去液体，加入含有15％DMSO的冻存液，按下列顺序降温：室温→4℃（20分钟〕→冰箱冷冻室（30分钟）→低温冰箱（－80℃1小时）→液氮。
培养经验细胞培养箱在每使用1个月最好用酒精擦洗一次，这样可以减少污染；（2）虽然说加样器放在紫外下照射会不准，但我们还是丢了一把1ml 的加样器在超净台，没有拿出来过，我想这样也许会减少污染；（3）小牛血清我们用的是国产的，所以在一开始的时候加了15％的小牛血清，但细胞总是长不好，后来摸索条件，把小牛血清的量调到了20％，细胞生长旺盛；（4）HEPES虽然贵点，但加上去后细胞会长的不错；（5）在超净台操作前要用％的新洁尔灭或75%酒精擦手。
1.AsPC-1（转移胰腺腺癌细胞）?【细胞复苏的方法】:（l）从液氮中取出冷冻管，迅速投入37～42℃水浴中，晃动，使其尽快融化（1分钟左右）。
（2）用培养液稀释至原体积的10倍以上，直接培养。
（3）或低速离心，去上清，加新鲜培养液培养。
SK-OV-3?[SKOV-3]细胞，人卵巢癌细胞细胞(株) KM12人结肠癌细胞。
