胰蛋白酶的动力学研究
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化学生物学小论文-胰蛋白酶的研究及应用
胰蛋白酶是一种酶类蛋白质,主要存在于胰腺的分泌液中。
它作为一种消化酶,在人体消化中扮演着非常重要的角色。
胰蛋白酶通过水解蛋白质的肽键来分解食物中的蛋白质成为小肽和氨基酸,以供身体吸收利用。
胰蛋白酶具有非常广泛的应用,主要有以下几个方面:
一、医学应用
胰蛋白酶可以用于治疗胰腺不足症和胰腺疾病等。
在胰腺不足症患者中,由于胰腺功能不良,使得胰蛋白酶分泌不足,导致无法对食物中的蛋白质进行消化分解。
而外源性添加胰蛋白酶可以补充消化酶,促进食物的消化吸收,对于保障机体营养具有非常重要的意义。
二、制药行业
胰蛋白酶作为生化制药行业中的一种重要原料,广泛应用于肿瘤、心血管、消化等领域。
通过在胰蛋白酶分子中特定位点上引入基团或者交联化学反应,可以显著增加其稳定性和活性,从而提高胰蛋白酶的制剂质量与产值。
三、食品加工
胰蛋白酶可以被应用于制作乳制品、肉制品、啤酒等食品。
在乳制品中,胰蛋白酶可以加速乳酸菌的生长与增殖,起到促进酸奶、发酵奶等乳制品中菌群发酵的效果。
在肉制品中,胰蛋白酶可以使其细腻、鲜嫩;在啤酒中,胰蛋白酶的加入可以提高酵母的生长率,促进酵母对麦芽中淀粉的消化利用。
总的来说,胰蛋白酶在医疗、生物制药、食品加工等领域中的应用十分广泛。
同时,尤其是在制药行业中,随着对胰蛋白酶安全性、纯度和活性质量的不断提高和发掘,胰蛋白酶将会在更多领域中得到应用。
大豆胰蛋白酶抑制剂对南极磷虾类胰蛋白酶的抑制动力学杭虞杰;李学英;杨宪时;迟海;郭全友【摘要】To study the kinetics of inhibition of trypsin-like protease from Euphausia superba by soybean trypsin inhibitor (STI), the kinetic theory by Tsou of irreversible inactivation was applied to measure its microscopic rate constants. The values of A"mand max were 0.155 mmol/L and 8.44μmol/(Lmin), respectively. As the concentration of STI was increased, the activity decreased with IC50 of 2.8 μg/mL. STI slowly, reversibly and competitively inhibited the enzyme activity at low concentration. The rate constant of the forward inactivation (k+0) was 0.184 tnin-'1, which was about Five times higher than the value of 0.039 4 min"' for the reverse reactivation (k-0). Therefore, at sufficiently high STI concentrations, the enzyme would be completely inactivated. This study provides experimental data for further research into the inhibition technology of the trypsin-like protease from E. superba.%为了探讨大豆胰蛋白酶抑制剂(STI)对南极磷虾(Euphausia superba)类胰蛋白酶的抑制动力学,采用邹氏不可逆抑制动力学法,测定了STI对该酶的微观速度常数.结果表明:南极磷虾类胰蛋白酶的Km和Vmax分别为0.155mmol/L,8.44 μmol/(L·min).酶活力随着STI溶液浓度增大而减小,其IC50约为2.8 μg/mL;低浓度的STI溶液对酶的抑制作用为竞争性慢可逆抑制.正向微观速度常数k+0为0.184 mmol/(L·min),逆向微观速度常数k.o为0.0394min-1,随着STI溶液浓度的逐渐增大,该酶最终将完全失活.本研究旨为该酶的抑制技术研究提供实验数据.【期刊名称】《中国水产科学》【年(卷),期】2012(019)004【总页数】6页(P635-640)【关键词】南极磷虾;抑制动力学;大豆胰蛋白酶抑制剂;类胰蛋白酶【作者】杭虞杰;李学英;杨宪时;迟海;郭全友【作者单位】中国水产科学研究院东海水产研究所,上海,200090;上海理工大学医疗器械与食品学院,上海,200093;中国水产科学研究院东海水产研究所,上海,200090;中国水产科学研究院东海水产研究所,上海,200090;中国水产科学研究院东海水产研究所,上海,200090;中国水产科学研究院东海水产研究所,上海,200090【正文语种】中文【中图分类】Q946.5南极磷虾(Euphausia superba)作为南大洋最大的单种生物资源, 是海洋浮游动物中重要的物种之一, 是企鹅、海豹、鲸类等食物链高层捕食者的重要食物来源[1]。
生物学家研究酶催化反应的动力学酶催化反应是生物学中一个重要的研究领域,它涉及到生物体内许多生物化学反应的催化过程。
酶作为一类特殊的蛋白质,能够催化反应速率的提高,使得生物体内许多反应能够在相对较低的温度和压力下进行。
生物学家们通过研究酶催化反应的动力学,旨在深入理解酶催化反应的机制和调控方式。
动力学研究酶催化反应的过程中,主要关注以下几个方面:酶的底物亲和力、催化速率和反应过渡状态。
其中,酶的底物亲和力是指酶与底物之间的结合程度。
酶结合底物的能力取决于酶的空间构象和化学性质。
生物学家们通过研究酶底物之间的结合情况,可以揭示酶催化的选择性和特异性。
催化速率是指酶催化反应的速率,也即是反应速率常数。
反应速率常数可以通过测量反应物浓度随时间的变化来得到。
通过调控反应的条件,比如温度、pH值和底物浓度等,生物学家可以了解到酶催化反应的增强效应。
此外,通过测定酶的催化速率常数,可以计算出酶的催化效率,从而比较不同酶的催化能力。
反应过渡状态是指反应物与产物之间的临时状态,在反应过程中出现的中间物质。
研究酶催化反应的动力学,可以通过研究反应过渡态来揭示酶催化反应的机制。
例如,可以通过X射线晶体学或核磁共振等技术,解析酶与底物结合后的结构,从而解释酶催化反应的机制。
在研究酶催化反应的动力学过程中,生物学家们提出了多种模型来描述酶催化动力学。
其中,最经典的模型是Michaelis-Menten模型。
该模型假设酶与底物之间形成酶底物复合物,然后发生化学反应生成产物。
根据该模型,可以推导出酶的反应速率与底物浓度之间的关系,即Michaelis-Menten方程。
通过实验测定酶的反应速率常数和底物浓度,可以拟合出酶的酶底物结合常数、反应速率常数等动力学参数。
除了Michaelis-Menten模型,还有其他一些模型被用于描述酶催化反应的动力学,比如Lineweaver-Burk模型和Eadie-Hofstee模型。
这些模型在不同条件下可以更加准确地描述酶催化反应的动力学特征。
实验三:胰蛋白酶的动力学研究一.实验目的1.掌握酶的米氏常数km值和Vmax的测定原理和方法。
2.了解底物浓度对酶促反应速率的影响。
二.实验原理1.米氏方程:V=Vmax[S]/km+[S]V是反应初速度,[S]是底物浓度2.采用双倒数作图法,对1/V=km/(Vmax[S])+1/Vmax作图:Km/Vmax1/Vmax1/-Km3.本实验以酪蛋白为底物,来测定胰蛋白酶的km值氨基酸是两性电解质,在水溶液中有如下平衡:-NH3是弱酸,完全解离时PH为11-12或更高,若用碱滴定-NH3所释放的H+来测定氨基酸,一般指示剂变色域小于10,很难准确指示滴定终点。
常温下,甲醛能迅速与氨基酸的氨基结合,生成羟甲基化合物,使上述平衡右移,促使-NH3释放H+,使溶液的酸度增加,滴定中和终点移至酚酞的变色域内(PH9.0左右)。
因此可用酚酞作指示剂,用标准氢氧化钠溶液滴定。
如样品为一种已知的氨基酸,从甲醛滴定的结果可算出氨基氮的含量。
如样品为多种氨基酸的混合物如蛋白质水解液,则滴定结果不能作为氨基酸的定量依据。
但此法简便快速,常用来测定蛋白质的水解程度,随水解程度的增加滴定值也增加,滴定值不再增加时,表明水解作用已完全。
三.试剂与仪器1.0.5%的胰蛋白酶溶液,用无离子水溶解。
2.酪蛋白酶溶液:40g/L,30 g/L,25 g/L,20 g/L,15 g/L,10 g/L,5g/L,2.5 g/L;用稀碱溶解。
3.0.25%的酚酞溶液:2.5g酚酞用50%的酒精溶解,定容至1L。
其变色范围是8.0—10.0(无色红色)。
4.中性甲醛溶液:75ml分析纯甲醛加15ml0.25%酚酞乙醇溶液,以0.01mol/lNAOH滴定至微红,密闭存放于棕色玻璃瓶中。
四.操作步骤1.组号 1 2 3 4 5 6 7 8所用底物浓度g/L 40 30 25 20 15 10 5 2.52.准备:7个50ml的三角瓶(分别编号:0 6),分别加入2.5ml中性甲醛与1滴酚酞(如果所取甲醛已是微红色,则不用加碱;若不是微红色,以0.01mol/lNAOH滴定至微红色)。
胰蛋白酶活性测定说明
详细介绍:
胰蛋白酶活性测定说明
原理:胰蛋白酶能催化蛋白质的水解,对于由碱性氨基酸(如精氨酸、赖氨酸)的羧基与其他氨基酸的氨基所形成的肽键具有高度的专一性。
此外,胰蛋白酶也能催化由碱性氨基酸的羧基所形成的酰胺键和酯键,有高度的专一性仍表现为对碱性氨基酸羧基一侧的选择对此等化学键的催化水解活性
的敏感度为:酯键>酰胺键>肽键。
因此,可以利用含有这些化学键中任一种键型的底物来研究胰蛋白酶的专一催化
活性。
在动物胰脏中,胰蛋白酶是以无活性的酶原状态存在的。
在生理条件下,胰蛋白酶原随胰液分泌至十二指肠后,在小肠上腔有Ca2+的环境中,为肠激酶或胰蛋白酶所激活,其肽链N-端的赖氨酸与异亮氨酸之间的一个肽键被水解,失去一个酸性6肽,其分子构象发生一定的改变后转变为具有催化蛋白质水解活性的胰蛋白酶。
胰蛋白酶原分子量约为24000,其等电点为pH8.9;胰蛋白酶的分子量约为23400,其等电点为pH10.8。
胰蛋白酶在pH3.0时最稳定,其浓溶液可贮存于冰箱(0℃以下)数周而活性无显著丧失。
pH<3时,胰蛋白酶易变性。
PH>5时,胰蛋白酶易自溶。
胰蛋白酶催化活性的最适pH 为7.6~7.8。
重金属离子、有机磷化合物和反应产物都能抑制胰蛋白酶的活性。
胰脏、卵清和大豆中也含有一些蛋白质对胰蛋白酶活性具有抑制作用。
保存条件:
①胰蛋白酶底物粉剂:4℃保存条件下3个月内有效
②胰蛋白酶底物稀释液:4℃保存条件下3个月内有效
③样本匀浆介质:4℃保存条件下6个月内有效。
实验胰蛋白酶活力测定一、原理福林—酚试剂中的磷钨酸和磷钼酸,在碱性条件下极不稳定,易被酚类化合物还原为蓝色化合物(钨蓝和钼蓝)。
蛋白质中含具酚基的氨基酸(酪氨酸、色氨酸、苯丙氨酸),用胰蛋白酶水解蛋白底物,生成含酚基的氨基酸与福林—酚试剂反应,生成蓝色化合物,在一定的范围内,蓝色化合物颜色的深浅与酶活力的大小成正比。
二、实验仪器试管7220分光光度计恒温水浴锅三、实验试剂福林试剂B:见福林(Folin)-酚试剂法测定蛋白质的浓度部分(冰箱中) 0.55mol/L碳酸钠溶液:58.3g无水碳酸钠溶于蒸馏水,稀释并定容至1000ml10%三氯乙酸溶液0. 2mol/L磷酸缓冲液(pH7.5):0.5% 酪素溶液:称取0.5g酪素,以0.5mol/L氢氧化钠1ml湿润,再加少量0. 2mol/L 磷酸缓冲液稀释。
在水浴中煮沸溶解,冷却,稀释并容至100ml ,冷藏在(冰箱)里。
500ug/L 酪氨酸溶液 胰蛋白酶溶液(冰箱中) 四、实验步骤标准曲线的制作:按下表加入试剂:0.20.40.60.81.0蒸馏水1.00.80.60.40.20500ug/L 酪氨酸溶液654321管号各管中加0.5%酪素2ml ,于37℃水浴中反应15分钟,然后加入10%三氯乙酸3ml ,过滤除去沉淀,取清液1ml ,加入0.55mol/L 碳酸钠5ml ,再加入福林试剂1ml ,于37 ℃水浴中显色15分钟,测OD 680。
以光密度为纵坐标,酪氨酸的微克数为横坐标绘制标准曲线。
样品测定:取干燥的试管2支,按下表加入试剂0 OD68011福林试剂B 5.05.0 0.55mol/L碳酸钠溶液37水浴中显色15分钟11上清液过滤3.03.0 10%三氯乙酸溶液1.00 2mg/ml胰酶溶液01.0 0. 2mol/L磷酸缓冲液37水浴中酶解15分钟2.02.0 0.5%酪素溶液备注21管号五、结果计算酶活力:在37℃下每分钟水解酪素产生lug酪氨酸为一个活力单位。
胰蛋白酶比活力测定的实验操作胰蛋白酶(trypsin)是一种重要的消化酶,用于蛋白质的降解。
测定胰蛋白酶的比活力可以评估其酶活性及纯度。
下面是测定胰蛋白酶比活力的实验操作步骤。
实验所需材料:1.胰酶溶液2. Brain Heart Infusion (BHI)培养基3. 丙氨酰-L-苯丙氨酰-L-色氨酸对(L-Tyr-L-Phe)4.0.1M氢氧化钠(NaOH)溶液5.0.1M硫酸(H2SO4)溶液实验步骤:1.准备酶样品:取适量的胰酶溶液,可以是商业制备的纯胰蛋白酶或者胰腺提取物。
2. 酶样品稀释:将胰酶溶液与BHI培养基按照一定比例混合,使得最终浓度在0.5-1.2mg/mL之间。
3.加入底物:向每个试管中加入20μL的丙氨酰-L-苯丙氨酰-L-色氨酸对底物。
4.孵育反应:将试管置于37℃恒温培养箱中,在设定的时间内进行酶催化反应。
5.终止反应:用加入2NNaOH溶液终止酶反应,使底物水解停止。
6.酶解产物的提取:将反应液离心,取上清液转移到新的离心管中。
实验测量方法:1. 分光光度计法:利用胰酶催化底物水解产生的对分光光度计可见吸收的产物进行测定。
用1cm光程的比色皿,将底物水解产物的吸光度读数记录下来。
2. pH差比色法:用pH差比色法测量胰酶反应液中产生的酪氨酸分解产物。
黄色小麦胚芽酪氨酸(Tyr)的醛缩反应,其产物具有红色或紫色,在526nm处吸收峰。
通过比较不同样品的吸收度可以得出胰酶比活力。
数据处理:1.分光光度计法:根据底物水解产物的吸光度,绘制标准吸光度-底物浓度曲线,利用该曲线确定底物浓度,进一步计算胰酶的比活力。
2.pH差比色法:计算样品吸收值,将其与标准吸光度曲线相对应的底物浓度进行比较,计算胰酶的比活力。
注意事项:1.操作要严格遵守无菌技术,以避免细菌或其他污染物对实验结果的干扰。
2.实验过程中可以选择不同的底物和测量方法,以适应实验目的和条件。
3.实验操作需谨慎,避免接触眼睛和口腔,注意个人安全。
胰蛋白酶动力学概述胰蛋白酶动力学(Protease Kinetics)是一种应用于生物学和化学中的重要技术,它可以帮助我们理解蛋白质以及其他大分子的结构和功能。
它可以帮助我们深入了解各种蛋白质的分解过程,以及如何影响它们的作用。
在药物开发、食品和饮料行业、生物制造业和其他行业中,胰蛋白酶动力学的应用也变得越来越广泛。
胰蛋白酶动力学是一种非常复杂的技术,它不仅可以帮助我们深入了解蛋白质的分解过程,而且可以帮助我们提高制造过程中的效率。
胰蛋白酶动力学通常包括对蛋白质的几种不同测试,以及使用计算机模拟来确定最佳条件。
这些测试可以帮助我们更好地理解蛋白质的活性,从而能够更好地控制蛋白质的分解过程。
原理胰蛋白酶动力学主要是研究蛋白质的分解过程,即胰蛋白酶的活性。
胰蛋白酶是一种有效的蛋白质酶,它可以帮助人体消化食物中的蛋白质,从而为人体提供必要的营养物质。
胰蛋白酶的活性可以受到许多因素的影响,如pH 值、温度、氧化剂以及其他化学物质的浓度。
胰蛋白酶动力学可以帮助我们了解这些因素对胰蛋白酶活性的影响,从而可以更好地控制其分解过程。
胰蛋白酶动力学通常使用反应动力学来研究蛋白质的分解过程。
反应动力学是一种用于研究化学反应的方法,反应动力学可以帮助我们了解化学反应的机理,从而使我们能够更好地控制它们。
反应动力学可以用来研究蛋白质的分解过程,可以帮助我们了解蛋白质分解过程中的各种因素,并确定最佳条件以控制蛋白质分解的进程。
工作原理胰蛋白酶动力学可以用来研究蛋白质的分解过程。
它的工作原理是通过分析蛋白质分解的时间和活性来确定最佳条件。
首先,将胰蛋白酶和一定量的蛋白质混在一起,然后记录蛋白质的分解情况,并记录每一步的时间。
这样,可以确定蛋白质分解的速率,从而得出最佳的分解条件。
在实验中,可以使用不同的参数(如温度、PH值、氧化剂浓度等)来控制蛋白质分解的过程,以便找到最佳的蛋白质分解条件。
此外,可以使用模拟计算来比较不同参数下蛋白质分解的效果,从而确定最佳参数。
实验一胰蛋白酶活性测定实验目的:掌握测定胰蛋白酶浓度、活性、比活的原理与方法。
实验原理:胰蛋白酶相对分子量23.7 KD,主要水解肽链中碱性氨基酸与其它氨基酸相连接的肽键,此外还能水解碱性氨基酸形成的酯键,如把人工合成的N-苯甲酰-L-精氨酸乙酯(N-benzuyl-L-argine ethyl ester, BAEE)水解为H-苯甲酰-L-精氨酸(BA)。
胰蛋白酶所催化的上述反应中,产物BA对253 nm 的光吸收远大于BAEE,因此可以在实验起始点把253 nm 的消光值调为零,然后记录反应体系对253 nm 的消光值的增量,并把这个增量作为测定胰蛋白酶的活性指标。
酶活单位定义:在底物BAEE浓度1m mol/L,光程1 cm,波长253nm,温度25 0C,测量体积3mL,.条件下吸光值每分钟递增0.001( A/min=0.001)为1个BAEE酶活单位。
胰蛋白酶制剂中蛋白质浓度含义:胰蛋白酶含量一般E1%表达。
这个值的含义是:浓度为1% 酶蛋白,在1cm光径下,对紫外280nm 的消光值。
不同厂家、不同产品的E1%值有很大差别。
E1% 值越高,表明酶制剂中酶蛋白含量越高。
由于酶制剂中蛋白质含量各不相同,所以用酶制剂配制E1%的蛋白质溶液时,按照厂家对产品的E1% 的测定值配制溶液。
在本实验中,胰蛋白酶酶蛋白样品采用SIGMA 公司生产的产品,生产公司对展品的描述是对280nm紫外吸收值15.3,配制胰蛋白酶标准溶液可根据厂家的这个说明。
器材以试剂:器材,电子天平,紫外分光光度计,微量加样器。
试剂:标准胰蛋白酶,N-苯甲酰-L-精氨酸乙酯,HCI, Tris。
1.胰蛋白酶活性测定:1)配制E1%的胰蛋白酶溶液每组取E1%=15.3的胰蛋白酶样品10mg 放到1ml去离子水中,充分溶解后,放入冰中保存。
2)按照表1 的要求配制试验体系所需其它各种溶液.3)按照表1的顺序进行测定标准胰蛋白酶的活性。
实验三:胰蛋白酶的动力学研究
一.实验目的
1.掌握酶的米氏常数km值和Vmax的测定原理和方法。
2.了解底物浓度对酶促反应速率的影响。
二.实验原理
1.米氏方程:V=Vmax[S]/km+[S]
V是反应初速度,[S]是底物浓度
2.采用双倒数作图法,对1/V=km/(Vmax[S])+1/Vmax作图:
3.本实验以酪蛋白为底物,来测定胰蛋白酶的km值
氨基酸是两性电解质,在水溶液中有如下平衡:
-NH3是弱酸,完全解离时PH为11-12或更高,若用碱滴定-NH3所释放的H+来测定氨基酸,一般指示剂变色域小于10,很难准确指示滴定终点。
常温下,甲醛能迅速与氨基酸的氨基结合,生成羟甲基化合物,使上述平衡右移,促使-NH3释放H+,使溶液的酸度增加,滴定中和终点移至酚酞的变色域内(PH9.0左右)。
因此可用酚酞作指示剂,用标准氢氧化钠溶液滴定。
如样品为一种已知的氨基酸,从甲醛滴定的结果可算出氨基氮的含量。
如样品为多种氨基酸的混合物如蛋白质水解液,则滴定结果不能作为氨基酸的定量依据。
但此法简便快速,常用来测定蛋白质的水解程度,随水解程度的增加滴定值也增加,滴定值不再增加时,表明水解作用已完全。
三.试剂与仪器
1.0.5%的胰蛋白酶溶液,用无离子水溶解。
2.酪蛋白酶溶液:40g/L,30 g/L,25 g/L,20 g/L,15 g/L,10 g/L,5 g/L,2.5 g/L;用稀碱溶解。
3.0.25%的酚酞溶液:2.5g酚酞用50%的酒精溶解,定容至1L。
其变色范围是8.0—10.0(无色红
色)。
4.中性甲醛溶液:75ml分析纯甲醛加15ml0.25%酚酞乙醇溶液,以0.01mol/lNAOH滴定至微红,密闭
存放于棕色玻璃瓶中。
四.操作步骤
1.
组号 1 2 3 4 5 6 7 8
2.准备:7个50ml的三角瓶(分别编号:0 6),分别加入2.5ml中性甲醛与1滴酚酞(如果所取
甲醛已是微红色,则不用加碱;若不是微红色,以0.01mol/lNAOH滴定至微红色)。
7瓶溶液的颜色应当一致。
3.滴定空白:按照操作1中的组号分别在0号三角瓶中加入5ml相对应的酪蛋白底物,以0.01mol/l
标准的NAOH滴定到微红色,记录消耗NAOH的体积。
4.1个200ml的碘量瓶(带磨口塞三角瓶),加40ml操作1中的组号相对应的酪蛋白底物,记为V空白,
在37℃水浴恒温锅中水浴10min,胰蛋白酶溶液也要在37℃水浴恒温锅中水浴10min。
5.10min到点后,取4ml胰蛋白酶溶液加入到酪蛋白溶液中,充分混匀,立即取出5ml反应液加入1
号三角瓶中,计时开始(0时刻)。
滴入2滴酚酞,用0.01mol/lNAOH滴定至微红色,记录体积V0min。
6.按照操作5的步骤,在保温2min,4min,6min,8min,10min后,分别取反应液加入到2——6号
三角瓶中,分别滴入2滴酚酞,并用0.01mol/lNAOH滴定至微红色,分别记录体积V2min、V4min、V6min、V8min、V10min。
五.结果与分析
1.
相应图表如下:
2.酶促反应初速的的计算。
3.以1/V和1/[S]作图,延长曲线至与纵轴和横轴相关。
六.注意事项
1.取样点要准确,2min一次,动作迅速。
2.酶促反应只有10min。
3.
a)标准氢氧化钠溶液应在使用前标定,并在密闭瓶中保存。
不可使用隔日贮在微量滴定管中的
剩余氢氧化钠。
b)中性甲醛溶液在临用前配制,若已放置一段时间,则使用前需要重新中和。
4.注意不要让甲醛溶液沾到手上,避免脱水。
与甲醛溶液有关的一切操作均在通风橱中进行。
李彩凤
生物工程
2012/4/27。