测定单糖组分
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单糖组分(连玉红)标准样品的配制:取葡萄糖、果糖、阿拉伯糖、木糖、核糖、甘露糖、半乳糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸10 mg,加5ml水配成2mg/mL的溶液。
1、多糖水解取l0mg纯化后多糖,加入5mL 2mol/L的三氟乙酸(1.5mL 三氟乙酸+8.5mL 蒸馏水),充氮气保护,封管,于120℃下水浴5 h 。
反应物用氮气吹干,加入2mL甲醇重新溶解,再用氮气吹干,以充分带走TFA。
2、糖腈乙酰酯衍生物的制备将降解后的多糖中加入5mg 盐酸羟胺,2mg肌醇,0.5ml吡啶,振荡混匀,放入90℃水浴中加热30min。
取出后冷却至室温,加入醋酸酐0.5ml,于90℃水浴中继续反应30min进行乙酰化。
将反应物用氮气吹干,加入氯仿1ml重新溶解,再用氮气吹干,反复进行3~4次。
最后加入2ml氯仿复溶,供气相色谱分析使用。
3、气相色谱条件色谱柱:OV-225-capillary column;内径:0.25mm;检测器:氢火焰离子化检测器(FID);检测器温度:280 ℃;进样口温度:250 ℃;载气:N2 (40 mL/min)。
以单糖标准品建立GC标准图谱为参照,根据多糖完全水解样品的出峰时间和峰面积比可知样品的单糖组成和摩尔比。
单糖组分(廖文镇)1、水解:称取20 mg 的雪莲果多糖于安瓿瓶中,加入4 mL 2 mol/L 三氟乙酸(TFA),用酒精喷灯对安瓿瓶进行封口后置于105℃下反应6 小时。
反应完后,冷却至室温,将多糖水解液与适量的甲醇混合后,减压旋转蒸干,再加入适量的甲醇,减压旋转蒸干,重复 5 次以完全去除残留的三氟乙酸。
2、衍生化:往干燥后的竹荪多糖水解物中加入0.5 mL 吡啶和10 mg 盐酸羟胺,置于95℃下恒温震荡反应30 分钟,反应完后冷却,加入0.5 mL 醋酸酐,于95℃下进行乙酰化反应35 分钟,最终生产糖腈乙酸酯衍生物。
所有的单糖标准品也按照上述步骤进行衍生化。
3、色谱条件:色谱仪为Dionex ICS-3000 离子色谱仪,检测器为电导检测器;色谱柱为Carbopac PA20 柱(2×250 mm);流速为0.6 mL/min,柱温为20℃,采用梯度洗脱方式:0-2 min:100% 200 mmol/L NaOH,2.1-20 min:10%20 mmol/L NaOH + 90%超纯水,20.1-40 min:100% 200 mmol/L NaOH。
单糖组成测定原理单糖是一类简单的糖类,由一个单糖分子组成。
常见的单糖有葡萄糖、果糖和半乳糖等。
单糖组成测定是一种分析方法,用于测定样品中单糖的种类和含量。
本文将详细介绍单糖组成测定的原理和方法。
一、单糖组成测定的原理单糖组成测定的原理基于单糖具有特定的化学性质。
常见的单糖是光学异构体,包括D-型和L-型两种构型,这两种构型可以互相转化。
在溶液中,单糖分子可形成开环结构和环状结构。
开环结构包括直链和链末内酯两种形式。
环状结构包括五元环(呈菱形)和六元环(呈椭圆形)。
单糖还具有亲水性和各种还原性反应。
单糖组成测定的核心原理是利用单糖的还原性反应进行测定。
单糖具有显著的还原性,可以将银离子(Ag+)还原为银(Ag)并生成沉淀。
这种反应被称为单糖还原反应或银镜反应。
还原反应的原理是单糖中的羟基(OH)在碱性条件下断裂形成还原剂,将银离子还原为银。
不同种类的单糖具有不同的还原性,因此可以利用还原反应测定样品中的单糖种类和含量。
二、单糖组成测定的方法1.高效液相色谱法(HPLC)HPLC是一种基于色谱原理的分析方法,可以用于分离和定量测定多种化合物。
对于单糖组成测定,HPLC通过分离和检测样品中的单糖,以确定其种类和含量。
HPLC的原理是将样品溶液通过高效液相色谱柱,利用固定相对样品进行分离。
样品中的单糖分子会因为相互作用力的不同而在柱上以不同的速度移动,从而实现分离。
继续沿柱流动的单糖分子会被检测器检测到,并根据峰的高度或面积进行定量分析。
2. 紫外-可见吸收光谱法(UV-Vis)UV-Vis光谱法是一种基于物质对紫外-可见光的吸收特性进行分析的方法。
对于单糖组成测定,UV-Vis光谱法可以通过测量样品在特定波长下的吸光度来确定其含量。
单糖在紫外-可见光谱中的吸收峰通常位于200-350 nm之间。
根据测量样品的吸光度,可以建立吸光度与浓度之间的标准曲线,从而定量分析样品中的单糖含量。
3.催化剂反应法催化剂反应法是一种利用催化剂促进单糖还原反应的方法。
HPLC-ELSD 法测定黄芪多糖中单的糖组成及摩尔比陈卫平陈琴鸣刘斌(丽水市食品药品检验所,浙江丽水323000)摘要目的:用HPLC-ELSD测定黄芪中多糖单糖组成及摩尔比测定。
方法:采用Agilent XDB-C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),柱温25 ℃;流动相为乙腈-水(80:20),流速0.8 mL·min-1;漂移管温度83.5 ℃,载气(N2)流速2.2L·min-1。
结果:鼠李糖(Rha )Y=1.3583x+5.2624, r = 0.9992, 线性范围:0.1634~1.634μg、阿拉伯糖(Ara)Y=1.2533x+3.9617, r = 0.9992 线性范围:0.3818~3.8176μg、木糖(Xyl )Y=1.3051x+5.7616 r = 0.9994 线性范围:0.1681~1.681μg、甘露糖(Man)Y=1.1817x+4.8772 r = 0.9918 线性范围:0.1604~1.604μg、半乳糖(Gal)Y=1.2622x+4.9182 r = 0.9952 线性范围:0.1634~1.634μg、葡萄糖(Glc)Y=1.3181x+7.4172 r = 0.9994 线性范围:0.1604~1.604μg、葡萄糖醛酸(Glc A)Y=1.2661X+0.2196 r = 0.9967 线性范围:11.64~116.4μg各个范围内呈良好的线性关系, 摩尔比Glu A :Rha: Ara: Gal: Glc 25.4∶0.03∶0.07∶0.08∶1。
结论:本方法灵敏、简便、准确。
关键词:HPLC-ELSD;黄芪多糖;单糖组成;摩尔比;鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、半乳糖、葡萄糖、葡萄糖醛酸黄芪为豆科植物膜荚黄芪[Astragalus membranaceus(Fisch.) Bge.]或蒙古黄芪[Astragalus membranaceus (Fisch.)Bge. var. mongholicus(Bge.)Hsiao] ,具补中益气、升阳固表、托毒生肌、利水退肿之功[1]。
HPCE法测定灵芝多糖中单糖的组成梁加贝,程贝,王菁成都中医药大学中药材标准化教育部重点实验室,成都(610075)摘要: 目的:采用高效毛细管电泳法测定灵芝多糖中单糖的组成。
方法:灵芝多糖水解后,经PMP衍生化,高效毛细管电泳分析。
电泳条件为缓冲液为50mmol·L-1硼砂溶液(pH9.3);柱温 25℃;电压20kV;检测波长200nm;气压进样0.5psi,进样时间5s。
结果:灵芝多糖主要是葡萄糖、木糖、甘露糖和半乳糖4种单糖组成。
结论:该方法具有简单、快速、分离效率高等特点,可用于测定灵芝多糖中单糖的组成。
关键词:灵芝,多糖,毛细管电泳灵芝为多孔菌科真菌赤芝Ganoderma lucidum(Leyss.ex Fr.)Karst.或紫芝Ganodermasinense Zhao,Xu et Zhang的干燥子实体。
灵芝多糖存在于灵芝属真菌的菌丝体和子实体中,是灵芝的主要有效成分之一,是由肽多糖、葡聚糖、杂多糖等组成的混合物[1]。
多糖样品的单糖组成分析常用的方法包括薄层色谱法、气相色谱法和液相色谱法。
薄层色谱法操作简单,但微量成分显色不明显;气相色谱法衍生化操作繁杂、费时;液相色谱法存在柱平衡时间长、色谱柱易污染、试剂消耗大等缺陷。
高效毛细管电泳法是近年发展起来的一种具有高效、灵敏和低耗的分析方法,在糖类物质的检测方面具有独特的优势[2]。
由于单糖缺乏常规紫外生色基团或荧光基团,需要对其进行柱前衍生,采用PMP为衍生试剂能够使其带上可被检测的基团[3~6]。
本实验首次采用高效毛细管电泳法测定了灵芝多糖中的单糖组成,为灵芝多糖的质量控制提供了一种快速、简便的新方法。
1. 材料与方法1.1 仪器与试剂电泳装置为Beckman公司P/ACE TM MDQ型毛细管电泳仪,二极管阵列检测器,用Gold 软件控制仪器操作和数据采集,弹性石英毛细管柱(57cm×50µm,有效长度50cm)(河北永年光导纤维厂)。
不同糖组分液相色谱检测方法引言糖类物质是生物学和食品科学中的重要组成部分,它们包括单糖、双糖和多糖等。
不同种类的糖分子在不同的环境下具有不同的生物学活性,因此对于糖类物质的分析和检测具有重要的意义。
液相色谱(HPLC)是一种高效、高灵敏度、高分辨率的分析方法,已广泛应用于糖类物质的分离和检测。
本文将重点介绍不同糖类物质的液相色谱检测方法。
一、单糖的液相色谱检测方法1. Fehling试剂法Fehling试剂法是一种常规的检测单糖的方法,它主要是通过单糖和酮糖的氧化还原反应来实现的。
色谱柱选用无极相逆向相色谱柱,可以溅破,适合小样品,检测较复杂。
2. 氨基树脂色谱法氨基树脂色谱法是通过氨基树脂柱分离和检测单糖的方法,氨基树脂柱对单糖有较好的分离性能,可以用于测定混合样品中的多种单糖。
3. 离子交换色谱法离子交换色谱法主要是通过离子交换柱对单糖进行分离和检测,它是一种常用的单糖检测方法,具有较高的分离和检测灵敏度。
二、双糖的液相色谱检测方法1. 碘酸法碘酸法是一种常用的检测双糖的方法,它是通过碘酸钠溶液和双糖反应生成碘的比色反应来实现的。
2. 色谱法色谱法是通过液相色谱柱分离和检测双糖的方法,色谱柱选用无极相逆向相色谱柱,可以有效地分离和检测双糖。
三、多糖的液相色谱检测方法1. 高效液相色谱-蒸发光散射检测法高效液相色谱-蒸发光散射检测法是一种常用的检测多糖的方法,它是通过高效液相色谱分离和蒸发光散射检测器联用来实现的,具有较高的检测灵敏度和分辨率。
2. 糖基柱色谱法糖基柱色谱法是通过糖基柱分离和检测多糖的方法,糖基柱具有较好的分离和检测性能,可以用于测定混合样品中的多种多糖。
结论通过不同的液相色谱检测方法,可以对不同糖类物质进行高效、准确的分离和检测。
在实际应用中,可以根据具体的需要选择合适的检测方法,以获得理想的分析结果。
液相色谱技术的不断发展将为糖类物质的分析和检测提供更多的选择和手段,为相关领域的研究和应用提供更好的技术支持。
气相色谱法测定新疆桑枝多糖中单糖组成及含量孙莲;孟磊;阿布都许库尔·吐尔逊【摘要】[目的]建立测定桑枝多糖中单糖的组成及含量的方法.[方法]水提醇沉法提取桑枝多糖,CF3 COOH水解多糖,水解产物用盐酸羟胺、吡啶和醋酸酐衍生化,生成糖腈乙酸酯衍生物,气相色谱法测定桑枝多糖的单糖组成及含量.[结果]新疆桑枝多糖由鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、葡萄糖、半乳糖等组成,含量分别为鼠李糖(11.8 mg/ml)、阿拉伯糖(14.4 mg/ml)、木糖(1.6 mg/ml)、甘露糖(1.9mg/ml)、葡萄糖(22.3 mg/ml)及半乳糖(28.0 mg/ml).[结论]该方法简便、灵敏、准确可靠,可用于桑枝多糖中单糖的组成及含量测定.【期刊名称】《安徽农业科学》【年(卷),期】2014(000)019【总页数】3页(P6207-6208,6262)【关键词】桑枝;多糖;气相色谱法【作者】孙莲;孟磊;阿布都许库尔·吐尔逊【作者单位】新疆医科大学药学院化学教研室,新疆乌鲁木齐830054;新疆医科大学药学院化学教研室,新疆乌鲁木齐830054;新疆医科大学药学院化学教研室,新疆乌鲁木齐830054【正文语种】中文【中图分类】S567桑枝(RAMULUS MORI)是桑科桑属植物桑(Morus alba L.)的一年生干燥嫩枝,是中医常用的传统药材,具有祛风活络、通利关节和燥湿利水之功效[1]。
桑枝中的主要功效成分为多糖、黄酮类和生物碱类。
现代药理研究证明,桑枝多糖具有抗炎、抗氧化、抗衰老、防癌、抗溃疡、解痉、抗菌、提高机体免疫功能以及降糖降脂等多种功能[2-8]。
测定桑枝多糖中单糖的组成及含量对桑枝的开发利用及药效学研究十分必要。
笔者利用气相色谱法对桑枝多糖的组成及含量进行测定[10],以期为新疆桑枝的质量控制和开发利用提供参考数据。
1.1 材料1.1.1 研究对象。
桑枝,采自新疆喀什,经新疆医科大学药学院天然药物教研室帕丽达·阿不力孜教授鉴定为桑的干燥嫩枝。
单糖组成成分检测及应用案例--青岛科标生物实验室单糖一般是含有3-6个碳原子的多羟基醛或多羟基酮。
最简单的单糖是甘油醛和二羟基丙酮。
单糖是构成各种糖分子的基本单位,天然存在的单糖一般都是D型。
在糖通式中,单糖的n是从3-7的整数。
单糖既可以环式结构形式存在,也可以开链形式存在。
结构单糖的环状结构和链状结构1.单糖的链状结构确定链状结构的方法(葡萄糖):2.单糖的环状结构在溶液中,含有4个以上碳原子的单糖主要以环状结构。
单糖分子中的羟基能与醛基或酮基可逆缩合成环状的半缩醛(emiacetal)。
环化后,羰基C 就成为一个手性C原子称为端异构性碳原子(anomeric carbon atom),环化后形成的两种非对映异构体称为端基异构体,或头异构体(anomer),分别称为α-型及β-型头异构体。
环状结构一般用Haworth结构式表示:用Fischer投影式表示环状结构很不方便。
Haworth结构式比Fischer投影式更能正确反映糖分子中的键角和键长度。
转化方法:①画一个五圆或六圆环②从氧原子右侧的端基碳(anomerio carbon)开始,画上半缩醛羟基,在Fischer投影式中右侧的居环下,左侧居环上。
葡萄糖的分子式为C6H12O6,分子中含五个羟基和一个醛基,是己醛糖。
其中C-2,C-3,C-4和C-5是不同的手性碳原子,有16个(α4=16)具有旋光性的异构体,D-葡萄糖是其中之一。
存在于自然界中的葡萄糖其费歇尔投影中,四个手性碳原子除C-3上的-OH在左边外,其它的手性碳原子上的-OH都在右边。
单糖构型的确定仍沿用D/L法。
这种方法只考虑与羰基相距最远的一个手性碳的构型,此手性碳上的羟基在右边的D型,在左边的L型。
自然界存在的单糖多属D型糖。
葡萄糖的环状结构和变旋现象结晶葡萄糖有两种,一种是从乙醇中结晶出来的,熔点146℃。
它的新配溶液的[α]D为+112°,此溶液在放置过程中,比旋光度逐渐下降,达到+52.17°以后维持不变;另一种是从吡啶中结晶出来的,熔点150℃,新配溶液的[α]D为+18.7°,此溶液在放置过程中,比旋光度逐渐上升,也达到+52.7°以后维持不变。
一:多糖中的单糖组分分析一般对多糖进行完全水解,水解条件:封管0.5~3M硫酸或1~6M盐酸,80℃~100℃水解2.5~8h 即可。
或控制水解条件,进行逐步水解,如封管0.025M硫酸,100℃水解15min,30min,45min 等,水解液用碳酸钡或氢氧化钡中和,滤液浓缩后可用纸层析、薄层层析、气相层析或高压液相层析等鉴定。
二:相邻单糖基连接方式分析将甲基化多糖水解得到甲基化的单糖,而此单糖上甲基化之羟基所在的碳原子就是连接键所在。
高碘酸氧化是定量反应,Smith降解是将高碘酸氧化产物进行还原,酸水解或部分水解,从高碘酸的消耗量和不同产物的生成,便可进行糖苷键位置的判断-产物中若有一分子比例的甲酸生成而消耗两分子比例的高碘酸根时,表明多糖的非还原末端或非末端部分有1-6苷键相连的单糖基存在;产物中若有赤藓醇生成,则提示有1-4结合苷键;若有甘油生成,有1-6、1-2结合的苷键或有还原性末端葡萄糖基等;若产物中能检出单糖,如葡萄糖、半乳糖、甘露糖等,则有1-3苷键存在。
结合¹³C-NMR确定连接位置。
三:端基碳苷键构型分析1:酶解实验:不被淀粉酶水解的多糖,无α-苷键,与纤维素酶有作用者,存在β-苷键。
2;IR:α-型差向异构体的C-H键在844±8cm‾¹处有一个吸收峰;β-型的C-H键在891±7cm‾处有一个吸收峰。
但是,海藻糖、阿洛糖和异阿洛糖的α-型和β-型同时存在的情况下,就不能以次来判断。
3:¹H-NMR:端基碳的δ值大于5.00ppm者,糖苷键为α-型,小于5.00ppm者,则为β-型。
4;¹³C-NMR:α-型连接的C₁化学位移在97-101ppm,β-型的在103~105ppm。
对甘露聚糖不能用化学位移判断α-型或β-型。
可用裂分常数决定,一般¹Jc-h=170HZ,为α-型,160HZ 者为β-型。
青钱柳叶多糖中单糖组分分析蒋向辉;蒋天智;王翔;苑静【摘要】采用水提醇沉法提取青钱柳叶中粗多糖,用苯酚-硫酸法测定多糖含量,进一步采用柱前衍生 HPLC 法测定多糖中的单糖组成,并对3个不同来源的青钱柳叶中多糖和单糖的含量与构成进行比较分析.研究结果显示,青钱柳叶中粗多糖的平均质量分数为4.34%,青钱柳叶中多糖主要由木糖、甘露糖、鼠李糖、阿拉伯糖、半乳糖、葡萄糖和核糖等单糖组成,其在粗多糖中的质量分数分别为3.04%、7.35%、8.46%、13.46%、24.32%、24.26%和6.16%.青钱柳叶中多糖因青钱柳叶来源不同而存在单糖组成差异.本研究为青钱柳叶质量控制与药理药效研究提供了依据.%The polysaccharides were extracted by water extraction and alcohol precipitation method. Phenol-sulfuric method was used for the determination of the content of polysacchrides.The monosacchride constituents of polysacchrides in the leaf of Cyclocarya paliurus were determined by pre-column derivatization HPLC.The content and composition of polysaccharides and monosaccharide from three different sources of Cyclocarya paliurus were analyzed and compared.The results displayed an average content of 4.34% for polysaccharides.The monosaccharide constituents of polysaccharides from the leaf of Cyclocarya paliurus arexylose,fructose,rhamnose,arabinose,galactose,glucose and ribose with their contents in polysaccharides being 3.04%,7.35%,8.46%,13.46%,24.32%,24.26% and 6.1 6%,respectively.The monosaccharide constituents and the contentof polysaccharides show differences among different sources of Cyclocaryapaliurus.It provides a basis for quality control and pharmacological efficacy study of Cyclocarya paliurus.【期刊名称】《广西师范大学学报(自然科学版)》【年(卷),期】2018(036)002【总页数】7页(P87-93)【关键词】青钱柳;柱前衍生法;HPLC;多糖;单糖组成【作者】蒋向辉;蒋天智;王翔;苑静【作者单位】凯里学院化学与材料工程学院,贵州凯里556011;凯里学院化学与材料工程学院,贵州凯里556011;凯里学院化学与材料工程学院,贵州凯里556011;凯里学院化学与材料工程学院,贵州凯里556011【正文语种】中文【中图分类】Q532青钱柳Cyclocarya paliurus又名摇钱树、麻柳、青钱李、山麻柳,系胡桃科青钱柳属我国特有的药用植物[1],主要生长于我国的湖南、贵州、江西与浙江等省的山区[2]。
单糖组成测定原理单糖是一种简单的碳水化合物,由一个单一的糖分子组成。
单糖包括葡萄糖、果糖和半乳糖等。
测定单糖的组成对于食品、医药和生物研究等领域具有重要意义。
测定单糖组成的原理主要基于单糖与特定试剂发生反应的化学性质。
下面将分别介绍几种常用的测定单糖组成的方法。
1. 高效液相色谱法(HPLC法)HPLC法是一种常用的分离和测定单糖的方法。
它基于单糖分子的化学性质和物理性质,利用高效液相色谱仪对单糖进行分离和定量分析。
该方法具有分离效果好、准确性高等优点,可用于测定多种单糖的组成。
2. 红外光谱法(IR法)IR法是一种利用单糖分子吸收红外光谱的方法。
不同的单糖具有不同的红外光谱吸收峰,通过测定样品的红外光谱图谱,可以确定其中单糖的组成。
该方法具有操作简便、结果可靠等优点,常用于食品和药物中单糖的测定。
3. 酶法酶法是一种利用酶的催化作用测定单糖组成的方法。
不同的单糖在特定的酶催化下会产生不同的反应,通过测定反应产物的生成量,可以确定样品中单糖的组成。
常用的酶包括葡萄糖氧化酶、果糖测定酶等。
该方法具有灵敏度高、选择性好等优点,广泛应用于食品和生物学领域。
4. 紫外光谱法(UV法)UV法是一种利用单糖分子在紫外光谱下的吸收特性进行测定的方法。
不同的单糖在紫外光谱下具有不同的吸收峰,通过测定样品的吸光度,可以确定其中单糖的组成。
该方法具有操作简便、结果可靠等优点,常用于食品和药物中单糖的测定。
5. 核磁共振法(NMR法)NMR法是一种利用核磁共振技术测定单糖组成的方法。
单糖分子中的氢原子和碳原子具有特定的共振信号,通过测定样品的核磁共振谱图,可以确定其中单糖的组成。
该方法具有分辨率高、准确性好等优点,常用于食品和医药领域中单糖的测定。
以上是几种常用的测定单糖组成的方法,它们基于单糖分子的化学性质和物理性质,通过不同的原理实现单糖的测定。
这些方法具有各自的优点和适用范围,可以根据实际需要选择合适的方法进行单糖组成的测定。
离子色谱法测定大蒜多糖的单糖组成和含量目的建立测定大蒜多糖的单糖组成和含量的离子色谱法。
方法以氨基酸分离柱,氢氧化钠/醋酸钠溶液梯度洗脱,脉冲积分安培检测器(Au为工作电极,Ag/AgCl为参比电极)检测,测定大蒜多糖水解产生的单糖组成及含量。
结果大蒜多糖主要由阿拉伯糖、半乳糖、葡萄糖、木糖、果糖等单糖组成,各单糖基本达到分离,线性关系良好,相关系数均>0.998,平均回收率均在95%~105%之间。
结论所建立的方法准确、简单,可用于大蒜多糖中单糖的含量测定和质量控制。
Abstract:Objective To establish a method to analyze the composition and content of monoses in the garlic polysaccharide by ion chromatography. Methods The monoses in the solution of garlic polysaccharide hydrolysised by trifluoroacetic acid were determined by amino PAC column,eluted by gradient hydroxide sodium and identified by ampere detector (AU as working electrode,Ag/AgCl as reference electrode). Results The garlic polysaccharide was mainly composed by arabinose,galactose,glucose,xylose and fructose. Good resolution could be achieved among the above mentioned five kinds of monoses. Their linear correlations over the investigated concentration were above 0.998,while the average recovery rates were in the range of 95%-105%. Conclusion The ion chromatography method is fast,accurate,simple and reliable,and can be applied in the content determination and quality control of garlic polysaccharide.Key words:ion chromatography;garlic polysaccharide;monose;galactose;glucose;xylose;fructose大蒜多糖具有增强免疫[1]、抗氧化[2]、治疗高脂血症[3]、防护紫外线损伤[4]、润肠通便[5]、心肌保护[6]、抗炎保肝[7]等作用,兼具药用和保健作用,有很高的开发价值。
反相-高效液体色谱法测定三种常见细菌胞外多聚物中的单糖组分李琼芳;张存凯;陈超;张文静【摘要】为研究细菌胞外多聚物( Extracellular polymeric substances,EPS)的复杂组分及其对环境中矿物细颗粒的溶蚀、改性作用,本文选取了土壤常驻菌硅酸盐细菌、空气常见致病菌金黄色葡萄球菌和人体常见菌大肠杆菌为研究对象,采用反相高效液相色谱(RP - HPLC)快速定性定量检测了三种细菌胞外多糖中单糖成分的方法。
结果表明:8种单糖在检测条件下进行了很好的分离,硅酸盐细菌胞外多糖中单糖成分有甘露糖和葡萄糖醛酸;金黄色葡萄球菌胞外多糖中单糖成分有核糖、葡萄糖,且在其生长过程中会消耗甘露糖、葡萄糖醛酸和半乳糖;大肠杆菌胞外多糖中单糖成分有核糖和半乳糖,且在其生长过程中会消耗甘露糖、葡萄糖醛酸、葡萄糖和半乳糖;不同微生物胞外多糖组成和含量上均有较大差异。
该研究建立了用反相高效液相色谱快速测定细菌胞外多糖组分的方法。
%To identify the complex components of the bacterial extra - cellular polymeric substances(EPS) and their effects of corrosion and surface modified on the mineral fine particles,three common bacteria from soil, air and human body were chosen to be tested strains. They were silicatebacteria,Staphylococcus aureus and Esch-erichia coli. RP - HPLC method was applied to rapid determinate the monosaccharide components of bacterial EPS qualitatively and quantitatively. The results showed 8 monosaccharides were separated well under the detecting condition. The monosaccharides of silicate bacterial EPS included mannose and glucuronic acid,while Staphylo-coccus aureusˊs EPS included ribose andglucose and Escherichia coli EPS included ribose and galactose. The dif-ferent bacteria consumed different monosaccharides in its growth process. The results also showed that the EPS monosaccharide components of each bacteria appeared apparent difference. In this research a method with RP -HPLC was established to determine the monosaccharide components of bacterial EPS.【期刊名称】《绵阳师范学院学报》【年(卷),期】2016(035)005【总页数】6页(P55-59,64)【关键词】反相高效液体色谱;细菌;胞外多糖;单糖【作者】李琼芳;张存凯;陈超;张文静【作者单位】西南科技大学生命科学与工程学院,四川绵阳 621010;西南科技大学生命科学与工程学院,四川绵阳 621010;西南科技大学生命科学与工程学院,四川绵阳 621010;西南科技大学生命科学与工程学院,四川绵阳 621010【正文语种】中文【中图分类】O657.7;Q936细菌胞外聚合物( Extracellular polymeric substances, EPS)是指附着在细菌表面或围绕在细菌周围,水道、孔隙穿通其间,形成蘑菇状膜结构,用于自我保护和相互粘附的天然有机物[1],其主要来源于微生物的新陈代谢、细胞自溶和从培养基质中吸附的有机物.EPS 广泛存在于细胞表面,具有表面吸附性强,生物絮凝性好,能稳定絮体结构,形成保护层抵御杀菌剂和有毒物质的危害,保持水分,富集营养物质等重要生理功能[2,3].国内外研究学者普遍认为EPS成分比较复杂,蒲晓芬等[4]对27种异养需氧菌EPS的组成进行研究,发现EPS主要由蛋白质和多糖组成,Liu等[5]和Sponza等[6]的研究表明,EPS中除了多糖和蛋白质外,还伴随有少量的腐殖酸、有机酸(糖醛酸)、脂类、氨基酸及核酸等物质.EPS是微生物在特定环境下产生的分子量>10 000 的高分子物质,其成分和含量与微生物的活性和功能特性有着密切联系.近几年来,由于细菌的EPS与微生物学、矿物表面化学以及矿物学溶解机制密切相关,涉及了整个生物氧化浸出界面过程,因而引起了生物冶金工作者的极大关注[7,8].微生物的胞外聚合物特性及组成研究日益引起广泛关注[9,10].本文为深入探讨EPS及其组分以深入了解微生物细胞在微生态环境中的作用与影响,用反相-高效液体色谱法对三种常见细菌胞外多糖中的单糖组分进行了分离和测定,并进行了比较,总结出测定细菌胞外单糖类物质成分的技术方法.1.1 实验材料1.1.1 供试菌株硅酸盐细菌(Bacillus mucitaginosus)、金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)和大肠杆菌(Escherichia coli)ATCC25922.B. mucitaginosus由中科院地球化学研究所连宾研究员提供[11-12];E. coli ATCC25922购自卫生部临床检验中心;S.aureus由四川省绵阳四 0 四医院友情赠送.B. mucitaginosus采用无氮培养基[11];E. coli和S.aureus采用普通牛肉膏蛋白胨培养基.1.1.2 主要试剂单糖标准溶液:分别称取20 mg甘露糖、核糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖和阿拉伯糖至烧杯,用超纯水溶解并定容至100 mL.配成浓度为200 mg/L 的混合标准溶液,4℃保存待用.其它试剂: NaCl、三氯乙酸、30% H2O2、95%乙醇、无水乙醇、乙醚、丙酮、1-苯基- 3-甲基- 5-吡唑啉酮(PMP)、三氟乙酸、三氯甲烷、乙腈、KH2PO4、NaOH.乙腈色谱纯,其他试剂均为分析纯.1.1.3 主要仪器电子分析天平、优普超纯水器、酸度计、全自动压力蒸汽灭菌锅、恒温振荡培养箱、冷冻高速离心机、透析袋(MW:8 000-14 000)、美国Agilent 1 260高效液相色谱仪.1.2 方法1.2.1 生长曲线的绘制实验采用比浊法测定细菌浓度.菌种测生长曲线前需先对其活化培养,以获得高活性的纯菌液,即挑取1~2环菌体于盛有20 mL的液体培养基中,分别置于120r/min、29℃(硅酸盐细菌)和150 r/min、37℃(金黄色葡萄球菌和大肠杆菌)的恒温培养箱中振荡培养60 h和14 h,此时的细菌具有很高的生长活性.再以2.5%(V/V)接种量接种于盛有液体培养基的三角瓶中,以无菌培养基作空白对照,其中硅酸盐细菌每6 h取样测定菌液浊度,共培养120 h,金黄色葡萄球菌和大肠杆菌每2 h取样测定菌液浊度,共培养24 h,以上步骤均重复3次,取平均值,绘制菌体的生长曲线.1.2.2 单糖待测液的制备a. 胞外多糖的提取:按文献方法[13-16]分别挑取2环菌体至装有60 mL灭菌培养基的三角瓶(200 mL)中进行活化培养,其中硅酸盐细菌置于29 ℃、120 r/min 的恒温振荡培养箱培养60 h,S.aureus和E.coli置于37 ℃、150 r/min的恒温振荡培养箱培养14 h,作母液备用.以2.5% (V/V)接种量分别接种硅酸盐细菌、金黄色葡萄球菌和大肠杆菌至600 mL相应液体培养基中,硅酸盐细菌于29 ℃、120 r/min的恒温振荡培养箱培养至稳定期,金黄色葡萄球菌和大肠杆菌于37 ℃、150 r/min的恒温振荡培养箱培养至稳定期,4℃、10 000 r/min下低温冷冻离心15 min,收集上清液,菌体加入适量的超纯水再次离心,取上清液,合并,于80 ℃水浴锅中浓缩至原体积的1/2时,10 000 r/min低温冷冻离心15 min,收集上清液,同上,继续浓缩至100 mL时,加入3倍体积的95%乙醇(进行醇沉多糖),4 ℃静止12h后,10 000 r/min低温冷冻离心15 min,收集沉淀,沉淀依次用无水乙醇、乙醚及丙酮洗涤,10000 r/min低温冷冻离心15 min收集沉淀,冷冻、干燥后即为粗多糖.将粗多糖于热水中溶解后,加入多糖溶液体积10%的10%三氯乙酸溶液脱蛋白,搅拌30 min,4 ℃静置15 min,10 000 r/min低温冷冻离心15 min收集上清液,80 ℃水浴锅中浓缩至一定体积,调pH=8.0,加入30% H2O2进行氧化脱色(45℃保温1 h),用透析袋除去H2O2及有机溶剂和小分子杂质后,浓缩至一定体积,加95%乙醇(调含醇量为80%)4 ℃静置,过夜,10 000r/min低温冷冻离心15 min收集沉淀,沉淀依次用无水乙醇、乙醚及丙酮洗涤,10 000 r/min低温冷冻离心15 min收集沉淀,冷冻、干燥后即为除蛋白后的精制多糖.b. 多糖水解:准确称取20 mg 多糖样品于安培瓶中,加入4 mol/L的三氟乙酸溶液2 mL,漩涡混匀后用酒精喷灯封管,置于120 ℃烘箱中水解2 h,水解完毕后取出至室温冷却,加入4 mol/L的NaOH溶液2 mL,并调pH至中性,待衍生化.1.2.3 标准曲线的确定将上述2.1.2中准备好的单糖混合标准溶液依次稀释,得到浓度分别为100、50、25、5、2.5 mg/L的混合标准溶液,待衍生.1.2.4 单糖衍生化分别移取单糖混合标准溶液和多糖水解液各200 μL于离心管,加入0.3 mol/L NaOH溶液200 μL,漩涡混匀后加入0.5 mol /L PMP甲醇溶液200 μL,盖好塞子,置于70 ℃烘箱中反应100 min,反应完毕后取出至室温放置10 min,加入0.3 mol/L HCl溶液200 μL中和至pH=6,混匀后加入三氯甲烷2 mL,充分涡旋后静置、分层,丢弃三氯甲烷层(下层液),重复萃取3次,将得到的水相用0.45 μm滤膜过滤后供HPLC进样分析.1.2.5 色谱条件美国Agilent 1 260高效液相色谱仪,ZORBAX Eclispe XDB-C18柱(4.6×150 mm,5 μm);柱温35℃;流动相为pH=6.8、浓度为0.05 mol/L的磷酸盐-乙腈(体积比85:15)缓冲液;流速为1.0 mL/min;检测波长250 nm;进样量10 μL.2.1 生长曲线三种细菌的生长曲线如图1所示:由图1可知,硅酸盐细菌0~20 h为迟缓期,此后进入对数期,60 h进入稳定期.金黄色葡萄球菌 2 h进入对数期,14 h左右开始进入稳定期,大肠杆菌也是2 h 进入对数期,6 h左右进入稳定期,因此,确定硅酸盐细菌稳定期培养时间为60 h,金黄色葡萄球菌稳定期培养时间为14 h,大肠杆菌稳定期培养时间为14 h. 2.2 混合标准单糖的分离单糖标准色谱图如图2所示,实验所选8种单糖均得到了很好的分离,每种单糖都有较明显的峰.对色谱图进行分析,由表1可知,单糖浓度与峰面积呈现较好的线性关系,线性相关系数均大于0.99.2.3 细菌胞外多糖中单糖组分的分析对比标准曲线,对三株细菌稳定期胞外单糖进行了色谱分析.部分结果如图2所示.在图谱中每种单糖都有较为明显的峰,与标准曲线对照可以清晰地分辨出已知单糖.由于培养基成分中也含有糖类,故实验中也同时测定了牛肉膏蛋白胨培养基的单糖成分,如图3.最终多糖成分分析结果总结于表2.由表2可知,硅酸盐细菌胞外多糖中单糖组分为甘露糖和葡萄糖醛酸,金黄色葡萄球菌和大肠杆菌胞外多糖中单糖组分和含量出现了负值,是由于牛肉膏蛋白胨培养基中成分复杂,对此进行单糖成分分析时,发现培养基中含有单糖组分甘露糖、核糖、葡萄糖醛酸、葡萄糖和半乳糖,因此金黄色葡萄球菌和大肠杆菌胞外单糖组分和含量为其HPLC图谱上显示的单糖减去对照组中的单糖含量.单糖组分负值说明此两种细菌在生长过程中需要消耗单糖,而金黄色葡萄球菌和大肠杆菌中单糖的负值含量不同,表明此两种细菌需要的营养成分不同.金黄色葡萄球菌稳定期胞外单糖包括核糖和葡萄糖,大肠杆菌稳定期胞外单糖包括核糖和半乳糖醛酸,甘露糖、核糖和葡萄糖醛酸含量较多.环境中微生物能产生大量的胞外多聚物(EPS),并利用EPS与外界直接接触进行各种物质交换及对环境变化做出相应反应,这些功能与EPS上的各种有机成分密切相关.为了解微生物与环境的相互响应,对于EPS的化学组成和结构则应进行深入研究.本实验利用反相-高校液相色谱对三种常见细菌的胞外单糖类进行了测定,并建立了有效的实验技术体系.本研究可以得出以下结论:不同细菌EPS中的单糖种类和含量均不相同.硅酸盐细菌胞外多糖中单糖成分有甘露糖和葡萄糖醛酸;金黄色葡萄球菌胞外多糖中单糖成分有核糖、葡萄糖,且在其生长过程中会消耗甘露糖、葡萄糖醛酸和半乳糖;大肠杆菌胞外多糖中单糖成分有核糖和半乳糖,且在其生长过程中会消耗甘露糖、葡萄糖醛酸、葡萄糖和半乳糖.【相关文献】[1] 倪丙杰,徐得潜,刘绍根,等.污泥性质的重要影响物质-胞外聚合物(EPS)[J].环境科学与技术,2006,29(3):108-110.[2] Ledin M.Accumulation of metals by microorganisms-processes and importance forsoil systems[J].Earth.Sci.Rev.,2000,51:1-31.[3] Andrews S C,Robinson A 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GLC法测定单糖组成1. 引言单糖是构成多糖的基本单元,了解多糖的单糖组成是研究其结构和功能的重要基础。
GLC法(气相色谱法)是一种常用的分析方法,可以准确、快速地测定多糖中的单糖组成。
本文将介绍GLC法的原理、操作步骤以及测定结果的分析与解释。
2. GLC法的原理GLC法利用气相色谱仪对样品中的单糖进行定性和定量分析。
其原理基于以下几个方面:2.1 蒸发-衍生化首先,将待测样品溶解在适当的溶剂中。
然后,通过蒸发使溶剂挥发,得到干燥的样品。
接下来,使用衍生化试剂(如醛糖试剂)对样品中的单糖进行衍生化反应。
衍生化反应可以使单糖转化为易于气相色谱分析的衍生物。
2.2 气相色谱分析衍生化后的样品通过气相色谱仪进行分析。
气相色谱仪由进样系统、色谱柱和检测器组成。
样品通过进样系统进入色谱柱,然后在色谱柱中发生分离。
不同的单糖衍生物会根据其化学性质在色谱柱中以不同的速度移动,从而实现分离。
最后,通过检测器检测样品中的各个单糖衍生物,得到相应的峰。
2.3 标准曲线法为了定量测定单糖组成,需要建立标准曲线。
标准曲线是通过测定一系列已知浓度的标准样品得到的,其中标准样品中的单糖组成已知。
通过测定待测样品中各个单糖衍生物的峰面积,并与标准曲线进行比较,可以计算出待测样品中各个单糖的含量。
3. GLC法的操作步骤3.1 样品的制备将待测样品溶解在适当的溶剂中,使其浓度适合进行衍生化反应。
根据样品的特性和需要,可以选择不同的溶剂。
3.2 蒸发-衍生化将样品溶液转移到干燥瓶中,用氮气吹干,使样品完全干燥。
然后,加入适量的衍生化试剂,使样品中的单糖发生衍生化反应。
反应时间和反应温度根据衍生化试剂和样品的特性来确定。
3.3 气相色谱分析将衍生化后的样品注入气相色谱仪的进样系统中。
设置色谱柱的温度程序和检测器的条件,以实现单糖衍生物的分离和检测。
3.4 建立标准曲线准备一系列已知浓度的标准样品,进行相同的操作步骤,得到标准曲线。
单糖组分测定
单糖测定是有机化学中一种常见的分析技术,它是一种用于检测物品中的单糖
含量的技术。
在美食领域,单糖测定可用于衡量食物的甜度,在医学领域,它被用于检测血清样本中的单糖含量,从而预测糖尿病的风险。
单糖测定所需的步骤主要分为准备样品、执行实验、分析实验结果以及绘制实
验曲线。
准备样品首先需要从检测物品中精确提取单糖,可以采用血清法、液相色谱法等方法获得纯度较高的单糖样品;然后将单糖样品采用明胶扩散法测量糖度含量,该方法比较简便,但是准确性较差;最后根据采集到的糖度数据来计算单糖的浓度。
执行实验时首先要准备样品的因子,即糖度比例、浓度和量;然后采用对比法
或色度分析法等设备,用于测量比较样品中的单糖度、浓度和量;结果可以使用数据库、统计图表来分析,从而确定单糖的类型及其含量,从而预测出合理的单糖浓度。
最后,可以通过绘制实验曲线,即根据采集到的实验数据来绘制平衡实验曲线,该曲线可以表现测量样品中的单糖的含量随糖度变化的规律。
总的来说,单糖测定是一种简单而又有效的技术,它可以用于检测物品中单糖
含量,从而预测其营养价值、甜度以及有害物质的风险等。
第1篇一、实验目的1. 掌握单糖的化学性质和反应特点;2. 学习使用Fehling试剂检测还原糖的方法;3. 掌握单糖含量的测定原理和操作步骤;4. 了解实验误差产生的原因及处理方法。
二、实验原理单糖是指具有还原性的糖类,包括葡萄糖、果糖、半乳糖等。
在碱性条件下,单糖可以还原Fehling试剂中的Cu2+离子,生成砖红色的Cu2O沉淀。
通过比较实验组与空白对照组的沉淀颜色深浅,可以确定单糖的含量。
三、实验材料及试剂1. 实验材料:白砂糖、葡萄糖、果糖、淀粉、蔗糖等;2. 实验试剂:Fehling试剂、硫酸铜溶液、氢氧化钠溶液、蒸馏水等;3. 仪器:锥形瓶、移液管、滴定管、试管、烧杯、玻璃棒等。
四、实验步骤1. 配制Fehling试剂:将硫酸铜溶液和氢氧化钠溶液按比例混合,配制成Fehling试剂;2. 准备实验组:将白砂糖、葡萄糖、果糖、淀粉、蔗糖等单糖分别溶解于蒸馏水中,配制成不同浓度的溶液;3. 检测单糖含量:a. 取试管,加入2ml Fehling试剂;b. 分别取不同浓度的单糖溶液1ml,加入试管中;c. 混匀后,将试管置于水浴中加热至沸腾,观察沉淀颜色变化;d. 比较实验组与空白对照组的沉淀颜色深浅,确定单糖含量;4. 数据处理:根据实验结果,绘制单糖含量与溶液浓度的标准曲线,计算样品中单糖的含量。
五、实验结果与分析1. 实验结果:a. 白砂糖溶液的沉淀颜色较浅,含量较低;b. 葡萄糖溶液的沉淀颜色较深,含量较高;c. 果糖溶液的沉淀颜色与葡萄糖溶液相近,含量也较高;d. 淀粉溶液的沉淀颜色较浅,含量较低;e. 蔗糖溶液的沉淀颜色较浅,含量较低;2. 实验分析:a. 根据实验结果,可以得出葡萄糖和果糖在溶液中的含量较高,符合其化学性质;b. 白砂糖、淀粉和蔗糖的沉淀颜色较浅,说明其在溶液中的含量较低;c. 实验结果与理论相符,验证了Fehling试剂检测还原糖的有效性。
六、实验误差及处理方法1. 误差来源:a. 试剂配制误差:Fehling试剂的浓度不精确,导致实验结果偏差;b. 操作误差:移液、滴定等操作不精确,影响实验结果;c. 仪器误差:仪器精度不足,导致实验结果偏差;2. 处理方法:a. 严格控制试剂配制过程,确保Fehling试剂浓度准确;b. 严格按照操作步骤进行实验,减少操作误差;c. 选择高精度的仪器,提高实验结果的准确性。
一、实验目的1. 掌握糖组分测定的原理和方法。
2. 了解不同糖类物质的性质及特点。
3. 学会运用化学实验方法测定糖组分。
二、实验原理糖类物质是生物体内重要的营养物质,包括单糖、二糖和多糖等。
本实验采用比色法测定糖组分,通过观察不同糖类物质与特定试剂反应后的颜色变化,确定样品中各种糖的含量。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:葡萄糖、果糖、蔗糖、淀粉、糖液样品、3,5-二硝基水杨酸、氢氧化钠、硫酸铜、硫酸锌、无水碳酸钠、苯酚、亚硫酸钠、酒石酸钾钠、葡萄糖标准溶液、蒸馏水等。
2. 实验仪器:可见分光光度计、电子天平、水浴锅、试管、滴管、移液器、容量瓶、烧杯等。
四、实验步骤1. 配制试剂:根据实验需要,配制3,5-二硝基水杨酸溶液、氢氧化钠溶液、硫酸铜溶液、硫酸锌溶液、无水碳酸钠溶液、苯酚溶液、亚硫酸钠溶液、酒石酸钾钠溶液等。
2. 样品处理:准确称取一定量的糖液样品,加入适量蒸馏水,搅拌均匀。
3. 比色测定:(1)葡萄糖:将处理好的样品与3,5-二硝基水杨酸溶液混合,置于水浴锅中加热煮沸,观察颜色变化,并与葡萄糖标准溶液进行比色。
(2)果糖:将处理好的样品与氢氧化钠溶液混合,置于水浴锅中加热煮沸,观察颜色变化,并与果糖标准溶液进行比色。
(3)蔗糖:将处理好的样品与硫酸铜溶液混合,观察颜色变化,并与蔗糖标准溶液进行比色。
(4)淀粉:将处理好的样品与硫酸锌溶液混合,观察颜色变化,并与淀粉标准溶液进行比色。
4. 数据处理:根据比色结果,计算样品中各种糖的含量。
五、实验结果与分析1. 实验结果:(1)葡萄糖含量:X mg/mL(2)果糖含量:Y mg/mL(3)蔗糖含量:Z mg/mL(4)淀粉含量:W mg/mL2. 结果分析:(1)根据实验结果,分析样品中各种糖的含量。
(2)比较不同糖类物质的颜色变化,了解其性质及特点。
(3)讨论实验过程中可能出现的误差,并提出改进措施。
六、实验总结1. 本实验成功测定了样品中各种糖的含量,掌握了糖组分测定的原理和方法。
一株硅酸盐细菌胞外多糖的单糖组分分析
题目简介(200字以内)
硅酸盐细菌是最重要的土壤细菌之一,可以利用有限的营养大量生产多糖。
硅酸盐细菌的胞外多糖具有很好的絮凝作用,絮凝特性要优于许多微生物,通常用于废水处理。
在不同培养条件下,硅酸盐细菌的胞外多糖含量差异较大。
据文献报道在培养基中加入矿粉,可以提高硅酸盐细菌的胞外多糖含量,发酵液外观较对照组差异显著。
本研究将通过苯酚-硫酸法、DART-MS技术来确定不同培养条件下多糖含量和单糖组分的差异。
任务简介
1、硅酸盐细菌的培养
2、胞外多糖的含量测定
3、胞外粗多糖的提取、纯化及酸水解
4、LC-MS分析单糖组分差异
一、硅酸盐细菌的培养
种子液制备时,以接种环挑取单菌落2-3环于有氮液体培养基(蔗糖2.0 g,酵母提取物0.1g,硫酸铵0.04g,MgSO4·7H2O 0.2g,碳酸钙0.1g,K2HPO4·12H2O 0.2g,pH 7-7.5)中,180r/min,30℃,摇床培养3天。
发酵液培养基:配制添加7种不同矿粉的有氮培养基及不加矿粉的有氮培养基各200mL,接种量为10%(体积比),150rpm 30℃培养5天。
有氮液体培养基:
蔗糖(C12H22O11)10.0 g
酵母膏0.3 g
(NH4)2SO40.2 g
CaCO30.5 g
MgSO4·7H2O 1.0 g
K2HPO4 1.0 g
pH值7.0~7.5
蒸馏水 1.0 L
115℃高压蒸汽灭菌20 min
胶质芽孢杆菌荚膜观察:用胶头滴管在载玻片中央滴一小滴蒸馏水,用接种环从培养液中挑取少量胶质芽孢杆菌,与水滴混匀,涂成薄层,然后滴加10ul
10%刚果红溶液染色2min ,置于普通光学显微镜下观察细胞形态。
有氮固体培养基培养,放大1000倍
二、测EPS 含量
1、测蛋白质含量:用考马斯亮蓝法测定蛋白质含量。
取1ml 发酵原液,加入4倍体积-20℃预冷的丙酮,4℃过夜。
离心,烘干,加2ml 40mM Trise 在
80 ℃的水浴锅中加热溶解。
8000 r/ min 离心10min 后取60ul 上清于96孔板中加180ulBradford 试剂,反应5min 后于595nm 测定蛋白质含量。
测蛋白标曲:
2、测多糖含量:用苯酚-硫酸法测定多糖含量。
取1ml发酵原液(1ml单蒸水调零),加3倍体积无水乙醇,4℃过夜。
离心,烘干,加4ml水在80 ℃的水浴锅中加热溶解。
8000 r/ min 离心10min后取1ml 上清,加6%苯酚0.5ml,浓硫酸2.5ml,静置10min,摇匀,室温放置20 min后,取200ul于96孔板中,于490nm测定吸光值。
测多糖标曲
三、纯化多糖:
将培养 5 d 后的发酵液在8000 r/ min 离心20 min ,取其上清液;将沉淀及少许液体合并后再次离心取上清液;合并两次上清液在 80 ℃的水浴锅中浓缩 ,体积减少至原体积的三分之一时 ,加入3倍体积的无水乙醇进行醇沉多糖 ,在4℃静止12 h 以后,4000 r/ min 离心
10 min ,收集沉淀,再分别用 95 %乙醇、无水乙醇,甲醇及乙醚洗涤沉淀,离心后得多糖粗品,即粗多糖。
将该多糖粗品用20 mL 蒸馏水溶解后,用savge 试剂除蛋白5~7次后,再次醇沉离心得到较纯多糖,即纯化多糖。
酸水解多糖:用2M H 2SO 4在100℃下完全水解2小时,然后用碳酸钡中和(调Ph 为7)水解产物,4℃过夜。
四、LC-MS 定性定量分析单糖组分
用savge 试剂除蛋白:取粗多糖溶液4 ml ,氯仿—正丁醇(预先配制成体积比为4∶1 混合液) 溶液1 ml ,置于具塞试管中,充分振摇30 min 后,经离心机离心1 min ,然后将水相与氯仿相分开。
将水相再加入相当于其体积1/ 4 的氯仿—正丁醇溶液,重复上述过程,共计重复5次。
Sevag 法较为温和,对多糖的结构影响不大,但效率较低,往往重复五次以上才能达到
理想效果。