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浮游植物的采集 计数与定量方法

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浮游植物的采集计数与定量方法ppt课件

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仅仅用数量就很难评价。这就要求，浮游植物的定
量工作，必须以测算生物量为目标。
在早期不同水体饵料生物的丰欠调查中，
人们往往只注重浮游植物的种类或数量， 其原因在于：
浮游植物生物量 目
2．采样点的选择及采样层次的确定
选择采样点的原则是，采样点在平面上的分布要有代表
浮游植物的现存量： 定义：指的是某一瞬间单位水体中所存在的浮游植物 的量。 两种表示方法： •
用数目单位表示的密度，一般用个／升为单位，五、六
十年代用之； • 用 重 量 单 位 （ mg/L） 表 示 的 现 存 量 称 为 生 物 量 （ Biomass）。70年代以来被广泛使用。
不同水体，不同种类的藻类在个体上有很大差异，
每瓶标本计数数量：计数两片取其平均值， 每片大约计算50～100个视野，但视野数可 按浮游植物的多少而酌情增减。
如平均每个视野不超过 1 ～ 2 个时，要数 200 个视野以上，如果平均每个视野有 5 ～ 6 个 时要数100个视野，如果平均每个视野有十 几个时数50个视野就可以了。
同一样品的两片计算结果和平均数之差如
3．采样量及采样次数
每一个采样点应采水1000ml。
若系一般性调查，可将各层采的水等量混合，取
1000ml混合水样固定；
或者分层采水，分别计数后取平均值。
（分层采水可以了解每一采样点各层水中浮游植物的数量和种类）
采样次数可多可少。有条件时还可逐月采样一次，
一般情况可采样一次，最低限度应在春季、夏季 末、秋初各采样一次。
二、固定保存
鲁哥氏液即将6克碘化钾溶于20ml水中，待
其完全溶解后，加入4克碘充分摇动，待碘 全部溶解后定容到100ml即配成鲁哥氏液。

7.实验七__浮游动物采集和定量

7.实验七__浮游动物采集和定量
实验七 浮游动物采集和 定量
实验目的
掌握浮游动物采集、浓缩、定量的常用 方法。
实验仪器、用品
广口瓶、浮游生物网、量杯、甲醛、刻 度吸管。
实验内容
1.采样：采样点、采样层次 同浮游植物在野外 采集时，必须遵循先采定量样品，后捞定性标本 的原则。
2.浓缩：用广口采水器采10~30 L（30L）水， 用浮游生物Ⅲ型网（25#，200目， 0.064mm孔径）过滤。用5%甲醛固定。
5.生物量的换算：
测出每升水中浮游动物的数量后，再求得各种 浮游动物的平均重量后，生物量就能换算。
① 体积法：把生物体当做一个近似几何图形，按求 体积公式求得生物体积，并假定比重为1，由此得 到体重。
② 沉淀体积法：把浮游动物样品放在有刻度的滴定 管中，经一段时间沉淀后读出沉淀体积。
③ 直接称重法：就是要把称重的生物体，直接放在 微量天平中称其体重。
3.计数：如果数量少（＜1000），可以直接 全部计数。如果数量多，可在相应的计数框内 计数。
4.个体数的计算：
N=(n·V′)/(V·V″)
式中， N为每升的个体数（个/L）； n为取样计数的个体数（个）； V′为水样浓缩的体积（ml）； V″为取样计算的体积（ml）； V为采水量或滤水量（L）。
动物
中型浮游动物定 量：取1 ml浓缩 水样于浮游动物 计数框内全片计
数
大型浮游动物 定量：在解剖 镜下体中浮游动物的密度和生物量
图1 浮游动物采样 、定量流程
作业：1.列表表示各种类浮游 动物的数量。
表1 浮游动物数量计数记录表
标本编号
站号
层次（m）
采水量（L）
浓缩体积（ml） 计数体积（ml）
调查时间： 年 月 日

浮游动植物采样方法

浮游动植物采样方法

浮游动植物采样方法
一、浮游植物定量
用1L的塑料瓶，直接在采样点装满水，加10-15ml的鲁哥试剂，摇匀。

鲁哥试剂即将6g碘化钾溶于20ml水中，待其完全溶解后，将4g碘充分摇动，待其完全溶解后，定容至100ml，即配成鲁哥氏液。

二、浮游植物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。

三、浮游动物定量
表层取水样10L（中层和底层取20L水样）过25号浮游生物网，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，4%添加的福尔马林溶液。

福尔马林溶液即40%的甲醛与蒸馏水按照1：9的比例混合配制而成。

四、浮游动物定性
定性样品用孔径约0.064 mm的25号浮游生物网在水面下约0.5 m处以适当的速度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样，放入50ml的白色方瓶中，添加适量的鲁哥氏液固定。

浮游生物调查方法

浮游生物调查方法

七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移 0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2 动台的显微镜。 经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准 适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。每 次计数时用的盖玻片应用碱水或肥皂水洗净备用。 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 净，计数框用前以薄绸布拭净，用毕以水弄湿后 轻拭或用水冲净。
虹吸动作要十分仔细、小心。开始时虹吸管一端 放在沉淀器内约三分之二处，另一端套接在已经 用手挤压出空气的橡皮球上，然后轻轻松手并移 开橡皮球使清液流出，为了避免漂浮水面的一些 微小藻类进入虹吸管而被吸走，管吕应始终低于 水面。虹吸管内清液的活动不宜过快，可用手指 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 应使清淮一滴一滴地流下。吸出的清液要用一洁 净的器皿装盛，以便在浓缩过程在出故障时，可 重新倒入沉淀器中浓缩，不必新采水。
数横条，最少不少于5 数横条，最少不少于5条具体可自行掌握。 总之不论数视野还是数横条，每片计数到 的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）500个（高浓度时）以上。 500个（高浓度时）以上。 同一样品的二片计数结果与其均数之差距 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 的均数即可视为计数结果。
浮游动物定量：

水质 浮游植物的测定

水质 浮游植物的测定

水质浮游植物的测定 0.1 ml计数框-显微镜计数法1 适用范围本标准规定了测定水中浮游植物的0.1 ml计数框-显微镜计数法。

本标准适用于地表水中浮游植物的密度测定。

样品浓缩50倍时，对角线方式计数方法检出限为9.2×103cells/L；行格方式计数方法检出限为3.0×103 cells/L；全片方式计数方法检出限为9.2×102 cells/L；随机视野方式计数的方法检出限与观察的视野数、显微镜视野面积有关，按附录A计算。

2 规范性引用文件本标准引用了下列文件或其中的条款。

凡是注明日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本标准。

凡是未注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本标准。

GB/T 14581水质湖泊和水库采样技术指导HJ/T 91地表水和污水监测技术规范HJ 494水质采样技术指导3 术语和定义下列术语和定义适用于本标准。

3.1浮游植物 phytoplankton在水中营浮游生活的微小藻类植物，通常浮游植物就是浮游藻类，包括原核的蓝藻和其它各类真核藻类。

3.2显微镜计数视野 microscope counting field显微镜视野中限定一定面积的区域，用于定量计数浮游植物。

3.3检出限 detection limit单次计数过程中，发现的概率不低于99%时最低的浮游植物密度。

4 方法原理在显微镜下，利用0.1 ml计数框对样品中的浮游植物进行人工分类和计数，计算单位体积样品中各种类浮游植物的细胞数量。

5 试剂和材料除非另有说明，分析时均使用符合国家标准的分析纯试剂，实验用水为新制备的去离子水或蒸馏水。

5.1 碘（I2）。

5.2 碘化钾（KI）。

5.3 甲醛溶液：w(HCHO)＝37%～40%。

5.4 丙三醇（HOCH2CHOHCH2OH）。

5.5 鲁哥氏碘液：称取60 g碘化钾（5.2），溶于100 ml水中，再加入40 g碘（5.1），充分搅拌使其完全溶解，加水定容至1000 ml，转移至棕色磨口玻璃瓶，室温避光保存。

研究浮游植物常用的方法

研究浮游植物常用的方法

研究浮游植物常用的方法浮游植物是水中的微型植物群体，主要包括藻类和悬浮植物等。

它们在水生生态系统中起着非常重要的作用，不仅是水中有机物的重要来源，还能够维持水质平衡，并为其他生物提供生活所需的氧气。

因此，研究浮游植物的分布、生态特征及其与环境因素之间的关系，对于理解水生生态系统的结构和功能具有重要意义。

以下是研究浮游植物常用的方法：1. 采样分析法：这是最常见的研究浮游植物的方法之一。

在湖泊、河流或海洋中采集水样，然后通过显微镜观察和计数水中的浮游植物。

这种方法可以获得浮游植物的种类组成和数量分布等信息。

2. 长时间监测法：利用自动水质监测仪器，连续监测水体中的浮游植物。

这种方法可以获得时间序列的数据，揭示浮游植物的季节变化规律，并与环境因素进行关联分析。

3. 光合作用测定法：通过测定浮游植物的光合作用速率和光合色素含量等参数，评估其生长和活性状态。

这种方法可以评估浮游植物对光照强度和营养物质的响应能力，揭示浮游植物的生态适应性。

4. 分子生物学方法：利用分子生物学技术，如PCR和DNA测序，对浮游植物的种类和亲缘关系进行分析。

通过提取和分析浮游植物的DNA，可以鉴定浮游植物的种类，甚至对未知种进行分类鉴定。

5. 滨浅法：该方法是在滨浅区域布置采样设备，如固定附着式采枝器、正接触落水手法、藻类拉网法等。

通过长时间的滨浅观察和采样，可以评估浮游植物的垂直分布和生态特征。

6. 光合与呼吸测定法：该方法基于浮游植物在光合和呼吸过程中产生的氧气和二氧化碳的浓度变化。

通过测量水样中氧气和二氧化碳的浓度变化，可以推导浮游植物的光合速率和呼吸速率，进而评估其生态功能。

总结起来，研究浮游植物的常见方法包括采样分析法、长时间监测法、光合作用测定法、分子生物学方法、滨浅法和光合与呼吸测定法等。

这些方法可以从不同角度了解浮游植物的分布、生态特征和生理过程，为水生生态系统的保护和管理提供科学依据。

浮游植物的定量分析


4、注意事项： ①计算过程中常可碰到某些个体的一部分在 视野中，而另一部分在视野外，可规定出 在视野上半圈者计数，下半圈者不计数。 此外，数量最好用细胞数表示，对不易用 细胞数表示的群体或丝状体，可求出其平 均细胞数。 ②计算时优势种类尽可能鉴别到种，其余鉴 别到属。注意不要把微可用下列公式计算： N = (Cs × V ) / ( Fs × Fn ×U ) × Pn 式中：Cs——计数框的面积（mm2）； Fs——显微镜的视野面积（mm2） Fn——计数的视野数 V——1升水样浓缩后的体积（ml） U——计数框的体积（ml） Pn——计数出的浮游植物个数 如果计数框、显微镜固定不变，Fs、V、U也固定 不变，公式(Cs × V ) / ( Fs × Fn ×U )用 常数K代替，上述公式可简化为：N = K × Pn。
2、生物量的换算
★生物量较数量更能反应水体中浮游植物的现 存量，不同水体的数据也更具可比性，所以 计算出的数值应按湿重换算成生物量。 ★湿重通常按体积计算，由于不同水体的个体 差异较大，所以最好每个样品都能实测其优 势种的体积，但此项工作量相当大。
3、计数具体要求；
①校正计数框容积。 ②定量用的盖玻片应以碱水或肥皂水洗净备用，用前 可浸于70﹪酒精中，用时取出拭干。 ③滴取样品以后最好用液体石蜡封好计数框四周，以 防计数过程中干燥。 ④用台微尺测显微镜一定倍数下的视野直径。 ⑤选好与计数框同样容积的定量吸管。 ⑥定量时应将浓缩标本水样充分摇匀，快吸快滴 。 ⑦加上盖玻片后不应有气泡出现 。 ⑧计数后的定量样品应保存下来。
浮游植物的定量分析
1、计数：
★ 将浓缩沉淀后的水样充分摇匀，吸出 0.1 mL置计数框内 （表面积最好 20 ×20 mm），在400—600倍显微镜下观 察计数。 ★每瓶标本计数2片取其平均值，每片大约计算50个视野， 如果平均每个视野有5—6个时浮游植物就要数100个视野， 如平均每个视野不超过1—2个时，要数200个视野以上， ★ 同一样品的2片计算结果和平均数之差如不大于其均数的 ±15％，其均数可视为有效结果，否则还必须测第 3片， 直至 3片平均数与相近两数之差不超过均数的15％为止， 这两相近值的均数，即可视为计算结果。

漓江浮游植物调查

漓江浮游植物调查何安尤(广西水产研究所南宁 530021)浮游植物是水域生态系统最主要的初级生产者，其种类组成和数量的变动，与水体的氮、磷、硅、钙等营养元素含量变化紧密相关，是水质污染及营养水平的重要标志。

1 调查方法1.1 采样点设置漓江浮游植物调查在漓江支流的小溶江电站、漓江的桂林市区木龙渡、桂林榕湖、灵川大圩、阳朔兴坪等设5个采样点调查，其中小溶江、桂林木龙渡、灵川大圩和阳朔兴坪采样点为漓江干流采样点，榕湖为半人工湖泊型采样点。

会仙湿地在临桂县会仙镇红星村设1个采样点调查。

分别在枯水期（2006年3月）、丰水期（2006年11月）进行调查。

1.2 样品采集及检测定性水样用25号浮游生物网在水下15cm作“∞”字型拖10min,用1.5％碘液固定，4％福尔马林保存。

定量水样用采水器在采水点左、中、右，上、中、下水层采集混合样，浮游植物定量水样取1000ml，用1.5％碘液固定，4％福尔马林保存，在室内进行二次沉淀处理，最后浓缩为30ml水样。

定性镜检：在显微镜下（100～400倍）镜检3～4片定性到属。

定量计数：将浓缩水样充分摇匀后，吸出0.1ml，置于0.1ml计数框内，在400倍显微镜下观察计数，每瓶标本计数二片取其平均值，每片计数200～400个视野；同一样品的计数结果和平均数之差不大于其均数的±15％，即为有效结果。

1.3 多样性指数的计算通过多样性指数可以将藻类群落结构数字化来指示水体污染情况和水质状况。

运用Margalef多样性计算公式d＝(S-1)/lnN和Menkinick多样性计算公式α＝×1000对藻类种类多样性进行计算。

式中：d和α均表示多样性指数，S为属数，N为个体总数。

Margalef指数值d﹥3时，轻或无污染， d＝1～3，中污染，d＝0～1，重污染；Menkinick指数值α＝5时，清洁，α﹥4，寡污，α﹥3，β中污，α﹤3，α中污。

2 结果2.1 漓江浮游植物2.1.1 种类组成与分布漓江5个采样点采集到浮游植物共7门80属，其中蓝藻门13属，占总数16.3％；绿藻门35属，占总数43.8％；、硅藻门20属，占总数25.0％；、裸藻门3属，占总数3.7％；甲藻门5属，占总数6.3％；金藻门3种，占总数3.7％；红藻门1属，占总数1.2％。

浮游植物取样测定规范

水体浮游植物分析规范参考淡水生物资源调查技术规范DB43/T 432-2009水层设置水深小于3m时，只在中层采样，混合均匀水体，可以只采表层（0.5m）水样；水深3m～6m时，在表层、底层采样，其中表层水在离水面0.5m处，底层水在离泥面0.5m处；水深6m～10m时，在表层、中层、底层采样；水深大于10m时，在表层、5m、10m水深层采样，10m以下除特殊需要外一般不采样，对于深水湖泊，取样的水层可以将取样间隔加大，如0m,10m,20m,50m, 100m。

采样定量样品在定性采样之前用采水器采集，每个采样点取水样1L，贫营养型水体应酌情增加采水量。

泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。

分层采样时，取各层水样等量混匀后取水样1L。

大型浮游植物定性样品用25号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集，注意网口与水面垂直，网口上端不要露出水面。

固定浮游植物样品立即用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1％～1.5％。

如样品需较长时间保存，则需加入37%～40％甲醛溶液，用量为水样体积的4％。

现行的一些规律性的方法为：取水样，500ml,加入5ml鲁格，虹吸到30-50ml,加入1ml甲醛。

水样的沉淀和浓缩固定后的浮游植物水样摇匀倒入固定在架子上的1L沉淀器中，2h后将沉淀器轻轻旋转，使沉淀器壁上尽量少附着浮游植物，再静置24h。

充分沉淀后，用虹吸管慢慢吸去上清液。

虹吸时管口要始终低于水面，流速、流量不能太大，沉淀和虹吸过程不可摇动，如搅动了底部应重新沉淀。

吸至澄清液的1/3时，应逐渐减缓流速，至留下含沉淀物的水样20mL～25（或30～40）mL，放入30（或50）mL的定量样品瓶中。

用吸出的少量上清液冲洗沉淀器2次～3次，一并放入样品瓶中，定容到30（或50）mL。

如样品的水量超过30（或50）mL，可静置24 h后，或到计数前再吸去超过定容刻度的余水量。

浓缩后的水量多少要视浮游植物浓度大小而定，正常情况下可用透明度作参考,依透明度确定水样浓缩体积见表3，浓缩标准以每个视野里有十几个藻类为宜。

浮游植物计数框使用

浮游植物计数框使用1 浮游植物计数框介绍浮游植物计数框是浮游生物学中常用的一种工具，用于对海洋、湖泊等水体中的浮游植物进行定量调查。

其结构为透明的方形框，内部划分为若干个小格，每个小格大小相等。

在采样时，使用网口将水流通过计数框，然后使用显微镜观察和计数浮游植物，最后根据计数框内浮游植物数量和采样量计算浮游植物密度。

2 浮游植物计数框的使用在使用浮游植物计数框前需要进行一些准备工作：首先选择一个适合的采样地点，并注意避开砂石等污染源；然后使用采样瓶在采样点采集水样，并注意尽量避免混入底泥等杂质。

采集完水样后，需要立即使用计数框进行浮游植物的计数。

将采样瓶的水倒入计数框中，并将其后续流入的水拦截，保证荧光染料或染色剂的充分混合和统一染色。

然后使用显微镜观察计数框内的浮游植物，并逐个计数。

在计数时，要避免遗漏或重复计数，对于明显的水动物或残体应当排除在外。

在计数结束后，将计算出的标准体积内的浮游植物数除以标准体积，即可得到单位体积的浮游植物密度。

3 浮游植物计数框的注意事项在使用浮游植物计数框时，需要注意以下几点：1. 采集、染色和计数过程应当尽量迅速进行，减少浮游植物数量和形态的改变。

2. 计数前应当根据样品是否染色，选用不同的镜片调节显微镜亮度和聚焦。

3. 计数框顶部和底部的高度误差不能大于框内每一小格的高度，否则会影响密度计算的准确性。

4. 计数前计算出采样时的水体体积，用于计算密度时保证准确。

5. 无法计算某些微观浮游植物密度时，应当通过加大采样次数或增加计数框的数量等方式提高统计学显著性。

4 结论浮游植物计数框是一种浮游植物密度快速、准确测量的工具，广泛应用于海洋、湖泊等水体中的浮游植物定量研究。

使用计数框时需要注意一些细节，以保证测量结果的准确性。

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。如下面的不浓浓缩缩体积稀与释 水透明度（体现水的肥瘦）之间关系大致如下， 仅供参考。
瘦中 肥
透明度 >1m 老水 特老水
>50cm
>30cm
<30cm <20cm 浓2缩020/的3/27标准是以每个视野里有十几个藻类为宜。
三、计数方法
将浓缩沉淀后水样充分摇匀后，立即用0.1ml吸量管吸出0.1ml样品，注入
体积公式计算细胞体积。细胞体积的毫升数相当于细胞重量的克数。
这样体积值（μm-3）可直接换算为重量值（109μm-3）可直接换算
为重量值（109μm-3≈1毫克鲜藻重）。
下列体积公式，可供计算生物量时参考：
圆锥体：V=1/3лR2h
圆柱体：V=лR2h
球 体：V=4/3лR3
椭圆体：V＝4/3ab2л（a为长轴半径，b为短轴半径）
0 . 1 ml 计 数 框 内 （ 计 数 框 的 表 面 积 最 好 是 2 0 × 2 0 ㎜ 2 ） ， 小 心 盖 上 盖 玻 片 （
22×22㎜2），在盖盖玻片时，要求计数框内没有气泡，样品不溢出计数框。
然后在14×40或16×40倍显微镜下计数。即在400－600倍显微镜下计数。每
瓶标本计数两片取其平均值，每片大约计算50～100个视野，但视野数可按浮
入虹吸管内，管口应始终低于水面，虹吸时流速流量不可过大，吸至澄 清液1／3时，应控制流速，使其成滴缓慢留下为宜。
采水时，每瓶样品必须贴上标签，标签上药剂在采集的时间、地点、 采水体积等，其他详细内容应另行做好记录，以备查对，避免错误。
1000m浓l 缩30的ml 体5积0 m视l 浮100游ml 植物的多少而定。也可根据水的肥瘦确定浓缩体积
浮游植物的现存量，指的是某一瞬间单位水体中所存在的浮游植 物的量。这个量有两种表示方法，用数目单位表示成为密度，一般 用万个／升为单位，五、六十年代用之；用重量单位（mg/L）表示 的现存2020量/3/27称为生物量（Biomass）。70年代以来被广泛使用。
在以往的调查中，人们往往只注重浮游植物的种类 或数量，对其生物量则重视不够。其原因在于：1、浮游 植物生物量测算繁琐；2、对生物量与数量之间的本质差 别认识不足。由于不同水体，不同种类的藻类在个体上 有很大差异，仅仅用数量就很难评价不同水体饵料生物 的丰欠。这就要求，浮游植物的定量工作，必须以测算 生物量为目标。
由于同一种类的细胞大小可能有较大的差别，同一属内 的差别就更大了，因此必须实测每次水样中主要种类（即 优势种）的细胞大小并计算平均重量，其他种类可以参考 附表计算。
藻类的生物量可直接作为初级生产力的一种指标，根据 几次定期测算的现存量之差亦可估计出生产量。
定量结果应列出总生物量、各门生物量、优势种属。在 条件许可时还可以用较简单的测定叶绿素法，来对照或代 替生物量。但叶绿素法不能反映种类组成情况。
视野数 种 类 第一片 第二片
正 小球藻 正正
正正
正 衣藻
正
正
正正 小环藻
正
正
2020/3/27
四、数量与生物量的计算： 1．一升水中的浮游植物的数量（N）可用下列公式计算：
N Cs VPn FsFnU
式中：Cs — 计数框体积（㎜2），一般为400㎜2。
Fs — 每个视野的面积（㎜2），лR2，视野半径r可用台微尺测出
2020/3/27
3．采样量及采样次数 每一个采样点应采水1000ml。若系一般性调查，可将各 层采的水等量混合，取1000ml混合水样固定；或者分层采 水，分别计数后取平均值。分层采水可以了解每一采样点 各层水中浮游植物的数量和种类。 采 得 水 样 后 立 即 加 入 1 0 － 1 5 ml 鲁 哥 氏 液 （ Lugol’s solution）固定，鲁哥氏液即将6克碘化钾溶于20ml水中， 待其完全溶解后，加入4克碘充分摇动，待碘全部溶解后定 容到100ml即配成鲁哥氏液。泥沙多时沉淀后再取水样。 采样次数可多可少。有条件时还可逐月采样一次，一般 情况可下及采样一次，最低限度应在春季、夏季末、秋初 各采样一次。
可视为计算结果。
在计数过程中，常碰到某些个体一部分在视野中，另一部分在视野外，这
时可规定出在视野上半圈者计数，出现在下半圈者不计数。数量最好用细胞
表示，对不宜用细胞数表示的群体或丝状体，可求出其平均细胞数。
计算时优势种类尽可能鉴别到属，注意不要把浮游植物当作杂质而漏计。
计数时可按下列格式记录，然后再进行整理计算。
Pn代表某种藻类的个数，计算结果N只表示一升水中这种藻类的
数量；Pn若代表各种藻类的总数，计算结果N则表示一升水中浮游
植物的2020总/3/27数。前者若求浮游植物数量将各计算结果相加即可。
2．生物量一般按体积来换算。这是因为浮游植物个体积小，直
接称重较困难，且其细胞比重多接近于1。可用形态相近似的几何
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二、沉淀浓缩：
上述水样，摇匀后倒入1000ml圆柱形沉淀器中沉淀24小时，沉淀器可 用1000ml的瓶子代替。用虹吸管小心抽出上面不含藻类的“清液”。剩 下30－50ml沉淀物转入50ml的定量瓶中；再用上述虹吸出来的“清液” 少许冲洗三次沉淀器，冲洗液转入定量瓶中。凡以碘液固定的水样固定 的水样，瓶塞要拧紧。还要加入2－4％的甲醛固定液（福尔马林），即 每100ml样品需另加4ml福尔马林，以利于长期保存。浓缩时切不可搅动 底部，万一动了应重新静止沉淀，为不是漂浮水面的某些微小生物等进
。一般要求湖心、库心、江心必须采样，有条件时采样点可
适当多设一些，如大的湖湾、库湾、河流的上、中、下游水
体的沿岸带、浅水区等也要设点采集。
凡水深不超过2米者，可于采样点水下0.5m处采水，水深2
～10米以内，应距底0.5米处另采一个样，水深超过10米时
。应于中层增采一个水样。一般来说池塘、水库、湖泊、河
圆台体：V＝1/3лH（
R
2Байду номын сангаас1
+
） R2 2 R1R2
长方体与正方体ab×h或a3
硅藻细胞的计算通式：V＝壳面面积×带面平均高度
不规则性藻类可分可为几个部分计算。
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每种藻类至少随机测量20个以上，求出这种藻类个体重 的平均值，一般都制成附表供查找。此平均值乘上一升税 种该种藻类的数量，即得到一升水中这种藻类的生物量 （mg/L）。
不同的调查方法，有时会得出不同的结果。关于浮 游生物的采集、计数与定量方法采用下列方法。
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一、采样：
1． 采水器：各种采水器均可，一般浅水（<10m）湖泊
可用玻璃瓶采水器，深水
湖泊或水库必须用颠倒采水
器。北原式采水器或有机玻璃采水器。
2．采样点的选择及采样层次的确定
选择采样点的原则是，采样点在平面上的分布要有代表性
游植物的多少而酌情增减，如平均每个视野不超过1～2个时，要数200个视野
以上，如果平均每个视野有5～6个时要数100个视野，如果平均每个视野有十
几个时数50个视野就可以了。同一样品的两片计算结果和平均数之差如不大
于其均数的±15％，其均数视为有效结果，否则还必须测第三篇，直至三片
平均数与相近两数之差不超过均数的15％为止，这两个相近值的平均数，即
第一章浮游植物的采集、计数 与定量方法
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浮游植物（Phytoplankon）又称浮游藻类，是水中悬浮生活的若 干种藻类的总称。
浮游植物及其生产力是水生态系统的重要成员与重要功能之一， 是鱼类天然饵料的重要组成部分。由于浮游植物对环境的变化十分 敏感，故在环境监测中，也有重要作用。
我国淡水养殖的主要对象是鲢、鳙鱼类，它们的天然饵料常以浮 游植物为主。我们知道，不同类型的水体或同一水体的不同季节， 藻类的组成是不相同的，各种藻类的相对量在不断地变化。这种变 化是有一定的趋势的，这以后要专题介绍。就鲢鳙而言，藻类又有 易消化种类和不易消化种类之分，一般说来，硅藻门、金藻门、甲 藻门中种类易于消化，而蓝藻门、绿藻门、裸藻门中的多数种类难 于消化。因此，在鱼类生长季节，研究水中藻类组成和现存量（ Standing crop），可为养殖鱼类的合理投放提供重要的科学依据。 同时为水生态研究及利用提供了有用的资料。
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（一定倍数下）。
Fn — 计数过的视野数。
V — 一升水样经沉淀浓缩后的体积（ml）
U — 计数框的体积（ml）为0.1ml。
Pn — 计数出的浮游植物个数。
如果计数框、显微镜固定不变，Fn、V、U也固定不变，公式中的
（
Cs
V
Fs Fn U
）可视为常数，此常数用K表示，则上述公式可
简化为：N=K×Pn。
流的样点及采水层次可总结如下：
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⑴池塘：样点可设在距岸边1m处。水深小于2m时采一中 层水样。若水深大于2m时，最好采上、中、下层水样。
亚表层：水下20cm左右。 中 层：水体中间部分。 下 层：离底20cm左右。 ⑵水库及河流：样点可设在上、中、下游。 上游：设十个点（亚表层或中层） 中游：水在2－3米深时设一个点，采2个样（上中层和中 下层） 下游：设2－3个样点。中心点3个样（上、中、下层）， 两测点各一个样（中层） ⑶湖泊：中心区设一点。进水口和出水口也应设点。