CLSI标准血培养推荐指南
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静脉血采集顺序是目前在很多检验科还存在争议或困惑的问题。
美国临床和实验室标准协会(CLSI)2010年发布了H3-A6指南,其中对静脉采血顺序给予了指导。
北京协和医院参考该指南,制定《检验样本留取及采集指南》,其中规定的血标本采集顺序如下。
1为血培养管;2为无添加剂管(白帽),适用微量元素或特殊项目;3为凝血项目管(蓝帽);4为血沉管(黑帽);5为血清管(红帽或黄帽);6为肝素血浆管(绿帽);7为EDTA 管(紫帽);8为抑制血糖酵解管(灰帽)。
采血注意事项:(1)特殊情况采用蝶翼方式采血,且无血培养管和微量元素等特殊项目时,第一管应为白帽管,作为丢弃管,也可送检生化免疫项目,其他顺序同直针穿刺采血。
(2)在实际工作中,如患者静脉条件较差,有可能采血不足,血培养优先考虑需氧管,其他管应首先考虑凝血(蓝帽) 和血沉(黑帽) 检测管,因为这2种标本对血量要求最严格,且二者抗凝剂均为枸橼酸钠。
该指南与H3-A6的不同点:H3-A6指南推荐的静脉血采集顺序为:(1)血培养管;(2)凝血管(如蓝帽管);(3)血清管,有或没有促凝剂,有或没有分离胶(如红帽管);(4)肝素管,有或没有血浆分离胶(如绿帽管);(5)EDTA管,有或没有分离胶(如浅紫帽管,珍珠色帽管);(7)含糖酵解抑制剂管(如灰帽管)。
协和医院采集顺序与指南原文略有出入的地方是,将血沉管排在了凝血管后。
这是基于以下几方面考虑,一为原指南中未推荐血沉管顺序;二为血沉管抗凝剂与凝血管抗凝剂均为枸橼酸纳,只是浓度和量有差异;三为血沉管与凝血管类似,严格要求采样量,故在可能采样量不足的情况下应优先考虑。
另一点不同是,在H3A6指南中未推荐白帽管,也就是无添加剂管的采样顺序。
目前,白帽采血管(无任何添加剂,也可是采血管制造商推荐的任何一种可避免对微量元素检测污染的无添加剂采血管) 在临床实验室中主要用于微量元素,或易受各类抗凝剂或促凝剂干扰的检验项目的血液样本采集。
临床微生物血培养操作指南最新版下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。
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微生物CLSI文件集锦(你想要的都在这里)说起临床微生物的CLSI文件,大家首先想到的就是CLSI M100S——《抗微生物药物敏感性试验的执行标准》。
但是其实,与临床微生物相关的CLSI文件很多,截至2017年7月,已多达43个。
下面,小编就给您简单介绍一下吧。
1、M02-A12:Approved Standard中文:抗菌药敏试验的性能标准英文:Performance Standards for Antimicrobial Disk Susceptibility Tests内容与解释:介绍药物纸片扩散法的质量控制标准和最新折点标准。
2、M06-A2: Approved Standard中文:脱水MH琼脂的评估程序英文:Protocols for Evaluating Dehydrated Mueller-Hinton Agar内容与解释:略3、M07-A10:Approved Standard中文:需氧菌稀释法抗菌药物敏感性试验英文:Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility T ests for Bacteria That Grow Aerobically内容与解释:描述了肉汤稀释法和琼脂稀释法,而且还包含这些方法的标准化操作流程和CLSI推荐方法的性能,局限性,适应性。
4、M11-A8:Approved Standard中文:厌氧菌抗菌药物敏感性试验英文:Methods for Antimicrobial Susceptibility Testing of Anaerobic Bacteria内容与解释:在过去的几年内,大部分厌氧菌的耐药表型都发生了很大的改变,导致了许多菌种的经验用药的面临很大的挑战。
对于厌氧菌,琼脂稀释法仍然是参考方法,对于调查研究和科研同样都适用。
而且其他的方法的对比标准也进行了说明,肉汤稀释法也应用于临床实验室,但是现在对脆弱拟杆菌和一些抗生素没有标准。
再谈真空采血管抽血顺序的问题在检验工作中,对于一次采血多管血液分配的顺序一直有一些争议,针对这个问题,在丁香园网站,还有一篇专门针性的文章《7家争言:真空采血管的抽血顺序到底哪个先哪个后》,作者是遵义医学院第五附属(珠海)医院的钟泽填。
文章很全面的搜集了不同教材中的不同标准。
以这篇文章为基础,我想再做一下补充和说明。
我们先分别来看一下不同的教材在这个问题上的说法。
圈里的字可能比较模糊,说明一下。
按照箭头顺序分别是:血培养瓶/管→红头管→浅蓝头管→黑头管→緑头管→紫头管→灰头管→金黄头管。
人卫版教材比较详细,特意区分了真空采血管的材料是玻璃(医用的硼硅玻璃)还是塑料(PET-聚对苯二甲酸乙二醇酯)。
由于玻璃管在安全性能上存有隐患,使用特种塑料PET试管替代玻璃管成为一种趋势,而且塑料拥有运输便捷,防摔的特点也是比玻璃管更胜一筹,由于 PET 试管有着良好的疏水性,很大程度上加大了真空管的生产难度。
二、人卫版《临床基础检验学技术》(全国高等学校医学检验专业第六轮暨医学检验技术专业第一轮规划教材)这个顺序也是BD公司(世界上最大的生产和销售医疗设备,医疗系统和试剂的医疗技术公司之一)推荐的采血顺序。
三、《全国临床检验操作规程》(第四版)这里有个“凝血项管”,注意不要和“凝血管(也叫“血清管”,不含抗凝剂)”混淆了。
凝血项管是指凝血项目检查的管,一般情况下指的就是含枸橼酸钠的蓝头管。
护理学对这个问题没有深入细致的说明,只保证了基本的原则。
五、卫生部行业标准你发现卫生部的行业标准其实就是把《临床基础检验技术》中的第2个和第3个“圈儿”换一下顺序。
六、日本标准日本标准推荐的采血管顺序:1.培养血液用采血;2.采集血清用采血;3.柠檬酸采血;4.肝素采血;5.EDTA 采七、美国 CLSI(美国临床及实验室标准化委员会)标准H3-A6 2003 美国(CLSI)标准推荐的采血管顺序:1.血培养管;2.血凝管;3.血清管;4.肝素管;5.EDTA 管;6.糖酵解抑制剂管。
血培养检测规范化操作(世上最全基本操作流程)2016-08-22来源:南方检验医学网阅读: 1291次【字号:大中小】导读:一、血培养检测采血指征:对入院的危重患者未进行系统性抗生素治疗前,应及时进行血液培养,患者出现以下体征时可作为采集血培养的重要指征: 1.发热(38℃)或低温(36℃)。
2.寒战。
3.白细胞增多(1010 9/L,特别有核左移未成熟的或带状的白细胞一、血培养检测采血指征:对入院的危重患者未进行系统性抗生素治疗前,应及时进行血液培养,患者出现以下体征时可作为采集血培养的重要指征:1.发热(≥38℃)或低温(≤36℃)。
2.寒战。
3.白细胞增多(〉10×10 9/L,特别有“核左移”未成熟的或带状的白细胞增多。
4.粒细胞减少(成熟的多核白细胞〈1×10 9/L)。
5.血小板减少。
6.皮肤粘膜出血.7.昏迷。
8.多器官衰竭。
或同时具备上述几种体征时应采血培养。
在评估可疑新生儿败血症时,除发热或低烧外,很少培养出细菌,应该补充尿液和脑脊液培养.肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿(特别是2岁以下的幼儿)一般多见于门诊,常伴有明显发热(≥38。
5℃)和白细胞增多(≥20×109/L).老年菌血症患者,可能不发热或不低热,如伴有身体不适,肌痛或中风可能是感染性心内膜炎的重要指征.血培养检测皮肤消毒程序:血培养为防止皮肤寄生菌污染,可使用消毒剂(碘酊或碘伏)对皮肤进行严格仔细的消毒处理,最大限度地减低皮肤污染。
感染性心内膜炎,特别是心脏瓣膜修复术的感染,可能由皮肤寄生的微生物引起(例如:表皮葡萄球菌或棒杆菌属).因此,在采集过程中血培养的污染一定要减小至最低程度.用做培养的血液均不应该在静脉或动脉的导管中抽取,除非静脉穿刺无法得到血液或用来评价与导管感染相关性指标。
如果抽取了导管血,也应同时在其他部位穿刺获取非导管内静脉血液进行血培养。
皮肤消毒严格按以下步骤进行:1.首先用70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30秒钟以上。