mRNA差别显示技术
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ddRT-PCR(差示反转录PCR,又mRNA差别显示技术) mRNA差别显示技术也称为差示反转录PCR(Differential Display of reverse Transcriptional PCR)简称为ddRT-PCR。
它是将mRNA反转录技术与PCR技术二者相互结合发展起来的一种RNA指纹图谱技术。
目前已广泛应用于分离鉴定组织特异性表达的基因。
差别基因表达(differential gene express)是细胞分化的基础。
mRNA 差别显示技术正是对组织特异性表达的基因进行分离的一种快速而行之有效的方法。
该方法的基本原理是首先选取不同的组织样品或不同发育阶段的同一组织样品或同一组织样品经不同药物处理诱导的样品,经总RNA提取后,进行mRNA反转录合成cDNA。
此cDNA的合成是采用Oligo(dT)12 MN为引物,其中M为A,C,G中的任意一种,N为A,C,G或T中的任意一种,所以共有12种oligo(dT)12 MN引物,其中M称为锚定碱基,起增大引物Tm值的作用,N称为分类碱基,对反转录进行分类。
用这12种引物分别对同一总RNA 样品进行cDNA合成,即进行12次不同的反转录反应,从而使反转录的cDNA具有12种类型,也就是对cDNA进行12种归类(目前较为流行的方法是进行4种归类,即M为简并碱基的形式存在),在此基础上对每一类cDNA进行随机引物和反转录引物PCR扩增,通过对组织样品的同一类cDNA的PCR选择性扩增产物凝胶电泳分析,从而反映出不同样品间基因的时间和空间上组织特异性的表达。
如此众多种类的mRNA反转录产物经PCR选择扩增后其类型依然为数众多,很难用电泳系统加以快速准确地分离。
因而需要对反转录产物cDNA进行归类处理,减轻不同PCR产物电泳分离的难度,提高分离的准确率。
(见示意图)一、实验流程:。
荧光标记mRNA差异显示技术mRNA差异显示技术(differential display,DD)是用于研究基因的差异表达的新方法。
该技术自1992年被首次报道后,即以其不可替代的优势被广泛应用于生物医学领域。
在应用过程中不断得到改进,并产生了诸多衍生技术如RPA(RNA finger printing by arbitrarily primed PCR)、GDD (genomic DD)等。
本文简要介绍在本试验室荧光标记差异显示技术(fluorescent DD,FDD)的应用及体会。
1.材料与方法1.1 标本人单核细胞系U937,细胞密度2×108/L,分对照组(N)、处理Ⅰ组(T1)、处理Ⅱ组(T 2),N用1640培养基及10%胎牛血清培养,T1用IF N-γ104U/L LPS 1μg/L、T2用IFN- γ10 U/L LPS l0μg/L分别刺激7h.1.2 主要试剂与仪器TRIzol试剂(GIBCO BRL)、Fluoro DD试剂盒(Genomyx)、Supersript Ⅱ逆转录酶(GIBCO BRL)、Ampli Taq DNA聚合酶(GIBCO BRL)、RNase-free DNaseI(Promega);Genomyx LR 、 Genomyx SC、DNAT hermal Cycler(Perkin Elmer)1.3 总RNA的制备按试剂盒提供的方法分别提取三种细胞的总RNA,以RNase-free DNase I(终浓度80 000 U/L)除去其中污染的 DNA,经甲醛变性凝胶电冰鉴定其完整性,并以紫外分光光度计检测其纯度1.4 mRNA差异显示1.4.1 逆转录反应选择锚定引物[T7(dT12)AP(anchored prime rs,AP)],序列为5'ACGACTCACT ATAGGGCTTTTTTTTTTTTMN3',其中M=A/G/C。
mRNA差别显示技术[DDRT-PCR]随着PCR技术的发展,人们在此基础上建立起了一系列基于基因分离的新技术新方法。
如mRNA差别显示技术(DDRT-PCR)、以及进一步改进的代表性差示分析(RA D),抑制性扣除杂交(SSH)和交互扣除RNA差别显示技术(RSDD)。
差别显示PCR是根据绝大多数真核细胞mRNA3’端具有的多聚腺苷酸尾(polyA)结构,因此可用含oligo(dT)的寡聚核苷酸为引物将不同的 mRNA反转录成cDNA。
该方法的创始人Liang P和Pardee A根据Poly A序列起点前2个碱基除AA外只有12种可能性的特征,设计合成了12种下游引物,称3′-锚定引物,其通式为5’-T11MN;同时为扩增出polyA 上游500bp以内所有可能性的mRNA序列,在5′端又设计了20种10bp长的随机引物。
这样构成的引物对进行PCR扩增能产生出20000条左右的 DNA条带,其中每一条都代表一种特定mRNA种,这一数字大体涵盖了在一定发育阶段某种细胞类型中所表达的全部mRNA。
差别显示技术自1992年建立后,一直在不断进行着改进。
如在1994年,Ito等对3′端锚定引物的设计由固定两个碱基变为一个碱基固定的引物,这就使原来12种引物减至3种即可(5′T12G,5′T12A,5′T12C),这样做减少了每个mRNA样品对逆转录反应种类的需要,并且把由于简并性引起的某些RNA的代表性差和RNA数量过多现象降低到最低程度;在随后的两年中,研究人员有在3′端引物和5′随机引物末端分别加上了限制性内切酶识别位点 (如Hind III酶切位点),使得5′端引物条数改为8条,长度为13bp,而3′端引物则由18个碱基组成。
这样形成的24种引物对,经计算机同源性分析表明同样能覆盖全部mRNA,使实验简化,同时由于引物变长,使cDNA扩增更为有效。
有的实验室采用把Bakman公司的kit,其引物5′端为26bp,3′ 端为31bp,并加上了T3和T7两端的测序引物,由仪器切割差异条带后,再次扩增,并通过荧光标记,用计算机统计出结果。
mRNA差别显示技术
mRNA差别显示技术也称为差示反转录PCR(Differential Display of reverse Transcriptional PCR)简称为ddRT-PCR。
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它是将mRNA反转录技术与PCR技术二者相互结合发展起来的一种RNA指纹图谱技术。
目前已广泛应用于分离鉴定组织特异性表达的基因。
差别基因表达(differential gene express)是细胞分化的基础。
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一、mRNA差别显示技术正是对组织特异性表达的基因进行分离的一种快速而行之有效的方法。
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进行mRNA反转录合成cDNA。
此cDNA的合成是采用Oligo(dT)12 MN为引物,其中M为A,C,G中的任意一种,N为A,C,G或T中的任意一种,所以共有12种oligo(dT)12 MN 引物,其中M称为锚定碱基,起增大引物Tm值的作用,N称为分类碱基,对反转录进行分类。
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用这12种引物分别对同一总RNA样品进行cDNA合成,即进行12次不同的反转录反应,从而使反转录的cDNA具有12种类型,也就是对cDNA进行12种归类(目前较为流行的方法是进行4种归类,即M为简并碱基的形式存在),在此基础上对每一类cDNA进行随机引物和反转录引物PCR扩增,通过对组织样品的同一类cDNA的PCR选择性扩增产物凝胶电泳分析,从而反映出不同样品间基因的时间和空间上组织特异性的表达。
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