微生物生长的测定

微生物生长量的测定咱先来说说微生物这小家伙们，别看它们个头小得咱肉眼都看不见，可它们的世界那也是丰富多彩，热闹非凡呐！就拿微生物生长量的测定来说，这可真是一门大学问。

想象一下，在一个微小的世界里，这些微生物们不断地繁殖、生长，就像一个小小的“城市”在不断扩张。

而咱们科学家和研究人员，就像是这个“城市”的“统计员”，要想办法搞清楚这里面到底发生了多少变化。

咱们测定微生物生长量，就好比要给一群看不见的“小朋友”量身高、称体重。

那怎么量呢？方法可不少。

比如说，咱可以通过测细胞的重量来算一算。

这就像是把一堆水果放在秤上称一称，只不过这“水果”咱看不见罢了。

我记得有一次在实验室里，为了测定一种微生物的生长量，我们可是费了好大的劲。

那是一种在培养皿里欢快生长的小细菌。

我们小心翼翼地把它们收集起来，经过一系列复杂的操作，就为了能准确地知道它们到底长了多少。

还有一种方法是测细胞的数量。

这就有点像数一群到处乱跑的小蚂蚁，只不过这些“小蚂蚁”太小了，咱们得用特殊的工具和方法才能数清楚。

咱再来说说比浊法。

这就像是通过看一杯水的浑浊程度来判断里面有多少杂质。

微生物多了，培养液就会变得浑浊，咱们就能通过测量这种浑浊度来推测微生物的生长量。

还有一种很有意思的方法，叫生理指标法。

这就好比通过观察一个人的饭量、运动量来判断他的生长发育情况。

微生物也有它们的“生理指标”，比如产生的二氧化碳量、消耗的氧气量等等。

总之，微生物生长量的测定是个精细又有趣的活儿。

它就像是一把神奇的钥匙，能让我们打开微生物世界的大门，了解那些看不见的小生命们的成长故事。

说不定未来的某一天，通过对微生物生长量更精确的测定，咱们能解决更多的大问题，比如研发出更厉害的药物，或者让农业生产更高效呢！所以啊，可别小看这小小的微生物生长量的测定，它背后隐藏着大大的科学奥秘和无限的可能！。

测定细菌生长曲线一、实验目的1．了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时；2．学习液体培养基的配制以及接种方法；3．反复练习无菌操作技术；4．了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同；5．掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法；二、实验原理将一定量的菌种接种在液体培养基内，在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数做纵坐标，以培养时间做横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线。

单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整期（迟滞期）、对数期（生长旺盛期）、平衡期（稳定期）、死亡期（衰亡期）。

生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的的全过程动态。

不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。

因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。

测定微生物生长曲线的方法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法。

本实验才用比浊法，由于细胞悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的菌液的浓度。

将所测得的光密度值（OD600）与对应的培养时间做图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。

注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌和死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。

从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G表示，其计算公式为：G＝（t2-t1）/[(lgW1-lgW2)/lg2]式中t2和t1为所取对数期两点的时间，W1和W2分别为对应时间测得的细胞含量或OD。

三、实验器材大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板；培养基(100mL/250mL三角瓶×10瓶/大组):牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基；取液器(5000ul, 1000ul 各一支)，无菌1000ul吸头若干，无菌5000ul吸头若干，比色皿10个及共用参比杯一个，培养箱3台，722s分光光度计；四、实验步骤1．活化菌种将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡培养18h，另外准备单菌落平板各1块；2．接种6人大组分为3个小组，按表1接种。

一、生长量测定法1.1体积测量法：又称测菌丝浓度法。

通过测定一定体积培养液中所含菌丝的量来反映微生物的生长状况。

方法是，取一定量的待测培养液（如10毫升）放在有刻度的离心管中，设定一定的离心时间（如5分钟）和转速（如5000 rpm），离心后，倒出上清夜，测出上清夜体积为v，则菌丝浓度为（10-v）/10。

菌丝浓度测定法是大规模工业发酵生产上微生物生长的一个重要监测指标。

这种方法比较粗放，简便，快速，但需要设定一致的处理条件，否则偏差很大，由于离心沉淀物中夹杂有一些固体营养物，结果会有一定偏差。

1.2称干重法：可用离心或过滤法测定。

一般干重为湿重的10-20%。

在离心法中，将一定体积待测培养液倒入离心管中，设定一定的离心时间和转速，进行离心，并用清水离心洗涤1-5次，进行干燥。

干燥可用烘箱在105℃或100℃下烘干，或采用红外线烘干，也可在80℃或40℃下真空干燥，干燥后称重。

如用过滤法，丝状真菌可用滤纸过滤，细菌可用醋酸纤维膜等滤膜过滤，过滤后用少量水洗涤，在40℃下进行真空干燥。

称干重发法较为烦琐，通常获取的微生物产品为菌体时，常采用这种方法，如活性干酵母（activity dry yeast, ADY）,一些以微生物菌体为活性物质的饲料和肥料。

1.3比浊法：微生物的生长引起培养物混浊度的增高。

通过紫外分光光度计测定一定波长下的吸光值，判断微生物的生长状况。

对某一培养物内的菌体生长作定时跟踪时，可采用一种特制的有侧臂的三角烧瓶。

将侧臂插入光电比色计的比色座孔中，即可随时测定其生长情况，而不必取菌液。

该法主要用于发酵工业菌体生长监测。

如我所使用UNICO公司的紫外-可见分光光度计，在波长600nm 处用比色管定时测定发酵液的吸光光度值OD600，以此监控E.Coli的生长及诱导时间。

1.4菌丝长度测量法：对于丝状真菌和一些放线菌，可以在培养基上测定一定时间内菌丝生长的长度，或是利用一只一端开口并带有刻度的细玻璃管，到入合适的培养基，卧放，在开口的一端接种微生物，一段时间后记录其菌丝生长长度，借此衡量丝状微生物的生长二、微生物计数法2.1血球计数板法:血球计数板是一种有特别结构刻度和厚度的厚玻璃片，玻片上有四条沟和两条嵴，中央有一短横沟和两个平台，两嵴的表比两平台的表面高0.1 mm，每个平台上刻有不同规格的格网，中央0.1 mm2面积上刻有400个小方格。

微生物生长测定是指通过一系列方法和技术来检测和测定微生物的生长情况，包括微生物数量、生长速率、生长条件等。

微生物生长测定方法在医药、食品、环境等领域都有着重要的应用，对于评估产品质量、卫生安全具有重要意义。

本文将从原理和优缺点两个方面对微生物生长测定方法进行分析和讨论。

一、微生物生长测定方法的原理微生物生长测定方法主要基于微生物在特定条件下的生长特性来进行测定。

常见的微生物生长测定方法包括培养计数法、营养物质利用法、生物发光法等，下面针对每种方法的原理进行详细介绍。

1.培养计数法培养计数法是通过将待测样品在适宜的营养培养基上培养一定时间后，根据所形成的微生物菌落数量来进行测定微生物数量的方法。

其原理是利用微生物在特定条件下的生长特性，以及对不同影响因素的适应能力。

通过控制培养基的成分和环境条件，可以使不同菌种在不同条件下得到生长，并最终形成可见的菌落。

根据菌落的数量和形态，可以初步判断出待测样品中微生物的种类和数量。

2.营养物质利用法营养物质利用法主要是利用微生物对不同的碳源、氮源、氢源、无机盐等物质的利用能力来进行测定微生物的数量和生长情况。

其原理是根据微生物对不同营养物质的需求和利用方式，采用不同的培养基和特定的条件，使不同微生物菌种在不同培养基上的生长情况有所差异，通过观察和测定微生物生长的情况来推断待测样品中微生物的数量和种类。

3.生物发光法生物发光法是一种利用微生物在特定条件下产生发光现象来进行测定微生物数量和生长情况的方法。

其原理是利用微生物在特定条件下产生的发光物质，例如荧光素、发光菌等，通过测定发光强度和时间来间接推断微生物的数量和生长情况。

二、微生物生长测定方法的优缺点微生物生长测定方法在实际应用中具有一定的优点和局限性，下面将针对不同的方法进行分析和讨论。

1.培养计数法的优缺点优点：(1) 可以直接观察和测定微生物的数量和生长情况，结果直观准确。

(2) 可以根据培养基的选择和条件的控制，选择性培养出目标微生物。

微生物生长的测定方法作者：刘华来源：《神州·下旬刊》2013年第02期摘要：微生物生长情况可以通过测定单位时间里微生物数量或生物量（biomass）的变化来评价。

通过微生物生长的测定可以客观地评价培养条件、营养物质等对微生物生长的影响，或评价不同的抗菌物质对微生物产生抑制（或杀死）作用的效果，或客观地反映微生物生长的规律。

因此微生物生长的测量在理论上和实践上有着重要的意义。

关键词：微生物测定方法计数法生理指标法微生物生长的测定有计数、重量和生理指标等方法。

1、计数法此法通常用来测定样品中所含细菌、孢子、酵母菌等单细胞微生物的数量。

计数法又分为直接计数和间接计数两类。

⑴直接计数这类方法是利用特定的细菌计数板或血细胞计数板，在显微镜下计算一定容积里样品中微生物的数量。

此法的缺点不能区分死菌与活菌。

计数板是一块特制的载玻片，上面有一个特定的面积l mm2和高0.1mm的计数室，在1mm2的面积里又被刻划成25个（或16个）中格，每个中格进—步划分成16个（或25个）小格，但计数室都是由400个小格组成。

将稀释的样品滴在计数板上，盖上盖玻片，然后在显微镜下计算4-5个中格的细菌数，并求出每个小格所含细菌的平均数，再按下面公式求出每毫升样品所含的细菌数。

每毫升原液所含细菌数=每小格平均细菌数×400×l000×稀释倍数⑵间接计数法此法又称活菌计数法，其原理是每个活细菌在适宜的培养基和良好的生长条件下可以通过生长形成菌落。

将待测样品经一系列10倍稀释，然后选择三个稀释度的菌液，分别取0.2ml 故人无菌平皿，再倒人适量的已熔化并冷至45℃左右的培养基，与菌液混匀，冷却、待凝固后，放人适宜温度的培养箱或温室培养，长出菌落后，计数，按下面公式计算出原菌液的含菌数：每毫升原菌液活菌数=同一稀释度三个以上重复平皿菌落平均数×稀释倍数×5此法可因操作不熟练造成污染，或因培养基温度过高损伤细胞等原因造成结果不稳定。

微生物生长量测定法1、体积测量法：又称测菌丝浓度法通过测定一定体积培养液中所含菌丝的量来反映微生物的生长状况。

方法是取一定量的待测培养液(如10毫升)放在有刻度的离心管中,设定一定的离心时间(如5分钟)和转速(如5000 rpm),离心后,倒出上清夜,测出上清夜体积为v,则菌丝浓度为(10-v)/10.菌丝浓度测定法是大规模工业发酵生产上微生物生长的一个重要监测指标。

这种方法比较粗放,简便,快速,但需要设定一致的处理条件,否则偏差很大,由于离心沉淀物中夹杂有一些固体营养物,结果会有一定偏差。

2、称干重发法可用离心或过滤法测定。

一般干重为湿重的10-20%.在离心法中,将一定体积待测培养液倒入离心管中,设定一定的离心时间和转速,进行离心,并用清水离心洗涤1-5次,进行干燥。

干燥可用烘箱在1050C或1000C下烘干,或采用红外线烘干,也可在800℃或400℃下真空干燥,干燥后称重。

如用过滤法,丝状真菌可用滤纸过滤,细菌可用醋酸纤维膜等滤膜过滤,过滤后用少量水洗涤,在400℃下进行真空干燥。

称干重发法较为烦琐,通常获取的微生物产品为菌体时,常采用这种方法,如活性干酵母，一些以微生物菌体为活性物质的饲料和肥料。

3、比浊法微生物的生长引起培养物混浊度的增高，通过紫外分光光度计测定一定波长下的吸光值,判断微生物的生长状况。

对某一培养物内的菌体生长作定时跟踪时,可采用一种特制的有侧臂的三角烧瓶。

将侧臂插入光电比色计的比色座孔中,即可随时测定其生长情况,而不必取菌液。

该法主要用于发酵工业菌体生长监测。

4、菌丝长度测量法对于丝状真菌和一些放线菌,可以在培养基上测定一定时间内菌丝生长的长度,或是利用一只一端开口并带有刻度的细玻璃管,到入合适的培养基,卧放,在开口的一端接种微生物,一段时间后记录其菌丝生长长度,借此衡量丝状微生物的生长。

实验三微生物生长曲线的测定Document serial number【UU89WT-UU98YT-UU8CB-UUUT-UUT108】实验三微生物生长曲线的测定一、实验目的目的1、了解细菌生长曲线特点及测定原理2、学习用比浊法测定细菌的生长曲线?二、实验原理将少量细菌接种到一定体积的、适合的新鲜培养基中，在适宜的条件下进行培养，定时测定培养液中的菌量，以菌量的对数作纵坐标，生长时间作横坐标，绘制的曲线叫生长曲线。

它反映了单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。

依据其生长速率的不同，一般可把生长曲线分为延缓期、对数期、稳定期和衰亡期。

这四个时期的长短因菌种的遗传性、接种量和培养条件的不同而有所改变。

因此通过测定微生物的生长曲线，可了解各菌的生长规律，对于科研和生产都具有重要的指导意义。

测定微生物的数量有多种不同的方法，可根据要求和实验室条件选用。

本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与光密度（OD值）成正比，因此可利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度，并将所测的OD值与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线，此法快捷、简便。

三、实验材料1、菌种2、培养基：肉膏蛋白胨培养基3、仪器和器具721分光光度计，比色杯，恒温摇床，无菌吸管，试管，三角瓶。

4、流程种子液→标记→接种→培养→测定四、实验步骤1、种子液制备取细菌菌种1支，以无菌操作挑取1环菌液，接入肉膏蛋白胨培养液中，培养18h作种子培养液。

2、标记编号取盛有30mL无菌肉膏蛋白胨培养液的三角瓶6个，分别编号为0、4、8、12、16、20。

3、接种培养用2mL无菌吸管分别准确吸取1mL种子液加入已编号的6个三角瓶中，于37℃下振荡培养。

然后分别按对应时间将三角瓶取出测定OD 值。

4、生长量测定将未接种的肉膏蛋白胨培养基倾倒入比色杯中，选用600nm波长分光光度计上调节零点，作为空白对照，并对不同时间培养液从0h起依次进行测定，对浓度大的菌悬液用未接种的牛肉膏蛋白胨液体培养基适当稀释后测定，使其OD值在.～以内，经稀释后测得的OD值要乘以稀释倍数，才是培养液实际的OD值。