Protein Analysis
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实验四蛋白质印迹分析【实验目的】了解蛋白质印迹法的基本原理及其操作和应用。
【实验原理】蛋白质印迹法又称为免疫印迹法,这是一种可以检测固定在固相载体上蛋白质的免疫化学技术方法。
待测蛋白既可以是粗提物也可以经过一定的分离和纯化, 另外这项技术的应用需要利用待测蛋白的单克隆或多克隆抗体进行识别。
如图所示,可溶性抗原,也就是待测蛋白首先要根据其性质,如分子量,分子大小,电荷以及其等电点等采用不同的电泳方法进行分离;通过电流将凝胶中的蛋白质转移到聚偏二氟乙烯膜上;利用抗体(一抗) 与抗原发生特异性结合的原理,以抗体作为探针钓取目的蛋白。
值得注意的是在加入一抗前应首先加入非特异性蛋白,如牛血清白蛋白对膜进行“封阻” 而防止抗体与膜的非特异性结合。
经电泳分离后的蛋白往往需再利用电泳方法将蛋白质转移到固相载体上, 我们把这个过程称为电泳印迹。
常用的两种电转移方法分别为:1.半干法: 凝胶和固相载体被夹在用缓冲溶液浸湿的滤纸之间,通电时间为10 分钟~30 分钟。
2. 湿法:凝胶和固相载体夹心浸放在转移缓冲溶液中,转移时间可从45 分钟延长到过夜进行。
由于湿法的使用弹性更大并且没有明显浪费更多的时间和原料,因此我们在这里只描述湿法的基本操作过程。
对于目的蛋白的识别需要采用能够识别一抗的第二抗体。
该抗体往往是购买的成品,已经被结合或标记了特定的试剂,如辣根过氧化物酶。
这种标记是利用辣根过氧化物酶所催化的一个比色反应,该反应的产物有特定的颜色且固定在固相载体上,容易鉴别。
因此可通过对二抗的识别而识别一抗,进而判断出目标蛋白所在的位置。
其他的识别系统包括碱性磷酸酶系统和125I 标记系统。
【实验材料】1. 实验器材SDS/PAGE实验相关材料;电转移装置;供电设备;PVDF膜 ( Millipore Immobion-P #IPVH 000 10 ); Whatman 3MM纸;其他工具:镊子、海绵垫、剪子、手套、小塑料或玻璃容器、浅盘。
热蛋白质组数据分析流程英文回答:Heat Proteomics Data Analysis Workflow.1. Data Acquisition and Preprocessing.Collect heat-treated protein samples and perform mass spectrometry (MS) analysis.Preprocess MS data, removing noise and contaminants, and aligning and quantifying spectra.2. Protein Identification.Search spectra against a protein database to identify proteins present in the samples.Use statistical methods to assess peptide and protein identifications.3. Differential Abundance Analysis.Compare protein abundance between heat-treated and control samples.Use statistical tests (e.g., t-tests, ANOVA) to identify proteins whose abundance differs significantly.4. Protein Grouping and Annotation.Cluster proteins into functional groups based on gene ontology (GO) terms and pathways.Annotate proteins with their known functions and roles in cellular processes.5. Network Analysis.Construct protein interaction networks using bioinformatics tools.Identify hub proteins and interactions that are affected by heat treatment.6. Pathway Analysis.Use pathway databases (e.g., KEGG, Reactome) to identify pathways enriched for heat-responsive proteins.Determine the potential dysregulation of pathways in response to heat stress.7. Validation and Verification.Confirm protein abundance and differential expression using orthogonal techniques (e.g., Western blotting, immunohistochemistry).Validate identified pathways and interactions through functional studies.中文回答:热蛋白质组数据分析流程。
细胞分子生物学中的蛋白质分析技术随着人类对生命科学的研究不断深入,细胞分子生物学作为生物领域中的一个重要研究方向也日渐受到关注。
在细胞分子生物学领域中,蛋白质是一种极其重要的生物分子,它们在细胞内担任着许多重要的功能角色。
因此,研究蛋白质的结构、功能和代谢途径,对深入理解细胞生命活动机理具有至关重要的作用。
蛋白质分析技术的不断发展,为该领域的研究提供了重要的手段和方法。
一、质谱法分析蛋白质质谱法分析蛋白质是当前蛋白质分析的一种主要技术手段。
通过质谱法,可以对蛋白质的分子量、结构和功能等进行深入研究。
质谱法分析蛋白质需要采用一系列操作和步骤,包括样品处理、离子化、加速器加速和检测等,较为复杂。
其中,样品处理和衍生化是质谱分析中一项重要的工作,可以提高质谱分析的准确性和可靠性。
在对复合蛋白质复杂样品进行分析时,还需要采用多维质谱技术,以提高样品的分离程度和质谱鉴定的准确性。
二、蛋白质组学蛋白质组学是指对蛋白质的组成、结构、功能和表达等进行系统研究的一种综合学科。
近年来,蛋白质组学技术的不断发展,为研究蛋白质组学提供了更为广阔的空间和更加精确的方法手段。
目前,蛋白质组学主要采用质谱技术、二维凝胶电泳技术和高通量蛋白质芯片技术等,来分析蛋白质群或者是细胞、组织、器官和生物流体等样品中包含的蛋白质集合。
这种技术可以更快地发现特定蛋白质,以及确定特定蛋白质在生物科学和临床医学领域的应用价值。
三、原位蛋白质分析原位蛋白质分析技术是指不需要分离和纯化样品就能够直接在细胞或者是组织水平上研究蛋白质结构、功能和亚细胞定位等的技术。
通过使用荧光标记蛋白质或者是酶标记抗体等,可以实现在细胞或者是组织级别上对蛋白质原位分析的目的。
目前,原位蛋白质分析技术已经成为细胞生物学和蛋白质组学领域中的重要研究手段。
尤其是在癌症的研究中,该技术具有很高的应用价值。
四、三维结构分析三维结构分析是指通过X射线晶体学、核磁共振技术等方法,对蛋白质的三维结构进行深入研究的技术。
蛋白质组学定量分析的方法蛋白质组学定量分析是对细胞或组织中的蛋白质进行定量分析的一种方法。
它是研究蛋白质组学的重要手段之一,可以揭示蛋白质的表达差异、功能变化以及相关的生物学过程和疾病机制。
目前,蛋白质组学定量分析的方法主要包括质谱定量法和定量免疫学方法。
质谱定量法是蛋白质组学定量分析的主要方法之一。
它基于质谱技术和同位素标记原理,使用质谱仪对样品中的蛋白质进行定量分析。
目前常用的质谱定量方法包括多重反应监测(MRM)、定量蛋白质鉴定(iTRAQ)和标记蛋白质鉴定(TMT)等。
多重反应监测(MRM)是一种常用的质谱定量分析方法。
它利用质谱仪中的三重四极杆(triple quadrupole)进行分析。
首先,确定待测蛋白质的肽段序列,然后合成同位素标记的肽段标准品作为内标。
接下来,使用质谱仪对待测蛋白质和内标进行质谱分析,测量待测蛋白质和内标的特定肽段的质荷比和峰面积。
最后,通过内标的峰面积和待测蛋白质的峰面积进行定量计算,得到待测蛋白质的表达量。
定量蛋白质鉴定(iTRAQ)是一种基于同位素标记的质谱定量方法。
在iTRAQ 实验中,待测组织或细胞培养基中的蛋白质经过胰蛋白酶消化后,将消化产物用不同的同位素标记。
这些标记反应产物有不同的质量,通过质谱分析可以得到有关各组分的数量比。
通过比较标记反应产物的相对丰度,可以定量分析待测蛋白质的表达差异。
标记蛋白质鉴定(TMT)是一种与iTRAQ类似的同位素标记质谱定量方法。
TMT 实验中,多个待测样品用不同的同位素标记,然后将这些样品混合在一起通过液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)进行分析。
通过质谱分析可以得到不同样品中蛋白质的相对表达量和差异表达蛋白质的鉴定。
定量免疫学方法也是蛋白质组学定量分析的重要方法之一。
相比于质谱定量法,定量免疫学方法具有高灵敏度、高特异性和高通量等优点。
常用的定量免疫学方法包括酶联免疫吸附实验(ELISA)、西方印迹(Western blotting)和流式细胞术(flow cytometry)等。
生物化学实验中的蛋白质分析技术蛋白质分析技术在生物化学实验中的应用在生物化学实验中,蛋白质分析技术是一项十分重要的技术。
蛋白质是生物体中最基本的分子组成部分之一,对于研究生物体的生化过程和功能具有重要意义。
本文将介绍几种常用的蛋白质分析技术,包括SDS-PAGE、Western Blot、质谱分析和免疫沉淀等。
重点讲述这些技术的原理、操作步骤以及其在生物化学实验中的应用。
一、SDS-PAGE技术SDS-PAGE(Sodium Dodecyl Sulfate Polyacrylamide Gel Electrophoresis)是一种常用的蛋白质分析技术,通过电泳的方式将蛋白质样品分离成不同的电泳带来研究其分子量和组成。
1. 原理:SDS-PAGE利用带负电荷的SDS使蛋白质样品具有净电荷,根据蛋白质分子量的不同,通过电泳的方式将蛋白质分离到聚丙烯酰胺凝胶中,然后用染色方法可视化蛋白质电泳带。
2. 操作步骤:制备凝胶、样品处理、电泳、染色等。
3. 应用:常用于估计蛋白质的分子量、纯度和相对表达水平等。
二、Western Blot技术Western Blot是一种用于检测特定蛋白质的技术,常用于研究蛋白质的表达、定位和相互作用等。
1. 原理:Western Blot主要由蛋白质电泳分离、转膜、蛋白质与抗体的特异性结合以及信号检测等步骤组成。
2. 操作步骤:SDS-PAGE分离蛋白质、转膜、抗体孵育、信号检测等。
3. 应用:常用于检测特定蛋白质在不同样品中的表达差异、研究蛋白质的翻译后修饰等。
三、质谱分析技术质谱分析技术是一种可以确定蛋白质分子量和氨基酸序列的方法,广泛应用于蛋白质鉴定和结构研究等领域。
1. 原理:质谱分析技术常用的方法有质谱图谱分析和串联质谱分析。
2. 操作步骤:样品制备、质谱分析、数据解析等。
3. 应用:常用于蛋白质的鉴定、研究蛋白质的翻译后修饰、蛋白质定量等。
四、免疫沉淀技术免疫沉淀技术是一种通过特异性抗体与特定蛋白质结合,进而将目标蛋白质从混合物中分离出来的方法,常用于研究蛋白质相互作用以及功能等。
生物信息学中的蛋白质分析技术蛋白质是生物体中不可或缺的重要分子,其功能包括酶催化、信号传递、结构支持等多种生命活动。
蛋白质分析是生物信息学研究中的重要领域之一,目的是从生物样品中获取有关蛋白质的信息。
这项技术不仅可以揭示蛋白质的结构和功能,还可以为医学诊断和药物研发提供重要的参考。
一、蛋白质分析的基本流程蛋白质分析的基本流程包括蛋白质提取、分离纯化、分析鉴定等几个步骤。
蛋白质提取是将目标蛋白从生物样品中提取出来,一般采用机械破碎、化学分解、超声波等方法。
分离纯化是将目标蛋白与其他蛋白分离开来,可以采用电泳、层析、过滤等方法。
分析鉴定则是对分离得到的蛋白进行化学、物理和生物学的分析,如质谱分析、核酸测序、免疫学检测等方法。
二、质谱分析技术的应用质谱分析是一种可以同时检测多种蛋白质组成和结构的方法,其技术基础是将蛋白质分离并进行离子化后进行质量分析。
这种方法被广泛地应用于蛋白质组学和蛋白质互作等领域。
在蛋白质组学中,将样品中的所有蛋白质分离并进行质谱分析,可以获得大量的信息,如蛋白质的数量、种类、分布和修饰状态等。
质谱分析技术的应用还包括蛋白质互作的研究。
蛋白质互作通常是指两个或多个蛋白质之间的相互作用,这在生物活动中非常重要。
质谱分析可以用来鉴定已知的蛋白质互作或发现新的蛋白质互作,这对于深入理解生物活动机理具有重要意义。
三、结构生物学的应用结构生物学是研究蛋白质三维结构的一种技术,其目的是探究蛋白质结构与功能之间的关系。
现有的结构生物学技术主要包括X射线晶体学、核磁共振和电子显微镜。
通过这些技术,可以确定单个蛋白质的原子结构,也可以确定蛋白质的超分子结构,如蛋白质-DNA复合物和蛋白质-蛋白质复合物等。
在药物研发方面,结构生物学的应用也非常广泛。
通过了解蛋白质的结构,可以设计出针对特定靶标的药物,并对药物与靶标之间的相互作用进行优化和改良。
四、生物信息学的应用生物信息学是将计算机和数学等方法应用于生物学研究的一种学科。
蛋白质和多肽反相hplc分析和纯化指南Protein and peptide reverse phase HPLC analysis and purification guideline蛋白质和多肽反相HPLC分析和纯化指南Introduction:引言:Protein and peptide analysis and purification are essential steps in protein research and the pharmaceutical industry. Reverse phase high-performance liquid chromatography (RP-HPLC) is a widely used technique for separating, analyzing, and purifying proteins and peptides based on their hydrophobicity. This guideline aims to provide an overviewof the principles, methods, and best practices for RP-HPLC analysis and purification of proteins and peptides.蛋白质和多肽的分析与纯化是蛋白质研究和制药行业中的关键步骤。
反相高效液相色谱(RP-HPLC)是一种基于蛋白质和多肽亲疏水性的广泛应用技术,用于蛋白质和多肽的分离、分析和纯化。
本指南旨在提供关于RP-HPLC分析与纯化蛋白质和多肽的原理、方法以及最佳实践的概述。
Principles of RP-HPLC:RP-HPLC原理:Reverse phase chromatography involves the separation of analytes based on their hydrophobicity using a hydrophobic stationary phase and a polar mobile phase. In RP-HPLC, a sample containing proteins or peptides is injected onto a column packed with a hydrophobic stationary phase such asC18. The polarity of the mobile phase, typically a mixture of water and an organic solvent, is gradually increased to elute the analytes. Proteins and peptides with higher hydrophobicity will have a higher tendency to interact with the hydrophobic stationary phase, resulting in delayed elution.反相色谱是利用亲疏水性质将待分析物分离的方法,其中使用了一个疏水固定相和一个极性流动相。
Introduction to Protein Analysis Tools and Prediction 呂平江博士/ 鄭兆勝博士清大生資所ExPASy (Ex pert P rotein A nalysis Sy stem)proteomics serverSwitzerland: /at Swiss Institute of Bioinformatics, Geneva Australia: /at Australian Proteome Analysis Facility, Sydney Brazil: /at Laboratório Nacional de Computação Científica, PetrópolisCanada: /at Canadian Bioinformatics Resource, Halifax Taiwan:/at National Health Research InstituteChina: /at Peking UniversityKorea: /at Yonsei Proteome Research Center, SeoulIntroduction•ExPASy是由瑞士生物資訊機構(Swiss Institute of Bioinformatics,SIB)所架設的伺服器。
此伺服器包含了資料庫、工具&軟體、教育服務及一些相關連結。
因為此伺服器所收集的資料及所提供的服務相當的龐大,無法一一概述,因此,我們在本課程中只針對資料庫及一部分的工具和軟體加以說明。
其餘部分將由有同學自行參考。
十二大分類項目•蛋白質身份辨識與理化特性分析(Identification and characterization)•人工轉譯分析(DNA -> Protein)•相似序列搜尋(Similarity searches)•樣板序列搜尋與分析(Pattern and profile searches)•轉譯後修飾預測(Post-translational modification prediction)•拓樸特性預測分析(Topology prediction)•一級結構分析(Primary structure analysis)•二級結構分析(Secondary structure prediction)•三級結構分析(Tertiary structure)•序列比對(Sequence alignment)•演化樹分析(Phylogenetic analysis)•生物學關鍵字分析(Biological text analysis)蛋白質身份辨識與理化特性分析(Identification and characterization)•以氨基酸序列預測質譜指紋(mass fingerprinting) 或以質譜指紋來確認蛋白質成份。
•分子量(MW)、等電點(pI)計算與氨基酸成分比例分析–Compute pI/Mw, AACompSim•蛋白分解酵素切位與片段分析–PeptideCutter, PeptideMasssequence樣板序列搜尋與分析(Pattern and profile searches)•搜尋經常被重複性使用的功能或結構性樣版序列。
例如Calcium binding domain, ATPase active site 等。
•ScanProsite, PPSEARCH, MotifScan拓樸特性預測分析(Topology prediction)•利用氨基酸序列預測蛋白質的拓樸學特性。
例如:•胞內分佈位置(subcellular localization)預測–PSORT, TargetP•穿膜區域預測–PredictProtein, SOSUI, TMHMM, TMpred•蛋白質骨架走勢分析–TopPred一級結構分析(Primary structure analysis)•基本理化特性計算分析–ProtParam, Compute pI/Mw•特殊序列搜尋分析–重複性: REP–coiled coil:Coils•親水性、親油性、SSE預測分析–ProtScale, DrawhcasequenceResultsSWISS PDB ViewerSWISS PDB Viewer1.Distance/angle2.Ribbon3.Ramachandran plot4.Mutation/rotamer5.Superimposepute H-bond/energy7.Energy minimization8.CavityProgram for automatically plotting protein-ligand interactionsWritten by Andrew Wallace& Roman Laskowski/bsm/ligplot/ligplot.htmlLigplot•Automatically generates schematic diagrams of protein-ligand interactions for a given PDB file. The interactions shown are thosemediated by hydrogen bonds and by hydrophobic contacts. Hydrogen bonds are indicated by dashed lines between the atoms involved, while hydrophobic contacts are represented by an arc with spokes radiating towards the ligand atoms they contact.•Availability•Available free to academic institutions by anonymous ftp from: .•We also recommend you pick up the following:-•HBPLUS -program for calculating hydrogen bonds and hydrophobic contacts for plotting by LIGPLOT.•Het Group Dictionary -dictionary of Het Groups•NACCESS-program for computing solvent accessible areas •Windows versionSample outputIntroduction•The program automatically generates schematic diagrams of protein-ligand interactions from the 3D coordinates in a PDB file.•LIGPLOT algorithm:–In principle, it reads in the 3D structure of the ligand from the PDB file, together with the protein residues it interacts with, and `unrolls' each object about itsrotatable bonds, flattening them out onto the 2D page.•By default, LIGPLOT expects the hydrogen bonds and nonbonded contacts to be calculated by the HBPLUS program and can read the files output by that program.•The major drawback of HBPLUS is unable to recognize the majority of ligands in the PDB. As a result, it may miss certain hydrogen bondsbetween protein and ligand, and then LIGPLOT will not plot these absent interactions.•Het Group Dictionary (HBADD)aims to cut out the manual effort of creating the input file for HBPLUS. The HBADD program identifies all the HETATM groups in your PDB file and searches for them in the Het Group Dictionary, available from the PDB in either PDB format:Login passwordThe script file that runs LIGPLOT assumes the following:1.That you have installed the HBPLUS program in accordance with theInstallation Instructions.2.That you have installed the Het Group Dictionary, as het_dictionary.txt oras components.cif, in the LIGPLOT directory3.LIGPLOT program, ligplot.scr can automatically run HBPLUS prgram togenerate two filesf ilename.hhb and filename.nnba. Running LIGPLOT (ligplot + hbplus)To run LIGPLOT, type the following:ligplot filename [residue1] [residue2] [chain_id] [-w] [-m][user@ibm4 ligplot]$ligplot1TI5_removeSG.pdb 23 26 A filename: Åyour protein structure[residue1] and [residue2]: Åits first and last residues ex: 18 20 Åresidue numberNAG 18 MAN 20 Åresidue name and residue number[chain_id]: Åmust be entered unless ligand's chain is blank. [-w]: Åligand is a water molecule[-m]: Åligand is a single metal ionInputs to LIGPLOT•The input files:–filename.pdbInput PDB file holding the coordinates of the protein and ligand.–filename.hhbList hydrogen-bonds in structure. (generated by HBPLUSprogram)–filename.nnbList nonbonded contacts in structure. (generated by HBPLUSprogram)–ligplot.prmParameter file to govern the final appearance of the plot.•Note: should not use the filename"ligplot.pdb" as the input fileEdit parameters [user@ibm4 ligplot]$vi ligplot.prmOutputs produced byLIGPLOT•The output files:•ligplot.ps-Colour or black-and-white PostScript•ligplot.pdb-Output file, in PDB format, of the final flattened molecules (ligand and interacting protein residues) as shown in the plot.•ligplot.hhb-Output file of just those hydrogen bonds in the original filename.hhb file that were used by LIGPLOT in producing the final picture•ligplot.nnb-Output file of just those hydrophobic contacts in the original filename.nnb file that were used by LIGPLOT in producing the final picture•ligplot.bonds-Output file listing of bonds and bond-types in the final LIGPLOT picture.•ligplot.frm-Output file, in PDB format, of the molecules. You can view this file using Rasmol to see only those residues that interact with the ligand.•ligplot.rcm-Output file listing all the residues on the plot.•ligplot.drw-File for input to the Java-based LIGPLOT editor, LigEd.PostScript (.ps)Ghostscript, Ghostview andGSview•/~ghost/index.htmLigplot.psb. Showing atom solvent accessibilities computed by NACCESS< Naccess(xxxx.asa) + Ligplot>Edit parametersPLOT PARAMETERS---------------Y <-Include: Hydrophobic interactions -(Y/N)?Y <-Include: Water molecules -(Y/N)?Y <-Include: Non-ligand mainchain atoms -(Y/N)?Y <-Include: Linked residues listed below -(Y/N)?Y <-Plot: Hydrogen bonds -(Y/N)?N <-Plot: Internal H-bonds in ligand-(Y/N)?N <-Plot: External groups covalently bonded to ligand-(Y/N)?N <-Plot: Bonds showing hydrophobic interactions -(Y/N)?N <-Plot: Schematic ligand representation [see Note 1] -(Y/N)?N <-Plot: Schematic non-ligand residues [see Note 1] -(Y/N)?Y <-Plot: Accessibility shading [see Note 2] -(Y/N)?Y <-Plot: Ligand atoms (as spheres) -(Y/N)?Y <-Plot: Nonligand atoms (as spheres) -(Y/N)?Y <-Plot: Double-and triple bonds (for ligplot.pdb only) -(Y/N)?Y <-Print: Key to symbols in PostScript output -(Y/N)?Y <-Print: Residue names/numbers -(Y/N)?Y <-Print: Atom names -(Y/N)?Y <-Print: H-bond lengths on hydrogen bonds -(Y/N)?Y <-Print: Filename as title if title not explicitly defined -(Y/N)?Y <-Plot: Solid lines for covalent bonds to external groups -(Y/N)?0 <-Non-bonded contacts option [see Note 3]Y <-Plot: Water atoms (as spheres) -(Y/N)?Y <-Plot: Accessibility shading for the ligand only -(Y/N)?Orange: Buried atomsYELLOW: Accessible atoms< Naccess(xxxx.asa) + Ligplot> [user@ibm4 ligplot]$./naccess1TI5_removeSG.pdb -h –f -f: "full" output format-h: HETATMs are to be included in the accessibility calculations[user@ibm4 naccess2.1.1]$ ls1TI5_removeSG.asa1TI5_removeSG.pdb 1TI5_removeSG.log 1TI5_removeSG.rsa (for HADOCK)[user@ibm4 ligplot]$ligplot1TI5_removeSG.asa 23 26 AProcheckProtein Structure Analysisprocheck/~roman/procheck/procheck.htmlIntroduction•Programs to check the Stereochemical Quality of Protein Structures •The aim of PROCHECK is to assess both the overall stereochemical quality of a given protein structure and to give an indication of itslocal, residue-by-residue reliability.•The checks also make use of “ideal”bond lengths and bond angles, as derived from CSD Database-now numbering over 100,000structures.•The PROCHECK programs produce a number of plots, together witha detailed residue-by-residue listing.•The input to PROCHECK is a single PDB fileAvailability•Available by anonymous ftp on: Source code can be picked up from:–pub/procheck/tar3_5pub/procheck/source3_5–pub/procheck/tar3_5/manual.tar.Z–Users must sign a Confidentiality Agreement and post or fax it to:-–Roman LaskowskiEuropean Bioinformatics Institute,Wellcome Trust Genome Campus,Hinxton,Cambridge, CB10 1SD,United KingdomFax:-+44 (0)1223 494 468•Note:A version of the PROCHECK programs running under Windows NT has been prepared by Bernhard Rupp of theLawrence Livermore National Laboratory and is available byanonymous ftp from /ftp_warning.html.Procheck programs•CLEAN -cleaning PDB file–corrects any mislabelled atoms and creates a new coordinates file (XXX.new)•SECSTR -assigning secondary structure•NB -identifying non-bonded interactions•ANGLEN -calculating bond lengths and bond angles •TPLOT, PPLOT, BPLOT -graphical outputInput requirements•The only input required for PROCHECK is the PDB file holding the coordinates of the structure of interest. For NMR structures, each model in the ensemble should be separated by the correct MODEL and ENDMDL records.Only the first model will be analysed. A separateprogram, PROCHECK-NMR deals specifically with the analysis of NMR structures.PROCHECK outputs •PostScript files (XXX.ps)•The plots show each of the different PROCHECK analyses generated by the run. •Residue-by-residue listing (xxx.out)•The residue-by-residue lists all the computed stereochemical properties, by residue, in a printable ASCII text file.•Other output files•n: Main-chain bond lengths and bond angles used by the plotting programs •.nb List of atom-pairs making near-neighbour contacts•.new "Cleaned-up" version of the original coordinates file•.pln Coordinates of atoms in planar groups•.rin Residue information used by the plotting programs•.sco Main-chain and side-chain properties•.sdh Residue-by-residue G-factors–.new file The .new file holds the `cleaned-up' version of the original PDB file, with any wrong atom-labels corrected in accordance with the IUPAC namingconventions–.sum file The .sum file gives a short summary of the overall PROCHECK RESULTS.•Log files•Each program in the suite also produces its own log file. Should the PROCHECK suite crash, or give strange-looking results, these log files should be the first place you look for a reason for the problem. The 7files are:•anglen.log clean.log pplot.log tplot.log bplot.log nb.log secstr.logProcheck output• a. Ramachandran plot quality –percentage of the protein's residues that are in the core regions of the Ramachandran plot.• b. Peptide bond planarity –standard deviation of the protein structure's omega torsion angles.• c. Bad non-bonded interactions –number of bad contacts per 100 residues.• d.C a tetrahedral distortion –standard deviation of the z torsion angle (Ca, N, C, and C b).• e. Main-chain hydrogen bond energy -standard deviation of the hydrogen bond energies for main-chain hydrogen bonds.• f. Overall G-factor -average of different Gfactors for each residue in the structure.Procheck output。